Khóa luận tốt nghiệp Ảnh hưởng của các quá trình chần lên hàm lượng bột sinh tố mãng Cầu Xiêm

Luận Văn Group hỗ trợ viết luận văn thạc sĩ,chuyên đề,khóa luận tốt nghiệp, báo cáo thực
tập, Assignment, Essay
Zalo/Sdt 0967 538 624/ 0886 091 915 Website:lamluanvan.net
LỜI CẢM ƠN
Em xin gửi lời cảm ơn chân thành và sự tri ân sâu sắc đối với các thầy cô của
trường Đại học Nguyễn Tất Thành, đặc biệt là các thầy cô khoa Kỹ thuật thực phẩm và
Môi trường và các anh chị trong viện nghiên cứu của trường đã tạo điều kiện thuận lợi
cho em trong quá trình học tập và để hoàn thành cuốn báo cáo này. Em cũng xin chân
thành cám ơn thầy PGS.TS Bạch Long Giang và chị Trần Thị Yến Nhi đã nhiệt tình
hướng dẫn em trong quá trình làm thí nghiệm và quá trình làm báo cáo.
Trong quá trình học tập làm thí nghiệm, cũng như là trong quá trình làm bài báo
cáo, khó tránh khỏi sai sót, rất mong quý Thầy, Cô góp ý để em hoàn thiện tốt
hơn. Em xin chân thành cảm ơn!
iv

TÓM TẮT LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP
Mãng cầu xiêm loại trái cây tốt cho sức khỏe và có sẵn quanh năm ở nước ta. Công
nghệ lưu trữ sau thu hoạch vẫn còn hạn chế, dẫn đến thiệt hại từ nhiều nguyên nhân và
giảm giá trị dinh dưỡng và chất lượng sẳn có trong quả Mãng Cầu Xiêm. Nghiên cứu
quá trình chần mãng cầu để khảo sát hàm lượng dinh dưỡng còn lại bao nhiêu và thất
thoát như thế nào để tạo điều kiện cho quá trình sau chần được diễn ra thuận lợi. Mục
tiêu của nghiên cứu này là khảo sát việc chần mãng cầu ở nhiều nhiệt độ với 4 mức
thời gian (2 phút, 4 phút, 6 phút, 8 phút ) và phương pháp chần khác nhau, quy mô thí
nghiệm. Ảnh hưởng của các yếu tố sau chần với mẫu nguyên liệu tươi với các chỉ tiêu
độ ẩm, polyphenol, vitamin C, màu sắc đã được nghiên cứu
v

MỤC LỤC
NHIỆM VỤ LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP ............................................................................ iii
LỜI CẢM ƠN ......................................................................................................................................iv
TÓM TẮT LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP.................................................................................v
MỤC LỤC..............................................................................................................................................vi
DANH MỤC BẢNG .........................................................................................................................ix
DANH MỤC HÌNH............................................................................................................................x
DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT.......................................................................................................xi
Chương 1. MỞ ĐẦU.......................................................................................................................1
1.1 TÍNH CẤP THIẾT VÀ LÝ DO CHỌN ĐỀ TÀI..................................................1
1.2 MỤC TIÊU NGHIÊN CỨU .............................................................................................1
1.2.1 Mục tiêu tổng quát..........................................................................................................1
1.2.2 Mục tiêu cụ thể.................................................................................................................1
Chương 2. TỔNG QUAN ............................................................................................................3
2.1 MÃNG CẦU XIÊM ..............................................................................................................3
2.1.1 Giới thiệu ............................................................................................................................3
2.2 QUÁ TRÌNH CHẦN ............................................................................................................6
2.2.1 Bản chất...............................................................................................................................6
2.2.2 Nguyên tắc..........................................................................................................................6
2.2.3 Phân loại..............................................................................................................................7
Chương 3. NGUYÊN LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU ....................9
3.1 NGUYÊN LIỆU ......................................................................................................................9
3.2 DỤNG CỤ – THIẾT BỊ – HÓA CHẤT .....................................................................9
3.2.1 Dụng cụ................................................................................................................................9
3.2.2 Thiết bị.................................................................................................................................9
3.2.3 Hóa chất...............................................................................................................................9
3.3 THỜI GIAN VÀ ĐỊA ĐIỂM NGHIÊN CỨU ..................................................... 10
vi

3.3.1 Thời gian nghiên cứu ............................................................................. 10
3.3.2 Địa điểm nghiên cứu .............................................................................. 10
3.4 PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU .............................................................. 10
3.4.1 Quy trình công nghệ............................................................................... 10
3.4.2 Sơ đồ nghiên cứu ................................................................................... 12
3.4.3 Bố trí thí nghiệm .................................................................................... 12
3.5 PHƯƠNG PHÁP PHÂN TÍCH ................................................................. 13
3.5.1 So màu ................................................................................................... 13
3.5.2 Xác định hàm lượng Vitamin C ............................................................. 14
3.5.3 Xác định hàm lượng phenolic tổng ........................................................ 15
3.5.4 Xác định hàm lượng tro ......................................................................... 15
3.5.5 Xác định hàm ẩm ................................................................................... 15
3.5.6 Xác định hàm lượng đạm ....................................................................... 15
3.6 PHƯƠNG PHÁP ĐÁNH GIÁ CẢM QUAN (NẾU CÓ) ......................... 15
3.7 PHƯƠNG PHÁP XỬ LÝ SỐ LIỆU .......................................................... 16
Chương 4. KẾT QUẢ VÀ BÀN LUẬN ............................................................ 17
4.1 ẢNH HƯỞNG THỜI GIAN CHẦN HƠI LÊN MÀU SẮC, HÀM
LƯỢNG VITAMIN C VÀ PHENOLIC TỔNG CỦA MÃNG CẦU XIÊM ...... 17
4.2 ẢNH HƯỞNG QUÁ TRÌNH CHẦN NƯỚC LÊN MÀU SẮC, HÀM
LƯỢNG VITAMIN C VÀ PHENOLIC TỔNG CỦA MÃNG CẦU XIÊM ...... 18
4.2.1 Ảnh hưởng của nhiệt độ chần nước tại 2 phút ....................................... 18
4.2.5 Ảnh hưởng nhiệt độ và thời gian chần nước lên màu sắc của mãng cầu
Xiêm ...................................................................................................................... 22
4.2.6 3.2.3. Ảnh hưởng quá trình chần microwave lên màu sắc, hàm lượng
Vitamin C và Phenolic tổng của mãng cầu Xiêm ................................................. 23
4.2.7 3.2.4 So sánh kết quả của phương pháp chần ........................................ 27
4
vii

Chương 5. KẾT LUẬN VÀ KHUYẾN NGHỊ............................................................... 28
5.1 KẾT LUẬN............................................................................................................................. 28
5.2 KHUYẾN NGHỊ..........................................................Error! Bookmark not defined.
TÀI LIỆU THAM KHẢO........................................................................................................... 29
viii

DANH MỤC BẢNG
Bảng 2.1 Thành phần hóa học của trái mãng cầu Xiêm......................................................4
Bảng 2.2 Chỉ tiêu chất lượng vật lý của trái mãng cầu xiêm.............................................5
Bảng 4.1 Ảnh hưởng quá trình chần hơi lên màu sắc của thịt quả mãng cầu Xiêm
18
Bảng 4.2 Giá trị độ sáng Lab* của mãng cầu bị ảnh hưởng bởi nhiệt độ và thời
gian chần ........................................................................................................................................................ 22
Bảng 4.4 Không gian màu của thịt mãng cầu Xiêm tươi thể hiện qua chỉ số Lab*
25
Bảng 5.4 Ảnh hưởng của công suất và thời gian chần MW lên không gian màu của
thịt mãng cầu Xiêm..................................................................................................................................... 25
ix

DANH MỤC HÌNH
Hình 2.1 Trái mãng cầu Xiêm trưởng thành .............................................................................3
Hình 3. 1 Quy trình sản xuất bột sinh tố mãng cầu Xiêm dự kiến ................................ 10
Hình 3. 2 Sơ đồ bố trí thí nghiệm ................................................................................................ 12
Hình 3.3. Sơ đồ khảo sát nguyên liệu đầu vào ...................................................................... 12
Hình 3.3 Sơ đồ khảo sát quá trình chần hơi........................................................................... 12
Hình 3.4 Sơ đồ khảo sát quá trình chần bằng nước............................................................ 13
Hình 3.5 Sơ đồ khảo sát quá trình chần bằng microwave................................................ 13
Hình 4.1 Sự suy giảm của hàm lượng Vitamin C và phenolic tổng thông qua các
quá trình chần ............................................................................................................................................. 17
x

DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT
MW microwave
TPC total phenolic content
TAA total ascorbic acid
xi

