SlideShare a Scribd company logo
1 of 23
Download to read offline
Winter 2016 & Spring 2016 
Research Report 
Advisor: Professor Yves Atchadé  
Student: Miao Wang 
 
Effect of sampling protocol modification on Response Driven Sampling Method  
 
 
Abstract : The main goal of this research project is to understand how slight change of sampling protocol would affect 
the estimate in the context of Response Driven Sampling. Two slight change of protocol are explored: (1) asking each 
participant to provide all their contacts and researchers randomly pick one contact to follow (2) given we know a 
covariate, which is related to the interested population, asking each participant to provide the covariate, and we tilt the 
sampling preference according to it. Both of the scenario were compared with the usual RDS process in terms of the 
mean­square­error of the estimate and the sensitivity to seed participants. The project finds out that the estimate from 
both scenario 1​ ​and scenario 2 have better performance in terms of smaller mean­square­error but both have  same 
level of sensitivity to seed participants compared to normal RDS procedure. This study may provide a new perspective 
of sampling in that how the change of protocol of sampling can help reduce the variance and yield better estimates.  
Keywords: sampling protocol, Response­driven­sampling, reduce variance of estimat
 
1. Introduction 
The Response Driven Sampling (RDS) is widely used where it is too difficult to directly sample 
from the desired population due to unavailability. For example, if we are interested to know the HIV 
infection rate among sex workers in the United States, there is no way to have a complete list of all sex 
workers. In this case, it is mostly useful to find one sex worker and ask her to recruit another worker she 
knows who might or might not be infected with HIV. The sampling method of one respondent recruiting 
another is Response Driven Sampling (RDS). The RDS sample constitutes a Markov Chain Monte Carlo 
(MCMC) (Goel & Saliinik, 2009) and thus can produce valid statistical inference. Given the Markov Chain 
has an invariant distribution, after some mixing time, the sample will follow the invariant distribution and 
therefore the estimate constructed by the sample (excluding the samples before mixing time) still 
approximate the true population mean of the estimate. However, as Goel & Saliinik (2009) mentioned that 
the RDS Method has serious problem of large variance and thus reducing variance for RDS estimate is 
essential and crucial.  
The protocol of RDS is very standard: researcher interviews participants and then give them some 
coupons, which they can give to their friends. Some of their friends will agree to participate and thus come 
back to the study with their coupons. The proposal of this research is to ​expl​ore whether slight 
modification of this above sampling process, ie Modification 1 and  Modification 2 below, could produce 
better estimate in terms of mean­square­error and sensitivity to seed.  
 
 
Modification 1: randomly pick one contact 
Instead of let participants to recruit their own friends, researchers ask the subjects to list all their 
contacts, and researchers will randomly pick one of the contact to interview. The intuition of this 
modification is as follows:  
Most researchers think of connection among individuals as either “yes” or “no”, that either you 
know someone or you don’t. However, this black­or­white model neglect the importance of the magnitude 
of closeness. Knowing 20 sex workers doesn’t necessarily imply that you will give the coupons to any of 
them equally likely. In reality, you will probably ask someone you feel most comfortable to talk to. The 
author believe that because people will mostly likely to recommend someone they are close to, the 
sampling is slowly pushed towards the entire population. In order to push the spread more quickly, the 
sampling should favor towards the least close person in a way.  
…... A  B   C   D …..↔ ↔ ↔ ↔ ↔  
For example, if A is most close to B, somewhat close to C and least close to D. If the researchers just 
simply ask A to recommend a person, A will mostly likely to recommend B and least likely D. However, if 
the researchers ask A to list all the people he/she knows and randomly picks one, then D will be more likely 
to chosen in this scenario than the previous one. This paper’s proposal is that in this way, the Markov Chain 
can get through the bottleneck between subgroups more quickly (in less sample size) and thus reducing the 
variance of the estimate.  
Modification ​2: have a sampling preference according to some covariate 
Suppose a study has a main research question, for example infection rate among sex workers, and 
we know that some covariate has a strong correlation with  the research question, for example we know that 
the lower education sex worker has, the more likely she is infected with HIV. Modification 2 is that 
researchers not only give the coupons to participants, but also gives participants extra rewards if their 
friends have low education. In other words, researchers implement the RDS in a way that someone with 
lower education will be more likely to be chosen than the others.  
The intuition of weighting the sampling according to some covariates is as follows: According to the 
theory about Markov Chain, the sample from RDS even dependent, all follow the same distribution π  
(proportion of time in a state)  and thus the estimate (infection rate ​p̂) is measured by the  
̂  1/Wxi (Xi) /Wxip =      *  ∑
n−1
i = 0
f        
WA  =   ∑
 
x in A
∑
 
y in population 
(x, )W y  
{ 1, if person x is infected with HIV(x) f =    
         { 0, if person x is not infected 
   W /W π =   x population  
 
Where  is the ith sample from RDS,  represent the edge from person x to y. In order to decreaseXi (x, ) W y  
the variance of p̂, it is essential to find a  which has high correlation with  . Therefore, by increasingπ (x)f  
the likelihood to recruit someone that is low in education, we modified the W(x,y) matrix, and thus increase 
the correlation between   and  .π (x)f   
 
   
 
2. Method 
The methodology in testing performance of modification 1( ​mod.1​) is by simulation: design a fake 
population, randomly infect a portion of the population and perform both the ordinary RDS (​control​) and 
mod.1​ to compare the mean­square­error and sensitivity of ​p̂. Methodology for modification 2 ( mod.2​) 
follows almost the same procedure. The only differences lie in the design of social network structure and 
the mathematical representation of two modifications.  
 
