ANALISA USAHA PEMBENIHAN

TEKNIK DAN AN
DI PT CENTRA
DESA
PROGR
JURUSAN TEKNOL
LA
ANALISA USAHA PEMBENIHAN UDANG
NTRAL PERTIWI BAHARI BREEDING OPER
DESA SUAK, KECAMATAN SIDOMULYO,
LAMPUNG SELATAN
Oleh :
Willyarta Yudisti
NRP : 4408418277
USULAN PRAKTEK AKHIR
PROGRAM DIPLOMA 4
ROGRAM STUDI TEKNOLOGI AKUAKULT
KNOLOGI PENGELOLAAN SUMBERDAYA
SEKOLAH TINGGI PERIKANAN
JAKARTA
2011
LAPORAN PRAKTEK INTEGRASI
ANG VANAME
OPERATION
ULTUR
AYA PERAIRAN

TEKNIK DAN AN
DI PT CENTRA
DESA
Nam
NRP
Prog
Untu
PROGR
JURUSAN TEKNOL
N ANALISA USAHA PEMBENIHAN UDANG
NTRAL PERTIWI BAHARI BREEDING OPER
DESA SUAK, KECAMATAN SIDOMULYO,
LAMPUNG SELATAN
Oleh :
Nama : Willyarta Yudisti
NRP : 4408418277
Program studi : Teknologi Akuakultur
LAPORAN PRAKTEK INTEGRASI
Sebagai Salah Satu Syarat
Untuk Mengikuti Perkuliahan Semester VII
Pada Sekolah Tinggi Perikanan
PROGRAM DIPLOMA 4
ROGRAM STUDI TEKNOLOGI AKUAKULT
KNOLOGI PENGELOLAAN SUMBERDAYA
SEKOLAH TINGGI PERIKANAN
JAKARTA
2011
ANG VANAME
OPERATION
ULTUR
AYA PERAIRAN

i
LEMBAR PENGESAHAN
Nama : Willyarta Yudisti
NRP : 4408418277
Judul : Teknik dan Analisa Usaha Pembenihan Udang
Vaname (Litopenaeus vannamei) di PT Central
Pertiwi Bahari Breeding Operation Desa Suak-
Sidomulyo, Lampung Selatan
Program Studi : Teknologi Akuakultur
Jurusan : Teknologi Pengelolaan Sumberdaya Perairan
Menyetujui :
( Dra. Hj Rachmatun Suyanto.) (Amyda Suryati Panjaitan, A.Pi.)
Pembimbing Pembimbing
Mengetahui :
(Sinung Rahardjo, S.Pi, M.Si) (Maria Goreti Eny K, S.St.Pi.M.MPi)
Ketua Jurusan Ketua Program Studi
Tanggal Pengesahan : ……..………………

ii
Kata Pengantar
Laporan pratek integrasi ini merupakan bentuk pertanggungjawaban atas
hasil pelaksanaan praktek integrasi yang dilaksanakan pada tanggal 5 Mei 2011
sampai dengan 3 Juli 2011.
Dengan selesainya laporan praktek integrasi ini tak lupa penulis
memanjatkan puji serta syukur kehadirat Allah swt. Judul dari Praktek Integrasi
ini adalah “Teknik dan Analisa Usaha Pembenihan Udang Vaname di PT
Central Pertiwi Bahari Breeding Operation Desa Suak Kecamatan
Sidomulyo Lampung Selatan”.
Penulis menyadari bahwa di dalam penulisan laporan integrasi ini masih
terdapat kekurangan. Oleh karena itu, penulis menerima segala saran, pendapat
maupun kritik yang dapat memperbaiki untuk kesempurnaan isi laporan ini.
Semoga laporan ini dapat bermanfaat bagi pembaca dalam rangka pengembangan
dan pengelolaan sumberdaya perikanan yang berkesinambungan hingga masa
yang akan datang.
Jakarta, Agustus 2011
Penulis

iii
Ucapan Terima Kasih
Penulis mengucapkan terima kasih kepada Dra. Hj. Rachmatun Suyanto
dan Ibu Amyda Suryati Panjaitan, A.Pi. Selaku dosen pembimbing yang telah
memberikan bimbingan, arahan dan semangat dalam penyusunan laporan praktek
integrasi ini.
Ucapan terima kasih juga disampaikan kepada Yth:
1. Bapak Dr. Aef Permadi, S.Pi, M.Si selaku Ketua Sekolah Tinggi Perikanan
2. Bapak Sinung Rahardjo, A.Pi, M.Si selaku Ketua Jurusan Teknologi
Pengelolaan Sumberdaya Perairan.
3. Ibu Maria Goreti Eny K, S.St.Pi, M.MPi selaku Ketua Program Studi
Teknologi Pengelolaan Sumberdaya Perairan.
Dan kepada seluruh pihak terkait yang ikut membantu dalam penyelesaian laporan
praktek integrasi ini.

iv
DAFTAR ISI
Halaman
LEMBAR PENGESAHAN ................................................................................... i
KATA PENGANTAR........................................................................................... ii
UCAPAN TERIMA KASIH ............................................................................... iii
DAFTAR ISI......................................................................................................... iv
DAFTAR GAMBAR........................................................................................... vii
DAFTAR TABEL .............................................................................................. viii
BAB 1 PENDAHULUAN ..................................................................................... 1
1.1. Latar Belakang ..................................................................................... 1
1.1. Tujuan................................................................................................... 2
1.2. Batasan Masalah................................................................................... 3
BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA............................................................................ 4
2.1. Biologi Udang Vaname........................................................................ 4
2.1.1. Klasifikasi dan Morfologi...................................................... 4
2.1.1. Habitat dan Penyebaran ......................................................... 5
2.1.2. Siklus Hidup dan Reproduksi ................................................ 5
2.1.3. Pakan dan Kebiasaan Makan ................................................. 6
2.1.4. Pergantian Kulit (Molting)..................................................... 7
2.1.5. Perkawinan............................................................................. 8
2.1.6. Maturasi ................................................................................. 8
2.1.7. Pemijahan dan Penetasan Telur ............................................. 9
2.2. Pemilihan Lokasi Hatchery................................................................ 10
2.3. Penyediaan Air Pemeliharaan ............................................................ 11
2.4. Pengelolaan Induk.............................................................................. 12
2.4.1. Wadah Pemeliharaan Induk ................................................. 12
2.4.2. Pengangkutan dan Aklimatisasi Induk................................. 13
2.4.3. Manajemen Pemberian Pakan Induk.................................... 14
2.4.4. Manajemen Kualitas Air Pemeliharaan Induk..................... 15
2.5. Pemeliharaan Larva............................................................................ 15

v
2.5.1. Persiapan Wadah Pemeliharaan Larva................................. 15
2.5.2. Penebaran Nauplii................................................................ 17
2.5.3. Pengelolaan Pakan ............................................................... 17
2.5.4. Perkembangan Larva............................................................ 18
2.5.5. Kualitas Air.......................................................................... 20
2.5.6. Hama dan Penyakit .............................................................. 22
2.5.7. Pencegahan Hama dan Penyakit .......................................... 22
2.6. Kultur Pakan Alami............................................................................ 23
2.6.1. Kultur Fitoplankton.............................................................. 23
2.6.2. Penetasan Artemia................................................................ 27
2.7. Panen dan Transportasi Benur............................................................ 29
2.8. Analisa Usaha..................................................................................... 30
2.8.1. Perkiraan Laba Rugi............................................................. 31
2.8.2. Aliran Kas ............................................................................ 31
2.8.3. Analisa Investasi .................................................................. 31
2.8.4. Break Even Point (BEP) ...................................................... 33
BAB 3 METODOLOGI...................................................................................... 34
3.1. Waktu dan Tempat Praktek Integrasi................................................. 34
3.2. Alat dan Bahan................................................................................... 34
3.2.1. Alat....................................................................................... 34
3.2.2. Bahan ................................................................................... 35
3.3. Metode Kerja...................................................................................... 36
3.3.1. Metode Pengumpulan Data.................................................. 36
3.3.2. Metode Analisis Data........................................................... 48
BAB 4 KEADAAN UMUM LOKASI ............................................................... 51
4.1. Lokasi................................................................................................. 51
4.2. Sumber Daya Manusia dan Struktur Organisasi ................................ 52
4.3. Kapasitas Produksi dan Wilayah Pemasaran ..................................... 53
4.4. Fasilitas............................................................................................... 53
4.4.1. Maturation and Nauplii Production Departement (MNPD) 54
4.4.2. Fry Production Departement (FPD).................................... 55
4.4.3. Departemen Pengelola Air (Water Departement)................ 55
4.4.4. Biofeed Departement............................................................ 56
4.4.5. Departemen Pengendali Mutu (Quality Control)................. 56

vi
4.5. Sumber Tenaga Listrik....................................................................... 57
4.6. Alur Produksi ..................................................................................... 57
BAB 5 HASIL DAN PEMBAHASAN............................................................... 59
5.1. Penyediaan Air Pemeliharaan ............................................................ 59
5.2. Pemeliharaan Induk............................................................................ 62
5.2.1. Persiapan Ruangan dan Media Pemeliharaan ...................... 62
5.2.2. Pematangan Induk................................................................ 63
5.3. Produksi Nauplii................................................................................. 66
5.3.1. Persiapan Bak dan Media Penetasan.................................... 66
5.3.2. Pemilihan Induk Mating dan Penetasan Telur..................... 67
5.3.3. Penampungan Nauplii.......................................................... 71
5.3.4. Sampling Kualitas dan Kuantitas Nauplii............................ 73
5.3.5. Panen Nauplii dan Transportasi Nauplii .............................. 75
5.4. Produksi Benur................................................................................... 76
5.4.1. Persiapan Bak dan Media Pemeliharaan.............................. 76
5.4.2. Penebaran Nauplii................................................................ 77
5.4.3. Pengamatan Perkembangan dan Kesehatan Larva............... 77
5.4.4. Pemberian Pakan.................................................................. 78
5.4.5. Manajemen Kualitas Air...................................................... 80
5.4.6. Panen Benur......................................................................... 82
5.4.7. Pengemasan dan Transportasi Benur................................... 82
5.5. Kultur Pakan Alami............................................................................ 83
5.5.1. Kultur Fitoplankton.............................................................. 84
5.5.2. Penetasan Artemia................................................................ 85
5.6. Analisa Usaha..................................................................................... 86
5.6.1. Perkiraan Laba Rugi............................................................. 86
5.6.2. Aliran Kas ............................................................................ 87
5.6.3. Analisa Investasi .................................................................. 88
5.6.4. Break Even Point (BEP) ...................................................... 91
BAB 6 KESIMPULAN DAN SARAN............................................................... 93
6.1. Kesimpulan......................................................................................... 93
6.2. Saran................................................................................................... 93
DAFTAR PUTAKA ............................................................................................ 94

vii
DAFTAR GAMBAR
Gambar 1. Lokasi PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation....................... 51
Gambar 2. Struktur Organisasi Perusahaan .......................................................... 53
Gambar 3. Ruangan Dalam Maturation and Nauplii Production Departement... 55
Gambar 4. Bagan Alur Produksi Perusahaan........................................................ 58
Gambar 5. Injeksi Kaporit Menggunakan Dosing ................................................ 60
Gambar 6. Sand Filter I dan II.............................................................................. 61
Gambar 7. Penampang Insang pada Induk Mati................................................... 65
Gambar 8. Induk Matang dan Mating................................................................... 68
Gambar 9. Penomoran pada Bak Penetasan.......................................................... 69
Gambar 10. Perbedaan Telur Fertil (a) dan Non Fertil (b) ................................... 71
Gambar 11. Penomoran Bak Penampungan Nauplii ............................................ 72
Gambar 12. Grafik pH Air Bak C25 Selama Pemeliharaan.................................. 81
Gambar 13. Grafik Kadar TAN pada Bak C25..................................................... 81
Gambar 14. Grafik Kadar Amonia pada Bak C25 ................................................ 82
Gambar 15. Pakan Alami yang Digunakan Selama Praktek................................. 83
Gambar 16. Hatching Rate Artemia pada Beberapa Wakru Setelah Kultur......... 85
Gambar 17. Grafik BEP Produksi dan Harga Benur............................................. 91

viii
DAFTAR TABEL
Tabel 1. Stadia Perkembangan Larva Litopenaeus vannamei .............................. 18
Tabel 2. Komposisi Pupuk Kultur Alga Skala Masal ........................................... 25
Tabel 3. Komposisi Pupuk Alga Skala Intermediate ............................................ 26
Tabel 4. Komposisi Pupuk Alga Murni (Guilard f/2 Medium) ............................ 26
Tabel 5. Alat yang Digunakan Selama Praktek .................................................... 34
Tabel 6. Daftar Bahan yang Digunakan Selama Praktek...................................... 35
Tabel 7. Klasifikasi Karyawan Berdasarkan Latar Belakang Pendidikan ............ 52
Tabel 8. Contoh Pemberian Pakan pada Bak C25 ................................................ 79
Tabel 9. Daftar Bunga dan Angsuran SetiapTahun .............................................. 86
Tabel 10. Proyeksi Laba Rugi Selama 6 Tahun.................................................... 87
Tabel 11. Aliran Kas Usaha Selama 6 Tahun ....................................................... 87
Tabel 12. Kas Masuk Bersih dan Akumulasi Kas Bersih..................................... 88

1
BAB 1
PENDAHULUAN
1.1. Latar Belakang
Budidaya udang di Indonesia mulai berkembang pesat sejak tahun 1980 –
an. Pada awalnya jenis udang yang dibudidayakan di Indonesia adalah udang
windu (Penaeus monodon) yang merupakan udang asli Indonesia. Namun, karena
serangan virus di tambak sejak tahun 1990 yang dikenal dengan sebutan WSSV
(White Spot Syndrom Virus), produksi udang windu mengalami penurunan. Oleh
karena itu, pada tahun 2001 Menteri Kelautan dan Perikanan mengintroduksi
induk udang vaname (Litopenaeus vannamei) asal Amerika Selatan dan Hawai
untuk meningkatkan kembali produksi udang nasional.
Udang yang habitat aslinya di pantai dan laut Amerika Latin, seperti
Meksiko dan Peurtrico ini telah diimpor oleh berbagai negara di Asia seperti Cina,
Thailand, India, Bangladesh, Malaysia, dan Vietnam. Daya tariknya terletak pada
ketahanannya terhadap penyakit dan tingkat produktifitas yang dapat dicapai.
Udang ini memiliki beberapa keunggulan antara lain dalam hal kebutuhan
kandungan protein yang relatif rendah, tumbuh cepat, toleran terhadap suhu air
dan oksigen terlarut yang relatif rendah, dan mampu memanfaatkan seluruh
kolom air dibanding udang windu. Selain itu, udang ini dapat matang gonad di
tambak (Cholik dkk, 2005).
Udang termasuk komoditas utama selain rumput laut yang diprogramkan
dalam revitalisasi perikanan budidaya nasional. Teknologi budidaya udang telah
banyak dikuasai dan berkembang dalam masyarakat. Peluang pasar udang untuk