Chương 1. MỞ ĐẦU
1.1 TÍNH CẤP THIẾT VÀ LÝ DO CHỌN ĐỀ TÀI
Nước ta là một nước có nền nông nghiệp lâu đời nên những sản phẩm từ nông nghiệp là vô
cùng phong phú, tùy thuộc vào vùng miền mà có những loại trái cây khác nhau. Trồng mãng
cầu xiêm với diện tích 4,5 ha, chỉ sau 2 năm, ông Nguyễn Văn Hận (ngụ TP Cần Thơ) thu
lãi hơn 1 tỉ đồng, bình quân mỗi cây cho 30 - 40 kg/năm. Toàn xã Tân Phú hiện có trên
570 ha mãng cầu xiêm trong đó có 419 ha đang cho trái ổn định. Thời gian qua, cây mãng
cầu xiêm đã thích nghi khá tốt ở vùng đất nhiễm mặn này, để mãng cầu xiêm có sức sinh
trưởng tốt, cho năng suất và sản lượng cao. Phòng Nông nghiệp và Phát triển Nông thôn
đã phối hợp cùng Viện nghiên cứu Cây ăn quả Miền Nam, chính quyền địa phương đã
vận động thành lập tổ hợp tác mãng cầu xiêm Tân Phú để áp dụng mô hình sản xuất trái
cây theo hướng an toàn sinh học theo tiêu chuẩn VietGap. 100 gram mãng cầu đã có đến
20 mg vitamin C, gấp đôi so với chuối, lê, táo, nho và dứa. Do đó, đây là loại trái cây rất
hữu ích trong việc tăng cường hệ thống miễn dịch của cơ thể. Mãng cầu sẽ làm giảm khả
năng nhiễm trùng đồng thời cũng tiêu diệt các
vi rút, vi khuẩn gây hại giúp cơ thể phòng ngừa các bệnh tốt hơn. Hàm lượng
carbohydrate cao trong mãng cầu rất cần thiết cho việc duy trì sức khỏe. Mãng cầu còn
có một lượng lớn fructose. Đây là một loại đường tự nhiên giúp bổ sung năng lượng
cho cơ thể hoạt động tốt hơn. Do chất chống oxy hóa cực cao trong mãng cầu sẽ giúp
loại bỏ các gốc tự do gây hại, đồng thời trực tiếp tấn công cả những tế bào ác tính gây
ra khối u. Trong đó, mãng cầu xiêm là đặc sản của vùng đồng bằng Sông Cửu Long
nước ta. Nhằm nghiên cứu hàm lượng dinh dưỡng còn lại sau các quá trình chần, tăng
giá trị kinh tế và nâng cao giá trị sử dụng của quả Mãng cầu xiêm. Đồng thời giải
quyết vấn đề mãng cầu vào mùa vụ. Với đề tài “Nghiên cứu ảnh hưởng của các quá
trình chần đến hàm lượng của bột sinh tố mãng cầu xiêm”.
1.2 MỤC TIÊU NGHIÊN CỨU
1.2.1 Mục tiêu tổng quát
Nghiên cứu ảnh hưởng của quá trình chần đến hàm lượng của bột sinh tố mãng
cầu xiêm.
1.2.2 Mục tiêu cụ thể
i. Khảo sát nguyên liệu mãng cầu xiêm
ii. Khảo sát quá trình chần mãng cầu bằng nước , xác định được nhiệt độ và thời gian
chần phù hợp.
iii. Khảo sát quá trình chần mãng cầu bằng hơi nước, xác định thời gian chần phù hợp.
iv. Khảo sát quá trình chần mãng cầu bằng microwave, xác định công suất và thời
gian chần phù hợp
1

v. So sánh hiệu quả các phương pháp chần
Khảo sát
2

Chương 2. TỔNG QUAN
2.1 MÃNG CẦU XIÊM
2.1.1 Giới thiệu
2.1.1.1 Nguồn gốc
Hình 2.1 Trái mãng cầu Xiêm trưởng thành
Mãng cầu Xiêm, còn gọi là mãng cầu gai, na Xiêm, na gai(tên khoa học là:
Annona muricata) tùy theo vùng trồng.Cây mãng cầu xiêm là cây bản địa của
vùng Trung Mỹ như México Cuba và phía bắc của Nam Mỹ chủ yếu
ở Brasil, Colombia. Ngày nay nó cũng được trồng ở một số vùng ở Đông Nam
Á, cũng như ở một số đảo Thái Bình Dương [1].
2.1.1.2 Đặc điểm sinh trưởng
Cây mãng cầu Xiêm sống ở những khu vực có độ ẩm cao và có mùa
Đông không lạnh lắm, nhiệt độ dưới 5 °C sẽ làm lá và các nhánh nhỏ hỏng và
nhiệt độ dưới 3 °C thì cây có thể chết. Cây mãng cầu xiêm được trồng làm cây
ăn quả. Cây trồng công nghiệp cao từ 20–30 cm (7,9-12 inches). Sau 2 năm,
Cây Mãng Cầu Xiêm bắt đầu cho trái, trái có gai, màu xanh, nặng trung bình từ
1–2kg. Có thể chứa vài chục đến vài trăm hạt, hạt bẹt hình ovel, nhẵn đen và rất
cứng. Hạt chứa 45% dầu không khô màu vàng có độc tính cao [2] [3].
Lượng mưa thích hợp cho mãng cầu xiêm là 1.800 mm, chịu hạn và lạnh
kém hơn mãng cầu ta. Ðộ pH thích hợp từ 5,0-6,5. Ở vùng đất mặn hoặc nhiễm
mặn có độ pH thấp
3

Luận Văn Group hỗ trợ viết luận văn thạc sĩ,chuyên đề,khóa luận tốt nghiệp, báo cáo thực tập,
Assignment, Essay
2.1.1.3 Thành phần hóa học
Bảng 2.1 Thành phần hóa học của trái mãng cầu Xiêm
Iron 0.64 mg
Calories 53.1-61.3
Vitamin A 0
Moisture 82.8 g
Protein 1.00 g Thiamine 0.11 mg
Fat 0.97 g Riboflavin 0.05 mg
Carbohydrates 14.63 g Niacin 1.28 mg
Fiber 0.79 g Ascorbic acid 29.6 mg
Ash 60 g Tryptophan 11mg
Calcium 10.3 mg Methionine 7 mg
Phosphorus 27.7 mg Lysine 60 mg
Trong thịt quả có chứa những thành phần chính như sau: nước 80-95%; glucid là
thành phần chủ yếu của chất khô trong quả, ở các dạng monosaccarit, disacharit,
polisaccharic, pectin…, acid hữu cơ trong quả tồn tại ở dạng tự do, dạng muối,dạng
este, tạo mùi và vị nổi bật cho quả, chất màu, bao gồm Chlorofil tạo màu xanh cho quả,
đóng vai trò quan trọng trong quá trình trao đổi chất và dinh dưỡng [4][5]
Về mặt dinh dưỡng tuy không nhiều calo, đường nhưng đây là thực phẩm giàu
vitamin B1, B2, P, C. Giàu chất khoáng: canxi magie, lân, kali thường tồn tại ở dạng
liên kết nên cơ thể người dễ hấp thu.
2.1.1.4 Tình hình nghiên cứu trong và ngoài nước
Ở thị trường Việt Nam: công ty TNHH Lê Hồng chuyên sản xuất và cung cấp
nhiều sản phẩm từ mãng cầu xiêm như sản phẩm trà mãng cầu xiêm, mứt mãng cầu
xiêm, bột hạt mãng cầu xiêm, dầu mãng cầu xiêm. Công ty TNHH Trobico sản xuất
nước giải khát nước ép mãng cầu xiêm. Công ty TNHH Thực Phẩm và nước giải khát
Rita sản xuất và cung cấp các loại nước ép rau quả trong đó có nước ép mãng cầu
xiêm
Trên thế giới kỹ thuật sấy đối lưu được áp dụng rộng rãi với quy mô lớn và trên
nhiều loại sản phẩm [6] như tạo ra các sản phẩm sấy từ rau trái: lúa mạch [7], olive
4

Assignment, Essay
xanh [8], rau bó xôi [9], táo [10], nấm [11], rau củ [12],…vậy nên, việc ứng dụng đa
dạng hóa sản phẩm trong thực phẩm từ nguồn nguyên liệu mới – mãng cầu Xiêm được
quan tâm rộng rãi
Tạp chí danh tiếng của Hàn Quốc là Journal of Natural Products đã đăng tải công
trình nghiên cứu cho rằng, nước ép quả mãng cầu có khả năng tiêu diệt tế bào ung thư
cao hơn gấp 10.000 lần so với liệu pháp hóa trị mà không hề làm hại các tế bào khỏe
mạnh và không có tác dụng phụ
Sản xuất toffee từ mãng cầu Xiêm đã được thực hiện bởi sinh viên Đại học công
nghiệp thực phẩm chưa thương mại.
Sản phẩm mứt mãng cầu truyền thống, syrup, jam mãng cầu và mãng cầu Xiêm
cũng được thương mại thị trường.
Đáng chú ý, trong thực phẩm, mãng cầu trước đây được nghiên cứu để sản xuất đồ
uống: nước ép, nước trái cây, xi-rô,…và các sản phẩm mứt mãng cầu Xiêm, kem, sữa
chua, thạch trái cây và cả rượu (các hợp chất mùi dễ bay hơi) [2-10].
2.1.1.5 Chỉ tiêu chất lượng
a. Vật lý
Bảng 2.2 Chỉ tiêu chất lượng vật lý của trái mãng cầu xiêm
Chỉ tiêu Vật lý
Trạng thái Trái còn nguyên vẹn,vừa chín tới,không bị dập nhát hoặc hư
hỏng đến mức không sử dụng được
Không bị nhiễm thuốc bảo vệ thực vật, không bị côn trùng
làm hư hỏng ,
Mùi vị Không có mùi lạ (bị lên men do quá chín)
Vị chua ngọt thơm của quả chín tự nhiên
Màu sắc Vỏ màu xanh
Thịt quả màu trắng đục
Hạt nhẵn đen
5

Hình dạng Trái đều hình bầu dục
Còn cuốn trên quả
Không bị côn trùng làm hư hại
b. Hóa học
• Hàm lượng kim loại nặng: không có
• Dư lượng thuốc bảo vệ thực vật: ở mức cho phép theo quy định của
TCVN 5624.
• Hàm lượng về chất nhiễm bẩn: tuân thủ giới hạn tối đa theo quy định
theo quy chuẩn của CODEX STAN 193-1995
c. Vi sinh
• Vi sinh vật gây hại: không có
• Ký sinh trùng: không có
• Độc tố nấm, bảo tử vi khuẩn: không có.
• Tổng số Coliform: TCVN 6187-1,2:1996 (ISO 9308-1,2-1990) hoặc
SMEWW 9222)
2.2 QUÁ TRÌNH CHẦN
2.2.1 Bản chất
Chần (Blanching) là quá trình xử lí nguyên liệu có sử dụng nước ( chần nước hay
chần MW) hay hơi nước ở nhiệt độ cao [15]. Là quá trình làm ngập ( hoặc để khô)
nguyên liệu trong nước nóng ở một khoản thời gian nhất định. Sau đó đưa nhiệt độ
nguyên liệu giảm từ cao xuống thấp 1 cách đột ngộ
2.2.2 Nguyên tắc
Quá trình chần luôn trãi qua 3 giai đoạn:
- Gia nhiệt đến nhiệt độ yêu cầu.
- Giữ nhiệt độ nguyên liệu ở 1 khoảng thời gian nhất định.
- Làm nguội/ làm lạnh nhanh.
Hầu hết bản thân nguyên liệu như rau, củ, quả đều chưa các enzyme khác nhau,
điển hình là polyphenoloxidase, chlorophylase, lipoxygenase, là những enzyme có khả
năng gây hư hỏng cho nguyên liệu. Để hạn chế việc hư hại này là gia nhiệt để làm bất
hoạt các enzyme đó, mỗi loại enzyme có những giá trị nhiệt độ khác nhau, peroxydase
được xem là enzyme bền nhiệt nhất trong rau trái, vì vậy việc vô hoạt hoàn toàn
6