Population Design for mod.1 
In order to echo to the reasoning of ​mod.1​ in the introduction, the population design for ​mod.1 
should contains two properties: (1) the connection between people should have different level of closeness 
(2) there exists subgroups in the population, where the connectivity inside the subgroups are stronger than 
connectivity across subgroups.  
In practise, a population size of 5000 was created, with a 1250 population of subgroup A and a 
3750 population of subgroup B. For simplicity, every individual inside a subgroup was assigned to have  2 
close friends, 2 friends, and 2 acquaintances.  
Person​i ­3 ​⎯​ Person​i ­2 ​⎯​ Person​i ­1​ ​⎯​ Person​i​ ​⎯​Person​i+1 ​⎯​ Person​i+2​⎯​Person​i+3 
For every person​ ​i, person i­1 and person i+1 are his close friends, person i­2 and i+2 are his friends, and 
person i­3 and i+3 are his acquaintances. The “close friend”, “friend”, and “acquaintance” relationship are 
represented by different numerical number in the matrix of network relationship. We also assume that that 
person i do not have any connection with the rest in population.  Then, 200 people from A and 200 people 
from B were randomly chosen and made a one­to­one­relationship represented by the lowest level of 
connection.  
Therefore, the relation matrix W looks like below: 
If x, y are in the same group:  
(x, )  9, if |x |  1W y =     −y =    
(x, )  4, if |x |  2W y =     −y =    
(x, )  1, if |x |  3W y =     −y =    
W(x, )  0, if |x |    3  y =     −y >    
If x, y are in different group:  
(x, )  1, if x, y are chosen to be connectedW y =        
(x, )  0, otherwiseW y =      
Where 9, 4, 1, 0 corresponds to “close friend”, “friend”, “acquaintance”, “stranger”.  
If we assume that participants will recruit their friends based on closeness, then the sample of 
ordinary RDS (​control​) will have a transmission matrix of K, where  .   However, if(x, ) K y =   W(x, y)
(x,y)∑
5000
y = 1
W
 
researchers ask participants to write down all their contacts and then randomly pick one, then every 
connection regardless of closeness will have equal chance to be selected. Therefore, for ​mod.1 ​the transition 
matrix will become:  
  (x, )  1, if W(x, )  0W˜ y =     y >    
  (x, )  0, if W(x, )  0W˜ y =     y =    
.(x, ) K y =   W (x, y)˜  
 (x,y)∑
5000
y = 1
W˜
 
 
Population Design for mod.2 
Mod.2​ requires a knowing covariate  that is correlated with Infection function  , where (x) h (x)f x  
represent any individual in the population. In this paper, two subgroups are deliberately design with 
subgroup A having a distinguishably higher infection rate than subgroup B. In this context, ​mod.2 ​means 
that researchers will increase the likelihood of recruit someone from group A.  
A population size of 5000 was then created, with a portion of subgroup A and the rest being 
subgroup B. Every individual in the network is connected to each other with some probability and for 
simplicity the connection will be represented as 1 and no connection will be represented as 0.  
  (x, )  1, if x, y are connectedW y =        
  (x, )  0, if x, y are not connectedW y =        
It is important to realize that infected people are usually 4 ­ 5 times more than others to be 
connected , and people in the same subgroup are more likely to be connected as well. In order to reflect 
different connectivity among four types of members in population (Infected A, Non Infected A, Infected B, 
Non­Infected B), we need to control 10 parameter of the probability of connection between these four 
types.  
 (W(x, )  1)  , if x nfect A, y ealthy A or x ealthy A, y nfect A   p y =   = pAa   ⊆ I   ⊆ H ⊆ H   ⊆ I  
Same for the rest 9 cases.  
The 10 parameter should be tuned so that the heatmap of the network will have strongest heat in 5, 
10 and some heat in 1, 8, 4, and not so much heat in the rest map in the left graph below. The right graph is 
the actual results from the chosen parameter in this experiment. After having the proper chosen parameter, I 
only modify the population connectivity by multiplying all 10 parameters by a same quantity, which means 
relative ratio of each parameter stays the same.   
 
 
The graph below is the heatmap of 0.1 times of all previous parameter, resulting 0.1 times of the 
mean degree of the population than before. As we can see, as long as the relative ratio stays the same, the 
heatmap of the network will still have the similar configuration. 
 
 
Since ​Mod.2 ​will increase the likelihood to recruit someone in A, the new network matrix W  was ˜  
designed as follows:  
 (x, )  W(x, ) W˜ y =   y * infection rate of B
infection rate of A
if y ,  ⊆ A  
 
 
3. Result 
Both of the modification is compared to the normal RDS (​control​) in two aspects: comparison 
between mean­square­error of the estimate  and its sensitivity to seed. Mean­square­error is apˆ  
measurement to understand the fluctuation from  to the true ​p​, and thus the smaller the mean­square­errorpˆ  
is, the better  .Seed refers to the first participant in the RDS sample. In most practise, the seed is notpˆ  
chosen randomly, and therefore the less sensitive  is to the seed, the more stable the result will be.pˆ   
The results shows that both ​mod.1 ​and ​mod.2​ have smaller mean­square­error than ​control 
but neither have less sensitivity to seed.   
 
