Dokumen tersebut membahas tentang penghitungan jumlah trombosit dalam darah dengan metode manual menggunakan pipet Thoma dan kamar hitung, serta metode otomatis menggunakan alat Cell-dyn Ruby. Dokumen ini juga menjelaskan beberapa kelainan jumlah trombosit seperti trombositopenia dan trombositosis, serta cara membaca hasil print out dari Cell-dyn Ruby.

1. TUTOR HEMATOLOGI PUTARAN I
PENGHITUNGA
N JUMLAH
TROMBOSIT
PENGHITUNGAN JUMLAH
DALAM DARAH
TROMBOSIT DENGAN
DENGAN CELLCELL-DYN RUBY
DYN RUBY
FARIDA NUR’AINI
dr.PAULUS
B.NOTOPURO,SpPK
FARIDA NUR ‘AINI/
PAULUS B. NOTOPURO ,Sp PK

2. PENDAHULUAN

Trombosit = Platelet

Kelompok myeloid, berasal dari
megakaryosit di sumsum tulang

Sutul dewasa normal menghasilkan 6 x
106 megakaryosit/kg BB

1 Megakaryosit menghasilkan 35.000
trombosit/µL darah/hari

3. …lanjutan PENDAHULUAN

2/3 di sirkulasi , 1/3 dihancurkan di lien

Usia trombosit 7-10 hari

Jumlah trombosit normal : 100.000 –
450.000/µL

Ukuran diameter trombosit 2-4 µm

Mean Platelet Volume (MPV) 8-11 fl

5. KELAINAN JUMLAH TROMBOSIT
TROMBOSITOPENIA
(jumlah trombosit< 100.000/µL)
TROMBOSITOSIS
(jumlah trombosit > 450.000/µL)

6. METODE PENGHITUNGAN
JUMLAH TROMBOSIT
MANUAL
OTOMATIS

7. MANUAL
LANGSUNG
(REES – ECKER)
Prinsip :
darah EDTA diencerkan dengan larutan
yang mengandung Brilliant cresyl blue
yang mewarnai trombosit berwarna biru
muda.

8. Alat dan Reagen :




Darah EDTA
Pipet Thoma
Larutan pengencer Rees-Ecker :
Brilliant cresyl blue ………………………………… 30 mg
Natrium Sitrat ………………………………………. 3,8 g
Formaldehid 40 % …………………………..……. 0,2 ml
Distilled water ……………………………………ad 100 ml
Kamar hitung Improved Neubauer

9. PIPET THOMA

10. PROSEDUR
1. Hisap darah EDTA
dengan pipet Thoma
sampai tanda 0.5.

11. PROSEDUR
2. Hisap larutan
pengencer ke
dalam pipet
Thoma sampai
tanda 101

12. PROSEDUR
3.Campur baik-baik
darah dan larutan
pengencer

13. PROSEDUR
4.Buang 4-5 tetes
larutan yang ada
dalam batang pipet
Thoma

14. PROSEDUR
5.Masukkan larutan
darah dalam pipet
Thoma ke dalam kamarhitung sampai mengisi
dengan tepat seluruh
area penghitungan
6.Biarkan trombosit yang
sudah berada dalam
kamar hitung selama 10
menit dalam suhu kamar

15. CARA PENGHITUNGAN




Volume 4 kotak W = 4 x
1x1x0,1 = 0,4 mm3
Besarnya
pengenceran
trombosit
dengan
pipet
Thoma=200 x
Jumlah trombosit dalam 4
kotak-W misalnya = R/0.4
mm3
Maka jumlah sel trombosit/
mm3=1/0.4xRx200=500R
mm3

16. MANUAL
 TIDAK
LANGSUNG (HAPUSAN DARAH TEPI)
Prinsip :
memperkirakan jumlah trombosit dengan
menghitung jumlah trombosit per lapang
pandang dibawah mikroskop

17. Alat dan Reagen :

Darah EDTA
Cairan Wright atau Giemsa
Methanol

Buffer solution

Mikroskop cahaya

Object glass



18. CARA PENGHITUNGAN
Memperkirakan jumlah sel
trombosit dengan obyektif
100x, minyak imersi):


FN 18 = trombosit dalam
18 lp x 1000 =
∑ trombosit/mm3 (terdapat
8-25 trombosit/lp adalah
normal)
FN 20 = trombosit dalam
11 lp x 1000 =
∑ trombosit/mm3 (terdapat
13-40 trombosit/lp adalah
normal)

19. OTOMATIS
 Cell-dyn


Ruby :
* MAPSS
( dgn. sudut optik
00 dan 100 )

20.  Sampel
diaspirasi
dan dicampur
dgn.diluent
 Dgn.mekanisme
hydro dynamic
focussing,maka sel
akan berjalan satu
persatu melalui
flow cell
 Sinar laser akan
memancarkan
sinar pada sel
yg.lewat

23. Contoh Print Out dengan Jumlah
Trombosit Normal

24. Contoh print out pada kasus
Trombositopenia

25. Contoh print out pada kasus
Trombositosis

26. FLAGGING
 Platelet
LRI (Lower Region Interference)

27. Platelet LRI (Lower Region
Interference
 TINDAKAN
:
cek pada blangko, bila dlm.rentang
limit , maka cek hapusan darah tepi
 INTERFERENS
yg .mungkin terjadi :
debris, kontaminasi reagen, fragmen
sel, agregat protein,mikrobubbles

28. FLAGGING
 Platelet
URI (Upper Region Interference)

29. Platelet URI (Upper Region
Interference)
 TINDAKAN
-
-
:
cek pada histogram platelet, jika ada
gelombang pd.platelet ,
kemungkinan ada clumping platelet.
Jika MCV rendah dan atau histogram
terdapat overlap RBC dan platelet,
maka cek dgn hapusan darah tepi

30. Platelet URI (Upper Region
Interference)
 INTERFERENS
yg. mungkin terjadi :
Mikrositik RBC
Schistocytes
Fragmen WBC
Sickle cells
Platelet Clumping atau Giant platelet

31. MPV tidak ada hasil
 TINDAKAN
:
cek dengan hapusan darah tepi,
untuk menentukan jumlah trombosit.
INTERFERENCE yg.mungkin terjadi :
platelet clumping

32. Quality Control :
 Satu
kali sehari
 Kontrol komersiil
 Low,Normal, High
 Open mode

33. TERIMA
KASIH