Assignment, Essay
enzyme trong nguyên liệu đạt yêu cầu sẽ dựa trên mức độ vô hoạt enzyme perolxydase.
Thông thường thì các giá trị đo lường hoạt độ enzyme củng tương tự như với vi sinh
vật, độ bền nhiệt enzyme được xác định thông qua thời gian vô hoạt thập phân (giá trị
D)-là khoảng thời gian cần thiết ở 1 giá trị nhiệt độ mà hoạt tính enzyme giảm đi 10 lần
và Z-khoảng nhiệt độ cần tăng để D giảm đi 10 lần [15].
Quá trình chần đạt yêu cầu phải dựa trên giá trị D và Z để xác định, tuy nhiên mỗi
loại nguyên liệu có D và Z khác nhau nên cần phải xác định cụ thể [16]
Trong chế biến rau bất hoạt của hoạt động peroxidase thường được sử dụng để tối
ưu hóa thời gian chần (Ganthavorn & Powers, 1988).
2.2.3 Phân loại
2.2.3.1 Chần bằng hơi nước
Là quá trình làm nóng nguyên liệu bằng hơi nước nóng, sẽ hạn chế được sự tiếp
xúc giữa nguyên liệu và nước chần, giảm đi một vài thất thoát các cấu tử tan trong
nước
Hơi nước ở 100°C tiếp xúc với bề mặt nguyên liệu thông quá các quá trình trao
đổi nhiệt, nước trong tế bào nguyên liệu dần nóng lên, không khí trong gian bào dần
thoát ra ngoài, sau khoảng thời gian chần, nguyên liệu đạt được nhiệt độ thích hợp sẽ
được đưa đi làm nguội nhanh. Sotome et al. (2009) đã phát hiện ra rằng hơi nước nóng
và phun sương có thể làm giảm sự mất màu và kết cấu tốt hơn so với chần nước trên
khoai tây [15].
2.2.3.2 Chần bằng nước
Chần nước là quá trình nguyên liệu được làm ngập hay phun nước nóng từ 70
100°C trong một khoảng thời gian quy định và làm nguội nhanh
Nhiệt độ cao sẽ làm các cấu tử tại bề mặt nguyên liệu hoạt động, di chuyển nhanh,
các cấu tử khí đồng thời di chuyển từ bên trong gian bào ra môi trường, nước nóng từ
môi trường sẽ đi vào trong nguyên liệu, thông qua sự trao đổi nhiệt, nguyên liệu sẽ
nóng lên.
Mục đích chính của chần là để ức chế các hoạt động của enzyme chẳng hạn như
polyphenol oxyase, peroxidase, lipoxygenase và phenolase [16]. Tuy nhiên, quá trình
chần có thể thay đổi màu sắc, kết cấu và hàm lượng chất dinh dưỡng trong nguyên liệu
[17], [18]. Hạn chế chính của phương pháp này là mất chất dinh dưỡng đáng kể do độ
hòa tan. Bên cạnh đó, cần nhiều thời gian và năng lượng hơn để làm nóng dung dịch
chần. Một số nghiên cứu liên quan đến quá trình chần đã được tiến hành. Muftugil
7

(1986) đã nghiên cứu ảnh hưởng của phương pháp chần khác nhau trên đậu xanh và
thấy rằng khi thêm nước, đậu xanh có thể giữ màu tốt hơn với các phương pháp chần
khác [19]. Neri và cộng sự. (2011) đã nghiên cứu ảnh hưởng của nước chần và dung
dịch đường (maltose và trehalose) lên kết cấu cà rốt thái lát và nhận thấy rằng tác dụng
của dung dịch đường là không đáng kể trong 90°C [20].
Có 2 phương pháp chần nước:
i. Ngâm nguyên liệu trong nước chần
ii. Phun nước chần lên bề mặt nguyên liệu
2.2.3.3 Chần bằng Microwave
Trong những năm gần đây, gia nhiệt MW đã ngày càng phổ biến trên toàn thế giới,
đặc biệt đối với hiện đại. Do sự tăng lên về mặt kinh tế ở nhiều nước đang phát triển tăng
trưởng kinh tế ổn định, thu nhập cao xu hướng này cũng có liên quan đến tăng 23 nhận
thức về lợi ích của thực phẩm dinh dưỡng và lành mạnh cũng như một số chất
phytochemical, gia nhiệt MW được biết đến vì sự an toàn trong hoạt động và chất dinh
dưỡng với khả năng duy trì sự mất mát tối thiểu các chất dinh dưỡng không ổn định nhiệt
như vitamin B và C, chất chống oxy hóa phenol và carotenoid. Bên cạnh việc cải thiện
khá tốt về mặt dinh dưỡng của phương pháp gia nhiệt bằng MW, nó củng có một số bất
lợi về chi phí và công nghệ, cần cân chỉnh và thay đổi phương pháp chần đối với những
loại nguyên liệu rau, củ có giá thành thấp. Chần bởi lò vi sóng đã được báo cáo rằng các
tác động lên cấu trúc cà rốt [21], mất axit ascobic và màu măng tây xanh
[23] ít hơn nước nóng và chần hơi. Ngoài ra, lò vi sóng vẫn giữ được chất lượng cảm
quan bằng hoặc hơn các phương pháp chần truyền thống [22]. Tuy nhiên, các đánh giá
liên quan đến chất lượng sản phẩm như hàm lượng axit ascobic, khả năng chống oxy
hóa vẫn còn hạn chế [23].
Dưới tác động của vi sóng, các tia tử ngoại đâm xuyên qua các tế bào của nguyên
liệu gây ra sự chuyển động liên tục của các phân tử nước, từ đó, nhiệt độ tăng và làm
nóng nguyên liệu. Tốc độ nóng lên phụ thuộc vào sự phân bố của các phân tử nước
trong nguyên liệu.
8

Chương 3. NGUYÊN LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
3.1 NGUYÊN LIỆU
Mãng cầu xiêm được thu nhận ở Tân Phú Đông, tỉnh Tiền Giang. Trái mãng cầu
thu hoạch đủ độ chín, không hư hại biến màu. Mùi vị đặc trưng của quả mãng cầu, lựa
chọn quả chín đều, quả khoảng (1-2 kg/trái) không bị sượn, vỏ xanh không bị sâu rầy,
nứt hay hư hỏng.
3.2 DỤNG CỤ – THIẾT BỊ – HÓA CHẤT
3.2.1 Dụng cụ
- Cân
- Phễu
- Buret
- Giấy lọc
- Erlen 250ml
- Ống nghiệm
- Ống nhỏ giọt
- Bóp cao su
- Cốc thủy tinh 50ml, 100ml, 250ml.
- Bình định mức 50ml, 100ml, 250ml, 500ml.
- Pipet 1ml, 2ml, 5ml, 10ml
3.2.2 Thiết bị
- Máy so màu Lab* system
- Máy quang phổ UV – Vis. (hiệu, model)
- Lò vi sóng (hãng, thông số kỹ thuật)
- Máy nung (hãng, thông số kỹ thuật)
3.2.3 Hóa chất
- FeSO4.7H2O
- CuSO4.5H2O
- K2SO4
- NaOH 50%
- L-Ascorbic acid
- Folin 10%
9

- Na2CO3 7.5%
- HCL 0.04N
- 2,6-Dichlorophenolindophenol sodium salt dihydratate
3.3 THỜI GIAN VÀ ĐỊA ĐIỂM NGHIÊN CỨU
3.3.1 Thời gian nghiên cứu
Thời gian thực hiện từ ngày 21/06/2019 đến ngày 22/09/2019
3.3.2 Địa điểm nghiên cứu
Thí nghiệm được thực hiện phòng phân tích và chế biến thực phẩm lầu 3 dãy B
trường Đại Học Nguyễn Tất Thành. Địa chỉ 331Quốc lộ 1A,Phường An Phú
Đông,Quận 12, tp Hồ Chí Minh
3.4 PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
3.4.1 Quy trình công nghệ
Hình 3. 1 Quy trình sản xuất bột sinh tố mãng cầu Xiêm dự kiến
10

3.4.1.1 Xử lý nguyên liệu:
Mục đích:
Chuẩn bị: loại bỏ các vỏ hạt hoặc thịt quả không đạt tiêu chuẩn bị hư hại, loại bỏ
các dị vật không mong muốn
Biến đổi:
Vật lí: khối lượng giảm, màu sắc được cải thiện.
Sinh học: tổng số vi sinh vật giảm.
3.4.1.2 Quá trình chần:
Mục đích:
Chuẩn bị: làm mềm sơ bộ mãng cầu để thực hiện dễ dàng các quá trình tiếp theo
trong sản xuất các bột mãng cầu
Bảo quản: ức chế hoặc tiêu diệt một vài nhóm vi sinh vật và ức chế hoạt động
enzyme gây hư hỏng.
Biến đổi:
Vật lí: khối lượng tăng do hút nước, các sắc tố màu thay đổi theo hướng sáng hơn,
có mùi thơm, nhiệt độ tăng cao, cấu trúc mềm.
Hóa lí: nước từ trạng thái lỏng chuyển thành trạng thái khí, một vài protein bị
đông tụ.
Hóa học: các phản ứng phân hủy xảy ra mạnh mẽ, hàm lượng các vitamin dễ tan
và mẫn cảm nhiệt giảm đáng kể, các hợp chất qui định màu sắc bị thay đổi,…
Hóa sinh: các enzyme oxy hóa bị vô hoạt.
Sinh học: tổng số vi sinh vật giảm vì bị ức chế hoặc tiêu diệt ở nhiệt độ thích hợp.
11

3.4.2 Sơ đồ nghiên cứu
Hình 3. 2 Sơ đồ bố trí thí nghiệm
3.4.3 Bố trí thí nghiệm
3.4.3.1 Khảo sát nguyên liệu
Thí nghiệm 1: Đánh giá nguyên liệu đầu vào
Hình 3.3. Sơ đồ khảo sát nguyên liệu đầu vào
3.4.3.2 Khảo sát quá trình chần
Thí nghiệm 2: Quá trình chần hơi
Hình 3.3 Sơ đồ khảo sát quá trình chần hơi
12