Results for modification 1 
● Mean­square­error  
Graph 1 and Graph 2 display that ​mod.1​ mean­square­error is smaller than that of the ​control​, throughout 
different population infection rate or different connectivity across group A and group B.  
 
 
Graph 1:  by applying​ mod.1​, the mean­square­error could be improved by roughly 16% to 28%.  
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Graph 2:  by applying​ mod.1​, the mean­square­error could be improved by roughly 19% to 35%.  
 
● Sensitivity to seed  
The sensitivity of   to seed is measured by the standard deviation of a massive quantity (1000) of  pˆ pˆ
generated from rather small sample size (200). It turns out that the standard deviation of ​mod.1​ is smaller 
than the ​control​, indicating less sensitivity.  
However, it turns out that the difference is not significant in practical senses. As mentioned by 
Heckathorn(1997), as the recruiting goes on, the demographic distribution of the sample will converge 
towards the distribution in the population and thus stabilize. Therefore, the practical benefit of less 
sensitivity to seed, meaning less mixing time of the Markov Chain process, is to reduce cost by having less 
sample size yet achieving the same estimation (see Graph 3). 
   
Therefore, we hold a threshold for fluctuation and find the time when the infection rate in sample 
first met a converge criteria, and compare the time to understand the speed of convergence. As shown in the 
table below, the convergence speed does not rely on the connectivity across subgroups. More importantly, 
as was shown more clearly in terms of the convergence speed, we do not benefit from using ​mod.1​, because 
the mixing time is reduced by 2 sample size or less. This means that in reality, less sensitivity of ​mod.1​ is 
so insignificant that we won’t feel it.  
 
Table 1. Comparison of the first time reaching convergence of the infection rate in the sample 
Estimate 
from 
mod.1 or 
control? 
Numbers 
of 
connection 
between 
Group A 
and B 
Minimum   1st 
Quantile 
Median  Mean  3rd 
Quantile 
Maximum  Standard 
deviation 
control  800  484  496  498  496.8  499  499  2.56 
mod.1  800  486  495  496.6  498  498  499  2.28 
control  100  480  496  497.5  496.6  498  499  2.64 
mod.1  100  486  496  497.5  496.8  499  499  2.05 
 
 
 
 
Results for modification 2 
● Mean­square­error of  pˆ  
Mod.2​’s better performance than ​control ​in terms of significant smaller mean­square­error. In addition, the 
mod.2 ​‘s performance is very stable throughout different mean degree (Graph 4). (The mean degree reflects 
the aggregated connectivity of the population.)  
 
 
 
Graph 5:  by applying​ mod.2​, the mean­square­error could be improved by roughly 24% to 32%.  
   
 
 
Graph 6: The correlation between degree of Network matrix and Infection function accords with the claim in the 
introduction that when  has high correlation with  , the estimate p̂ will have lower varianceπ (x)f   
 
 
● Sensitivity to seed 
 Using the same method shown in results for ​mod.1​, it shows that neither does ​mod.2​ has smaller variance 
of  than the ​control​, nor does it has significant faster convergence speed. Therefore, we conclude thatpˆ  
mod.2​ do not bring better performance in terms of the sensitivity to seed. 
 
 
   
4. Conclusion 
To summarize, ​mod1’s ​essential intuition​ ​is to encourage the participants to recruit someone they 
are less familiar with to speed up the sampling spread out, while ​mod.2​’s essential procedure is to guide the 
sampling towards the subgroups with higher values or more observations of the research question.  
The simulation above indicated that both ​mod.1​ and ​mod.2​ have potentiality in terms of reducing 
estimate’s variance.  However, it is crucial to distinguish the circumstance where either of the modification 
of RDS provides better edge than the normal RDS because the simulation is heavily rely on the design of 
the population network and the control of the parameters.   
First, ​mod.1 ​should be considered in case where the connectivity inside subgroups are apparently 
better than the connectivity across different subgroups. In other word, there are some isolated social groups. 
Also, as mentioned by Heckathorn, ​mod.1​ might not be applicable in case of the hidden population 
suffering from social judgement (sex workers, drug injectors), because participants will be threatened or 
unwilling to provide information about others.  
Second, ​mod.2 ​should be considered in case where the research question has remarkably diverse 
answers across each subgroups. It also required that the study has a clear research question and a 
beforehand knowledge of the diverse characteristics of the population. And last but not least, the 
connectivity is also assumed to be correlated with people share similar value in the research question. For 
example, in the above experiment, the research question is to find out the infection rate of HIV. We not 
only assumed that connectivity within subgroups are stronger, we also assumed that the an infected person 
is 4­5 times more likely to be connected with an infected person. This is a key assumption in order to come 
to the conclusion that mod.2 has less mean­square­error.  
 