2
ekspor serta serapan pasar luar negeri tinggi. Akan tetapi, potensi serapan pasar
dalam negeri belum terkelola dengan maksimal.
Semenjak budidaya udang vaname mendapat legalitas dari pemerintah,
kebutuhan induk vaname dalam negeri pun mengalami peningkatan. Hal ini untuk
memenuhi kebutuhan benur yang terus menerus meningkat. Benur yang
diharapkan di pasar adalah benur yang berkualitas sehingga dapat menghasilkan
udang yang berkualitas juga. Dalam memproduksi benur yang berkualitas
diperlukan menajemen dan pengelolaan induk yang baik dari segi genetik, nutrisi,
maupun lingkungan hidupnya. Melalui kegiatan pembenihan yang baik dan sesuai
dengan kaidah yang ditetapkan, diharapkan dapat menghasilkan benur yang baik
sesuai dengan permintaan pasar.
Seluruh usaha pembenihan tidak lepas dari persoalan biaya. Suatu usaha
tidak akan terlaksana apabila tidak ada sumber biaya yang mencukupi. Sehingga
sebelum melakukan suatu usaha, suatu analisa keuangan sangat dibutuhkan untuk
mengetahui kelayakan usaha tersebut.
Berdasarkan latar belakang di atas, maka penulis tertarik untuk
mempelajari teknik dan analisa usaha pembenihan udang vaname. Oleh karena
itu, dalam pelaksanaan praktek integrasi ini penulis mengambil judul “Teknik
dan Analisa Usaha Pembenihan Udang Vaname (Litopenaeus vannamei) di
PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation di Desa Suak – Sidomulyo
Lampung Selatan”.
1.1. Tujuan
a. Mengkaji penerapan teknik pembenihan udang vaname dari awal sampai
akhir produksi.

3
b. Mempelajari analisa usaha pembenihan udang vaname.
1.2. Batasan Masalah
Dalam praktek integrasi ini penulis membatasi masalah pada
1) Teknik pembenihan udang vaname yang meliputi pemeliharaan induk,
penetasan telur, pemeliharaan larva, pemberian pakan alami dan pakan
buatan, pengamatan kualitas air, serta pemanenan benur.
2) Analisa usaha pembenihan udang vaname yang meliputi proyeksi laba
rugi, aliran kas, payback period, Net Present Value (NPV), Internal Rate
of Return, BC Ratio, dan Break Even Point.

4
BAB 2
TINJAUAN PUSTAKA
2.1. Biologi Udang Vaname
2.1.1. Klasifikasi dan Morfologi
Wyban dan Sweeney (1991) menggolongkan udang vaname dalam
klasifikasi sebagai berikut:
Phylum : Arthropoda
Class : Crustacea
Subclass : Malacostraca
Seri : Eumalacostraca
Superordo : Eucarida
Ordo : Decapoda
Subordo : Dendrobrachiata
Infraordo : Peneaeidea
Superfamily : Penaeoidea
Family : Penaeidae
Genus : Penaeus
Subgenus : Litopenaeus
Species : Litopenaeus vannamei
Udang vaname merupakan kelas krustasea dan termasuk kedalam ordo
dekapoda bersama udang, lobster, dan kepiting. Sesuai dengan namanya, hewan
ini memiliki 10 kaki dan memiliki karapas yang berkembang baik yang menutupi
kepala dan dada yang menyatu. Udang vaname termasuk kedalam famili
penaeidae. Udang penaeid berbeda dengan ordo dekapoda lainnya, karena udang

5
ini menetas pertama kali menjadi stadia nauplius, dan induk betina melepaskan
dan membiarkan telurnya menetas begitu saja dalam air. Udang ini juga memiliki
rostrum yang bergerigi (Wyban dan Sweeney, 1991).
2.1.1. Habitat dan Penyebaran
Litopenaeus vannamei merupakan udang asli yang hidup di pesisir
pasifik Meksiko, Amerika Tengah, dan Amerika Selatan yang memiliki perairan
dengan suhu umumnya tetap 20 0
C sepanjang tahun. Udang vaname ini telah
banyak tersebar ke seluruh dunia karena teknik budidaya yang relatif mudah
(Wyban dan Sweeney, 1991).
2.1.2. Siklus Hidup dan Reproduksi
Litopenaeus vannamei merupakan hewan katadromus, yaitu udang
dewasa berada di laut lepas sedangkan larva dan yuana bermigrasi menuju
perairan pantai. Pada habitat aslinya, udang menjadi dewasa secara seksual,
kawin, dan melepaskan telur di laut lepas yang memiliki kedalaman air sekitar 70
meter di perairan Amerika Utara, Amerika Selatan, dan Amerika Tengah pada
suhu 26-28 0
C. Air laut memiliki salinitas sekitar 35 ppt. Telur udang vaname
menetas dan larva berkembang pada perairan ini dan bersifat planktonis. Post
larva udang vaname bergerak menuju perairan pantai dan hidup di dasar perairan
estuari yang dangkal (Wyban dan Sweeney, 1991).
Perairan estuari yang dangkal memiliki parameter kualitas air yang lebih
bervariasi daripada kondisi di perairan laut lepas dan kaya akan nutrisi. Setelah
beberapa bulan hidup di perairan estuari, udang dewasa kembali menuju
lingkungan laut lepas tempat pematangan gonad, perkawinan, dan pelepasan telur
terjadi menjelaskan bahwa setelah menetas udang penaeid bermetamorfosis

6
melalui tiga stadia utama, yaitu nauplius, zoea, dan mysis. Masing-masing stadia
tersebut dapat dibagi lagi menjadi beberapa sub stadia yang memiliki perbedaan
morfologi nyata dengan transisi yang ditandai dengan molting. Telur udang
vaname menetas menjadi nauplii + 14-16 jam setelah fertilisasi terjadi. Nauplii
berganti kulit satu kali setiap 7 jam. Jumlah pergantian kulit pada stadia nauplius
ini adalah lima kali. Tiga puluh enam jam setelah menetas, nauplii telah melewati
seluruh sub stadianya dan bermetamorfosis menjadi stadia zoea. Udang vaname
umumnya melakukan perjalanan ke lepas pantai untuk melakukan perkawinan.
Proses perkawinan udang vaname meliputi pemindahan spermatophore dari
udang jantan ke udang betina. Peneluran berlangsung pada perairan yang lebih
dalam. Telur yang dilepaskan mengalami fertilisasi secara eksternal di dalam air
2.1.3. Pakan dan Kebiasaan Makan
Udang paneus umumnya cenderung bersifat omnivora maupun pemakan
detritus. Berdasarkan pengujian, diketahui bahwa isi pencernaan udang vaname
terdiri dari krustasea kecil, amphipoda, dan polychaeta. Udang vaname
merupakan hewan nocturnal sehingga sepanjang hari hewan ini tinggal pada
substrat dan tidak mencari makan. Kegiatan makan dilakukan malam hari atau
ketika suasana redup (Wyban dan Sweeney,1991).
Udang vaname membutuhkan pakan dengan kandungan protein yang
lebih rendah dibandingkan dengan udang windu. Kandungan protein dalam pakan
udang vaname yang baik adalah 35 %. Sedangkan untuk udang windu, pakan
paling tidak harus memiliki kandungan protein 45 % (Subaidah dan Pramudjo,

7
2008). Pakan yang mengandung ikan dan cumi-cumi akan memacu pertumbuhan
2.1.4. Pergantian Kulit (Molting)
Pertumbuhan pada udang dan semua arthropoda tergantung kepada dua
faktor yaitu frekuensi molting dan kecepatan tumbuh (seberapa tumbuh udang
tersebut setiap telah melakukan molting) karena tubuh udang ditutupi oleh karapas
yang keras. Udang harus melepaskan karapas yang lama dan mengganti dengan
yang baru untuk tumbuh. Selama molting, terjadi keretakan dalam kutikula antara
karapas. Melalui bagian inilah chepalothorax dan abdomen keluar. Udang
melepaskan cangkang lamanya melalui suatu lecutan keras oleh ekornya.
Cangkang baru tersebut mula-mula lunak namun kemudian mengeras dalam
jangka waktu sesuai dengan ukuran udang. Udang berukuran kecil mengeras
dalam beberapa jam, tetapi udang berukuran besar bisa memakan waktu satu
sampai dua hari. Frekuensi molting juga berhubungan dengan ukuran udang.
Interval waktu molting bertambah seiiring dengan pertambahan ukuran udang.
Molting terjadi setiap 30-40 jam (dalam suhu 28 0
C) pada stadia larva. Benur
berbobot 1-5 gram melakukan molting setiap 4-6 hari tetapi benur yang berbobot
lebih dari 15 gram molting setiap 2 minggu. Kondisi lingkungan dan nutrisi juga
mempengaruhi frekuensi molting. Suhu yang tinggi meningkatkan frekuensi
molting. Penyerapan oksigen oleh tubuh tidak efisien selama molting terjadi.
Udang yang mati ketika molting umumnya mengalami hypoxia. Molting ini
biasanya mengindikasikan tingkat stres udang (Wyban dan Sweeney, 1991).

8
2.1.5. Perkawinan
Yano dkk, 1988 dalam Wyban dan Sweeney (1991) menjelaskan bahwa
perilaku kawin udang vaname umumnya terjadi sesaat sebelum dan sesudah
matahari terbenam. Biasanya perkawinan berlangsung 3 sampai 16 detik dan
dapat dibedakan menjadi 4 tahap yaitu:
1) Approaching, penjantan mendekati betina dari belakang dengan berenang di
dasar perairan
2) Crawling, pejantan merayap sehingga posisi kepala berada di bawah ekor
betina
3) Chasing, pejantan mengejar dari bawah dan selalu mengikuti setiap
perubahan arah betina. Betina matang telur mengeluarkan pheromon dengan
melepasnya dalam air atau melalui kontak fisik sehingga merangsang
pejantan untuk melakukan pengejaran
4) Mating, induk jantan memutar sisi ventralnya ke atas kemudian memegang
induk betina dengan kaki jalannya. Posisi bagian ventral yang saling
berhadapan ini berlangsung 1-2 detik sewaktu jatan mengeluarkan
spermatophore yang lengket dari petasmanya. Spermatophore ini dilekatkan
ke thellicum betina setelah proses perkawinan selesai.
2.1.6. Maturasi
Maturasi berarti proses perkembangan telur (oogenesis) dalam ovarium
induk betina. Sistem reproduksi betina Litopenaeus vannamei terdiri dari sepasang
ovari, oviduk, saluran genital, dan sebuah thellicum. Telur (oogonia) diproduksi
secara mitosis oleh jaringan epitelium germinal sepanjang masa subur betina.
Oogonia selanjutnya melakukan meiosis, berdiferensiasi menjadi oocyte, dan

9
kemudian diselimuti oleh sel follicle. Oocyte (telur) yang dihasilkan kemudian
menyerap bahan kuning telur dari darah induknya melalui sel follicle tersebut.
Komponen utama kuning telur adalah lipoglycoprotein, yang disebut Lipovitellin.
Sumber kuning telur, yang hanya ditemukan pada hemolymph betina matang
gonad, umumnya dipercaya berasal dari hepatopankreas. Organ reproduksi utama
jantan adalah testis, vas deferens, petasma, dan appendix masculina. Sperma
udang tidak memiliki flagel, dengan sebuah nucleus yang kental. Bagian utama
sperma matang adalah kepala, tudung, base, dan spike. Selama melewati vas
deferens sperma bergabung menjadi cairan kental dan terkumpul dalam sebuah
spermatophore berkitin (Wyban dan Sweeney, 1991).
2.1.7. Pemijahan dan Penetasan Telur
Penetasan terjadi setelah induk betina mengeluarkan telur yang sudah
matang. Proses ini umumnya berlangsung selama 2 menit. Induk betina berenang
lambat kedepan, pada bagian tengah kolom air, dan dalam banyak kasus telur
dilepaskan seluruhnya. Ketika telur dikeluarkan, induk betina langsung
mencampurkan telur dengan sperma menggunakan hentakan kaki jalannya.
Fertilisasi berlangsung ketika material genetik sperma dan telur bersatu (Wyban
dan Sweeney, 1991).
Sebuah rangkaian proses reaksi sel terjadi ketika sperma melekat pada
permukaan telur sampai dengan penggabungan telur-sperma. Sekitar 20 sel
sperma melekat pada sebuah sel telur tunggal. Sperma dan telur tersebut
kemudian mengalami rangkaian proses perubahan biokimia yang akhirnya
menghasilkan gabungan antara telur dan satu sel sperma terentu. Proses ini

10
berlangsung selama 11 menit pada suhu 28 0
C (Clark dkk, 1984 dalam Wyban dan
Sweeney, 1991).
Udang vaname biasanya melepaskan telur pada malam hari, dalam
jangka waktu beberapa jam setelah perkawinan. Perhatian khusus perlu dilakukan
untuk mengontrol reproduksi udang vaname dalam suasana gelap. Udang tersebut
harus dibiarkan sendiri agar perkawinan alami terjadi, tetapi induk betina yang
telah kawin segera ditangkap dan ditransfer menuju bak peneluran (Wyban dan
Sweeney, 1991).
2.2. Pemilihan Lokasi Hatchery
Suyanto dan Panjaitan (1985) menjelaskan bahwa lokasi hatchery yang
baik adalah berada di tepi pantai dengan tujuan untuk memudahkan penyediaan
air laut bagi kegiatan operasional hatchery. Lokasi hatchery juga harus berada
jauh dari pencemaran lingkungan, baik itu pencemaran limbah industri maupun
pencemaran limbah rumah tangga.
Djunaidah dkk (2002) menjelaskan bahwa persyaratan lokasi unit
pembenihan udang untuk menunjang aspek teknis, ekonomis, dan kekuatan
konstruksi antara lain sebagai berikut:
a. Area pembenihan harus dekat dengan pantai, dengan dasar perairan tidak
berlumpur, air laut jernih dan tidak tercemar, salinitas 29-34 ppt,
pH 7,5-8,5, alkalinitas 33-60 ppm, bahan organik < 10 ppm.
b. Tanah dasar untuk bangunan harus stabil, untuk menjaga daya tahan
bangunan
c. Letak strategis, mudah dijangkau untuk kelancaran operasional dan
pemasarannya