Thí nghiệm 3: Quá trình chần nước
Hình 3.4 Sơ đồ khảo sát quá trình chần bằng nước
Thí nghiệm 4: Quá trình chần Microwave
Hình 3.5 Sơ đồ khảo sát quá trình chần bằng microwave
3.5 PHƯƠNG PHÁP PHÂN TÍCH
3.5.1 So màu
Nguyên tắc: sử dụng phương pháp đo màu của nguyên liệu và sản phẩm với không
gian màu CIE L*a*b*.
Phương pháp thực hiện: đặt mẫu nguyên liệu sau khi đã cắt đoạn lên mặt bàn. Cầm
máy chiếu thẳng xuống mẫu đo. Ghi lại kết quả, đo mỗi mẫu 2 - 3 lần, lưu ý: nên đo
13

màu ở những vị trí khác nhau của mẫu, vì ở những vị trí khác nhau thì màu cũng sẽ
khác nhau.
Không gian màu CIE Lab* là tùy chọn màu tham chiếu dựa trên ba giá trị L*, a*
và b* (Torres B và cộng sự, 2011) [24]. Độ sáng được đo thông qua máy đo màu Máy
quét Chroma (kiểu NR60CP). Kết quả được hiển thị dưới dạng số thông qua L* (độ
sáng dao động từ 0-100), giá trị a* (từ xanh lục đến đỏ) và b* (từ xanh dương sang
vàng)
3.5.2 Xác định hàm lượng Vitamin C
Nguyên tắc: Dựa trên sự oxy hóa acid ascorbic với DCPIP thành acid
dehydroascorbis và 2,6 diclophenolindophenol sẽ chuyển thành dẫn xuất lenco không
màu. Phản ứng tối ưu ở pH 3 - 4, trong môi trường này khi một giọt dư DPIP xanh sẽ
làm cho dung dịch chuyển thành màu hồng.
Phương pháp thực hiện:
- Phân tích vitamin C chuẩn: cân khối lượng vitamin C chuẩn sau đó định mức
lên bình định mức 100ml. Hút 1ml dung dịch vitamin C chuẩn cho vào erlen, sau đó
hút 5ml HCl cho vào cùng. Cuối cùng, chuẩn độ bằng DCPIP đến màu hồng nhạt bền
trong 30s. Ghi lại giá trị VDCPIP =V0.
- Trích ly mẫu: cân khối lượng mẫu nguyên liệu ban đầu và sau khi chần. Cho
nguyên liệu cắt nhuyễn vào cối xay, mỗi lần xay với 50 ml nước cất. Sau đó, định mức
lên thể tích gần nhất rồi lọc. Bước tiếp theo hút 10 ml dịch lọc và 1ml HCl cho vào
erlen. Cuối cùng, chuẩn độ bằng DCPIP màu hồng nhạt bền trong 30s. Ghi lại giá trị
VDCPIP = V0.
Tính toán kết quả : Hàm lượng vitamin C (mg/g)
Vitamin C content
Trong đó:
- : thể tích bình định mức
- : 1
- : khối lượng mẫu nguyên liệu cân được
14

3.5.3 Xác định hàm lượng phenolic tổng
Nguyên tắc: Tổng hàm lượng polyphenol được đo bằng phương pháp so màu
Folin- Ciocalteu mô tả trước đây bởi Gao và các cộng sự, 2000. Độ hấp thụ của quả
màu xanh được đo ở 765 nm bằng cách sử dụng một máy quang phổ UV - Vis
(Shimadzu, PC UV-2401; Kyoto, Nhật Bản).
Phương pháp thực hiện:
- Lập đường chuẩn: đầu tiên hút 9 ml dung dịch acid galic sau đó định mức lên
bình định mức 100 ml. Hút 1ml, 2ml, 3ml, 4ml, 5ml acid galic vào lần lượt ống
nghiệm, sau đó hút tuần tự 9ml, 8ml, 7ml, 6ml, 5ml nước cất cho vào ống nghiệm (1).
Bước tiếp theo hút lần lượt (1) 1ml cho vào 5 ống nghiệm khác, hút 1ml folin và 5
phút sau cho vào 1ml Na2CO3 vào ống nghiệm, đợi 30 phút đo quang phổ.
- Trích ly mẫu: cân khối lượng mẫu nguyên liệu, cho nguyên liệu cắt nhuyễn vào
cối xay, mỗi lần xay với 50 ml nước cất. Định mức lên thể tích gần nhất rồi lọc. Hút
1ml dịch lọc cho vào lần lượt 5 ống nghiệm sau đó hút 1ml folin. Tiếp theo 5 phút hút
1ml Na2CO3 vào lần lượt 5 ống nghiệm. Đợi 30 phút đo quang phổ.
3.5.4 Xác định hàm lượng tro
Cân lg mẫu sấy khô ở 150°C đến khối lượng không đổi. Cân chính xác khối lượng
mẫu. Cho cốc vào nung ở 500- 550ºC trong 3 giờ, để hạ nhiệt độ xuống 200°C rồi lấy
ra cho vào tủ sấy ở 105°C để 1-2 giờ, cân cốc
3.5.5 Xác định hàm ẩm
3.5.6 Xác định hàm lượng đạm
Tổng nitơ được đo bằng phân tích Kjeldahl [25]. 1g kali sulfat được thêm vào 1 g
mẫu rắn để tăng nhiệt độ sôi của 3 ml axit sunfuric đậm đặc. 0,1g đồng sunfat và sắt
sunfat đã được thêm vào trước khi lấy mẫu hóa chất. Tác dụng xúc tác của một vài
giọt hydro peroxide làm tăng quá trình oxy hóa axit. Sau 6 giờ ở 370°C, 10ml chất
lỏng được hiệu chuẩn bằng axit boric. Hàm lượng protein được biểu thị bằng tổng
phần trăm nitơ trên mỗi gam chất khô
3.6 PHƯƠNG PHÁP ĐÁNH GIÁ CẢM QUAN (NẾU CÓ)
Dựa vào phương pháp đánh giá cảm quan về sản phẩm đồ hộp rau quả theo
phương pháp cho điểm (theo TCVN 3216:1979). Mức độ yêu thích sản phẩm (thang 6
điểm, đánh giá chấp nhận).
15

3.7 PHƯƠNG PHÁP XỬ LÝ SỐ LIỆU
Dùng phần mềm Microsoft Excel tính toán kết quả. Sử dùng phần mềm
Statgraphics hoặc phần mềm SPSS phân tích mức độ tin cậy
16

Chương 4. KẾT QUẢ VÀ BÀN LUẬN
4.1 ẢNH HƯỞNG THỜI GIAN CHẦN HƠI LÊN MÀU SẮC, HÀM LƯỢNG
VITAMIN C VÀ PHENOLIC TỔNG CỦA MÃNG CẦU XIÊM
Polyphenol Vitamin C
5.01 ± 0.02a
4.68 ± 0.07b
4.35± 0.13c
D
M
21.89 ± 4.07 ± 0.07d
3.21 ± 0.07e
0.06a
16.86 ±
m
g
/
g
17.55 ±
0.03c 13.33 ± 13.04 ±
0.01b
0.06d 0.03e
Fresh 2 4 6 8
Blanching time (min)
Hình 4.1 Sự suy giảm của hàm lượng Vitamin C và phenolic tổng thông qua quá trình chần
hơi.
Kết quả biểu diễn sự suy giảm hàm lượng vitamin C và phenolics tổng được trình
bày trong hình 4.1. Nhận thấy rằng, khi tăng thời gian gia nhiệt, giá trị Vitamin C thất
thoát đáng kể từ 5.01 mg/g DM giảm còn 3.21 mg/g DM sau 8 phút. Vitamin C là chất
dinh dưỡng thiết yếu cho sức khỏe con người. Đây là thành phần hóa học được coi là
một chất chống oxy hóa được tìm thấy trong hầu hết các loại rau và trái cây. Vitamin
C có thể ngăn ngừa một số bệnh ung thư [26]. Sự lưu giữ hàm lượng ở mức 64.1%
ascorbic acid sau 8 phút chần được đánh giá là thấp. Trước đây, nhận định bởi
Quenzer và cộng sự giá trị này giảm mạnh qua quá trình chần bằng hơi trên cải bó xôi
[27]. Mặt khác, giá trị polyphenol có sự giảm tương đương với hàm lượng vitamin C.
Sự giảm này có ý nghĩa sau 2 phút chần hơi, từ 21.89 giảm 4.57% còn 17.55 mg
GAE/g DM. Tiếp tục giảm khi gia nhiệt hơi tại thời điểm 8 phút. Giá trị cuối còn lưu
giữ 13.04 mg tương ứng với 59.57% so với mẫu ban đầu. Có thể giải thích rằng, hơi
nước tại điểm sôi đạt 100°C, sự phá hỏng tế bào chất giải phóng nhóm chất phenolics
gây ra các tổn thất [23]. Nhìn chung, sự rò rỉ hàm lượng dinh dưỡng qua quá trình này
là có ý nghĩa [28][29].
17

Bảng 4.1 Ảnh hưởng quá trình chần hơi lên màu sắc của thịt quả mãng cầu Xiêm
Tươi 2 phút 4 phút 6 phút 8 phút
L* 63.17 ± 0.75a
61.90 ± 1.45bc
59.33 ± 0.90d
61.24 ± 1.53def
61.00 ± 0.79de
a* -4.95 ± 0.11a
-5.17 ± 0.21bc
-5.42 ± 0.08de
-5.18 ± 0.20bc
-5.56 ± 0.06e
b* 11.55 ± 0.60a
9.67 ± 0.30b
9.44 ± 0.17ac
8.94 ± 0.39c
9.57 ± 0.41ac
Báo cáo về sự ảnh hưởng của các thông số chần hơi lên màu sắc của mãng cầu
Xiêm được thể hiện trong Sự thay đổi màu sắc theo xu hướng giảm dần giá trị L* từ
63.17a còn 61.90bc và 61.00de tại 2 phút và 8 phút, tương ứng. Cho thấy mãng cầu
Xiêm bị ảnh hưởng có ý nghĩa về mặt màu sắc, nhiệt độ cao phá hủy các sắc số quy
định màu, đồng thời phản ứng Maillard gây sậm màu khi gia nhiệt cao trong thời gian
dài. Điều này cũng được báo cáo trước đây đối với bắp cải [23][28].
4.2 ẢNH HƯỞNG QUÁ TRÌNH CHẦN NƯỚC LÊN MÀU SẮC, HÀM LƯỢNG
VITAMIN C VÀ PHENOLIC TỔNG CỦA MÃNG CẦU XIÊM
4.2.1 Ảnh hưởng của nhiệt độ chần nước tại 2 phút
Effect of 2 minutes hot water blanching on
Vitamin C, Polyphenol in Soursop's pulp
Vitamin C Polyphenol
24.25 ± 0.10
19.76 ± 0.18
10.47 ± 0.47
5.46 ± 0.03 7.59 ± 0.48 6.92 ± 0.11
3.05 ± 0.03 2.99 ± 0.11 2.38 ± 0.01 1.92 ± 0.06
Fresh 60°C 70°C 80°C 90°C
Temperature blanching
Hình 4.2 Sự suy giảm giá trị TAA và TPC bởi nhiệt độ trong mãng cầu Xiêm
sau chần bằng nước 2 phút
Như hình 4.2 giá trị TPC giảm mạnh từ mẫu tươi 24.25 mg GAE/g DM còn
19.76mg sau 2 phút chần nước tại 60°C, giá trị này thất thoát 74.06% khi tăng nhiệt xử
18

