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Snyder test and alban’s test
치아우식활성검사법 <세균인자>
35 양지선
Snyder test
• 실험목적
– 목적 : 구강 내 산 생성균의 양과 그 활성을 측정
• 실험원리
– 원리 : 색지표 (Color indicator)로서 BCG(bromcresol
green)를 함유하고 산도가 4.7~5.0으로 맞추어져 있
는 배지에 자극성 타액을 주입하여 산생성 속도를 측
정하는 방법으로 구강 내 산생성능을 비색적으로 측
정하는 검사법
• 실험근거
– 근거 : 타액 중의 세균이 산을 생성하여 치아우식증을
유발시킨다는 근거
– → 함수탄소 배양기에서 타액 중의 세균이 산을 형성
• 실험장비
– 타액수집용기, 파라핀왁스, 스나이더 배지, 피펫, 배양
장비, Union-screw cap test tube
• 배지 제조 과정
1) 재료 준비 (증류수, agar,
Dextrose, BCG, beef
extract, lactic acid)
2) 중탕기에 증류수를 넣고
중탕시키면서 낮은 온도에
서 Beef extract를 넣고 끓
인다.
3) 지시약 (0.04% BCG)을
넣는다.
4) Dextrose와 Agar를 소
량씩 넣으면서 엉겨붙지
않게 한다.
5) 0.1N Lactic acid로 pH
5.0이 되도록 조절한다.
• 실험과정
– 정규 식사 전이나 칫솔질을 하기 전에 약 3분
동안 1.0mg 정도의 파라핀 조각을 저작하여
자극성 타액을 추출한다.
– 실험시 medium이 든 test tube를 65℃의 중
탕기에서 melting 시킨 뒤 수집한 타액 0.2ml
를 pipetting하여 잘 흔들어 준다.
– 시험관의 agar가 굳으면 37℃에서 72시간 배
양한다.
1. 대조군
2. Inactivate (blue)
3. Limited (green)
4. Definite (yellow green)
5. Marked (yellow)
Alban’s test
차이점
실험 준비물
방법
결과
• 원리
– Snyder test 와 같이 타액중의 유산균의 활성도를 비색적으로 측정하는
검사
• Snyder 검사와의 차이점
– 1) Snyder test agar in a prepared test tube is used without melting
and cooling as is usually recommended.
: Agar를 녹일 필요가 없다. 과정이 단순해지면서 결과를 읽기가 쉬워진
다. Living bacteria의 손상을 막는다.
2) Unstimulated saliva is collected by having the patient "drool"
directly into a prepared culture tube
:Time of day, relation to eating time, volume of sample에 의해 결과가
영향 받지 않는다.
3) Results are read by daily observation of color change from blue-
green to yellow and by recording the depth of color change.
: 색변화의 깊이를 측정할 수 있다. Original snyder test 는 test tube
shake에 따라 색깔변화에 따라 다를 수 있다.
4) A new method of scoring provides a calibrated result.
:1000명을 대상으로 한 실험에서 95%의 재현성을 나타내었다. 반복시
행 시 결과가 정확하다.
• Alban test의 결과
장점
-타액의 양을 측정할 필요가 없고 비자극성 타액을 tube에 바로 채
취하여 번거로운 과정을 생략할 수 있다. 임상치과 에서 쉽게 행할
수 있다.
- Ideal test for patient education. 환자의 동기유발에 효과적이다.
- 다양한 우식 제어 절차에 효과적인 측정법이다.
과거 우식경험에 기초한 치아
우식 활성도의 예측
<숙주인자-치아>
P.26
Caries Activity Indicators: Guide for Dental Practitioners
Tamgadge Sandhya, Tamgadge Avinash, Evie Satheesan
International Journal of Oral & Maxillofacial Pathology. 2012;4(1):34-42
Newbrun E. Caries activity test: Cariology. 3rd ed. Quintessence Publication
Company: 1989. 273-291p.
치아우식활성도(caries activity)
• 원리
– 과거 우식경험
은 앞으로를
예측하는 방법
이 될 수 도 있
다. 이럴 시에
치아 교합면은
제외하는 것이
낫다
• 과정
– 9-10세 아동들을 치아우식 활성
도가 높은 집단과 낮은 집단으로
나누었다.
① 전치와 제 1대구치의 인접면
② 상악 제 1대구치의 협면
③ 하악 제 1대구치의 설면
결과
• 조사 1년후 치아우식
활성도가 높은 집단은
9.5개의 새로운 치아
우식면이 생겼다
• 낮은 집단에서는 5.3
개의 새로운 치아우식
면이 생겨났다.