11
d. Tersedia sumber tenaga listrik 24 jam, dari PLN atau generator
e. Sumber air tawar cukup, bersalinitas maksimal 10 ppt dan
kesadahan 50-500 ppm
2.3. Penyediaan Air Pemeliharaan
Air laut yang disediakan dalam hatchery digunakan untuk pemeliharaan
induk, pemeliharaan larva, dan kultur pakan alami. Air laut mengalami proses
filtrasi mekanik yang terdiri dari lapisan pasir dan kerikil yang tersusun dari
ukuran yang semakin kecil ke arah pengeluaran. Penyaringan ini dilakukan untuk
membersihkan air dari kotoran dan organisme laut yang tidak dikehendaki. Unit
filtrasi bisa diletakan terpisah ataupun menyatu dengan bagian reservoir.
Reservoir paling tidak harus dapat menampung 30-50% air dari total maksimal
konsumsi air laut per hari (Suyanto dan Panjaitan, 1985).
Moretti dkk (1999) menyatakan bahwa air laut yang digunakan harus
terbebas dari patogen dan polutan. Air laut diolah untuk menghilangkan padatan
terlarut, kontaminan, organisme, dan meningkatkan parameter kualitas air agar
sesuai untuk pertumbuhan biota yang dipelihara. Pengolahan air tersebut meliputi
filtrasi mekanik, sterilisasi ultraviolet, dan klorinasi. Perlakuan tambahan
dilakukan untuk media pemeliharaan mikroalga. Perlakuan tersebut adalah
sterilisasi autoclave, sterilisasi uap kering, dan pengkayaan media.
Sterilisasi dilakukan untuk menjamin agar tidak ada mikroorganisme
yang terbawa kedalam media pemeliharaan. Metode sterilisasi yang umum
dilakukan adalah dengan menggunakan ultra violet, klorinasi, autoclave, dan
oven. Sinar ultra violet memiliki panjang gelombang 265 nm (gelombang pendek
UV atau UV-C) memiliki efek membunuh kuman yang kuat karena dapat

12
merusak rantai DNA. Sinar ini berasal dari uap lampu merkuri yang dioperasikan
pada tekanan tertentu. Efek sterilisasi sinar UV ini tergantung oleh daya,
kejernihan air laut yang disterilisasi, jenis dan kuantitas mikroorganisme, derajat
pemurnian yang dibutuhkan, waktu kontak, dan suhu. Intensitas UV sedikitnya 40
mJ/cm2
dapat membunuh 99% dari semua organisme yang tak diinginkan (Moretti
dkk, 1999).
Metode sterilisasi lainnya adalah klorinasi. Klorin aktif adalah agen
pengoksidasi yang kuat. Tersedia dalam bentuk larutan pemutih (NaOCl) dan
serbuk pemutih (CaOCl2). Persentase klorin aktif pada senyawa kimia tersebut
berturut-turut yaitu 5-15% dan 60-70%. Dosis akhir yang umum digunakan untuk
sterilisasi air laut adalah 5 – 10 ppm berupa klorin aktif. Waktu kontak antara air
dan klorin paling tidak harus mencapai satu jam. Setelah itu semua residu klorin
dinetralisir menggunakan Na-thiosulfat (Na2S2O3) (Moretti dkk, 1999).
2.4. Pengelolaan Induk
2.4.1. Wadah Pemeliharaan Induk
Untuk memproduksi nauplii udang vaname dibutuhkan wadah
pemeliharaan induk berupa bak-bak yang digunakan untuk wadah
penampungan/karantina, pematangan dan perkawinan, serta bak pemijahan dan
penetasan (Subaidah dan Pramudjo, 2008).
Bak penampungan/karantina berfungsi untuk menampung induk yang
baru datang, diadaptasi, dan dilakukan pengecekkan penyakit. Bentuk bak bulat,
oval, atau empat persegi panjang, bersudut tumpul dengan luas dasar minimal 20
m2
, dengan ketinggian bak minimal 1 m dan kedalaman air minimal 0,6 m. Warna
dasar bak cerah dan warna dinding bak gelap, atau warna keseluruhannya cerah.

13
Bak dapat terbuat dari semen, fiber glass, atau plastik (Subaidah dan Pramudjo,
2008).
Subaidah dan Pramudjo (2008) menjelaskan bahwa bak pematangan dan
perkawinan berfungsi untuk pematangan gonad induk. Setelah induk matang
gonad dilakukan perkawinan pada bak yang sama. Bentuk bak bulat, oval, atau
empat persegi panjang, bersudut tumpul dengan luas dasar bak paling tidak 20 m2
,
ketinggian bak minimal 1 m. Kedalaman air minimal 0,6 m. Padat tebar pada bak
pematangan adalah 8 ekor/m2
.
Bak pemijahan dan penetasan berfungsi untuk memijahkan induk yang
telah matang gonad. Bak dapat berbentuk bulat, oval, maupun empat persegi
panjang dengan sudut tumpul. Kedalaman air minimal 0,6 m serta luas dasar bak
minimal 2 m2
. Bak pemijahan ada yag berfungsi sebagai bak penetasan bila telur
tidak dicuci (Subaidah dan Pramudjo, 2008).
2.4.2. Pengangkutan dan Aklimatisasi Induk
Menurut Kokarkin dkk (1986), pengangkutan calon induk dapat
dibedakan menjadi dua sistem yaitu pengangkutan sistem terbuka dan
pengangkutan sistem tertutup. Sistem pengangkutan ini dipilih berdasarkan jarak
tempuh perjalanan.
Pengangkutan sistem tertutup dapat digunakan untuk lama pengangkutan
yang lebih lama dibandingkan dengan pengangkutan sistem terbuka.
Pengangkutan sistem tertutup ini menggunakan kantong plastik tebal yang
diberikan air media dan penambahan oksigen. Kepadatan efektif menurut
Kokarkin dkk (1986) adalah 2 ekor untuk setiap 10 liter media air laut. Lama
pengangkutan yang disarankan adalah 6 jam perjalanan.

14
Menurut Kokarkin dkk (1986), saat aklimatisasi calon induk dapat
diberikan desinfektan yang bersifat bakterisida, fungisida, dan bahan lain yang
dapat mengeliminir penyakit yang bisa terbawa oleh calon induk.
2.4.3. Manajemen Pemberian Pakan Induk
Pakan untuk induk sangat menentukan kesehatan dan kemampuan induk
untuk memproduksi telur. Pakan yang baik akan disukai oleh udang dan tidak
mudah menurunkan kualitas air media pemeliharaan. Pakan segar merupakan
pakan yang paling cocok untuk induk udang. Jenis pakan yang umum digunakan
sebagai pakan induk adalah cumi, kepiting, udang kecil, dan kerang (Kokarkin
dan Sumartono, 1990).
Cumi-cumi disediakan dalam bentuk potongan-potongan beku setelah
sebelumnya dibersihkan dari kulit dan isi perut. Sedangkan kepiting, udang kecil,
dan kerang diberikan dalam keadaan baru dipotong-potong (segar) tanpa
pembekuan. Ketepatan penentuan dosis dan frekuensi pemberian pakan induk erat
kaitannya dengan mudah menurunnya kualitas air dan efisiensi dalam penanganan
induk secara ekonomis. Induk udang dalam satu hari rata-rata membutuhkan
pakan sebanyak 5-20% dari berat tubuhnya. Dosis pakan yang terlalu banyak
menyebabkan air mengental, berbuih, dan berwarna keputih-putihan. Frekuensi
pemberian pakan sebanyak 3-5 kali sehari menunjukkan hasil yang memuaskan
pada produktifitas induk (Kokarkin dan Sumartono, 1990).
Wyban dan Sweeney (1991) menjelaskan bahwa pakan induk diberikan
empat kali dalam sehari. Pakan yang digunakan dapat berupa cacing darah dan
cumi beku. Cacing darah diberikan setelah dilelehkan terlebih dahulu dan
dipotong-potong menjadi berukuran panjang 3 inch. Cumi beku

15
dipotong-potong seperti dadu dengan ukuran kurang lebih ¼ Inch3
. Perlakuan
pakan seperti ini dapat mengurangi kekeruhan dalam air. Pemberian pakan
dilakukan dengan cara menebar secara merata di sepanjang dinding bak. Dosis
pakan yang diberikan lebih baik menggunakan metode satiasi daripada dengan
cara menghitung kebutuhan pakan berdasarkan bobot induk.
2.4.4. Manajemen Kualitas Air Pemeliharaan Induk
Air sebagai media hidup induk udang harus mendapat perhatian khusus
karena air merupakan salah satu faktor yang menentukan tingkat keberhasilan
pematangan gonad, oleh karena itu dari segi kualitas dan kuantitas harus
terpenuhi. Air yang digunakan harus betul-betul bersih dan steril. Sistem
pengaturan air dalam bak pemeliharaan dibuat sirkulasi. Pada sistem pemeliharaan
induk, air media pemeliharaan dipasang pompa sirkulasi ukuran 1 inch dan
dialirkan secara terus-menerus selama pemeliharaan berlangsung, kecuali pada
saat sampling. Untuk menghindari penumpukan kotoran di dasar bak, maka perlu
dibersihkan setiap pagi hari. Suhu air harus selalu dipantau dan diusahakan berada
pada kisaran 27-28 0
C (Djunaidah, 2002).
Pembersihan dasar bak dilakukan dengan cara di sipon. Kegiatan ini
dilakukan setiap hari sebelum pemberian pakan dengan menggunakan selang 1
inch. Selang ukuran ini cukup untuk menyipon sisa molting, udang mati, pakan,
dan lain – lain tanpa mengakibatkan penyumbatan (Wyban dan Sweeney 1991).
2.5. Pemeliharaan Larva
2.5.1. Persiapan Wadah Pemeliharaan Larva
Bak pemeliharaan larva dilapisi dengan cat U-poxy berwarna biru muda
dan dilengkapi pipa saluran udara, instalasi air laut, instalasi alga, dan saluran

16
pengeluaran yang dilengkapi saringan sirkulasi dan pipa goyang serta terpal
sebagai penutup bak agar suhu stabil selama proses pemeliharaan larva.
Kemiringan bak 2-5%, hal ini bertujuan untuk memudahkan dalam pengeringan.
Sistem aerasi pada bak pemeliharaan menggunakan aerasi gantung dengan jarak
antar titik 40 cm dan jarak dari dasar 5 cm agar sisa pakan dan kotoran tidak
teraduk (Subaidah dan Pramudjo, 2008).
Pencucian bak dilakukan dengan menggunakan kaporit 60% sebanyak
100 ppm yang dicampur deterjen 5 ppm dan dilarutkan dalam air tawar pada
wadah berupa ember. Pencucian bak dilakukan dengan menggunakan scoring pad
dan dibilas menggunakan air tawar, kemudian dikeringkan selama 2 hari.
(Subaidah dan Pramudjo, 2008). Kokarkin dan Sumartono (1990) menerangkan
bahwa pengeringan mutlak dilakukan untuk memutus daur hidup berbagai jenis
penyakit. Sinar matahari diketahui memiliki beraneka ragam gelombang cahaya
dan salah satu di antaranya adalah ultra violet sehingga dapat dikatakan bahwa
sinar matahari merupakan desinfektan alami.
Bak pemeliharaan yang pernah digunakan sebagai wadah pemeliharaan
larva yang terkena penyakit pada siklus sebelumnya direndam dengan air tawar
serta ditambahkan kaporit 60%, dosis 100 ppm, dan PK 1 ppm selama dua hari
kemudian air dibuang dan dicuci menggunakan kaporit 100 ppm (Subaidah dan
Pramudjo, 2008). Lay (1971) dalam Boyd (1988) menjelaskan bahwa PK dapat
mengoksidasi bahan organik dan anorganik serta membunuh bakteri dengan cara
mengurangi kadar COD dan BOD dalam air.
Pengisian air laut ke dalam bak pemeliharaan menggunakan filter bag.
Air laut langsung ditransfer dari tandon yang sebelumnya telah dilakukan

17
penyaringan dengan menggunakan sand filter dan disinari UV dan ditampung
dalam bak tandon tertutup rapat serta dilakukan pemompaan ke tower yang
dilengkapi UV juga untuk dialirkan ke bak-bak pemeliharaan larva (Subaidah dan
Pramudjo, 2008).
2.5.2. Penebaran Nauplii
Menurut Subaidah dan Pramudjo (2008) penebaran nauplii sebaiknya
dilakukan pada pagi atau sore hari. Hal ini bertujuan untuk menghindari
perubahan suhu yang terlalu tinggi. Aklimatisasi dilakukan sebelum penebaran.
Aklimatisasi dilakukan terutama terhadap suhu dan salinitas selama 30 menit.
Apabila bak penetasan berdekatan dengan bak pemeliharaan, proses pemindahan
dapat dilakukan dengan menggunakan ember plastik (Lim dkk, 1989).
Nauplii yang ditebar adalah nauplii muda (N3-N4) yang bertujuan untuk
menekan gangguan proses metamorfosis sekecil mungkin dari stadia nauplius ke
stadia zoea 1 karena dalam pemeliharan udang vaname sering dikenal istilah zoea
syndrom atau zoea lemah. Elovaara (2001) dalam Subaidah dan Pramudjo (2008)
memberikan keterangan bahwa saat mengalami zoea syndrom, larva kelihatan
lemah dan tubuh kotor sehingga dapat meneyebabkan kematian sampai 90%.
2.5.3. Pengelolaan Pakan
Jenis pakan yang digunakan pada larva udang vaname (Litopenaeus
vannamei) adalah pakan alami dan pakan buatan. Masing-masing pakan tersebut
diberikan dengan jumlah dan frekuensi tertentu sesuai dengan stadia larva. Jenis
pakan alami yang dikultur adalah Chaetoceros ceratos dan Artemia salina.
Pemberian Chaetoseros ceratos dilakukan saat sub stadia zoea 1 sampai mysis 3.
Pemberian artemia dimulai sejak sub stadia mysis 3 sampai dengan PL 10. Pakan