lý lên 90°C. Tương tự vậy, giá trị TAA trong cùng điều kiện giảm 3.54mg/g DM. Sự
khác nhau về giá trị TAA và TPC khi thay đổi nhiệt độ chần nước được giải thích
trước đây Jun-Wen Bai và cộng sự [30], mặc dù có sự bất hoạt enzyme
polyphenoloxydase, hàm lượng TPC vẫn giảm bởi nhiệt độ. Quá trình hòa lẫn vào
nước và phân hủy bởi ánh sáng của TPC và TAA gây ra sự thất thoát tại các thông số
chần 60°C (2.41; 4.49), 70°C (2.47; 13.78), 80°C (3.08; 16.66), 90°C (3.54; 17.33).
Effect of 4 minutes hot water blanching on Vitamin C,
Polyphenol in Soursop's pulp
22.56 ± 0.01
14.99 ± 0.51
11.06 ± 2.02
8.47 ± 0.02 8.56 ± 0.02
5.69 ± 0.15
3.78 ± 0.01
2.59 ± 0.10
1.78 ± 0.15 1.30 ± 0.01
Fresh 60°C 70°C 80°C 90°C
Hình 4.3 Ảnh hưởng của nhiệt độ lên Vitamin C và polyphenol trong thịt quả mãng cầu Xiêm
tại 4 phút
Những thay đổi về hàm lượng lưu giữ phenolic và ascorbic acid cũng thể hiện
trong hình 4.3. Duy trì polyphenol có xu hướng giảm từ 60 xuống 90°C. cho thấy sự
lưu giữ axit ascobic và tổng polyphenol ở các nhiệt độ khác nhau. Khi nhiệt độ tăng,
hàm lượng axit ascobic có xu hướng giảm và có giá trị thấp nhất ở 90°C (1.30mg). Có
sự khác biệt đáng kể về tỷ lệ giữ vitamin C từ 60°C đến 90°C. Thử nghiệm ANOVA ở
mức ý nghĩa 0,05. Giá trị TPC giảm mạnh từ 22.56mg còn 14.99mg tại 60°C, thấp so
với xử lý cùng nhiệt độ ở 2 phút. Tăng nhiệt xử lý 10°C giảm còn 11.06, đạt nồng độ
cuối cùng là 8.56mg tại 90°C. Chỉ số TAA giảm cùng quy luật với TPC. Hàm lượng
lưu giữ còn lại của TAA được tính so với mẫu mãng cầu Xiêm tươi là 66.43% (60°C),
45.52% (70°C), 31.28 (80°C), 22.85 (90°C). Điều này cho thấy, ảnh hưởng của nhiệt
độ và thời gian có mối tương quan lên 2 chỉ tiêu này. Vitamin C đã bị phá hủy vì phản
ứng oxy hóa dưới xúc tác, phụ thuộc vào nhiều yếu tố như nhiệt độ, nồng độ oxy, ánh
19

sáng, nước hoạt động và chất xúc tác [31]. Trong quá trình chần, sự suy giảm vitamin
C xảy ra chủ yếu theo nhiệt độ và tiếp xúc với nước. Mãng cầu Xiêm có cấu trúc mềm,
sự phân tán vitamin vào dung dịch chần dễ dàng hơn. Zheng và Lu (2011) cho thấy
cấu trúc của các vật liệu sẽ ảnh hưởng đến việc mất axit ascobic [32]. Hơn nữa,
Olivera cũng giải thích các mô thực vật đã bị phá hủy bởi nhiệt độ cao, ảnh hưởng đến
việc chiết xuất các chất từ thực vật [33]. Sự mất mát của Hàm lượng vitamin C trong
rau và trái cây thông qua quá trình chần từ 32% đến 68% đã được báo cáo bởi
Anchinewhu (1983) [34]. Ở 90°C, hàm lượng Vitamin C và polyphenol giảm đáng kể
do cấu trúc của Các tế bào mãng cầu Xiêm đã bị phá hủy dẫn đến tăng sự khuếch tán
vitamin C vào dung dịch chần. Hơn nữa, nhiệt độ quá cao cũng làm tăng tốc độ phân
hủy của 2 giá trị này.
25.27 ± 0.87
17.69 ± 0.03 15.59 ± 0.01
11.59 ± 0.0111.48 ± 0.03
5.63 ± 0.02
3.76 ± 0.41
2.76 ± 0.34 2.28 ± 0.54 2.00 ± 0.04
Fresh 60°C 70°C 80°C 90°C
Hình 4.4 Ảnh hưởng của nhiệt độ chần nước tại 6 phút lên TAA và TPC của mãng cầu Xiêm
Tương tự như 2 và 4 phút, sự thay đổi trong hàm lượng TAA và TPC tại 6 phút ở
các mức nhiệt độ từ 60-90°C được thể hiện trong hình 3.6. Giá trị TAA thay đổi từ
mẫu tươi 5.63mg còn 2.00mg (thất thoát 64.47% tại nhiệt độ cao nhất), đồng thời TPC
giữ lại 45.43% so với mẫu ban đầu, giá trị này được nhận định là cao sau quá trình
chần nước ở 90°C. Không có sự khác biệt đáng kể trong phần trăm giữ lại của hàm
lượng polyphenol ở 80°C và 90°C. Sự mất mát của hàm lượng phenolic có thể chủ yếu
là do ảnh hưởng của nhiệt độ. Tuy nhiên, hàm lượng polyphenol cao hơn ở 4 phút có
20

thể liên quan đến ức chế polyphenol oxydase. Sự phân hủy polyphenol xảy ra theo hai
cơ chế đó là xúc tác của enzyme và chất oxy hóa tự động. Enzyme polyphenol oxydase
(PPO) chịu trách nhiệm cho cơ chế chính là quá trình oxy hóa polyphenol [35]. PPO là
một loại enzyme có mặt trong hầu hết mô thực vật. Nó có khả năng xúc tác phản ứng
oxy hóa các hợp chất monophenolic thành o-diphenol và o-dihydroxy thành o-
quinones [36]. Hoạt động của enzyme PPO làm giảm giá trị dinh dưỡng và cảm quan
của sản phẩm rau quả [37]. Oxy hóa các hợp chất phenolic bằng PPO được coi là chính
nguyên nhân của màu nâu của nhiều loại trái cây và rau quả [38]. Do đó, ức chế
enzyme PPO là một cần thiết cho ngành công nghiệp thực phẩm ngày nay. Đã có nhiều
nghiên cứu về ảnh hưởng của nhiệt độ lên enzyme PPO hoạt động [36], [39],
[40]. Nhiệt độ không hoạt động của enzyme PPO trong rau dao động từ 70°C đến
90°C [38]. Kết quả này cho thấy tùy thuộc vào loại thực vật, khả năng làm bất hoạt
enzyme là đa dạng. Hơn nữa, nhiệt độ càng cao thì tốc độ bất hoạt càng nhanh. Hàm
lượng polyphenol giảm mạnh ở 90°C do ảnh hưởng của nhiệt độ cao tạo ra các hợp
chất polyphenol bị phá hủy.
24.37 ± 0.05
11.87± 0.14
6.11 ± 0.01
8.60 ± 0.01
5.71 ± 0.01
4.38 ± 0.04
4.02 ± 0.14
2.22 ± 0.02 1.83 ± 0.03 1.92 ± 0.03
Fresh 60°C 70°C 80°C 90°C
Hình 4.5 Ảnh hưởng của 8 phút chần nước khi nhiệt độ thay đổi lên TAA và TPC
Hình 4.5 cho thấy những thay đổi về vitamin C và tổng hàm lượng phenolic trong
thời gian chần khoảng nhiệt độ khác nhau. Hàm lượng vitamin C giảm dần sau khi
21

tăng nhiệt độ gia nhiệt và đạt giá trị thấp nhất trong khoảng thời gian 8 phút ở 90°C
(1.92 ± 0.03).
Vitamin C không bền với nhiệt và tan trong nước, vì vậy vitamin C bị oxy hóa
mạnh do tiếp xúc với nhiệt độ và môi trường nước trong một thời gian dài. Phát hiện
này tương tự như báo cáo của Gupta et al. (2008) về quá trình chần nước trên một số
rau ăn lá nhiệt đới khi thời gian chần tăng dần, hàm lượng vitamin C giảm [41]. Những
thay đổi về tổng phenolic cũng được thể hiện trong hình 4.5. Tỷ lệ giữ lại của tổng
phenolic có xu hướng để giảm và trở nên thấp nhất sau 8 phút tại 90°C (4.38 ± 0.04).
Không có sự khác biệt đáng kể trong tổng số hàm lượng phenolic trong khoảng từ
80°C và 90°C khi sử dụng xét nghiệm ANOVA một chiều (p> 0,05). Do sự tiếp xúc
với nhiệt độ và nước môi trường trong một thời gian ngắn và sự ức chế enzyme
polyphenol oxyase. Tuy nhiên, tại 60°C và 80°C xử lí chần, hàm lượng polyphenol
giảm đáng kể vì các hợp chất chứa trong các tế bào được giải phóng mạnh trong nước
nóng và các hợp chất phenolic (ví dụ như flavonoid) đã bị phá hủy, dẫn đến sự thay
đổi về màu sắc và kết cấu. Kết quả này tương tự như báo cáo của Amin và Wee (2005)
trong đó tổng hàm lượng polyphenol giảm sau khi tăng thời gian và nhiệt độ chần
trong một số loại rau như bắp cải đỏ, bắp cải trắng và bắp cải mù tạt [42].
4.2.5 Ảnh hưởng nhiệt độ và thời gian chần nước lên màu sắc của mãng cầu Xiêm
Bảng 4.2 Giá trị độ sáng Lab* của mãng cầu bị ảnh hưởng bởi nhiệt độ và thời gian chần
Thời gian Độ sáng 60°C 70°C 80°C 90°C
L* 61.90 ± 1.45 59.33 ± 0.90 61.24 ± 1.53 61.00 ± 0.79
2 phút
a* -5.17 ± 0.21 -5.42 ± 0.08 -5.18 ± 0.20 -5.56 ± 0.06
b* 9.67 ± 0.30 9.44 ± 0.17 8.94 ± 0.39 9.57 ± 0.41
L* 60.27 ± 0.05 59.23 ± 0.05 61.60 ± 0.11 60.12 ± 0.07
4 phút a* -4.64 ± 0.06 -5.45 ± 0.06 -5.46 ± 0.14 -5.49 ± 0.08
b* 9.49 ± 0.39 9.58 ± 0.11 10.11 ± 0.31 8.30 ± 0.16
L* 61.28 ± 0.25 59.56 ± 0.51 61.59 ± 1.74 60.06 ± 0.66
6 phút
a* -4.66 ± 0.06 -5.44 ± 0.14 -5.44 ± 0.19 -5.65 ± 0.23
22

