1. Pengendalian Hama dan Penyakit
Cabai dengan Menggunakan
Bioteknologi Agen Hayati
Farid Habibi
(125040200111011)

2. Patogenisitas Beberapa Isolat Cendawan Entomopatogen
Metarhizium spp. terhadap Telur Spodoptera litura Fabricius
(Lepidoptera: Noctuidae)
• Bahan dan metode
Tempat penelitian di Laboraturium Pengendalian Hayati, Jurusan
HPPT, Fakultas Pertanian, Universitas Andalas, sejak Juli 2010
hingga Oktober 2010.
Koleksi dan Perbanyakan isolate
Perbanyakan Spodoptera litura
Penyiapan Suspensi Konidia

3. Koleksi dan perbanyakan isolat
• Koleksi jamur entomopatogen dari tanah dilakukan dengan
mengambil tanah sekitar perakaran tanaman.
• Contoh tanah diayak dengan menggunakan ayakan berukuran
0,4 mm. Isolasi jamur dilakukan dengan menggunakan metode
perangkap dengan larva Tenebrio molitor.

4. Aplikasi Konidia Metarhizium spp.
terhadap Telur S. litura
menyemprotkan 2ml suspensi konidia cendawan pada kelompok
telur uji
• Dengan konsentrasi 108 konidia/ml
dimasukkan ke dalam petri dan diamati hingga menetas
Larva instar I yang baru menetas diberi pakan daun kubis segar
Dilakukan pengulangan sebanyak 3 kali dan disusun dalam rancangan
acak lengkap (RAL). Parameter tang diamati adalah mortalitas telur
dan motalitas larva S. litura

5. Hasil dan metode
Mortalitas telur
Telur serangga terdiri dari tiga lapisan, yaitu (1) eksokorion yang
mengandung karbohidrat, (2) endokorion tersusun dari protein, dan (3)
lapisan kristalin paling dalam yang mengandung protein Karbohidrat dan
protein merupakan sumber nutrisi utama yang dibutuhkan untuk
pertumbuhan cendawan

6. • Pada awal infeksi (tiga hari setelah aplikasi) telur
tampak berwarna coklat kehitaman dan mulai
tumbuh miselia cendawan berwarna putih. Tahap
selanjutnya (lima hari setelah aplikasi) seluruh
permukaan telur telah diselimuti oleh miselium
cendawan yang berwarna putih dan pada hari
keenam miselium cendawan berubah warna
menjadi kehijau-hijauan

7. Mortalitas larva instar
• terjadinya kematian pada larva instar I disebabkan oleh
larva yang baru keluar dari telur memakan kulit telur dan
diduga konidia yang menempel pada kulit telur juga
termakan oleh larva dan infeksi terjadi melalui saluran
pencernaan.

8. Populasi dan Serangan Lalat Buah Bactrocera dorsalis Hendel
(Diptera: Tephritidae) serta Potensi Parasitoid pada
Pertanaman Cabai (Capsicum annum L)
Tujuan
Untuk mendapatkan kerapatan konidia yang paling baik dalam
menekan populasi M. Persicae
Metode
• Pemeliharaan dan perbanyakan massal M. persicae
• Perbanyakan massal jamur entomopatogen V. lecanii

9. Perbanyakan massal jamur
entomopatogen V. lecanii
Pembuatan media
PDA
Pembuatan media
beras
Perbanyakan
jamur V. lecanii
pada PDA
Perbanyakan
jamur V. lecanii
pada media beras

10. Pelaksanaan Percobaan Aplikasi V. Lecanii
pada M. persicae
Pembuatan suspensi konidia V. lecanii
Aplikasi suspensi konidia V. lecanii
pada imago M. persicae
Selanjutnya dilakukan pengamatan

11. Rata-rata persentase mortalitas imago M.persicae pada
tingkat kerapatan konidia jamur V.lecanii
Mortalitas M. persicae baru terjadi
pada pengamatan kedua, dikarenakan
jamur V. lecanii tidak langsung
menembus intergumen serangga dan
menginfeksi serangga tersebut.
Pada perlakuan A, B, C, D, kematian
M. Persicae hanya pada pengamatan
ke – 12 HSA. Berbeda dengan
perlakuan E, kematian terjadi pada
pengamatan ke – 13 HSA. Hal tersebut
dikarenakan menurunnya kualitas dan
virulensi konidia jamur.

12. Persentase Tingkat Kerusakan Daun Cabai
Merah oleh M.persicae pada hari ke-14 Setelah
Aplikasi
Semakin tinggi konsentrasi konidia V. Lecanii, maka
perkembangan populasi M. persicae semakin menurun
sehingga tingkat kerusakan daun cabai semakin kecil.