• 통계적으로 유의성이
있었다.
우식경험 영구치면 지수
• DMFS index =
피검자 개인 우식경험 영구치면 수의 합
피검사수
• D (decayed permanent teeth)
– 미충전우식영구치아
• M (missing or extraction because of dental caries on
permanent teeth)
– 우식경험상실치아
• F (filled permanent teeth)
– 우식경험충전치아
• S (Surface)
• Initial DMFS score 사용의 단점
– 이미 명확한 치아우식이 발생되었다
– 아주 어린 나이에서는 적용될 수가 없다
– 전문적인 검사능력이 필요하다
치질내산성의 측정
<숙주인자-치아>
P.26
치질내산성(acid resistance)
• 원리
– 치아표면의 표면의 오염을 제거한 후
– 일정의 조건 (산의 종류, 농도, pH, 액량, 접촉
면적, 접촉시간)으로 산액을 치면에 접촉하여
용출한 치아의 법랑질 성분의 양 (칼슘 혹은
인)을 측정하고
– 이미 알고 있는 치질용출양의 분포로부터 치
질의 내산성의 강약을 안다.
• 준비물
– pH2.5, 0.1M 유산완충액, 1N HCl, 염산칼륨제
제의 치마제 (불소 배합), 치료용 엔진 및
polishing brush, air compressor, aspirator, 펙
토리 샤아레 및 치과용 핀세트, 마이크로 피펫,
시험관, 분사병, 원자흡수 분광 광도계, non
woven fiber Disk (ND)
과정
① 치면의 연마청소: 연마청소-세정-건조
② 치면의 유산완충액에 의한 세정: 유산완충액 적심-세정-건조
③ 내산성 측정: 유산완충액을 ND로 옮겨, 3분간 치면에 붙인후, 1N HCl
3㎖ 시험관에 넣는다.
④ Ca의 정량: ND의 치질성분을 유산완충액에 확산시킨 후, 원자흡광분
광광도계로 용출 Ca양을 정량한다.
• 판정 Ca 용출량
4.6㎍ 미만 강군
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15 김안석 개인 보호장비
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7번 김계형 핸드피스 멸균법
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7번 김계형 핸드피스 멸균법
 

35 양지선 우식활성검사

  • 1. Snyder test and alban’s test 치아우식활성검사법 <세균인자> 35 양지선
  • 2. Snyder test • 실험목적 – 목적 : 구강 내 산 생성균의 양과 그 활성을 측정 • 실험원리 – 원리 : 색지표 (Color indicator)로서 BCG(bromcresol green)를 함유하고 산도가 4.7~5.0으로 맞추어져 있 는 배지에 자극성 타액을 주입하여 산생성 속도를 측 정하는 방법으로 구강 내 산생성능을 비색적으로 측 정하는 검사법 • 실험근거 – 근거 : 타액 중의 세균이 산을 생성하여 치아우식증을 유발시킨다는 근거 – → 함수탄소 배양기에서 타액 중의 세균이 산을 형성 • 실험장비 – 타액수집용기, 파라핀왁스, 스나이더 배지, 피펫, 배양 장비, Union-screw cap test tube
  • 3. • 배지 제조 과정 1) 재료 준비 (증류수, agar, Dextrose, BCG, beef extract, lactic acid) 2) 중탕기에 증류수를 넣고 중탕시키면서 낮은 온도에 서 Beef extract를 넣고 끓 인다. 3) 지시약 (0.04% BCG)을 넣는다. 4) Dextrose와 Agar를 소 량씩 넣으면서 엉겨붙지 않게 한다. 5) 0.1N Lactic acid로 pH 5.0이 되도록 조절한다.
  • 4. • 실험과정 – 정규 식사 전이나 칫솔질을 하기 전에 약 3분 동안 1.0mg 정도의 파라핀 조각을 저작하여 자극성 타액을 추출한다. – 실험시 medium이 든 test tube를 65℃의 중 탕기에서 melting 시킨 뒤 수집한 타액 0.2ml 를 pipetting하여 잘 흔들어 준다. – 시험관의 agar가 굳으면 37℃에서 72시간 배 양한다.