b* 9.46 ± 0.33 9.59 ± 0.16 10.15 ± 0.32 8.20 ± 0.06
L* 61.53 ± 0.22 58.82 ± 0.68 60.26 ± 0.22 60.54 ± 0.48
8 phút a* -4.78 ± 0.14 -5.46 ± 0.06 -5.48 ± 0.10 -5.51 ± 0.14
b* 9.49 ± 0.22 9.65 ± 0.24 10.12 ± 0.27 8.47 ± 0.26
Đối với màu sắc, bảng trên cũng cho thấy sự thay đổi màu sắc do thay đổi nhiệt độ
chần. Từ 60 đến 90°C, màu trắng của mãng cầu xiêm trở nên sẫm hơn mẫu tươi. Ở
nhiệt độ dưới 80°C, hoạt tính polyphenol oxyase có thể không bị ức chế. Do đó, hàm
lượng polyphenol trong tế bào thực vật đã được chuyển đổi thành o-quinone làm cho
mãng cầu xiêm trở nên tối hơn. Begum và công sự (1996) đã báo cáo quy luật tương tự
này trên nguyên liệu măng tây sau chần, màu xanh trở nên vàng hơn [43]. Nhiệt độ
càng cao, kết cấu của mãng cầu càng mềm. Sự khác biệt trong cấu trúc mềm của mãng
cầu ở nhiệt độ 60 đến 90°C từ 2-8 phút là không rõ rệt. Trong quá trình chần, thủy
phân pectin Phản ứng, cũng như sự hòa tan pectin, sẽ ảnh hưởng đến thành tế bào và
lamella giữa dẫn đến thay đổi rau cứng có xu hướng làm mềm [44]. Anderson và cộng
sự. (1994) cũng cho thấy nhiệt độ càng cao, 6 phá hủy nhiều hơn kết cấu và độ cứng
của thành tế bào thực vật [45]. Abu-ghannam và Crowley (2006) cũng báo cáo sự phá
hủy kết cấu xảy ra mạnh mẽ ở nhiệt độ 80°C [46]. Có thể nói màu sắc bị thay đổi đáng
kể bởi quá trình chần [47]
4.2.6 3.2.3. Ảnh hưởng quá trình chần microwave lên màu sắc, hàm lượng
Vitamin C và Phenolic tổng của mãng cầu Xiêm
100.00
80.00
60.00
40.00
20.00
0.00
150W
300W
450W
600W
2 4 6 8
Minutes
Hình 4.6 Phần trăm lưu giữ polyphenol sau khi chần MW
23

Hình 4.6 cho thấy sự lưu giữ các polyphenol bị ảnh hưởng bởi công suất vi sóng.
Tổng hàm lượng phenolic ở 150W là 91.39 % ± 0.61 và có xu hướng giảm khi công
suất vi sóng cao hơn 150W và kéo dài thời gian xử lý nhiệt. Điển hình như tại 450W,
sự lưu giữ hàm lượng này sau 2 phút là cao nhất 87.65% ± 2.18, sau đó giảm dần tại 8
phút 74.39% ± 1.09. Năng lượng điện từ càng cao, càng nhiều năng lượng được hấp
thụ và chuyển đổi thành nhiệt dẫn đến tăng tốc độ gia nhiệt, sự phân hủy polyphenol
diễn ra mạnh mẽ.
Sự gia tăng đáng kể hàm lượng polyphenol ở 600W từ 53.76% đến 77.97% sau 8
phút có thể được giải thích bằng sự biến tính protein của phức hợp carotenoids-protein
có trong mẫu nguyên liệu chần. Trong một số nghiên cứu, hàm lượng phenolics (bao
gồm tanin và không tanin) có xu hướng tăng sau khoảng 23% xử lý nhiệt [48]. Điều
này có thể là do sự bất hoạt của enzyme polyphenol oxyase trong quá trình kết tủa dẫn
đến sự thoái biến polyphenol [49]. Việc tăng công suất vi sóng làm tăng năng lượng
điện hấp thụ vào dung dịch và nguyên liệu thô. Điều này gây ra sự gia tăng chuyển
động của các phân tử cực, làm tăng nhiệt độ của dung dịch và thúc đẩy phản ứng phân
hủy. Những tiết lộ trước đây chỉ ra rằng nhiệt độ tăng và thời gian chần có thể dẫn đến
mất chất phytochemical trong bắp cải [50], cà rốt, đậu xanh, bông cải xanh [51] và
măng tây xanh [52], [53].
100.00
90.00
%e
80.00
70.00
retention
60.00
150W
50.00
300W
C
40.00
Vitamin
450W
30.00
600W
20.00
10.00
0.00
2 4 6 8
Min
Hình 4.7 Ảnh hưởng của điều kiện chần MW lên phần trăm lưu giữ hàm lượng
Vitamin C của mãng cầu Xiêm
Hình 4.7 cho thấy giá trị duy trì vitamin C bị ảnh hưởng bởi công suất và thời gian
xử lý vi sóng. Kết quả cho thấy hàm lượng ascorbic acid ở 150W giảm đáng kể khi
tăng thời gian từ 76.28% giảm còn 35.28% (thấp nhất trong các điều kiện xử lý MW).
24

Xu hướng tương tự trình bày ở công suất 300-450W. Điều này cũng có thể được giải
thích bằng mối tương quan tuyến tính giữa hàm lượng polyphenol và vitamin C. Đáng
chú ý, khi tăng thời gian gia nhiệt, hàm lượng vitamin C giảm, tuy nhiên tại công suất
450W, giá trị này là cao nhất khoảng 88.23% (tại 2 và 4 phút không có sự khác biệt).
Có khả năng giải thích rằng, mẫu nguyên liệu tươi tại giai đoạn này có hàm lượng
vitamin C cao hơn, dẫn đến việc lưu giữ lại con số lớn hơn tại các điều kiện khác.
Đồng thời, tỷ lệ phần trăm duy trì ở mức công suất 600W khoảng 43% và hầu như
không chênh lệch quá cao so với những khoảng thời gian còn lại. Mặc khác, giá trị này
là thấp nhất so với các điều kiện công suất MW nhỏ hơn. Khi công suất vi sóng tăng
lên, khả năng thu giữ vitamin giảm. Có thể nhận định rằng, vitamin C bị phân hủy rất
nhiều tại công suất 600W trong từ 2-8 phút gia nhiệt, các hợp chất carotene (~ 25μg g-
1 trọng lượng khô) [54] trong vật liệu được xử lý bằng lò vi sóng có thể được chuyển
thành các sản phẩm chống oxy hóa (làm giảm hàm lượng vitamin C).
e. Ảnh hưởng nhiệt độ và thời gian chần bằng MW lên màu sắc của mãng cầu
Xiêm
Bảng 4.3 Không gian màu của thịt mãng cầu Xiêm tươi thể hiện qua chỉ số Lab*
Giá trị độ sáng L* a* b*
Mãng cầu tươi 63.17 ± 0.75 -4.95 ± 0.11 11.55 ± 0.60
Bảng 4.4 Ảnh hưởng của công suất và thời gian chần MW lên không gian màu
của thịt mãng cầu Xiêm
Thời gian Độ sáng 150W 300W 450W 600W
L* 65.77 ± 0.95 62.89 ± 0.35 61.56 ± 0.47 61.30 ± 0.51
2 phút
a* -4.59 ± 0.06 -5.51 ± 0.12 -4.83 ± 0.14 -4.48 ± 0.41
b* 10.98 ± 0.11 10.24 ± 0.26 9.82 ± 0.08 8.70 ± 0.46
L* 61.86 ± 0.53 61.79 ± 0.68 61.26 ± 0.48 58.98 ± 0.46
4 phút a* -5.18 ± 0.03 -4.60 ± 0.06 -5.42 ± 0.40 -5.33 ± 0.15
b* 10.45 ± 0.21 10.32 ± 0.03 9.78 ± 0.14 8.44 ± 0.25
25