   
5. Discussion 
This paper ask an interesting question about the effect of slight change of sampling protocol. 
Design new sampling method for a specific problem might be one solution. However, what if in the future 
researchers can not only find out a sampling method suitable for their research, but also tailor the sampling 
protocol to their own specific need and thus resulting better estimate? As one can see, the change in 
sampling protocol can be achieved by simply adding additional questions to the survey or provide intention 
to recruit a specific subgroups, while resulting a estimate 20% to 30% better than before. The impact of 
slight change of sampling protocol can be rewarding.  
It is also noteworthy that the first modification proposed in this paper was first mentioned by 
Klovdahl  in 1989 as “random walk sampling”. Therefore, in fact this paper implemented a comparison 
between Random Walk Sampling and Response Driven Sampling and also provides new perspective to 
understand Response Driven Sampling.  
The second modification can be applied to a more general scenario, where researchers in advance 
know a set of covariates that is high correlated with the research question. Then, instead of weight towards 
a specific subgroup, the researchers could guide the sampling according to the value of the covariates in the 
hidden population.  
The limitation of this study is the lack of application on real data sets and a theoretical proof of 
this paper's proposal. The difficulty of mathematical proof mainly lies on the how to abstract a recruiting 
transition matrix. The difficult of application on real data is due to both time and budget limitation. I 
sincerely hope that there will be follow up research. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Appendix 
1. R code for simulation, Modification 1:  
1.1 constructing Kernel Matrix 
Pop_size = 5000 
inf_pop = 0.5 
 
######## within group parameter ###### 
Scale = c(9,4,1,0) 
 
 
####### Infect Parameter ###### 
inf_a = 0.5 
P_a = 1/4 
 
##### Between group Parameter ######  
scale_connect = 1 
n_connect = 100 
 
###################### 
 
A_size = Pop_size * P_a 
B_size = Pop_size ­ A_size 
A_Infect = inf_a * A_size 
B_Infect = Pop_size*inf_pop ­ A_Infect  
 
A = Square_matirx(A_size,Scale) 
B = Square_matirx(B_size,Scale) 
M1 = Connect(A,B,n_connect,scale_connect) 
W1 = Weight_v(M1) 
 
 
A2 = Square_matirx(A_size,c(1,1,1,0)) 
B2 = Square_matirx(B_size,c(1,1,1,0)) 
M2 = Connect(A2,B2,n_connect,1) 
W2 = Weight_v(M2) 
 
 
############################################ 
#### Function  
############################################ 
 
### The Square Matrix ### 
# n: dimension;  
# Scale: vector of scale close to 0 
Square_matirx = function(n,Scale){ 
  k = length(Scale); v = Scale 
  M = matrix(NA,nrow = n, ncol = n) 
  M[1,] = c(0,v,numeric(n­k*2­1),rev(v)) 
  for ( i in 2:k){ 
    M[i,] = c(v[i­1],M[i­1,][­n]) 
  } 
  for (i in (k+1):(n­k)){ 
    M[i,] = c(0,M[i­1,][­n]) 
  } 
  for (i in (n­k+1):n){ 
    M[i,] = c(rev(v)[i­n+k],M[i­1,][­n]) 
  } 
  return (M) 
} 
 
### Combine two Matrix ###  
# A, B two matrix 
# n: the dimension of output matrix 
Combine_matrix = function(A,B){ 
  a = nrow(A); b = nrow(B) 
  A_0 = matrix(0,nrow=a,ncol=b) 
  A = cbind(A,A_0) 
  B_0 = matrix(0,nrow=b,ncol=a) 
  B = cbind(B_0,B) 
  return(rbind(A,B)) 
} 
 
### Connect between A, B ### 
# A,B two matrix 
# n: number of one to one connect between A,B 
# k: scale of connection between A,B  
Connect = function(A,B,n,k){ 
  M = Combine_matrix(A,B) 
  a = nrow(A); m = nrow(M) 
  candid = sample(x = 1:a,size = n,replace=F) 
  for ( i in candid){ 
    j = sample(x=(a+1):m,size = 1) 
    M[i,j] = k; M[j,i] = k 
  } 
  return(M) 
} 
 
### Weight Matrix ### 
Weight_v = function(Pop){ 
  W = rowSums(Pop) 
  return (W) 
} 
 
 
1.2 deciding infect population  
Infect = numeric(Pop_size) 
Infect[sample(x = 1:A_size,size = A_Infect,replace = F)] = 1 
Infect[sample(x = (A_size + 1) :Pop_size,size = B_Infect,replace = F)] = 1 
 
 
 
1.3 Test two Method  
MCMC_one = function(M,seed,N){ 
  n = nrow(M); Res = numeric(N) 
  Res[1] = seed 
  for ( i in 2:N){ 
    m = M[Res[i­1],] 
    k = m/sum(m) 
    p = k[which( m > 0)] 
    v = which( m > 0) 
    Res[i] = sample(v,1,F,p)} 
  return(Res) 
} 
 
Test_MCMC_one = function(M,seed,N,W){ 
  dt = MCMC_one(M,seed,N) 
  infect = Infect[dt] 
  Sum_Wxi = sum(infect*1/W[dt]) 
  Norm = sum(1/W[dt]) 
  return(1/Norm * Sum_Wxi) 
} 
 
################## 
################## 
N = 1000 
rep = 200 
pi_1 = W1/sum(W1) 
pi_2 = W2/sum(W2) 
seed1 = sample(1:Pop_size,rep,T,prob = pi_1) 
seed2 = sample(1:Pop_size,rep,T,prob = pi_2) 
 
p_hat1 = numeric(rep) 
p_hat2 = numeric(rep) 
 
for ( i in 1:rep){ 
  p_hat1[i] = Test_MCMC_one(M1,seed1[i],N,W1) 
  p_hat2[i] = Test_MCMC_one(M2,seed2[i],N,W2) 
} 
 
inf_pop 
mean(p_hat1) 
mean(p_hat2) 
sqrt(mean((p_hat1­inf_pop)^2)) #MSE for method 1 
sqrt(mean((p_hat2­inf_pop)^2)) #MSE for method 2 
 