18
buatan juga diberikan pada larva untuk mencegah terjadinya kekurangan pakan
selama pemeliharaan larva (Subaidah dan Pramudjo, 2008).
2.5.4. Perkembangan Larva
Uraian perkembangan larva udang vaname (Litopenaeus vannamei)
dijelaskan dalam Tabel 1. berikut
Tabel 1. Stadia Perkembangan Larva Litopenaeus vannamei
No Stadia Karakteristik
1 Nauplius 1 - Panjang tubuh 0,4 mm, tidak termasuk furcal spine
- Lebar tubuh 0,2 mm pada bagian terlebar
- Dua ujung furcal spine melengkung ke dalam
- Badan berbentuk cembung (convex)
- Ada 3 terminal setae yang panjang pada exopoda antena
ke-2 (3 pada sisi lateral/samping dan 2 pada sisi
terminal/ujung)
- Exopoda ini akan menambah setae setiap kali molting,
sebagai indikator berubahnya sub stadia
2 Nauplius 2 - Panjang tubuh 0,45 mm
- Dua ujung furcal spine melengkung ke luar
- Tubuh berbentuk cekung (concave)
- Ada 3 terminal setae pada antena ke-1(1 panjang, 1
sedang, dan 1 pendek)
- Ada 6 setae pada exopoda antena ke-2 (3 panjang pada
sisi terminal, dan 1 pendek pada terminal), endopoda
pada antena ke-2 mempunyai 2 terminal setae yang
panjang
- Terdapat setula pada setae yang panjang, tetapi setula ini
sukar dilihat di bawah mikroskop dengan pembesaran
kurang dari 40 x
- Dua proses furcal spine masing – masing menjadi 3 spine
- Pada antena ke-1 ada terminal setae (2 panjang dan 1
pendek) serta terdapat bekas segmentasi yang sukar
dilihat pada pangkal antena ke-1
- Pada antena ke-2, exopoda memiliki 7 setae (3 panjang
lateral, 3 panjang terminal, dan 1 pendek terminal)
- Endopoda pada antena k-2 memiliki 8 terminal setae
yang panjang

19
Lanjutan Tabel 1.
No Stadia Karakteristik
- Lebar tubuh 0,2 mm
- Masing – masing proses memiliki 5 spine
- Exopoda memiliki 8 setae (4 panjang lateral, 2 panjang
terminal, 1 sedang, terminal, 1 pendek terminal)
- Segmentasi appendage sudah mulai tampak, meskipun
sukar dilihat secara jelas
- Maxila dan maxiliped (bagian dari mulut) juga mulai
tampak tetapi sukar dilihat secara jelas
- Lebar tubuh 0,2 mm
- Masing – masing proses furcal memiliki 7 spine
- Terdapat perbedaan yang nyata pada setae antara antena
ke-1 dan ke-2
- Tubuh lebih ramping
- Swollen (struktur seperti tombol dapat dilihat di pangkal
mandibula)
- Dari sisi dorsal batas perkembangan karapas dapat dilihat
di bawah kutikula
6 Zoea 1 - Panjang tubuh : + 1mm
- Lebar tubuh : 0,49 mm pada bagian terlebar
- Bentuk tubuh: perubahan yang sangat nyata dari N5.
Tubuh sudah dapat dibedakan antara chepalothorax dan
abdomen dengan mata telanjang
- Mata : sudah ada tetapi tidak berada pada karapas
7 Zoea 2 - Panjang tubuh : + 1,9 mm
- Mata : mulai bertangkai, teletak di atas karapas
- Rostrum tampak seperti duri di antara kedua mata
8 Zoea 3 - Panjang tubuh: + 2,7 mm
- Biramous uropoda mulai terbentuk
- Duri muncul pada abdominal somites (segmen)
9 Mysis 1 - Panjang tubuh: + 3,4 mm
- Bentuk tubuh: bentuk dan struktur tubuh mirip udang
dewasa
- Pleopoda: pleopoda mulai berkembang pada segmen ke
lima abdomen
- Telson dan uropoda mulai terbentuk
10 Mysis 2 - Panjang tubuh : + 4 mm
- Pleopoda mulai tampak memanjang tetapi belum
bersegmen
11 Mysis 3 - Panjang tubuh: + 4,4 mm
- Pleopoda memanjang dan bersegmen
- Duri dorsal telah tampak pada rostrum
12 PL - Bentuk sudah seperti udang dewasa
Sumber: Wyban dan Sweeney (1991); Tabb dkk (1972) dalam (Wyban dan Sweeney
(1991)

20
Perubahan sub stadia nauplius masing-masing 7 jam (Wyban dan
Sweeney, 1991).
2.5.5. Kualitas Air
A. Suhu
Perubahan suhu berpengaruh terhadap proses fisika, kimia, dan biologi
badan air. Organisme akuatik memiliki kisaran tertentu (batas atas dan batas
bawah) yang menjadi suhu optimum untuk keberlangsungan hidup dan
pertumbuhannya. Sebagai contoh, algae dari filum chlorophyta dan diatom akan
tumbuh dengan baik pada kisaran suhu berturut-turut 30-35 0
C dan 20-30 0
C
sedangkan filum Cyanophyta lebih dapat bertoleransi terhadap kisaran suhu yang
lebih tinggi dibandingkan dengan keduanya (Effendi, 2003). Cholik dkk (2005)
menjelaskan bahwa suhu juga berpengaruh terhadap kualitas sperma yang
dihasilkan oleh induk jantan udang vaname.
B. Salinitas
Salinitas adalah konsentrasi total ion yang terdapat di perairan (Boyd,
1988 dalam Cholik dkk, 2005). Cholik dkk (2005) juga menambahkan bahwa
salinitas menggambarkan padatan total di dalam air, setelah semua karbonat
dikonversi menjadi oksida, semua bromida dan iodida digantikan oleh klorida,
dan semua bahan organik telah dioksidasi. Salinitas dinyatakan dalam satuan g/kg
atau ppt (part per thausand). Wyban dan Sweeney (1991) menyatakan bahwa
udang vaname hidup pada perairan bersalinitas 35 ppt pada habitat aslinya.
C. Oksigen Terlarut
Oksigen terlarut merupakan parameter kualitas air paling penting bagi
kehidupan organisme air. Oksigen terlarut dalam air pada konsentrasi tertentu

21
dapat diserap oleh haemosianin dalam pembuluh darah lamella udang akibat
perbedaan tekanan parsial. Oksigen yang diserap kemudian dimanfaatkan dalam
proses metabolisme. Pada konsentrasi oksigen rendah (< 50% konsentrasi jenuh)
tekanan parsial oksigen dalam air tidak cukup tinggi untuk memungkinkan
penetrasi oksigen kedalam lamella sehingga mengakibatkan udang bisa mati
lemas (Ahmad, 1991). Djunaidah dkk (2002) menyebutkan bahwa kadar DO air
yang baik minimal sebanyak 4 ppm.
D. pH
Posseince of Hydrogen (pH) adalah cerminan derajat kemasaman yang
diukur dari jumlah ion hidrogen yang menggunakan rumus umum pH= - log (H+
).
Air murni terdiri dari ion H+
dan ion OH-
dalam jumlah yang berimbang hingga
pH air murni adalah 7. Semakin banyak ion OH-
dalam suatu larutan, maka
semakin rendah konsentrasi ion H+
dan semakin tinggi nilai pH, larutan demikian
disebut dengan larutan alkalis. Dalam keadan sebaliknya disebut larutan asam
(Ahmad, 1991).
Nilai pH terletak antara 1-14 dengan angka 7 sebagai nilai netral. Air laut
umumnya bersifat alkalis dengan pH lebih dari 7 karena banyak mengandung
garam bersifat alkalis. pH yang baik bagi udang adalah berada pada kisaran 7-9
(Ahmad, 1991).
E. Amonia
Ahmad (1991) menjelaskan bahwa sumber utama amoniak adalah bahan
organik baik dalam bentuk sisa pakan, kotoran udang, maupun dalam bentuk
plankton dan bahan organik tersuspensi. Pembusukan bahan organik terutama
yang mengandung banyak protein menghasilkan amonium dan amonia. Bila

22
proses lanjutan dari pembusukan (nitrifikasi) tidak berlangsung lancar, maka
terjadi penumpukkan NH3 yang membahayakan udang.
Perhitungan kadar amonia umumnya bersama sama dengan penghitungan
amonium sebab amonia dan amonium sulit dipisahkan karena selalu dalam
kondisi kesinambungan. Hasil perhitungan dikenal dengan sebutan Total
Ammonia Nitrogen (TAN). Konsentrasi TAN yang aman adalah < 0,5 ppm,
sementara kandungan amonia sebaiknya < 0,1 ppm (Ahmad, 1991).
Persentase amonia dari TAN dipengaruhi oleh suhu dan pH air. Semakin
tinggi pH dan suhu, maka persentase amonia juga semakin tinggi. Boyd (1979)
dalam Ahmad (1991) memberikan contoh bahwa pada pH 8 dan suhu 26 0
C
persentase NH3 hanya 5,71%, sedangkan pada pH 9 dan suhu 30 0
C mencapai
44,84%. Proses perubahan NH4
+
menjadi NH3 dilanjutkan dalam proses nitrifikasi
(Ahmad, 1991).
2.5.6. Hama dan Penyakit
Hama biasanya merupakan jenis organisme yang dapat mengakibatkan
kerugian bagi budidaya. Penyakit pada udang sering dijumpai pada udang berusia
muda, baik periode larva maupun post larva. Proses timbulnya suatu penyakit
sangat bergantung pada keadaan lingkungan. Penyakit pada pembenihan udang
diantaranya adalah yang disebabkan oleh virus, bakteri, jamur, dan parasit
(Subaidah dan Pramudjo, 2008).
2.5.7. Pencegahan Hama dan Penyakit
Pengelolaan kesehatan udang adalah kegiatan operasional yang bertujuan
untuk mencegah terjadinya penyakit. Aktifitas pencegahan penyakit hanya dapat
dicapai melalui pengelolaan yang terintegrasi dari mulai penyediaan kualitas

23
lingkungan budidaya yang baik, memberi nutrisi yang cukup dalam hal kualitas
dan kuantitasnya sehingga status kesehatan biota selalu prima, dan menjaga
sanitasi lingkungan. Tanpa memberikan keseimbangan di antara ketiga aspek
tersebut, maka upaya pencegahan tidak dapat dicapai. Hal tersebut terjadi karena
kenyataannya biota selalu hidup bersama patogen yang setiap saat berpotensi
menyebabkan penyakit. Budidaya udang yang menerapkan tenologi sterilisasi
sekalipun tidak mampu untuk mengeliminasi seluruh patogen potensial dari
lingkungan budidaya (Subaidah dan Pramudjo, 2008).
Subaidah dan Pramudjo (2008) menjelaskan pengendalian penyakit melalui proses
skrining induk, pengelolaan kualitas air, dan penggunaan bahan pengendali
penyakit yang aman. Skrining induk dilakukan untuk mencegah terjadinya
transmisi penyakit secara vertikal dari induk kepada larva. Pengelolaan kualitas
air bertujuan agar media pemeliharaan biota tetap optimal sehingga dapat
mencegah munculnya penyakit dalam media pemeliharaan. Penggunaan bahan
pengendali penyakit berupa antibiotik dikurangi dan diganti dengan penggunaan
imunostimulan dan aplikasi probiotik.
2.6. Kultur Pakan Alami
2.6.1. Kultur Fitoplankton
A. Manajemen Kultur Fitoplankton Murni
Subaidah dan Pramudjo (2008) menjelaskan bahwa dalam upaya
menyediakan persediaan pakan alami (alga), perlu adanya manajemen dan
fasilitas pada suatu tempat laboratorium yang diupayakan agar kultur alga tetap
terjaga kemurniannya. Manajemen alga murni dibagi menjadi 5 tahapan/kategori
yaitu kultur pada media tabung reaksi (20 ml), botol (1 L), karboy (20L),

24
akuarium (100L), dan fiberglass 1 m3
. Untuk persediaan, alga murni dikultur
dalam media agar ataupun media cair yang dapat disimpan dalam waktu yang
lama pada suhu dingin. Persediaan dalam media cair menggunakan media dalam
tabung reaksi bervolume 10 ml yang diberi pupuk tanpa aerasi, tetapi harus
dilakukan pengadukan setiap hari. Biakan murni ini diletakan pada rak kultur
dengan pencahayaan lampu TL. Stok murni ini dapat disimpan dalam lemari es
dan dapat bertahan sampai satu bulan.
Berhasil atau tidaknya usaha kultur murni berkaitan erat dengan
persyaratan-persayaratan teknis yang harus dipenuhi antara lain masalah biologi,
fisika, dan kimia untuk kelangsungan hidup spesies itu sendiri. Namun secara
umum dapat dibuat batasan-batasan umum untuk keberhasilan kultur murni
misalnya diatom membutuhkan unsur silikat, sedangkan alga hijau tidak
(Subaidah dan Pramudjo, 2008).
B. Kultur Semi Masal
Kultur skala semi masal dimulai dari volume kultur 100-1000 liter yang
diletakkan di luar laboratorium. Pupuk yang digunakan adalah pupuk teknis. Bibit
yang digunakan berasal dari kultur murni yang sudah mencapai kepadatan 2 juta
sel/ml. Pemanenan dilakukan setelah 5-7 hari ketika kepadatan dalam bak
mencapai 5-7 juta sel/ml (Subaidah dan Pramudjo, 2008).
C. Kegiatan Kultur Masal
Kegiatan ini dilakukan di tempat terbuka dengan volume bak 4 m3
sampai 30 m3
. Sinar matahari yang masuk sangat diperlukan untuk proses
fotosintesis. Inokulasi bibit dilakukan sebanyak 20 % dari volume total. Umur

25
kultur masal ini umumnya maksimal 4 hari bersamaan dengan habisnya pupuk di
dalam media kultur alga (Subaidah dan Parmudjo, 2008).
D. Pupuk Kultur Alga
Kelangsungan hidup kultur fitoplankton berkaitan erat dengan terjaganya
suatu kondisi bebas kontaminan yang menjadi penyebab kegagalan kultur baik itu
kontaminan yang berasal dari spesies lain, bakteri, protozoa, maupun jamur.
Untuk itu upaya sterilisasi perlu dilakukan (Subaidah dan Pramudjo, 2008).
Tumbuh pesatnya fitoplankton juga behubungan dengan faktor nutrisi
yang ada di lingkungannya. Secara umum fitoplankton membutuhkan nutrisi yang
tergolong sebagai unsur makro dan mikro. Unsur makro meliputi kebutuhan akan
nitrat dan posfat sebagai dasar nutrien utama disamping unsur – unsur mikro trace
element seperti Fe, Mo, Cu, Zn, dan Co. Vitamin B1, B12, dan biotin merupakan
mikronutrien lain yang juga diperlukan. Faktor kimia yang juga dapat menjadi
fator pembatas adalah salinitas, pH, dan CO2 (Subaidah dan Pramudjo, 2008).
Komposisi pupuk untuk setiap skala kultur pakan alami fitoplankton bagi
udang vaname dapat dilihat pada Tabel 2. sampai dengan Tabel 4.
Tabel 2. Komposisi Pupuk Kultur Alga Skala Masal
Kandungan Jumlah
A. KNO3
Na H2PO4
3.750 gram
250 gram
B. Na2SiO3 300 gram
C. FeCl3.6H2O
EDTA
Unsur mikro
157,5 gram
217,5 gram
50 gram
D. Larutan campuran vitamin 50 ml
Ket : 1. Larutan A, B, C, D diencerkan dalam akuades steril 10 liter
2. Bahan kimia yang digunakan adalah bahan teknis
3. Dosis pemakaian 1 ml/liter
Sumber: Subaidah dan Pramudjo (2008)