13. KEMAMPUAN FUNGI MIKORIZA ARBUSKULA (FMA) DALAM MENEKAN
PERKEMBANGAN Colletotrichum capsici PENYEBAB ANTRAKNOSA PADA
CABAI MERAH (Capsicum annum L.)
Metode Pelaksanaan
Dilaksanakan di Rumah Plastik dan Laboratorium
Penyakit Tanaman Fakultas Pertanian Universitas
Syiah Kuala Banda Aceh. Perlakuan terdiri atas 4
taraf dosis mikoriza yaitu: m0 (tanpa mikoriza),m1( 5
g tanaman-1), m2 (10 g tanaman-1), dan m3 (15
g.tanaman-1). Setiap perlakuan diulang 5 kali dan
setiap unit percobaan terdiri atas 4 polibag (pot
percobaan) sehingga jumlah pot keseluruhn 4 × 5 ×
4 = 80 pot

14. Persiapan
media
tanam
Menggunakan tanah entisol, di kering anginkan,
dihaluskan,diayak dan dihomogenkan
Dimasukan dalam polybag ukuran 10 kg
Pesemaian
dan
membibitan
Pesemaian dilkukan di seed bed dengan
media tanah dan pasir 2:1 selama 8 hari,
pembibitan dilakukan dalam polibag kecil
selama 3 minggu.
Penyediaan
isolat C.
capsici
Dilakukan setelah bibit berumur
3 minggu. Disertai aplikasi
mikoriza Pada minggu ke 6 di
tambah NPK 7 gr pertanaman
Dilakukan pada buah buah muda pertama saat
panjang 5 cm dengan spora 106 ml-1. masing
masing buah dilukai dengan jarum pentul.
Diambil dari buah cabai merah
yang terinfeksi dan
menunjukan gejala antarknosa
di inkubasi pada medium PDA
Penanaman
dan aplikasi
FMA
Inokulasi
patogen C.
capsici

15. Hasil dan pembahasan
Masa inkubasi Colletotrichum capsici
• Pengamatan dilakukan
setiap hari
• Gejala pertama kali
muncul pada saat hari ke9 stelah inokulasi
• Dosis 15 g/tanaman
dapat menunda
terjadinya gejala
serangan C. capsici

16. Hasil dan pembahasan
Intensitas serangan antraknosa pada
buah cabai
• Pengamatan dilakukan
pada hari ke 9 setelah
inokulasi
• Semakin tinggi dosis yang
diberikan, maka semakin
rendah intensitas
serangan C.capsici

17. Uji Antagonis Trichoderma harzianum Terhadap Fusarium spp.
Penyebab PenyakitLayu pada Tanaman Cabai (Capsicum
annum) Secara In Vitro
Tujuan
Untuk mengetahui potensi antagonis Trichoderma harzianum
terhadap Fusarium spp. Penyebab penyakit layu pada cabai.
Bahan dan metode
Isolat T.harziamun
Isolat fusarium spp.
Uji antagonis

18. Isolat T.harziamun
Mengambil tanah ± 100 gram di sekitar perakaran cabai
• Secara acak pada kedalaman 0-20 cm
Dihomogenkan dan dibuat larutan pengenceran
• Dilakukan dampai seri pengenceran 10-3
Dituangkan kedalam PDA dengan metode pour plate
• Media yang telah padat di ingkubasi 280 C selama 2-5 hari
Pengambilan Isolat murni T. harzianum lalu di ingkubasi
• diperoleh dengan mengisolasi potongan agar berukuran 5x5 mm

19. Isolat Fusarium spp.
Koleksi jaringan yang terserang
• Jaringan akar batang buah dan bunga yang terserang Fusarium
Identifikasi di laboratorium
• Memastikan penyakit yang menyerang
Identifikasi lanjutan
• Memotong bagian yang terserang dengan ukuran 1cm
Isolasi kedalam cawan petri dan ingkubasi selama 2-5 hari
• Bila terdapat hifa maka penyakit disebabkan jamur
Hifa jamur di tumbuhkan di media PDA dan ingkubasi selama 5 hari
• Selanjutnya di perbanyak dan di remajakan

20. Uji antagonis
• Menggunakan metode uji ganda
Potong 5x5 mm hifa Fusarium dan T. harzianum
• Masukan dalam petri diameter 90 mm dengan jarak 30 mm
Hifa Fusarium sebagai kontrol (-) dan hifaT. harzianum (+)
Setiap perlakuan dilakukan 5 kali pengulangan
Pengukuran luasan hifa T.harzianum
• Dimulai dari hari ke 0-7

21. Hasil dan pembahasan
• Hifa T. harzianum
cenderung lebih
luas dibandingkan
hifa Fusarium spp.
• Hal ini diduga karena adanya kemampuan T. harzianum untuk
menghasilkan asam organik tertentu yang tidak dapat dimanfaatkan
Fusarium spp. serta adanya kemampuan dari T. harzianum untuk
menghasilkan metabolit sekunder berupa anti biotika yang bersifat
menghambat perkecambahan spora cendawan Fusarium spp.

22. Terima kasih