L* 59.90 ± 0.60 58.45 ± 0.43 57.07 ± 0.63 56.33 ± 0.34
6 phút a* -5.16 ± 0.18 -4.68 ± 0.35 -4.55 ± 0.11 -4.44 ± 0.36
b* 8.35 ± 0.18 9.25 ± 0.12 10.03 ± 0.08 10.29 ± 0.13
L* 59.33 ± 0.87 61.39 ± 0.44 58.48 ± 0.55 56.15 ± 0.39
8 phút a* -5.48 ± 0.08 -5.23 ± 0.12 -5.31 ± 0.07 -4.68 ± 0.10
b* 9.58 ± 0.11 9.33 ± 0.12 9.43 ± 0.06 10.61 ± 0.05
Bảng 4.3 trình bày kết quả dựa trên chỉ số Lab* bị ảnh hưởng đồng thời của thời
gian và công suất chần MW. Trong mẫu xử lý nhiệt 2 phút, giá trị L*
Màu sắc và kết cấu là các chỉ số quan trọng để đánh giá chất lượng sản phẩm và sự
chấp nhận của khách hàng. Trong xử lý nhiệt 2 phút, không có sự khác biệt đáng kể so
với mẫu tươi. Có thể tại thời điểm này, nhiệt độ của dung dịch chần thấp (bởi công
suất 150W) và thời gian quá ngắn để năng lượng vi sóng ảnh hưởng đến kết cấu và
màu sắc của măng tây. Giami (1991) đã báo cáo rằng việc chần bằng lò vi sóng trong
vòng 3 phút không mang lại hiệu quả đáng kể nào cho kết cấu của vật liệu [55]. Tuy
nhiên, màu sắc của mãng cầu Xêm thay đổi đáng kể khi thời gian làm nóng được tăng
từ 4 phút lên 8 phút. Kết quả cho thấy giá trị L* là 63.17 của mẫu tươi giảm còn 59.33
sau 8 phút (150W), và tiếp tục sậm đi khi giá trị tại công suất 600W là 56.15. Những
thay đổi đáng kể này là kết quả của việc gia nhiệt kéo dài với công suất cao. Trong quá
trình xử lý nhiệt, các phản ứng enzyme và không enzyme đã xảy ra gây ra thay đổi
màu sắc và cấu trúc của rau. Những thay đổi hóa học như hòa tan và khử polyme của
polysacarit pectic đã ảnh hưởng đến các thành phần của thành tế bào gây ra sự giãn nở
và phá vỡ cấu trúc thực vật dẫn đến thay đổi độ dẻo dai của rau quả [33]. Kết quả từ
Bảng 3.15 cho thấy màu sắc của mãng cầu trở nên tối hơn khi chúng được chần trong
2 phút đến 8 phút. Có thể do sắc tố màu đã bị biến chất và các sắc tố tự do khác được
khuếch tán vào dung dịch chần. Trong các nghiên cứu động học thoái hóa sắc tố đã
phát hiện ra rằng phản ứng này phụ thuộc vào nhiệt độ [56]. Các phản ứng hóa nâu
cũng góp phần làm cho giá trị này giảm xuống. Kết quả từ một nghiên cứu của Brewer
và Begum (2003) cho thấy hiệu ứng của công suất vi sóng ở 385W, 490W và 700W
trong 4 phút làm giảm độ sáng (giá trị L*) của mẫu so với mẫu đối chứng [57].
26

Assignment, Essay
4.2.7 3.2.4 So sánh kết quả của phương pháp chần
Sau khi phân tích sự ảnh hưởng của ba phương pháp chần lên màu sắc, TPC và
TAA của mãng cầu Xiêm, nhận thấy rằng mỗi phương pháp có những ưu và nhược
điểm riêng. Tuy vậy, điển hình là thông số từ chần bằng sử dụng lò vi sóng, các giá trị
luôn ở mức lưu giữ cao. Ganiyu (2005) khi nghiên cứu ảnh hưởng của việc chần quá
trình về chất lượng của rau xanh, đã đo cả vitamin C, polyphenol và hoạt động chống
oxy hóa. Kết quả đã chứng minh rằng vitamin C và hoạt động chống oxy hóa đã bị mất
trong quá trình chần nhưng tổng số hàm lượng polyphenol tăng [31]. Tuy nhiên,
Dewanto và cộng sự. (2002) cho thấy hàm lượng vitamin C giảm nhưng hoạt tính
chống oxy hóa tăng trong quá trình xử lý nhiệt của cà chua ở 88°C [58].
Có thể kết luận rằng, tỷ lệ mất chất dinh dưỡng và khả năng chống oxy hóa phụ
thuộc vào loại vật liệu, cấu trúc của sản phẩm, phương pháp xử lý nhiệt [59] hoặc
trong sự khác biệt trong chiết xuất dung môi [60].
Thông số được chọn lựa cho quy trình chần tại 450W trong 4 phút sử dụng hỗ trợ
của lò vi sóng. Con số này bị chi phối một phần do sự lưu giữ hàm lượng TPC và TAA
cao, ngoài ra dựa trên cấu trúc và màu sắc sản phẩm, đánh giá cảm quan của mẫu sau
sấy. Vì các thông số của quá trình chần phải hỗ trợ được cho quá trình sau một vài ưu
điểm.
4.3 THÀNH PHẦN DINH DƯỠNG CỦA BỘT SINH TỐ MÃNG CẦU XIÊM
Bảng 4.5 Thành phần hóa học của bột sinh tố mãng cầu Xiêm
Thành phần Hàm lượng Thành phần Hàm lượng
Ẩm (%) 8.23 ± 0.69 Béo (%) 1.91 ± 0.35
Đạm (%) 16.44± 0.10 Đường (mg/g) 17.29 ± 0.06
Tro (%) 3.02 ± 0.13 Xơ (%) 1.55 ± 0.05
27

Chương 5. KẾT LUẬN VÀ KHUYẾN NGHỊ
5.1 KẾT LUẬN
Kết quả chỉ ra rằng ở phương pháp chần microwave 450W trong 2 phút và 450W
4 phút thì hàm lượng vitamin C và polyphenol, màu giữ lại hàm lượng dinh dưỡng tối
ưu nhất khi sản phẩm hoàn thành. Thông số được chọn lựa cho quy trình chần tại
450W trong 4 phút sử dụng hỗ trợ của lò vi song vì ở 2 phút 450W chưa đủ nhiệt độ
và thời gian để kiểm tra được lượng hao hụt về dinh dưỡng trong mãng cầu. Vì vậy ở 4
phút 450W sẽ đủ nhiệt độ và thời gian kiểm tra chất lượng còn lại của mãng cầu xiêm
đảm bảo những thành phần dinh dưỡng trong mãng cầu xiêm còn lại ở mức độ cao
nhất để có thể thực hiện các quá trình sau chần.
28

TÀI LIỆU THAM KHẢO
[1] H. Y. Nakasone and R. E. Paull, Tropical fruits. Cab International, 1998.
[2] S. J. Singh and T. U. Maheswari, “Influence of pre-sowing seed treatments on
the performance of soursop (Annona muricata L.) seedlings,” vol. 17, no. 2, pp.
1215–1218, 2017.
[3] J. F. Morton, “Soursop (Annona muricata),” Fruits warm Clim. Purdue Univ.,
vol. 39, pp. 75–80, 1987.
[4] J. F. Morton, Fruits of warm climates. JF Morton, 1987.
[5] “Thermal di usivity of soursop ( Annona muricata L .) pulp,” vol. 46, 2000.
[6] A. Lenart, “An International Journal Osmo-Convective Drying of Fruits and
Vegetables : Technology and Application,” Dry. Technol., vol. 14, no. March
2015, pp. 391–413, 2007.
[7] T. M. Afzal, T. Abe, and Y. Hikida, “Energy and quality aspects during
combined FIR-convection drying of barley,” J. Food Eng., vol. 42, no. 4, pp.
177–182, 1999.
[8] V. Demir, T. Gunhan, and A. K. Yagcioglu, “Mathematical modelling of
convection drying of green table olives,” Biosyst. Eng., vol. 98, no. 1, pp. 47–53,
2007.
[9] S. N. Karaaslan and I. K. Tuncer, “Development of a drying model for
combined microwave–fan-assisted convection drying of spinach,” Biosyst. Eng.,
vol. 100, no. 1, pp. 44–52, 2008.
[10] D. Velić, M. Planinić, S. Tomas, and M. Bilić, “Influence of airflow velocity on
kinetics of convection apple drying,” J. Food Eng., vol. 64, no. 1, pp. 97–102,
2004.
[11] U. S. Pal and A. Chakraverty, “Thin layer convection-drying of mushrooms,”
Energy Convers. Manag., vol. 38, no. 2, pp. 107–113, 1997.
[12] S. Pabis, “The initial phase of convection drying of vegetables and mushrooms
and the effect of shrinkage,” J. Agric. Eng. Res., vol. 72, no. 2, pp. 187–195,
1999.
[13] A. C. A. Gratao, V. Silveira Jr, and J. Telis-Romero, “Laminar flow of soursop
juice through concentric annuli: Friction factors and rheology,” J. Food Eng.,
vol. 78, no. 4, pp. 1343–1354, 2007.
[14] J. F. Morton, “The soursop, or guanabana (Annona muricata Linn.),” Florida
State Hortic. Soc. Univ. Miami., 1966.
[15] I. Sotome et al., “Blanching of potato with superheated steam and hot water
spray,” LWT - Food Sci. Technol., vol. 42, no. 6, pp. 1035–1040, 2009.
[16] E. M. Gonçalves, J. Pinheiro, M. Abreu, T. R. S. Brandão, and C. L. M. Silva,
“Carrot ( Daucus carota L .) peroxidase inactivation , phenolic content and

Assignment, Essay
physical changes kinetics due to blanching,” J. Food Eng., vol. 97, no. 4, pp.
574–581, 2010.
[17] J. Song, G. An, and C. Kim, “Color, texture, nutrient contents, and sensory
values of vegetable soybeans [Glycine max (L.) Merrill] as affected by
blanching,” Food Chem., vol. 83, pp. 69–74, 2003.
[18] U. Kidmose and H. J. Martens, “Changes in texture, microstructure and
nutritional quality of carrot slices during blanching and freezing,” J. Sci. Food
Agric., vol. 1753, no. November 1998, pp. 1747–1753, 1999.
[19] N. Muftugil, “Effect of Different Types of Blanching on the Color and the
Ascorbic Acid and Chlorophyll Contents of Green Beans,” J. Food Process.
Preserv., vol. 10, no. 1, pp. 69–76, 1986.
[20] L. Neri, I. H. Hernando, P. Isabel, G. Sacchetti, and P. Pittia, “Effect of
Blanching in Water and Sugar Solutions on Texture and Microstructure of
Sliced Carrots,” J. Food Sci., vol. 76, no. 1, pp. 23–30, 2011.
[21] D. W. Stanley, M. C. Bourne, A. P. Stone, and W. V Wismer, “Low temperature
blanching effects on chemistry, firmness and structure of canned green beans
and carrots,” J. Food Sci., vol. 60, no. 2, pp. 327–333, 1995.
[22] C. T. PONNE, T. BAYSAL, and D. YUKSEL, “Blanching Leafy Vegetables
with Electromagnetic Energy,” J. Food Sci., vol. 59, no. 5, pp. 1037–1041, 1994.
[23] R. P. C. Powers, Joseph R, Jose´I.ReyesDeCorcuera, “Blanching of Foods,”
Encycl. Agric. ,Food, Biol. Eng., 2004.
[24] B. Torres, B. K. Tiwari, A. Patras, P. J. Cullen, N. Brunton, and C. P. O.
Donnell, “Stability of anthocyanins and ascorbic acid of high pressure processed
blood orange juice during storage,” Innov. Food Sci. Emerg. Technol., vol. 12,
no. 2, pp. 93–97, 2011.
[25] R. B. Bradstreet, “Kjeldahl method for organic nitrogen,” Anal. Chem., vol. 26,
no. 1, pp. 185–187, 1954.
[26] S. J. Padayatty et al., “Vitamin C as an Antioxidant : Evaluation of Its Role in
Disease Prevention,” J. Am. Coll. Nutr., vol. 22, no. 1, pp. 18–35, 2013.
[27] N. M. Quenzer and E. E. Burns, “Effects of Microwave , Steam and Water
Blanching on Freeze-Dried Spinach,” J. fpod Sci., vol. 46, pp. 410–418, 1977.
[28] N. Abu-ghannam, “Blanching as a Treatment Process : Effect on Polyphenols
and Antioxidant Capacity of Cabbage,” Process. impact Act. components food,
pp. 35–43, 2015.
[29] A. K. Jaiswal, G. Rajauria, N. Abu-ghannam, and S. Gupta, “Phenolic
Composition , Antioxidant Capacity and Antibacterial activity of selected Irish
Brassica vegetables,” Nat. Prod. Commun., vol. 6, no. 9, pp. 1299–1304, 2011.
[30] J. Bai, Z. Gao, H. Xiao, X. Wang, and Q. Zhang, “Original article Polyphenol
oxidase inactivation and vitamin C degradation kinetics of Fuji apple quarters by
high humidity air impingement blanching,” Int. J. Food Sci. Technol., vol. 48,
pp. 1135–1141, 2013.