26
Tabel 3. Komposisi Pupuk Alga Skala Intermediate
Kandungan Jumlah
A. KNO3
NaH2PO4.H2O
75 gram
5 gram
B. Na2SiO3.9H2O 30 gram
C. Na2EDTA (Na2C10H14O8N2.H2O)
FeCl3.6H2O
Unsur mikro
4,36 gram
3,15 gram
1 ml
D. Campuran vitamin 5 ml
Ket : 1. Semua bahan kimia yang digunakan adalah kimia teknis
2. Larutan A,B,C,D masing – masing dilarutkan dalam akuades steril
3. Dosis pemakaian 1 ml/liter
Tabel 4. Komposisi Pupuk Alga Murni (Guilard f/2 Medium)
Kandungan Jumlah
Solution A
NaNO3
NaH2PO4.H2O
75 gram
5 gram
Solution B
Na2SiO3.9H2O 30 gram
Solution C
Na2EDTA
FeCl3.6H2O
Stok E
4,36 gram
3,15 gram
1 ml
Lanjutan Tabel 4.
Kandungan Jumlah
Solution D
Stok F 5 ml
Stok E
CoCl2.6H2O
CoCl4.5H2O
MnCl2.4H2O
NaMoO4.2H2O
ZnSO4.7H2O
10 gram
9,8 gram
180 gram
6,3 gram
22 gram
Stok F
Thiamin HCl
Vit H (Biotin)
Vit B12
20 gram
0,1 gram
0,1 gram
Ket: 1. Masing – masing solution dan stok dilarutkan dalam akuades
2. Kecuali solution D dan stok F, semua pupuk diautocalve
3. Semua bahan kimia menggunakan bahan Pro Analyse
4. Dosis pemakaian 1 ml/Liter

27
2.6.2. Penetasan Artemia
Artemia (brine shrimp) diberikan pada larva sejak sub stadia akhir
zoea 3. Artemia ini tersedia dalam bentuk kista kering yang masih dapat bertahan
berbulan-bulan. Kista artemia akan menetas menjadi artemia ketika kista tersebut
dihidrasi kembali. Seperti halnya udang, artemia juga mangalami molting secara
periodik. Artemia tumbuh cepat sehingga ukuran atau umur artemia harus
disesuaikan dengan ukuran udang agar mudah untuk dimangsa oleh udang. Proses
penetasan artemia meliputi tahapan hidrasi, dekapsulasi, inkubasi, dan pemanenan
(Wyban dan Sweeney 1991).
A. Hidrasi
Untuk menetaskan telur artemia yang telah kering (kadar air kurang dari
10%) yang embrionya dalam keadaan dorman, perlu melakukan perendaman
terlebih dahulu. Telur-telur artemia yang sedang dalam proses perendaman akan
menyerap sejumlah air hingga tampak menggembung. Apabila kadar airnya baru
mencapai 10-30%, masih belum terjadi metabolisme. Metabolisme mulai terjadi
jika kadar air telah mencapai 30-65%, tetapi metabolisme ini akan berhenti bila
kadar air tidak bertambah lagi. Metabolisme yang aktif akan dimulai apabila kadar
air melebihi 65%. Artemia membutuhkan kadar air sampai 140% untuk
melangsungkan metabolisme sampai terjadi penetasan (Mudjiman, 1989).
Proses penyerapan air kedalam telur tersebut berlangsung secara
hipoosmotik, yaitu tekanan osmotik di dalam telur lebih rendah dibanding dengan
tekanan osmotik lingkungan luarnya. Proses ini akan berlangsung lebih baik
apabila telur direndam dalam air tawar. Untuk menggembungkan telur kering
menjadi bulat sempurna membutuhkan waktu sekitar 1 jam. Sumber energi untuk

28
melangsungkan metabolisme artemia menggunakan makanan cadangan yang
berupa trehalose yang akan dipecah menjadi glikogen dan gliserol. Glikogen
dapat menghasilkan tenaga, sedangkan gliserol akan meningkatkan tekanan
osmotik dalam telur (Mudjiman, 1989).
Moretti (1999) menambahkan bahwa tahap hidrasi merupakan tahap
yang penting karena pelepasan korion hanya dapat terjadi ketika kista berbentuk
bulat. Kapadatan kista maksimal untuk melakukan proses hidrasi adalah
200 g/liter pada suhu air antara 20-25 0
C. Selama proses hidrasi aerasi diberikan
dengan cukup kuat untuk menjaga kista tetap teraduk. Kista dikumpulkan dengan
menggunakan saringan dan harus langsung dilanjutkan dengan tahap berikutnya
yaitu dekapsulasi.
B. Inkubasi
Inkubasi dilakukan segera setelah proses hidrasi dan dekapsulasi. Kista
artemia akan bermetabolisme terus sampai dengan cangkangnya pecah. Tahapan
ini disebut tahapan pecah cangkang (emergence I atau E-I). Waktu yang
dibutuhkan untuk mencapai tahap E-I ini sekitar 15 jam. Pada tahapan ini proses
beralih menjadi hiperosmotik, yaitu tekanan osmotik dalam kista lebih tinggi
dibandingkan lingkungannya. Terjadinya pemecahan cangkang merupakan proses
yang dibantu oleh kegiatan enzim penetasan yang hanya dapat bekerja pada
keadaan pH air lebih dari 8 (Mudjiman, 1989). Moretti dkk (1999) menyarankan
penggunaan NaHCO3 dengan dosis 1 gram/liter untuk mencapai pH tersebut.
Enzim tersebut keluar bersamaan dengan pecahnya kista dan dapat
membantu proses pemecahan cangkang-cangkang yang lain sehingga proses
penetasan akan lebih baik bila kista berdekatan. Moretti dkk (1999) menyarankan

29
kepadatan kista saat inkubasi adalah 2 gram/liter. Kegiatan enzim penetasan dapat
terhambat jika air penetasannya mengandung ion besi, dan ion tembaga
(Mudjiman, 1989)
Embrio yang masih terbungkus dalam selaput penetasan keluar dari
cangkang saat inkubasi telah berlangsung 17 jam, bentuk visual seperti payung,
maka disebut dengan tingkat payung (emergence II atau E-II). Embrio tersebut
terus tumbuh dan akhirnya menetas menjadi nauplius pada waktu sekitar 19 jam
(Mudjiman, 1989).
C. Pemanenan Artemia
Wyban dan Sweeney (1991) menyebutkan bahwa waktu pemanenan
yang baik adalah ketika inkubasi telah berlangsung selama 17-22 jam. Artemia
akan telah mencapai instar I sebanyak 50% saat inkubasi mencapai 24 jam
sehingga kualitas nutrisi menjadi lebih rendah. Pemanenan dilakukan dengan
mematikan aerasi dan menyinari bagian bawah bak penetasan dengan lampu 60
watt paling tidak selama 30 menit. Nauplii artemia akan mendekati cahaya karena
bersifat fototaksis positif. Selanjutnya artemia ditampung dengan menggunakan
saringan 100 mikron dan dicuci menggunakan air bersih untuk menghilangkan
kotoran dan bakteri. Mudjiman (1989) menambahkan bahwa tujuan pencucian ini
adalah untuk menghilangkan kandungan gliserol yang dapat digunakan oleh
bakteri untuk tumbuh dan berkembang.
2.7. Panen dan Transportasi Benur
Pemanenan benur dilakukan pada saat stadia PL 10 atau ukuran PL telah
mencapai 1 cm dan yang telah memenuhi kriteria-kriteria benur yang siap
dipanen. Pemanenan benur dimulai dengan menurunkan volume air sampai

30
dengan ketinggian air mencapai 30 cm (Subaidah dan Pramudjo, 1999; Djunaidah
dkk, tanpa tahun). Setelah mencapai ketinggian air tersebut, pipa saringan
sirkulasi larva dibuka dan air dari saluran pengeluaran ditampung menggunakan
hapa. Larva yang tertampung di dalam hapa dipindahkan ketempat lain
menggunakan serokan (Subaidah dan Pramudjo, 1999).
Djunaidah dkk (2002) menjelaskan bahwa benur yang berada dalam hapa
diserok dan dimasukkan kedalam tampungan dengan suhu air 24 0
C, setelah
semua benih masuk kedalam bak penampungan bisa dilakukan penakaran dan
pengemasan untuk transportasi.
Untuk perjalanan jarak dekat (< 6 jam) air media transportasi dibuat
dengan suhu 22 0
C. Setiap kantong dengan volume air 8 liter bisa diisi sekitar
5.000 ekor benur dengan volume oksigen bervolume 12 liter. Suhu yang lebih
dingin (17 0
C) dan kepadatan per kantong lebih rendah (3.000 ekor) diterapkan
pada transportasi jarak jauh dengan waktu tempuh lebih dari 6 jam. Proses
pemasukkan kantong berisi benur kedalam styrofoam perlu dilakukan agar
kondisi suhu terjaga serta penambahan batu terbungkus plastik juga dilakukan
untuk mempertahankan suhu agar tidak cepat naik (Djunaidah dkk, 2002)
2.8. Analisa Usaha
Tujuan menganalisis aspek keuangan adalah untuk menentukan rencana
investasi melalui perhitungan biaya dan manfaat yang diharapkan, dengan
membandingkan antara pengeluaran dan pendapatan, seperti ketersediaan dana,
biaya modal, kemampuan proyek untuk membayar kembali dana tersebut dalam
waktu yang telah ditentukan dan menilai apakah usaha akan dapat berkembang
terus (Umar, 2005).

31
Studi kelayakan terhadap aspek keuangan bertujuan untuk menganalisis
prakiraan aliran kas yang terjadi. Pada umumnya ada empat metode yang biasa
dipertimbangkan untuk penilaian aliran kas dari suatu investasi yaitu paybac
period, net present value, internal rate of return, dan profitability index, serta
analisa break even point (Umar, 2005).
2.8.1. Perkiraan Laba Rugi
Perkiraan laba rugi adalah bagian laporan keuangan sebagai salah satu perangkat
analisis keuangan berbentuk tabel yang memperkirakan seluruh pendapatan dan
seluruh biaya beserta selisihnya sehingga dapat mengetahui apakah usaha
mengalami laba atau rugi. Perhitungan laba rugi dilakukan paling tidak sampai
dengan kewajiban kredit selesai. Prakiraan laba rugi umumnya terdiri dari jumlah
produksi, hasil penjualan, nilai sisa, biaya produksi, laba operasi, biaya lain – lain,
laba sebelum bunga, laba sebelum pajak, dan laba bersih.
2.8.2. Aliran Kas
Umar (2005) menjelaskan bahwa perubahan kas (cash flow statement)
disusun untuk menunjukkan perubahan kas selama satu periode tertentu serta
memberikan alasan mengenai perubahan kas tersebut dengan menunjukkan dari
mana sumber – sumber kas dan penggunaan – penggunaannya.
2.8.3. Analisa Investasi
Payback period adalah suatu periode yang diperlukan untuk menutup
kembali pengeluaran investasi awal dengan menggunakan aliran kas. Perhitungan
payback period adalah dengan membandingkan antara nilai invetasi awal dengan
aliran kas masuk nya. Nilai yang dihasilkan memiliki satuan waktu. Selanjutnya
nilai rasio tersebut dibandingkan dengan maximum payback period atau rencana

32
umur usaha (Umar, 2005). Jika payback period < umur usaha, maka dikatakan
investasi dapat diterima.
A. Internal Rate of Return
Metode ini digunakan untuk mencari tingkat bunga yang menyamakan
nilai dari arus kas yang akan datang, atau penerimaan kas, dengan mengeluarkan
investasi awal. Teknisnya yaitu dengan menggunakan metode coba – coba yaitu,
menghitung nilai sekarang dari suatu arus kas investasi dengan menggunakan
suku bunga yang wajar. Suku bunga ditetapkan sampai dengan nilai sekarang
(present value) = nilai investasi. Kriteria penilaian dilakukan bila IRR yang
didapat lebih besar dari rate of return yang ditentukan, maka investasi dapat
diterima (Umar, 2005).
B. Net Present Value
Umar (2005) mengatakan bahwa NPV adalah selisih antara present value
dari investasi dengan nilai sekarang dari penerimaan – penerimaan kas bersih di
masa yang akan datang. Kriteria penilaian NPV adalah sebagai berikut:
NPV > 0, maka usulan usaha diterima
NPV < 0, maka usulan proyek ditolak
NPV = 0, maka dikatakan bahwa nilai usaha tetap walaupun usulan usaha
diterima maupun ditolak.
C. Profitability Indeks atau Benefit Cost Ratio
Pemakaian metode ini adalah dengan menghitung perbandingan antara
nilai sekarang dari rencana penerimaan – penerimaan kas bersih yang akan datang
dari investasi yang telah dilaksanakan. Usaha dikatakan layak apabila Profitability
Index > 1 (Umar, 2005).

33
2.8.4. Break Even Point (BEP)
Analisis pulang pokok atau break even point adalah suatu alat analisis
yang digunakan untuk mengetahui hubungan antara beberapa variabel di dalam
kegiatan perusahaan, seperti luas produksi atau tingkat produksi yang
dilaksanakan, biaya yang dikeluarkan, serta pendapatan yang diterima perusahaan
dari kegiatannya. Biaya operasi merupakan pengeluaran yang ada karena kegiatan
perusahaan. Biaya operasional terbagi menjadi tiga bagian, yaitu biaya tetap,
biaya variabel, dan biaya semi variabel (Umar, 2005).