 
# sensitivity 
n = 200; seed_n = 1000 
seed = sample(1:Pop_size,seed_n) 
A = c(); B =c() 
for ( i in 1:seed_n){ 
  A = c(A,Test_MCMC_one_mixingtime(K1,seed[i],n,W1)) 
  B = c(B,Test_MCMC_one_mixingtime(K2,seed[i],n,W2)) 
} 
sqrt(mean((A – Infect_size/Pop_size)^2)) #MSE for method 1 
sqrt(mean((B ­ Infect_size/Pop_size)^2)) #MSE for method 2 
 
## Compare the converge speed of the demographic distribution 
N = 500 
rep = 500 
 
seed = sample(1:Pop_size,rep) 
Sample1 = matrix(0,nrow = rep, ncol = N) 
Sample2 = matrix(0,nrow = rep, ncol = N) 
 
for ( i in 1:rep){ 
  Sample1[i,] = MCMC_one(M1,seed[i],N) 
  Sample2[i,] = MCMC_one(M2,seed[i],N) 
} 
 
inf_pro = function(vector,Infect){ 
  x = Infect[vector] 
  pro = as.numeric(length(x)) 
  for ( i in 1:length(x)){ 
    pro[i] = sum(x[1:i])/i 
  } 
  return(pro) 
} 
 
pro1 = matrix(0,nrow = rep, ncol = N) 
pro2 = matrix(0,nrow = rep, ncol = N) 
for ( i in 1:rep){ 
  pro1[i,] = inf_pro(Sample1[i,],Infect) 
  pro2[i,] = inf_pro(Sample2[i,],Infect) 
} 
plot(pro1[3,], xlab= "sample size", ylab = "infection rate", type = 'l',main = "Graph 3: converging speed of the sample ") 
lines(pro2[3,],col = "red") 
legend("topright",col=c("black","red"),legend = c("control","mod.1"), lty = c(1,1)) 
converg_time = function(vector,err){ 
  n = 1 
  dist = max(vector) ­ min(vector) 
  while(dist > err*2){ 
    vector = vector[­1] 
    dist = max(vector) ­ min(vector) 
    n = n + 1 
  } 
  return(n) 
} 
 
err = 0.001 
time1 = numeric(rep) 
time2 = numeric(rep) 
for ( i in 1:rep){ 
  time1[i] = converg_time(pro1[i,],err) 
  time2[i] = converg_time(pro2[i,],err) 
} 
 
sum(time1 == 500) 
sum(time2 == 500) 
mean(time1); mean(time2) 
sd(time1); sd(time2) 
 
 
2. R code for simulation in Modification 2 
2.1 Network Construction 
 
#### Population Parameter #### 
Total_pop = 500 
pro_a = 1/4 
 
#### Infection Parameter #### 
inf_a = 0.8 
inf_b = 0.4 
 
 
#### Network Parametr #### 
# Define p of a connection between four type: 
# A(non infect A), a(infect A), B(non infect B), b(infect B)  
# In total 10 type of connection 
P_AA = 0.01 #1 
P_Aa = 0.0001 #2 
P_AB = 0.0005 #3 
P_Ab = 0.00025 #4 
P_aa = 0.04 #5 
P_aB = 0.00025 #6 
P_ab = 0.02 #7 
P_BB = 0.01 #8 
P_Bb = 0.0025 #9 
P_bb = 0.04 #10 
 
### Generate Population ### 
n_AT = floor(Total_pop*pro_a) 
n_BT = Total_pop ­ n_AT 
n_A = floor(n_AT*(1­inf_a)) 
n_a = n_AT ­ n_A 
n_B = floor(n_BT*(1­inf_b)) 
n_b = n_BT ­ n_B 
 
Network = matrix(0,nrow=Total_pop,ncol = Total_pop) 
#1 
for (i in 1:n_A){ 
  for (j in 1:n_A){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_AA) 
  } 
} 
#2 
for (i in 1:n_A){ 
  for (j in n_A:(n_A + n_a)){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_Aa) 
  } 
} 
#3 
for (i in 1:n_A){ 
  for (j in (n_A + n_a):(n_A + n_a + n_B)){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_AB) 
  } 
} 
#4 
for (i in 1:n_A){ 
  for (j in (n_A + n_a + n_B):(n_A + n_a + n_B + n_b)){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_Ab) 
  } 
} 
#5 
for (i in n_A:(n_A + n_a)){ 
  for (j in n_A:(n_A + n_a)){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_aa) 
  } 
} 
#6 
for (i in n_A:(n_A + n_a)){ 
  for (j in (n_A + n_a):(n_A + n_a + n_B)){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_aB) 
  } 
} 
#7 
for (i in n_A:(n_A + n_a)){ 
  for (j in (n_A + n_a + n_B):(n_A + n_a + n_B + n_b)){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_ab) 
  } 
} 
#8 
for (i in (n_A + n_a):(n_A + n_a + n_B)){ 
  for (j in (n_A + n_a):(n_A + n_a + n_B)){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_BB) 
  } 
} 
#9 
for (i in (n_A + n_a):(n_A + n_a + n_B)){ 
  for (j in (n_A + n_a + n_B):(n_A + n_a + n_B + n_b)){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_Bb) 
  } 
} 
#10 
for (i in (n_A + n_a + n_B):(n_A + n_a + n_B + n_b)){ 
  for (j in (n_A + n_a + n_B):(n_A + n_a + n_B + n_b)){ 
    Network[i,j] = as.numeric(runif(1) < P_bb) 
  } 
} 
 