  • 5. 1. 대조군 2. Inactivate (blue) 3. Limited (green) 4. Definite (yellow green) 5. Marked (yellow)
  • 7. • 원리 – Snyder test 와 같이 타액중의 유산균의 활성도를 비색적으로 측정하는 검사 • Snyder 검사와의 차이점 – 1) Snyder test agar in a prepared test tube is used without melting and cooling as is usually recommended. : Agar를 녹일 필요가 없다. 과정이 단순해지면서 결과를 읽기가 쉬워진 다. Living bacteria의 손상을 막는다. 2) Unstimulated saliva is collected by having the patient "drool" directly into a prepared culture tube :Time of day, relation to eating time, volume of sample에 의해 결과가 영향 받지 않는다. 3) Results are read by daily observation of color change from blue- green to yellow and by recording the depth of color change. : 색변화의 깊이를 측정할 수 있다. Original snyder test 는 test tube shake에 따라 색깔변화에 따라 다를 수 있다. 4) A new method of scoring provides a calibrated result. :1000명을 대상으로 한 실험에서 95%의 재현성을 나타내었다. 반복시 행 시 결과가 정확하다.
  • 8. • Alban test의 결과 장점 -타액의 양을 측정할 필요가 없고 비자극성 타액을 tube에 바로 채 취하여 번거로운 과정을 생략할 수 있다. 임상치과 에서 쉽게 행할 수 있다. - Ideal test for patient education. 환자의 동기유발에 효과적이다. - 다양한 우식 제어 절차에 효과적인 측정법이다.
  • 9. 과거 우식경험에 기초한 치아 우식 활성도의 예측 <숙주인자-치아> P.26 Caries Activity Indicators: Guide for Dental Practitioners Tamgadge Sandhya, Tamgadge Avinash, Evie Satheesan International Journal of Oral & Maxillofacial Pathology. 2012;4(1):34-42 Newbrun E. Caries activity test: Cariology. 3rd ed. Quintessence Publication Company: 1989. 273-291p.
  • 10. 치아우식활성도(caries activity) • 원리 – 과거 우식경험 은 앞으로를 예측하는 방법 이 될 수 도 있 다. 이럴 시에 치아 교합면은 제외하는 것이 낫다
  • 11. • 과정 – 9-10세 아동들을 치아우식 활성 도가 높은 집단과 낮은 집단으로 나누었다. ① 전치와 제 1대구치의 인접면 ② 상악 제 1대구치의 협면 ③ 하악 제 1대구치의 설면
  • 12. 결과 • 조사 1년후 치아우식 활성도가 높은 집단은 9.5개의 새로운 치아 우식면이 생겼다 • 낮은 집단에서는 5.3 개의 새로운 치아우식 면이 생겨났다. • 통계적으로 유의성이 있었다.
  • 13. 우식경험 영구치면 지수 • DMFS index = 피검자 개인 우식경험 영구치면 수의 합 피검사수 • D (decayed permanent teeth) – 미충전우식영구치아 • M (missing or extraction because of dental caries on permanent teeth) – 우식경험상실치아 • F (filled permanent teeth) – 우식경험충전치아 • S (Surface)
  • 14. • Initial DMFS score 사용의 단점 – 이미 명확한 치아우식이 발생되었다 – 아주 어린 나이에서는 적용될 수가 없다 – 전문적인 검사능력이 필요하다
  • 16. 치질내산성(acid resistance) • 원리 – 치아표면의 표면의 오염을 제거한 후 – 일정의 조건 (산의 종류, 농도, pH, 액량, 접촉 면적, 접촉시간)으로 산액을 치면에 접촉하여 용출한 치아의 법랑질 성분의 양 (칼슘 혹은 인)을 측정하고 – 이미 알고 있는 치질용출양의 분포로부터 치 질의 내산성의 강약을 안다.
  • 17. • 준비물 – pH2.5, 0.1M 유산완충액, 1N HCl, 염산칼륨제 제의 치마제 (불소 배합), 치료용 엔진 및 polishing brush, air compressor, aspirator, 펙 토리 샤아레 및 치과용 핀세트, 마이크로 피펫, 시험관, 분사병, 원자흡수 분광 광도계, non woven fiber Disk (ND)
  • 18. 과정 ① 치면의 연마청소: 연마청소-세정-건조 ② 치면의 유산완충액에 의한 세정: 유산완충액 적심-세정-건조 ③ 내산성 측정: 유산완충액을 ND로 옮겨, 3분간 치면에 붙인후, 1N HCl 3㎖ 시험관에 넣는다. ④ Ca의 정량: ND의 치질성분을 유산완충액에 확산시킨 후, 원자흡광분 광광도계로 용출 Ca양을 정량한다. • 판정 Ca 용출량 4.6㎍ 미만 강군 4.6-7.6㎍ 중군 7.6㎍ 이상 약군