34
BAB 3
METODOLOGI
3.1. Waktu dan Tempat Praktek Integrasi
Praktek integrasi ini dilakukan pada tanggal 5 Mei 2011 sampai dengan 3
Juli 2011. Lokasi praktek integrasi ini adalah di PT Central Pertiwi Bahari
Breeding Operation yang terletak di desa Suak, kecamatan Sidomulyo, Kab.
Lampung Selatan, Provinsi Lampung.
3.2. Alat dan Bahan
3.2.1. Alat
Alat yang digunakan pada pelaksanaan praktek integrasi adalah seperti
Tabel 5. di bawah ini.
Tabel 5. Alat yang Digunakan Selama Praktek
No Alat Jumlah Spesifikasi Kegunaan
1 Ruang receiving 1 unit 24 m x 30 m Penerimaan induk
baru
2 Bak maturasi 6 unit 3 m x 11 m x 0,9 m Pematangan induk
3 Bak peneluran 32 unit Ukuran 1000 liter Peneluran induk
dan penetasan
4 Bak penampungan 16 unit Ukuran 500 liter Penampungan
nauplii
5 Tabung oksigen Oksigenasi
6 Bak intake 2 unit 1,65 m x 5,12 m x
2,70 m
Filtrasi penyediaan
air
7 Sand filter I 2 unit 3,9 m x 5,12 m x
2,45 m
Filtrasi penyediaan
air
8 Sand filter II 2 unit 10 m x 5,12 m x
2,45 m
Filtrasi penyediaan
air
9 Pompa listrik 10 unit 10 HP. 3PH. Tipe
100X80.FSSF 575
merk Ebara
Transportasi air
10 Generator ozon 1 unit Tipe NFW.130.A.S
KOHLN Germany,
kapasitas 130 g
O3/jam
Ozonisasi
11 Bak kultur
plankton
28 unit 6,83 m x 5,7 m x
1,8 m
Kultur masal
plankton

35
Lanjutan Tabel 5.
No Alat Jumlah Spesifikasi Kegunaan
12 Bak kultur artemia 25 unit 1,6 m x 1,02 m x
1,48 m
Penetasan artemia
13 Bak pemeliharaan
larva
12 unit 9 m x 7 m x 2 m Pemeliharaan larva
sampai stadia PL
14 Beaker glass 12 unit 500 ml Pengamatan visual
larva
15 Seser benur 4 unit Mesh size 56 (600 –
625 mikron)
diameter 30 cm
Menyeser benur
saat panen
16 Jaring panen 4 unit 70 cm x 90 cm x 75
cm mesh 56
Menampung benur
saat panen
17 Timbangan pakan 1 unit Mettler Toledo PB
802 ketelitian 1 g
Menimbang pakan
18 Filter bag 12 unit Diameter 6 inch 88
cm x 30 cm
Filtrasi air masuk
19 Selang aerasi Diameter 5 mm
merek green marine
Pensuplai udara
20 Batu aerasi dan
timah pemberat
Berat 100 gram Pemerataan aerasi
dan pemberat
21 Mikroskop 1 unit Pengamatan larva
3.2.2. Bahan
Bahan yang digunakan pada pelaksanaan praktek integrasi adalah seperti
Tabel 6.
Tabel 6. Daftar Bahan yang Digunakan Selama Praktek
No Nama Bahan Jumlah Spesifikasi Kegunaan
1 Induk Udang Pemproduksi telur
dan nauplii
2 Polychaeta Pakan induk
3 Artemia beku Pakan induk
4 Cumi beku Pakan induk
5 CaOCl2 Bahan aktif 60% Desinfektan
6 Formalin teknis Bahan aktif 37% Fumigasi dan uji
stress benur
7 Vitamin C Serbuk dan cair Prophylaksis
8 Povidone iodin Bahan aktif 10% Desinfeksi
peralatan dan bak
9 Es balok Penurun suhu saat
transportasi benur
10 KMnO4 Fumigasi
lingkungan

36
Lanjutan Tabel 6.
No Nama Bahan Jumlah Spesifikasi Kegunaan
11 EDTA 5 ppm serbuk Mengikat logam
berat yang ada
dalam air
12 Urea 25 ppm padatan Sumber nutrisi
fitoplankton
13 NPK 10 ppm padatan Sumber nutrisi
fitoplankton
14 TSP 5 ppm padatan Sumber nutrisi
fitoplankton
15 Vitamin B tablet Merangsang
hormon
pertumbuhan
16 FeCl3 serbuk Unsur pembentuk
klorofil
17 CP – 00 – 03 Serbuk Pakan buatan larva
18 H2O2 Cair Menaikan
cangkang kista
secara cepat
3.3. Metode Kerja
3.3.1. Metode Pengumpulan Data
Metode praktek yang digunakan adalah pola magang, yaitu melakukan
pengamatan dan mengikuti kegiatan langsung di lapangan selama melaksanakan
praktek di berbagai departemen yang telah ditentukan perusahaan yaitu
departemen pengelolaan induk dan produksi nauplii, departemen pakan alami,
serta departemen produksi benur. Selain itu juga melakukan wawancara kepada
pihak terkait dan mencatat data sekunder yang ada di perusahaan untuk
melengkapi data yang tidak dapat diperoleh melalui kegiatan praktek.
Berikut ini merupakan langkah kerja dari masing – masing kegiatan yang
dilakukan selama melakukan praktek di PT Central Pertiwi Bahari Breeding
Operation.

37
A. Kegiatan Operasional Pendukung
a. Pengelolaan Air
1) Air dipompa dari laut menuju bak intake
2) Air dialirkan melalui dua kali proses filtrasi sand filter
3) Air hasil filtrasi ditampung dalam bak penampungan I
4) Air yang telah bersih dipompa dan ditampung di bak-bak reservoir
dengan melewati pressurized filter dan proses ozonisasi
5) Air yang telah diozon disirkulasi melewati pressurized filter paling tidak
selama 4 jam dan diendapkan selama 4 jam.
6) Air siap didistribusikan menuju departemen-departemen yang
membutuhkan
b. Kultur Fitoplankton (Diatom)
1) Mencuci bersih semua peralatan yang akan digunakan dengan
menggunakan larutan detergen dan bilas dengan air tawar
2) Mengeringkan peralatan sebelum digunakan
3) Menyiapkan air dengan salinitas 28 ppt yang sudah diozon dan disaring
dengan menggunakan filter bag
4) Memasukan EDTA2Na 3-5 ppm kedalam media dan beri aerasi dengan
kekuatan sedang sedikitnya 4 jam
5) Memasukan pupuk sesuai dengan dosis

38
6) Setelah pupuk tercampur dengan air, menginokulasikan bibit diatom
berumur 24 jam sebanyak 10-30 %
7) Diatom yang telah berumur 24 jam dipanen dengan cara
mendistribusikannya menggunakan pompa menuju modul-modul yang
membutuhkan
c. Penetasan Artemia
1) Mengisi bak penetasan dengan air laut yang tlah diozon melalui filtrasi
dengan filter bag
2) Membuka kran aerasi sehingga menghasilkan gelembung udara yang
cukup besar untuk mengaduk kista yang akan ditetaskan
3) Memasukan kista yang teah didesinfeksi kedalam bak penetasan dengan
kepadatan 1-2 gram per liter
4) Menginkubasi selama 24-30 jam dengan menggunakan aerasi kuat
5) Setelah 24 jam artemia yang sudah menetas siap untuk dipanen dengan
cara:
- Memasang pipa panen pada lubang pengeluaran di dalam bak.
- Mematikan aerasi selama 20-30 menit untuk membiarkan cangkang
naik ke permukaan air dan terpisah dari nauplii artemia yang menetas
sementara bagian atas bak ditutup dengan penutup berwarna hitam
- Membuka kran pengeluaran air yang terdapat di sisi luar bak yang
akan dipanen dan biarkan nauplii artemia keluar dengan kecepatan air
rendah-sedang
- Mencuci nauplii artemia menggunakan air tawar yang mengalir selama
5-10 menit hingga bersih dari lendir

39
- Memindahkan nauplii artemia kedalam bak fiber kerucut yang berisi
air tawar 250-500 liter ( 1,5-2 kg kista) dan beri aerasi kuat
- Memberikan Peroksida (H2O2) dengan dosis 1000 ppm
- Mematikan aerasi dan tutup bagian atas bak dengan penutup berwarna
hitam selama 15-25 menit
- Membuka kran pada pipa pengeluaran dengan kecepatan aliran
rendah-sedang sampai nauplii artemia terpanen dan cangkangnya tidak
terbawa lagi
- Mencuci nauplii artemia dengan air tawar mengalir dan kemudian siap
untuk diberikan kepada modul-modul yang membutuhkan
B. Pemeliharaan Larva dan Post Larva
a. Fumigasi
1) Menyiapkan ember/kaleng, gayung, PK, dan formalin teknis
2) Memasukkan 0,5 kg PK kedalam kaleng dan letakan di enam titik dalam
ruangan modul/bagian luar bak serta masing-masing satu titik di dalam
bak pemeliharaan
3) Secara bersama-sama dan hati-hati, memasukkan formalin teknis sebanyak
1 liter dalam setiap kaleng tersebut
4) Menutup rapat ruangan setiap bak dan ruangan dan biarkan paling tidak 24
jam
5) Proses fumigasi dapat dilakukan 2-3 kali tergantung lamanya masa
pengeringan dan persiapan

40
b. Pencucian Bak, Peralatan, dan Sanitasi
1) Mencuci bak dan semua peralatannya dengan menggunakan detergen
kemudian keringkan
2) Melakukan perendaman seluruh peralatan pendukung operasional dengan
larutan kaporit 100 ppm selama 24 jam, kemudian lakukan pencucian
menggunakan detergen, lalu keringkan kembali
3) Menyiapkan larutan PK 100 ppm pada tempat cuci kaki (foot bath) di
depan ruang pemeliharaan larva
4) Menyiapkan larutan iodin 200 ppm di dalam ember-ember 20 liter dan
tempatkan di masing-masing bak pemeliharaan larva untuk merendam
beaker glass yang akan digunakan selama masa pemeliharaan. Gunakan
satu alat untuk satu bak.
c. Persiapan Air dan Penebaran Nauplii
1) Mengisi bak dengan air laut yang telah ditreatment sebanyak 70 % dari
total kapasitas
2) Membuka saluran aerasi dan lakukan penyetelan besar kecilnya aerasi.
Usahakan gelembung udara yang dihasilkan tidak terlalu kuat dan tidak
terlalu lemah
3) Melakukan pemberian EDTA2Na 3-5 ppm 6 jam sebelum nauplii ditebar
4) Plankton (Chaetoceros sp) diberikan 6 jam sebelum penebaran nauplii
5) Melakukan Penebaran Nauplii dengan Cara:
- Membuka ikatan kantong plastik berisi nauplii dan bilas bagian luar
kantong dengan larutan iodin 200 ppm

41
- Memasukan naupli dalam kantong plastik kedalam ember tebar yang
telah disiapkan
- Memasukan ember tebar kedalam bak pemeliharaan dan beri aerasi
kedalamnya
- Membuka penyumbat dasar ember agar air dalam bak sedikit demi
sedikit masuk ke dalam ember dan biarkan ember tenggelam secara
perlahan-lahan
- Menebar naupii secara perlahan-lahan kedalam bak pemeliharaan
d. Pemberian Fitoplankton
1) Plankton diberikan pada stadia zoea sampai dengan PL 1
2) Frekuensi pemberian plankton adalah tiga kali sehari yaitu pada pukul
08.00, 13.00, dan 19.00.
3) Jumlah plankton yang diberikan pada setiap stadia dibedakan sesuai
dengan kebutuhan makannya
4) Persiapan dan penyediaan plankton dapat dilakukan sesuai standar
operasional yang telah ditetapkan (terlampir)
5) Mentransfer plankton menggunakan pompa
e. Pemberian Artemia
1) Artemia diberikan pada stadia MPL sampai dengan PL panen
2) Frekuensi pemberian artemia adalah tiga kali sehari yaitu pada pukul
09.00, 15.00, dan 21.00.
3) Jumlah total artemia yang diberikan adalah sekitar 5 kg per juta benur
yang dihasilkan dengan contoh pemberian terlampir

42
4) Persiapan dan penyediaan artemia dapat dilakukan sesuai standar
operasional yang telah ditetapkan
5) Melakukan penebaran nauplii artemia ke dalam bak pemeliharaan secara
merata dengan menggunakan gayung pakan
6) Penentuan kista artemia yang ditetaskan
f. Pemberian Pakan Buatan
1) Mencatat jumlah pakan yang diperlukan sesuai dengan nomor bak
2) Menimbang pakan bersama tempat (plastik) yang sudah diberi nomor bak
yang akan diberi pakan
3) Satu per satu, Menuangkan pakan kedalam saringan pakan dengan ukuran
sesuai kebutuhan, kemudian hancurkan serta larutkan di dalam air laut 10
liter yang sudah disiapkan di dalam ember agar ukuran partikel pakan
sesuai dengan bukaan mulut larva
4) Menyebarkan pakan secara merata ke dalam bak pemeliharaan dengan
menggunakan gayung
5) Setelah selesai, mencuci ember dan gayung hingga bersih dan simpan
kembali di tempat masing-masing
g. Pengamatan dan Pencatatan Aktifitas Larva / PL
1) Mengambil media pemeliharaan dan benur dalam bak dengan
menggunakan beaker glass 500 ml
2) Mengamati larva di tempat terang mengenai respon terhadap cahaya
maupun aktifitas dan cara renangnya yang menjadi indikator kesehatan
benur

43
3) Mengamati keberadaan partikel makanan di dalam air dengan melihat
kekeruhan maupun warna media.
4) Melakukan pengamatan terhadap keberadaan feces di media pemeliharaan
terutama pada stadia zoea
5) Melakukan pengamatan terhadap kondisi fisik larva/PL dengan mengamati
warna tubuh/pigmentasi serta abnormalitas morfologinya.
h. Pendugaan Populasi
1) Mengambil sampel secara acak di tempat titik dalam bak pemeliharaan
dengan mempergunakan beaker glass 500 ml
2) Menghitung jumlah larva/PL pada setiap pengambilan dan konversikan
hasilnya dengan persamaan berikut:
C. Panen Benur
a. Persiapan Air Panen
1) Memasukkan 10 m3
air laut di bak tandon, lengkapi dengan aerasi kuat
dan lakukan pemerikasaan terhadap salinitasnya
2) Memasukkan air tawar dan sesuaikan salinitasnya sampai mencapai 1 ppt
lebih tinggi dari salinitas air panen
3) Menambahkan 13 balok es dalam bak
4) Memasukkan sensor termometer kedalam bak tersebut untuk mengetahui
perubahan suhu
5) Menghidupkan pompa untuk mensirkulasi air dan mempercepat
pencampuran air dengan es yang telah mencair
6) Mematikan pompa setelah 15 menit, sek salinitas dan suhu