Network[lower.tri(Network,diag = T)] = 0 
Network = (Network + t(Network)) 
isSymmetric(Network) 
any(rowSums(Network) == 0) 
sum(rowSums(Network) == 0) 
which(rowSums(Network) == 0) 
Network[which(rowSums(Network) == 0),sample(1:Total_pop,sample(1:2,1))] = 1 
 
M1 = Network 
W1 = rowSums(M1) 
M2 = M1 
for ( i in 1:Total_pop){ 
  M2[i,] = c(M2[i,1:(n_A+n_a)] * (inf_a/inf_b),  
              M2[i, (n_A+n_a+1):Total_pop]) 
} 
W2 = rowSums(M2) 
Infect = c(numeric(n_A),rep(1,n_a),numeric(n_B),rep(1,n_b)) 
cor(W1,Infect) 
cor(W2,Infect) 
summary(rowSums(M1)) 
summary(rowSums(M2)) 
 
 
 
2.2 Heatmap  
### Heat map, testing for small population 
source("http://www.phaget4.org/R/myImagePlot.R") 
ID_names = c(rep("A",n_A),rep("a",n_a),rep("B",n_B),rep("b",n_b))  
colnames(Network) = ID_names 
rownames(Network) = ID_names 
myImagePlot(Network) 
 
 
2.3 Test  
inf = inf_a*pro_a + inf_b *(1­pro_a) 
#### Testing function 
Recru = function(M,seed,N){ 
  n = nrow(M); Res = numeric(N) 
  Res[1] = seed 
  for ( i in 2:N){ 
    m = M2[Res[i­1],] 
    p = m[which(m > 0)] 
    p = p/sum(p) 
    v = which(m > 0) 
    if (length(v) > 1){ 
      Res[i] = sample(v,1,T,p) 
    } 
    else{Res[i] = v} 
    } 
  return(Res) 
} 
 
Test = function(M,seed,N,W){ 
  dt = Recru(M,seed,N) 
  infect = Infect[dt] 
  Sum_Wxi = sum(infect*1/W[dt]) 
  Norm = sum(1/W[dt]) 
  return(1/Norm * Sum_Wxi) 
} 
 
 
#### Test 1 
# Recru a sample of 2500 people from M1, M2 with same seed 
N = 500 
 
seed = sample(1:Total_pop,1) 
Sample1 = Recru(M1,seed, N) 
Sample2 = Recru(M2, seed, N) 
 
mat_Sample1 = matrix(0, nrow = N, ncol = 4) 
colnames(mat_Sample1) = c("#A at t","#a at t","#B at t","#b at t") 
rownames(mat_Sample1) = 1:N 
mat_Sample2 = matrix(0, nrow = N, ncol = 4) 
colnames(mat_Sample2) = c("#A at t","#a at t","#B at t","#b at t") 
rownames(mat_Sample2) = 1:N 
 
for ( i in 1:N){ 
  mat_Sample1[i,2] = sum((Sample1[1:i] > n_A) & (Sample1[1:i] <= (n_A + n_a))) 
  mat_Sample1[i,4] = sum((Sample1[1:i] > (n_B + n_A + n_a)) & (Sample1[1:i] <= (n_B + n_A + n_a + n_b))) 
  mat_Sample1[i,1] = sum(Sample1[1:i] < (n_A) + (n_a)) ­ mat_Sample1[i,2] 
  mat_Sample1[i,3] = sum(Sample1[1:i] > (n_A) + (n_a)) ­ mat_Sample1[i,4] 
   
  mat_Sample2[i,2] = sum((Sample2[1:i] > n_A) & (Sample2[1:i] <= (n_A + n_a))) 
  mat_Sample2[i,4] = sum((Sample2[1:i] > (n_B + n_A + n_a)) & (Sample2[1:i] <= (n_B + n_A + n_a + n_b))) 
  mat_Sample2[i,1] = sum(Sample2[1:i] < (n_A) + (n_a)) ­ mat_Sample2[i,2] 
  mat_Sample2[i,3] = sum(Sample2[1:i] > (n_A) + (n_a)) ­ mat_Sample2[i,4] 
} 
 
for ( i in 1:N){ 
  mat_Sample1[i,] = mat_Sample1[i,]/i 
  mat_Sample2[i,] = mat_Sample2[i,]/i 
} 
par(mfrow = c(2,1)) 
plot(mat_Sample1[,1], col = "blue", type = "l",  
     ylim = c(0,max(max(mat_Sample2),max(mat_Sample1))), xlab = "n th sample wave",  
     ylab = "% type by nth wave", main = "M1, n= 500, seed is B") 
lines(mat_Sample1[,2], col = "red") 
lines(mat_Sample1[,3], col = "green") 
lines(mat_Sample1[,4], col = "pink") 
plot(mat_Sample2[,1], col = "blue", type = "l",  
     ylim = c(0,max(max(mat_Sample2),max(mat_Sample1))), xlab = "n th sample wave",  
     ylab = "% type by nth wave", main = "M2, n = 500, seed is B") 
lines(mat_Sample2[,2], col = "red") 
lines(mat_Sample2[,3], col = "green") 
lines(mat_Sample2[,4], col = "pink") 
 