[31] G. Oboh, “Effect of blanching on the antioxidant properties of some tropical
green leafy vegetables,” LWT - Food Sci. Technol., vol. 38, no. 5, pp. 513–517,
2005.
[32] H. Zheng and H. Lu, “Effect of microwave pretreatment on the kinetics of
ascorbic acid degradation and peroxidase inactivation in different parts of green
asparagus (Asparagus officinalis L.) during water blanching,” Food Chem., vol.
128, no. 4, pp. 1087–1093, 2011.
[33] D. F. Olivera et al., “Effect of blanching on the quality of Brussels sprouts
(Brassica oleracea L . gemmifera DC) after frozen storage,” J. Food Eng., vol.
84, pp. 148–155, 2008.
[34] O. Access, A Review of Cyanogenic Glycosides in Edible Plants. 2016.
[35] D. Sources and N. Significance, “Polyphenols : Chemistry , Dietary Sources ,
Metabolism , and Nutritional Significance,” Nutr. Rev., vol. 56, no. 11, pp. 317–
333, 1998.
[36] X. Cheng, M. Zhang, and B. Adhikari, “Ultrasonics Sonochemistry The
inactivation kinetics of polyphenol oxidase in mushroom ( Agaricus bisporus )
during thermal and thermosonic treatments,” Ultrason. - Sonochemistry, vol. 20,
no. 2, pp. 674–679, 2013.
[37] M. E. Latorre, P. R. Bonelli, A. M. Rojas, and L. N. Gerschenson, “Microwave
inactivation of red beet ( Beta vulgaris L . var . conditiva ) peroxidase and
polyphenoloxidase and the effect of radiation on vegetable tissue quality,” J.
Food Eng. J., vol. 109, pp. 676–684, 2012.
[38] C. Queiroz, M. Lúcia, M. Lopes, E. Fialho, and V. Lúcia, “Polyphenol Oxidase :
Characteristics and Mechanisms of Browning Control,” Food Rev. Int., vol. 24,
pp. 361–375, 2008.
[39] C. Y. Lee and N. L. Smith, “Blanching effect on polyphenol oxidase activity in
table beets,” J. Food Sci., vol. 44, no. 1, pp. 82–84, 1979.
[40] S. Ma, J. L. Silva, J. Hearnsberger, and J. Garner, “Prevention of Enzymatic
Darkening in Frozen Sweet Potatoes [ Ipomoea batatas ( L .) Lam .] by Water
Blanching : Relationship among Darkening , Phenols , and Polyphenol Oxidase
Activity,” J. Agric. Food Chem, vol. 40, pp. 864–867, 1992.
[41] S. Gupta et al., “Effect of different blanching treatments on ascorbic acid
retention in green leafy vegetables,” Nat. Prod. Radiance, 2008.
[42] I. Amin and W. Y. Lee, “Effect of different blanching times on antioxidant
properties in selected cruciferous vegetables,” J. Sci. Food Agric., vol. 2320, no.
February, pp. 2314–2320, 2005.
[43] M. Blanching, E. On, and O. F. F. Asparagus, “Microwave blanching effects on
color, chemical and sensory characteristics of frozen asparagus,” J. Food Qual.,
vol. 20, no. 1997, pp. 471–481, 1996.
[44] and N. A.-G. Jaiswal, S. Gupta, “Kinetic Evaluation of Colour, Texture,
Polyphenols and Antioxidant Capacity of Irish York Cabbage After Blanching

Assignment, Essay
Treatment,” Food Chem., vol. 131, no. 1, pp. 63–72, 2011.
[45] C. citations to0 Date, Altmetric, O. Articles, E. of preheating on potato Texture,
and A. Andersson, “Effect of Preheating on Potato Texture,” J. Crit. Rev. Food
Sci. Nutr., vol. 34, no. 3, pp. 1–23, 1994.
[46] N. Abu-ghannam and H. Crowley, “The effect of low temperature blanching on
the texture of whole processed new potatoes,” J. Food Eng., vol. 74, no. 9, pp.
335–344, 2006.
[47] M. E. Heras-ramírez, A. Alberto, and J. Barnard, “Effect of Blanching and
Drying Temperature on Polyphenolic Compound Stability and Antioxidant
Capacity of Apple Pomace,” Food Bioprocess Technol., vol. 5, no. August, pp.
2201–2210, 2011.
[48] S. Fanasca, Y. Rouphael, E. Venneria, E. Azzini, A. Durazzo, and G. Maiani,
“Antioxidant properties of raw and cooked spears of green asparagus cultivars,”
Int. J. Food Sci. Technol., vol. 44, no. 5, pp. 1017–1023, 2009.
[49] T. Yamaguchi et al., “Influence of polyphenol and ascorbate oxidases during
cooking process on the radical-scavenging activity of vegetables,” Food Sci.
Technol. Res., vol. 9, no. 1, pp. 79–83, 2003.
[50] A. K. Jaiswal, S. Gupta, and N. Abu-Ghannam, “Kinetic evaluation of colour,
texture, polyphenols and antioxidant capacity of Irish York cabbage after
blanching treatment,” Food Chem., vol. 131, no. 1, pp. 63–72, 2012.
[51] A. Patras, B. K. Tiwari, and N. P. Brunton, “Influence of blanching and low
temperature preservation strategies on antioxidant activity and phytochemical
content of carrots, green beans and broccoli,” LWT-Food Sci. Technol., vol. 44,
no. 1, pp. 299–306, 2011.
[52] J. M. Fuentes-Alventosa et al., “Effect of the extraction method on
phytochemical composition and antioxidant activity of high dietary fibre powders
obtained from asparagus by-products,” Food Chem., vol. 116, no. 2, pp. 484–
490, 2009.
[53] J. M. Drinkwater, R. Tsao, R. Liu, C. Defelice, and D. J. Wolyn, “Effects of
cooking on rutin and glutathione concentrations and antioxidant activity of green
asparagus (Asparagus officinalis) spears,” J. Funct. Foods, vol. 12, pp. 342–353,
2015.
[54] P. García‐Herrera, M. C. Sánchez‐Mata, M. Cámara, J. Tardío, and B. Olmedilla‐Alonso,
“Carotenoid content of wild edible young shoots traditionally consumed in Spain (Asparagus
acutifolius L., Humulus lupulus L., Bryonia dioica Jacq. and Tamus communis L.),” J. Sci. Food
Agric., vol. 93, no. 7, pp. 1692–1698, 2013.
[55] S. Y. Giami, “Effects of pretreatments on the texture and ascorbic acid content
of frozen plantain pulp (Musa paradisiaca),” J. Sci. Food Agric., vol. 55, no. 4,
pp. 661–666, 1991.
[56] N. Koca, H. S. Burdurlu, and F. Karadeniz, “Kinetics of colour changes in

dehydrated carrots,” J. Food Eng., vol. 78, no. 2, pp. 449–455, 2007.
[57] B. S. M.S. Brewe, “Effect of microwave power level and time on ascorbic acid
content, peroxidase activity and color of selected vegetables,” J. Food Process.
Preserv., vol. 27, no. 6, pp. 411–426, 2003.
[58] V. E. D. Ewanto, X. W. U. Ianzhong, K. A. K. A. Dom, and R. U. I. H. A. I. L.
Iu, “Thermal Processing Enhances the Nutritional Value of Tomatoes by
Increasing Total Antioxidant Activity,” J. Agric. Food Chem, vol. 50, no. 10, pp.
3010–3014, 2002.
[59] R. Ferracane et al., “Effects of different cooking methods on antioxidant profile,
antioxidant capacity, and physical characteristics of artichoke,” J. Agric. Food
Chem., vol. 56, no. 18, pp. 8601–8608, 2008.
[60] B. Sultana, F. Anwar, and M. Ashraf, “Effect of extraction solvent/technique on
the antioxidant activity of selected medicinal plant extracts,” Molecules, vol. 14,
no. 6, pp. 2167–2180, 2009.
[61] N. D. Mrad, N. Boudhrioua, N. Kechaou, F. Courtois, and C. Bonazzi,
“Influence of air drying temperature on kinetics, physicochemical properties,
total phenolic content and ascorbic acid of pears,” Food Bioprod. Process., vol.
90, no. 3, pp. 433–441, 2012.

Khóa luận tốt nghiệp Ảnh hưởng của các quá trình chần lên hàm lượng bột sinh tố mãng Cầu Xiêm

Recommended

Recommended

More Related Content

Similar to Khóa luận tốt nghiệp Ảnh hưởng của các quá trình chần lên hàm lượng bột sinh tố mãng Cầu Xiêm

Similar to Khóa luận tốt nghiệp Ảnh hưởng của các quá trình chần lên hàm lượng bột sinh tố mãng Cầu Xiêm (20)

More from lamluanvan.net Viết thuê luận văn

More from lamluanvan.net Viết thuê luận văn (20)

Khóa luận tốt nghiệp Ảnh hưởng của các quá trình chần lên hàm lượng bột sinh tố mãng Cầu Xiêm