44
7) Setelah suhu dan salinitas yang diinginkan di bak tandon tercapai,
memindahkan air tersebut ke dalam bak-bak fiber penampungan berukuran
1 m3
8) Menginjeksi air dalam bak fiber penampungan tersebut dengan oksigen
untuk memperoleh kadar DO > 20 ppm. Biasanya diperlukan waktu
minimal 7-10 menit untuk meningkatkan DO sesuai dengan standar
tersebut
9) Menambahkan artemia dengan kepadatan 1-2 ekor/ml ke dalam bak-bak
fiber penampungan tersebut untuk kemudian siap digunakan sebagai air
packaging benur
b. Persiapan Air Penampungan Benur
1) Menyiapkan tank fiber 500 liter untuk menampung benur dari bak
pemeliharaan (1 bak = 500.000 ekor benur)
2) Mengisi sepertiga bagian bak tersebut dengan air bersalinitas sesuai dan
suhu 28 0
C dan dilengkapi dengan aerasi oksigen murni maupun oksigen
dari blower dengan kekuatan sedang
c. Persiapan Air Aklimatisasi Suhu
1) Menyiapkan bak fiber ukuran 300 liter sebanyak 3 unit dan atur posisinya
berurutan
2) Mengisi bak-bak tersebut dengan air laut yang telah disiapkan di bak
tandon yang bersuhu 23 0
C dan lakukan penyesuaian suhu pada
masing-masing bak sehingga diperoleh suhu akhir 26 0
C, 24 0
C, dan 23
0
C untuk proses aklimatisasi. Peningkatan suhu dari 24 0
C dan 26 0
C dapat

45
dilakukan dengan menambahkan air laut langsung dari pipa air laut yang
belum diturunkan suhunya.
d. Pemanenan Benur
1) Menyiapkan rangka panen yang terbuat dari stainless steel dan dilengkapi
net panen
2) Menyiapkan seser benur
3) Melakukan penurunan air di bak pemeliharaan yang akan dipanen sampai
tesisa 25% dari total volume bak
4) Memasang rangka dan jaring panen pada pipa pembuangan di luar bak
5) Menutup sebagian siring (jalan air) yang terdapat di bak panen dengan
papan sampai ketinggian tertentu agar air tetap tergenang
6) Mencabut pipa saringan pembuangan agar benur dapat keluar
7) Menyiapkan dan mengisi ember transfer dengan air dari bak asal 75%
bagian dan injeksi dengan oksigen dari tabung yang telah disiapkan selama
+ 2 menit untuk meningkatkan DO menjadi > 12 ppm. Lakukan injeksi
oksigen tersebut dengan aerasi sedang
8) Benur yang keluar dan tertampung dalam net panen diseser/diserok
dengan menggunakan seser mesh size 56, kemudian ditampung dalam
ember transfer yang telah dioksigenasi dengan kepadatan benur per ember
kurang lebih 50.000 ekor
9) Membawa ember berisi benur tersebut ke packing area dan masukkan
kedalam fiber penampungan benur dengan kepadatan maksimal 500.000
ekor benur per bak

46
e. Pengepakan
1) Memindahkan benur menggunakan seser mesh size 56 dari fiber
penampungan ke tank aklimatisasi I (26 0
C) dan tampung di dalam net
aklimatisasi dengan kepadatan maksimal 100.000 ekor benur
2) Melakukan penyesuaian suhu minimal selama dua menit. Selanjutnya
pindahkan ke net aklimatisasi berikutnya (24 0
C dan 23 0
C) dengan
rentang waktu yang sama
3) Pada masing-masing net aklimatisasi, melengkapi dengan aerasi oksigen
murni dan aerasi blower untuk mensuplai oksigen bagi benur
4) Menyerok benur dari net aklimatisasi terakhir dengan seser mesh 56
kemudian lakukan penakaran (scooping) benur dengan menggunakan
takaran dan masukkan kedalam kantong benur yang sudah terisi air laut 8
liter. Kepadatan benur per kantong adalah 4-7 ribu ekor. Selama dilakukan
penakaran, posisi seser harus tetap terendam air dan dilengkapi aerasi pada
bagian luar seser agar suplai oksigen tetap terjamin
5) Menambahkan es diantara kantong plastik yang terisi benur dan kantong
kedua
6) Melakukan penambahan oksigen kedalam kantong plastik benur dengan
perbandingan 1 bagian air : 2 bagian oksigen
7) Mengikat plastik dengan karet
8) Memasukan kantong berisi benur kedalam master karton / styrofoam box
untuk selanjutnya diikat dengan strapping band
9) Benur siap didistribusikan/transportasi

47
f. Pendugaan Jumlah Benur per Kantong
1) Mengambil secara acak kantong-kantong plastik yang telah berisi benur
yang telah ditakar sebanyak tiga kantong
2) Sampel yang diambil adalah kantong saat awal penakaran, pertengahan,
dan akhir untuk meningkatkan akurasi
3) Menghitung benur pada masing-masing kantong
4) Mengestimasi per kantong ditetapkan sebagai jumlah minimum dari tiga
sampel yang diambil
g. Pengeringan
1) Mencabut batu aerasi dan timah pemberat segera setelah proses panen
selesai dan lakukan perendaman dengan detergen selama 24 jam,
selanjutnya dilakukan pencucian dan pembilasan dengan air tawar
2) Menjemur batu aerasi dan timah tersebut di dalam modul sampai kering
3) Melepas selang aerasi dalam bak, lakukan pencucian dengan deterjen dan
air laut
4) Merendam selang aerasi tersebut dalam larutan formalin 1000 ppm
selama 24 jam dan selanjutnya lakukan penjemuran sampai kering
5) Melakukan pencucian bak pemeliharaan dengan larutan deterjen dan bilas
dengan air tawar
6) Melakukan pencucian seluruh peralatan pendukung operasional
pemeliharaan benur dengan larutan deterjen selanjutnya kering udara kan
7) Melakukan penggelontoran terhadap dinding dan lantai bak serta lantai
ruangan pemeliharaan dengan larutan kaporit 1000 ppm dan biarkan
sampai akan digunakan kembali

48
3.3.2. Metode Analisis Data
Analisis data diawali dengan kegiatan pengolahan data yang meliputi
kegiatan tabulasi dan sortasi data. Setelah ditabulasikan dan dipilih, selanjutnya
data diolah sesuai dengan tema dan tujuan praktek yaitu usaha pembenihan udang
vaname. Hasil pengolahan data disajikan dalam bentuk tabel, gambar, maupun
grafik.
Selanjutnya data dianalisis atau dikaji secara lebih mendalam mengarah
kepada tujuan praktek yaitu menjelaskan ruang lingkup usaha pembenihan udang
vaname dilihat dari apek teknis dan keuangan. Metoda analisa data yang
digunakan adalah analisa deskriptif atau kualitatif dan analisa kuantitaif
A. Analisa Deskriptif (Kualitatif)
Dilakukan dengan menggambarkan dengan jelas mengenai usaha
pembenihan udang vaname (Litopenaeus vannamei) di lokasi praktek dan
membandingkan dengan kepustakaan yang ada.
B. Analisa kuantitatif
Analisa kuantitatif dilakukan dengan menganalisa data di lapangan
dengan menggunakan berbagai persamaan. Data kuantitatif yang dapat dianalisa
adalah sebagai berikut:
1) Derajat fertilitas telur
Derajat fertilitas (%) =
jumlah telur yang fertil (butir)
jumlah telur yang dihasilkan (butir)
× 100%
2) Fekunditas induk
Fekunditas =
jumlah telur yang dihasilkan (butir)
bobot induk betina (g)

49
3) Hatching Rate
HR (%) =
Jumlah nauplii yang menetas (ekor)
jumlah telur fertil (butir)
× 100%
4) Kepadatan nauplii
Kepadatan nauplii =
jumlah nauplii (ekor)
volume bak pemeliharaan (liter)
5) Survival Rate (Wyban dan Sweeney, 1991)
SR (%) =
jumlah populasi terhitung
jumlah nauplii yang ditebar pada hari ke 1
× 100%
6) NPV (Umar, 2005)
NPV = ෍
CF୲
(1 + K)୲
୬
୲ୀଵ
− I଴
Keterangan: NPV = Net Present Value
CFt = aliran kas per tahun t
I0 = investasi awal
K = suku bunga
7) IRR (Umar, 2005)
IRR = Pଵ − Cଵ ×
Pଶ − Pଵ
Cଶ − Cଵ
Keterangan: P1 = tingkat bunga ke 1
P2 = tingkat bunga ke 2
C1 = NPV ke 1
C2 = NPV ke 2

50
8) B/C Ratio (Umar, 2005)
PI =
Present value kas masuk
investasi awal
9) BEP
BEP =
Biaya tetap
1 −
biaya variabel
jumlah penjualan

51
BAB 4
KEADAAN UMUM LOKASI
4.1. Lokasi
PT CPB Breeding Operation merupakan perusahaan yang bergerak di
bidang pembenihan udang vaname (Litopenaeus vannamei) terletak di Desa Suak,
Kecamatan Sidomulyo, Kabupaten Lampung Selatan - Provinsi Lampung, seperti
yang digambarkan oleh Gambar 1. Letak astronomis PT CPB adalah 50
39` LS dan
1050
28` BT. Sedangkan secara geografis PT CPB terletak pada sebuah teluk,
sebelah utara dan sebelah timur berbatasan dengan Desa Budidaya, sedangkan
sebelah barat dan selatan berbatasan dengan samudera Hindia. Lokasi area
perusahaan yang terletak pada teluk ini sangat strategis karena dapat terhindar dari
pengaruh musim yang sangat ekstrim sepanjang tahun sehingga sejak berdirinya
perusahaan tidak pernah mengalami banjir maupun terkena abrasi.
Gambar 1. Lokasi PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation

52
Luas total wilayah perusahaan ini adalah 123,37 ha yang terdiri atas 35%
sebagai area produksi, 20% sebagai area pendukung, 10% sebagai area riset dan
sisanya 35% sebagai area ekspansi.
4.2. Sumber Daya Manusia dan Struktur Organisasi
Jumlah total karyawan di PT CPB Breeding Operation adalah sebanyak
452 orang yang terdiri dari 93% pria dan 7% wanita. Adapun latar belakang
pendidikan karyawan beragam mulai dari tingkat sekolah dasar sampai dengan
tingkat sarjana. Berikut ini adalah Tabel 7. mengenai penggolongan karyawan
berdasarkan latar belakang pendidikan.
Tabel 7. Klasifikasi Karyawan Berdasarkan Latar Belakang Pendidikan
Latar Belakang Pendidikan Persentase
SD 3 %
SMP 6 %
SMA 73 %
Diploma 8%
Sarjana 10%
Perusahaan ini dipimpin oleh seorang manajer tertinggi hatchery yang
membawahi beberapa wilayah produksi di seluruh Indonesia. Pimpinan tertinggi
di Hatchery Suak, Sidomulyo adalah Bapak A. Musyafik yang secara langsung
memimpin seluruh departemen yang ada di bawahnya sesuai dengan tugas dan
fungsinya masing – masing. Struktur organisasi perusahaan dapat dilihat pada
Gambar 2.

Ga
4.3. Kapasitas Produk
Perusahaan in
benur per tahun. Distr
yang terletak di kabup
kepada tambak – tam
maupun afiliasi perusah
4.4. Fasilitas
Fasilitas yang
menjadi 2 kelompok y
fungsional terdiri atas
Fry Production De
MNPD FP
Gambar 2. Struktur Organisasi Perusahaan
Produksi dan Wilayah Pemasaran
aan ini mampu melakukan produksi sampai deng
Distribusi benur 90% menuju wilayah pertambak
kabupaten Tulangbawang. Dan sisanya menuju pa
tambak pembesaran milik pihak lain baik itu
erusahaan yang bergerak di bidang pembesaran ud
s yang dimiliki PT CPB Breeding Operation dapa
pok yaitu fasilitas fungsional dan fasilitas pendu
i atas Maturation and Nauplii Production Departe
Departement (FPD), Biofeed Departement
Hatchery di
Desa Suak
Admin
Produksi
Hatchery
(Breeding Operation)
FPD
Support
Production
Biofeed FIS
53
i dengan 6,6 milyar
ambakan CPB farms
uju pasar bebas yaitu
ik itu milik pribadi
ran udang.
n dapat digolongkan
pendukung. Fasilitas
artement (MNPD),
ment (BD), area
Engineering
& GA - BO

54
pengemasan, dan laboratorium. Fasilitas pendukung antara lain perumahan,
perkantoran, kantin, koperasi, dan sarana olahraga.
4.4.1. Maturation and Nauplii Production Departement (MNPD)
Maturation and Nauplii Production Departement (MNPD) adalah sebuah
departemen yang berfungsi untuk mengelola induk dari mulai pengadaan induk,
penerimaann induk, pemeliharaan induk, sampai dengan menghasilkan nauplii.
Induk yang dipelihara di MNPD merupakan induk vaname yang berjenis Specific
Patogen Free (SPF) dan Specific Patogen Resistant (SPR) berasal dari Shrimp
Improvement System (SIS), Florida. Departemen ini memiliki sebuah ruangan
pengelolaan induk yang terdiri dari empat ruangan yaitu receiving room,
maturation room, spawning and hatching room, dan holding room. Gambar setiap
ruangan dapat dilihat pada Gambar 3. Induk yang baru datang kemudian
diaklimatisasi dan dipelihara di dalam bak receiving selama kurang lebih dua
minggu. Setelah induk beradaptasi dengan lingkungan baru yang ditandai dengan
nafsu makan meningkat, induk betina selanjutnya diablasi dan dipindahkan
menuju bak pematangan telur (maturaion tank) bersama – sama dengan induk
jantan. Kemudian setelah terjadi perkawinan, induk betina dipindahkan menuju
bak peneluran dan penetasan telur (spawning and hatching tank). Telur yang telah
keluar dibiarkan sampai dengan menetas menjadi nauplii dan dipindahkan menuju
bak penampungan (holding tank). Setelah itu kemudian nauplii ditransfer menuju
departemen lain yang bertugas untuk memelihara nauplii sampai menjadi benur
dan siap jual yaitu FPD.