#### Test 2 
## measure the theoretical varience of p_hat  
N = 1000 
rep = 100 
 
pi_1 = W1/sum(W1) 
pi_2 = W2/sum(W2) 
seed1 = sample(1:Total_pop,rep,T,prob = pi_1) 
seed2 = sample(1:Total_pop,rep,T,prob = pi_2) 
 
p_hat1 = numeric(rep) 
p_hat2 = numeric(rep) 
 
for ( i in 1:rep){ 
  p_hat1[i] = Test(M1,seed1[i],N,W1) 
  p_hat2[i] = Test(M2,seed2[i],N,W2) 
} 
 
inf 
mean(p_hat1) 
mean(p_hat2) 
sqrt(mean((p_hat1­inf)^2)) #MSE for method 1 
sqrt(mean((p_hat2­inf)^2)) #MSE for method 2 
sd(p_hat1) 
sd(p_hat2) 
 
par(mfrow = c(2,1)) 
plot(p_hat1,xlab = "n th p_hat", ylab = "p_hat value",  
     main = "M1,N = 1000,rep = 100", 
     type = "l",ylim = c(0.35,0.85)) 
abline(h = inf, col = "blue", lty = 2) 
abline(h = mean(p_hat1) + sd(p_hat1), col = "orange", lty = 6) 
abline(h = mean(p_hat1) ­ sd(p_hat1), col = "orange", lty = 6) 
plot(p_hat2,xlab = "n th p_hat", ylab = "p_hat value",  
     main = "M2,N = 1000,rep = 100", 
     type = "l", ylim = c(0.35,0.85)) 
abline(h = inf, col = "blue", lty = 2) 
abline(h = mean(p_hat2) + sd(p_hat2), col = "orange", lty = 6) 
abline(h = mean(p_hat2) ­ sd(p_hat2), col = "orange", lty = 6) 
 
### Test 3 
#### Sensitivity to the seed  
## compare sd(1), sd(2) 
N = 100 
rep = 300 
seed = sample(1:Total_pop, rep) 
p_hat1 = numeric(rep) 
p_hat2 = numeric(rep) 
 
for ( i in 1:rep){ 
  p_hat1[i] = Test(M1,seed[i],N,W1) 
  p_hat2[i] = Test(M2,seed[i],N,W2) 
} 
 
inf 
mean(p_hat1) 
mean(p_hat2) 
sqrt(mean((p_hat1­inf)^2)) #MSE for method 1 
sqrt(mean((p_hat2­inf)^2)) #MSE for method 2 
sd(p_hat1) 
sd(p_hat2) 
 
## Compare the converge speed of the demographic distribution 
N = 500 
rep = 500 
 
seed = sample(1:Total_pop,rep) 
Sample1 = matrix(0,nrow = rep, ncol = N) 
Sample2 = matrix(0,nrow = rep, ncol = N) 
 
for ( i in 1:rep){ 
  Sample1[i,] = Recru(M1,seed[i],N) 
  Sample2[i,] = Recru(M2,seed[i],N) 
} 
 
inf_pro = function(vector,Infect){ 
  x = Infect[vector] 
  pro = as.numeric(length(x)) 
  for ( i in 1:length(x)){ 
    pro[i] = sum(x[1:i])/i 
  } 
  return(pro) 
} 
 
pro1 = matrix(0,nrow = rep, ncol = N) 
pro2 = matrix(0,nrow = rep, ncol = N) 
for ( i in 1:rep){ 
  pro1[i,] = inf_pro(Sample1[i,],Infect) 
  pro2[i,] = inf_pro(Sample2[i,],Infect) 
} 
plot(pro1[1,]) 
 
converg_time = function(vector,err){ 
  n = 1 
  dist = max(vector) ­ min(vector) 
  while(dist > err*2){ 
    vector = vector[­1] 
    dist = max(vector) ­ min(vector) 
    n = n + 1 
  } 
  return(n) 
} 
 
err = 0.001 
time1 = numeric(rep) 
time2 = numeric(rep) 
for ( i in 1:rep){ 
  time1[i] = converg_time(pro1[i,],err) 
  time2[i] = converg_time(pro2[i,],err) 
} 
 
sum(time1 == 500) 
sum(time2 == 500) 
mean(time1); mean(time2) 
sd(time1); sd(time2) 
 
 
  
 
 
   
Reference 
Goel, S., & Salganik, M. J. (2009). Respondent­driven sampling as Markov chain Monte Carlo. 
Statist. Med. Statistics in Medicine,​ ​28​(17), 2202­2229. doi:10.1002/sim.3613  
 
 Heckathorn, D. D. (1997). Respondent­Driven Sampling: A New Approach to the Study of 
Hidden Populations. ​Social Problems,​ ​44​(2), 174­199. doi:10.1525/sp.1997.44.2.03x0221m  
 
Klovdahl, Alden. S. (1989). Urban social network: some methodological problems and 
possibilities. ​In the small world, ​M. Kochen(ed.), 176­210. Norwood, N.J.:Ablex. 
 