55
Gambar 3. Ruangan Dalam Maturation and Nauplii Production Departement
4.4.2. Fry Production Departement (FPD)
Fry Production Departement (FPD) adalah departemen yang berfungsi
untuk memproduksi benur. Departemen ini merupakan suatu depertemen yang
terintegrasi untuk memproduksi benur sehingga lokasinya berdekatan dengan
departemen lain yang menunjang bagi kelangsungan produksi seperti departemen
pakan alami, departemen air, dan departemen pengendali mutu. Dalam
departemen ini nauplii yang berasal dari MNPD dipelihara sampai dengan stadia
PL 10 untuk kemudian dipanen dan didistribusikan menuju pasar, baik itu menuju
lokasi tambak (pond site), pasar bebas, maupun menuju afiliasi perusahaan.
Departemen ini terdiri dari lima unit hatchery. Masing – masing hatchery
terdiri dari 5 modul yang masing – masing memiliki 12 bak pemeliharaan dengan
volume maksimal 100 m3
. Target produksi setiap modul adalah 60 juta benur per
siklus.
4.4.3. Departemen Pengelola Air (Water Departement)
Departemen ini berfungsi untuk memproduksi air steril yang memiliki
kualitas sesuai dengan permintaan yang dibutuhkan departemen lain. Air yang
diolah berasal dari air laut yang diproses melalui filtrasi dan ozonisasi. Air yang
sudah memliki kualitas air sesuai, disimpan dalam bak penampungan besar atau
resevoir bervolume 700 m3
. Fasilitas yang dimilki departemen pengelola air ini

56
antara lain pipa pemasukan air, filter pasir, reservoir, filter bertekanan, dan
generator ozon.
4.4.4. Biofeed Departement
Biofeed departement adalah departemen yang berfungsi untuk
mendukung kelangsungan proses produksi benur dengan menyediakan pakan
alami bagi larva yang sesuai dengan stadia larva. Departemen ini terdiri dari unit
kultur alga dan unit penetasan artemia.
Unit kultur alga berfungsi untuk menyediakan alga mulai dari skala
laboratorium sampai dengan skala masal dan akhirnya ditranfer menuju bak
pemeliharaan larva sesuai dengan permintaan modul. Kultur alga skala
laboratorium dimulai dari kultur dalam ukuran tabung, botol, sampai dengan
galon. Kultur selanjutnya adalah kultur skala intermediate yang dilakukan dalam
bak berkapasitas 9 m3
. Tahapan kultur masal dilakukan dalam bak bervolume 60
m3
.
Unit penetasan artemia berfungsi untuk menyediakan kebutuhan nauplii
artemia hidup bagi setiap modul. Penetasan artemia ini menggunakan bak
bervolume 2 m3
dengan kepadatan kista 1,5 – 2 gram per liter.
4.4.5. Departemen Pengendali Mutu (Quality Control)
Departemen ini berfungsi untuk melakukan pengecekan kualitas biota
yang dipelihara pada masing-masing departemen. Hal ini untuk memastikan agar
output masing-masing departemen memenuhi standar yang telah ditetapkan.
Kualitas yang diamati adalah kualitas induk, nauplii, alga, dan benur. Selain itu
juga, pemeriksaan dilakukan terhadap keberadaan bakteri, epibion, virus, serta
kualitas air media pemeliharaan.

57
4.5. Sumber Tenaga Listrik
PT CPB Breeding Operation memiliki sumber listrik yang berasal dari
PLN dengan daya 1,2 mega watt. Sebagai cadangan, perusahaan ini juga memiliki
empat unit generator dengan kapasitas 500 kVA per unit.
4.6. Alur Produksi
PT CPB Breeding Operation memiliki dua departemen utama untuk
melaksanakan kegiatan produksi. Departemen tersebut adalah Maturation and
Nauplii Production Departement (MNPD) dan Fry Production Departement
(FPD).
Proses produksi dimulai dari penentuan kapasitas produksi berdasarkan
permintaan benur dari tambak CPB, afiliasi, dan pasar bebas. Sejumlah induk
didatangkan oleh MNPD sesuai dengan rencana produksi tersebut untuk
memproduksi nauplii. Nauplii yang dihasilkan ditransfer menuju FPD dan
dipelihara sampai dengan PL 10. Benur yang telah lolos pengecekkan
laboratorium selanjutnya dipanen dan dikirim menuju tambak pembesaran. Alur
produksi dapat dilihat pada Gambar 4.
Proses produksi tersebut didukung oleh divisi lain untuk menjamin
kelancaran produksi dan mengontrol mutu benur yang akan dipasarkan. Divisi
tersebut antara lain adalah Algae Production Departement (APD), kultur artemia,
water departement, dan bagian laboratorium.

58
Sumber : PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation
Gambar 4. Bagan Alur Produksi Perusahaan
Bagian laboratorium khusus melakukan kegiatan pengamatan terhadap
kualitas output dari masing-masing departemen seperti artemia, alga, nauplii,
benur, jumlah bakteri, virus, dan bahkan kualitas air.

59
BAB 5
HASIL DAN PEMBAHASAN
5.1. Penyediaan Air Pemeliharaan
Sumber air yang dipakai untuk melakukan kegiatan produksi berasal dari
perairan di sekitar hatchery. Dasar perairan di sekitar hatchery merupakan karang
berpasir. Sehingga secara visual perairan ini selalu jernih. Keadaan sumber air ini
sesuai dengan pendapat Djunaidah dkk (2002) yang menyatakan bahwa air laut
yang jernih merupakan salah satu faktor dalam penentuan lokasi hatchery.
Air langsung diambil dari laut menggunakan pompa yang berjarak 300
meter ke arah laut dengan kedalaman air 20 m melalui pipa saluran utama
berdiamter 6 inch. Desinfeksi dilakukan dengan larutan kaporit 60% yang
diinjeksi kedalam pipa utama menggunakan alat yang disebut dosing, seperti
tampak pada Gambar 5. alat tersebut memompakan sejumlah volume larutan
kedalam pipa pada interval waktu tertentu. Alat ini diset agar dapat menginjeksi
kaporit untuk mendesinfeksi air dengan dosis 100 ppm. Klorinasi ini melebihi
dosis sterilisasi yang di sarankan oleh Moretti dkk (1999) yaitu sebanyak 5 – 10
ppm klorin aktif.

60
Gambar 5. Injeksi Kaporit Menggunakan Dosing
Sistem injeksi ini memanfaatkan gaya gerak air dalam pipa untuk
melakukan proses pengadukan kaporit dengan air laut yang masuk sehingga
proses desinfeksi berlangsung saat proses transfer dilakukan. Air laut ini
kemudian disalurkan menuju dua departemen utama yaitu Maturation and Nauplii
Production Departement (MNPD) dan Fry Production Departement (FPD).
Pembagian jalur ini dilakukan karena kualitas air yang dibutuhkan oleh kedua
departemen berbeda terutama pada parameter salinitas. MNPD membutuhkan air
dengan salinitas 31 ppt-33 ppt sedangkan FPD membutuhkan air dengan salinitas
28 ppt-30 ppt. Pembagian ini bertujuan untuk menyesuaikan kondisi media
pemeliharaan udang agar mendekati kondisi habitat aslinya. Wyban dan Sweeney
(1991) menjelaskan bahwa induk udang hanya dapat bereproduksi di perairan laut
lepas dengan salinitas di atas 30 ppt, sementara udang muda bermigrasi menuju
estuari yang memiliki salinitas lebih rendah.
Untuk memenuhi kebutuhan air yang bersih dan siap digunakan, maka air
yang telah mengalami klorinasi ini selanjutnya dialirkan kedalam serangkaian
filter menggunakan sand filter dan pressurized filter serta melalui proses

61
ozonisasi. Proses filtrasi ini dimulai dengan sand filter I dan sand filter II, seperti
yang tampak pada Gambar 6. Fungsi dari sand filter ini adalah untuk menyaring
partikel-partikel berukuran besar maupun kecil secara bertahap. Selanjutnya air
hasil filtrasi tersebut dipompa dan ditampung di bak reservoir melewati
pressurized filter untuk mereduksi bahan-bahan terlarut yang tidak diinginkan di
dalam air seperti amonia dan H2S. Untuk kebutuhan pemeliharaan induk, salinitas
air laut tidak diturunkan sedangkan untuk keperluan produksi benur, salinitas
diturunkan dengan penambahan air tawar. Selama proses transfer tersebut, air
dialirkan melalui generator ozon untuk membunuh bakteri atau mikroorganisme
lain yang masih terdapat dalam air. Rangkaian proses ini sama dengan yang
dijelaskan oleh Djunaidah dkk (2002) bahwa untuk memproduksi air bersih perlu
dilakukan pengendapan, penyaringan, dan ozonisasi.
Gambar 6. Sand Filter I dan II
Sand filter I tersusun atas 20 cm batu kali, 10 cm batu split, dan
60 cm pasir silika. Sedangkan sand filter II tersusun dari 15 cm arang batok dan
70 cm pasir silika .Fungsi dari batu kali adalah untuk menahan pasir yang tersusun
di atasnya, dan juga untuk memberikan rongga bagi air dari bak intake untuk

62
dapat mengalir ke sand filter II dimana saat yang sama berfungsi juga untuk
menahan kotoran yang berukuran besar. Batu split berfungsi untuk menyaring
kotoran yang masih lolos dari tahapan penyaringan baru kali. Begitu juga halnya
dengan pasir silika berfungsi sebagai filtrasi. Akan tetapi arang batok disisipkan
dalam rangkaian proses filtrasi berfungsi sebagai penyerap bahan-bahan
anorganik yang tidak diinginkan misalnya amonia dan H2S, bahkan Djunaidah dkk
(2002) menyatakan bahwa karbon aktif dapat menyerap sisa ozon dan logam
berat. Bagan aliran air dan susunan bahan filter digambarkan pada Lampiran 15.
5.2. Pemeliharaan Induk
Pemeliharaan induk ini meliputi kegiatan persiapan bak dan media
pemeliharaan, pematangan induk, dan seleksi induk. Rangkaian proses tersebut
mendekati rangkaian proses yang diurutkan oleh Subaidah dan Pramudjo (2008),
yaitu pengadaan induk, pematangan gonad, perkawinan, serta pemijahan dan
penetasan.
5.2.1. Persiapan Ruangan dan Media Pemeliharaan
Ruangan pemeliharaan dikondisikan agar tercipta suasana gelap untuk
memberikan kesesuaian dengan kebiasaan udang agar melakukan proses
perkawinan. Untuk mencapai kondisi tersebut, dipasang orchid net di atas
ruangan pemeliharaan. Selanjutnya memasang selang-selang aerasi beserta
kelengkapannya mengelilingi bak dengan jarak 30 cm untuk menambah suplai
oksigen dalam air.
Setelah bak siap untuk digunakan maka dilakukan fumigasi dengan
mencampur PK dengan formalin. Gas yang dihasilkan dari pencampuran tersebut
dapat membunuh organisme-organisme patogen yang berada di dalam ruangan

63
maupun yang melekat di dinding-dinding bak. Sanitasi bak dan kelengkapannya
juga dilakukan dengan menggunakan larutan campuran deterjen dan povidone
iodine 1000 ppm. Sanitasi ini dilakukan untuk mencuci bak dan juga memastikan
tidak ada organisme yang masih hidup pada bak pemeliharaan. Bahan – bahan
yang digunakan tersebut seperti PK, formalin, dan iodin merupakan bahan
desinfeksi yang umum digunakan.
5.2.2. Pematangan Induk
Pematangan induk dilakukan pada ruangan maturasi setelah induk
diaklimatisasi di ruang receiving dan diablasi. Tujuan pemindahan induk ke ruang
maturasi ini adalah untuk memelihara induk agar mencapai matang telur dan
kawin.
Dalam ruang maturasi terdapat 12 bak yang terpakai untuk memelihara
induk. Bak yang digunakan ini berbentuk empat persegi panjang. Induk yang
dipelihara dalam ruang maturasi ini sebanyak 2.225 ekor dengan berat rata-rata 52
gram/ekor. Induk-induk ini ditebar pada bak maturasi dengan padat tebar rata-rata
5 ekor/m2
. Rasio kelamin (sex ratio) rata-rata setiap bak adalah 6 jantan : 5
betina. Perbandingan jantan dan betina ini mendekati perbandingan yang
dijelaskan oleh Wyban dan Sweeney (1991) yaitu 9 jantan : 7 betina.
Kegiatan yang dilakukan selama proses maturasi ini adalah pengelolaan
air, pemberian pakan, pemilihan induk mating, dan pengecekan induk yang mati.
Sistem pengelolaan air pada bak maturasi adalah dengan sirkulasi secara
flowtrough, yaitu pergantian air dengan cara mengalirkan air baru terus menerus
dan membiarkan air lama terbuang. Sehingga air bak maturasi selalu jernih.
Pergantian air pada bak maturasi rata-rata maksimal mencapai empat kali per hari.

64
Pergantian air sebanyak ini melebihi persentase pergantian air minimum per hari
yang dianjurkan oleh Oceanic Institute dalam buku Wyban dan Sweeney (1991)
yaitu sebanyak 200% per hari. Debit air yang dialirkan rata-rata sebesar
4,2 m3/
jam. Air yang digunakan berasal dari divisi khusus yang menangani proses
pengolahan air laut mentah menjadi air siap pakai untuk pemeliharaan.
Setiap bak maturasi diisi air dengan ketinggian 0,5 m. Volume air
dipertahankan pada volume 26 m3
. Aerasi dipasang sejajar dengan panjang bak.
Batu aerasi dipasang tepat di pinggir bak, sesuai dengan yang dijelaskan
Djunaidah dkk (2002). Tujuannya adalah untuk menambah DO dalam air tetapi
tidak mengganggu kegiatan induk untuk melakukan perkawinan (mating).
Aerasi tersebut diset agar debit udara yang keluar sedang, yaitu tidak
terlalu besar dan juga tidak terlalu kecil. Secara kuantitatif, debit udara yang
keluar diusahakan berkisar 0,1 liter/detik. Data perhitungan debit air bak maturasi
terdapat pada Lampiran 5.
Penyiponan dilakukan pada pukul 07.30 WIB untuk membuang kotoran
yang berasal dari sisa pakan dan feces dan mengendap di dasar. Dengan demikian
dasar bak selalu bersih setiap hari. Hal ini sesuai dengan yang dijelaskan oleh
Wyban dan Sweeney (1991) bahwa penyiponan bak maturasi dilakukan sebelum
pemberian pakan pada pagi hari.
Pakan yang diberikan pada induk udang selama maturasi adalah berupa
pakan beku dan pakan hidup. Pakan beku terdiri dari cumi, artemia, cacing, dan
krill. Sedangkan pakan hidup yang diberikan berupa cacing laut (polychaeta).
Dosis pakan induk rata rata sebesar 31,9 % dari biomass induk per hari.
Pakan diberikan dengan frekuensi delapan kali pemberian per hari. Pakan berupa

ANALISA USAHA PEMBENIHAN

Recommended

Recommended

More Related Content

What's hot

What's hot (20)

Viewers also liked

Viewers also liked (20)

Similar to ANALISA USAHA PEMBENIHAN

Similar to ANALISA USAHA PEMBENIHAN (20)

ANALISA USAHA PEMBENIHAN