More Related Content

What's hot

Sample size for survival analysis - a guide to planning successful clinical t...
Sample size for survival analysis - a guide to planning successful clinical t...Sample size for survival analysis - a guide to planning successful clinical t...
Sample size for survival analysis - a guide to planning successful clinical t...nQuery
 
Sample and sample size
Sample and sample sizeSample and sample size
Sample and sample sizeManoj Xavier
 
determination of sample size
determination of sample sizedetermination of sample size
determination of sample sizeJijo Varghese
 
Minimizing Risk In Phase II and III Sample Size Calculation
Minimizing Risk In Phase II and III Sample Size CalculationMinimizing Risk In Phase II and III Sample Size Calculation
Minimizing Risk In Phase II and III Sample Size CalculationnQuery
 
Sample size for phase ii clinical trials-Simons design and mcp mod case studies
Sample size for phase ii clinical trials-Simons design and mcp mod case studies Sample size for phase ii clinical trials-Simons design and mcp mod case studies
Sample size for phase ii clinical trials-Simons design and mcp mod case studies nQuery
 
5 essential steps for sample size determination in clinical trials slideshare
5 essential steps for sample size determination in clinical trials   slideshare5 essential steps for sample size determination in clinical trials   slideshare
5 essential steps for sample size determination in clinical trials slidesharenQuery
 
Non-inferiority and Equivalence Study design considerations and sample size
Non-inferiority and Equivalence Study design considerations and sample sizeNon-inferiority and Equivalence Study design considerations and sample size
Non-inferiority and Equivalence Study design considerations and sample sizenQuery
 
Statistical considerations for confirmatory clinical trials for similar biothe...
Statistical considerations for confirmatory clinical trials for similar biothe...Statistical considerations for confirmatory clinical trials for similar biothe...
Statistical considerations for confirmatory clinical trials for similar biothe...National Institute of Biologics
 
Webinar slides- alternatives to the p-value and power
Webinar slides- alternatives to the p-value and power Webinar slides- alternatives to the p-value and power
Webinar slides- alternatives to the p-value and power nQuery
 
Extending A Trial’s Design Case Studies Of Dealing With Study Design Issues
Extending A Trial’s Design Case Studies Of Dealing With Study Design IssuesExtending A Trial’s Design Case Studies Of Dealing With Study Design Issues
Extending A Trial’s Design Case Studies Of Dealing With Study Design IssuesnQuery
 

What's hot (20)

Sample size for survival analysis - a guide to planning successful clinical t...
Sample size for survival analysis - a guide to planning successful clinical t...Sample size for survival analysis - a guide to planning successful clinical t...
Sample size for survival analysis - a guide to planning successful clinical t...
 
Sample size
Sample sizeSample size
Sample size
 
Sample and sample size
Sample and sample sizeSample and sample size
Sample and sample size
 
determination of sample size
determination of sample sizedetermination of sample size
determination of sample size
 
Minimizing Risk In Phase II and III Sample Size Calculation
Minimizing Risk In Phase II and III Sample Size CalculationMinimizing Risk In Phase II and III Sample Size Calculation
Minimizing Risk In Phase II and III Sample Size Calculation
 
Sample size calculation final
Sample size calculation finalSample size calculation final
Sample size calculation final
 
Sample size for phase ii clinical trials-Simons design and mcp mod case studies
Sample size for phase ii clinical trials-Simons design and mcp mod case studies Sample size for phase ii clinical trials-Simons design and mcp mod case studies
Sample size for phase ii clinical trials-Simons design and mcp mod case studies
 
5 essential steps for sample size determination in clinical trials slideshare
5 essential steps for sample size determination in clinical trials   slideshare5 essential steps for sample size determination in clinical trials   slideshare
5 essential steps for sample size determination in clinical trials slideshare
 
Non-inferiority and Equivalence Study design considerations and sample size
Non-inferiority and Equivalence Study design considerations and sample sizeNon-inferiority and Equivalence Study design considerations and sample size
Non-inferiority and Equivalence Study design considerations and sample size
 
Statistics
StatisticsStatistics
Statistics
 
Statistical considerations for confirmatory clinical trials for similar biothe...
Statistical considerations for confirmatory clinical trials for similar biothe...Statistical considerations for confirmatory clinical trials for similar biothe...
Statistical considerations for confirmatory clinical trials for similar biothe...
 
SAMPLE SIZE, CONSENT, STATISTICS
SAMPLE SIZE, CONSENT, STATISTICSSAMPLE SIZE, CONSENT, STATISTICS
SAMPLE SIZE, CONSENT, STATISTICS
 
Sample size determination
Sample size determinationSample size determination
Sample size determination
 
Sample size calculation
Sample size calculationSample size calculation
Sample size calculation
 
Webinar slides- alternatives to the p-value and power
Webinar slides- alternatives to the p-value and power Webinar slides- alternatives to the p-value and power
Webinar slides- alternatives to the p-value and power
 
Sample size calculations
Sample size calculationsSample size calculations
Sample size calculations
 
6. sample size v3
6. sample size   v36. sample size   v3
6. sample size v3
 
Sampling Size
Sampling SizeSampling Size
Sampling Size
 
Extending A Trial’s Design Case Studies Of Dealing With Study Design Issues
Extending A Trial’s Design Case Studies Of Dealing With Study Design IssuesExtending A Trial’s Design Case Studies Of Dealing With Study Design Issues
Extending A Trial’s Design Case Studies Of Dealing With Study Design Issues
 
Sample Size Determination
Sample Size Determination Sample Size Determination
Sample Size Determination
 

Similar to ResearchReportwithproYves.docx (2)

RESEARCH METHODOLOGY PPT............pptx
RESEARCH METHODOLOGY PPT............pptxRESEARCH METHODOLOGY PPT............pptx
RESEARCH METHODOLOGY PPT............pptxIshikaRoy32
 
Advanced Biostatistics and Data Analysis abdul ghafoor sajjad
Advanced Biostatistics and Data Analysis abdul ghafoor sajjadAdvanced Biostatistics and Data Analysis abdul ghafoor sajjad
Advanced Biostatistics and Data Analysis abdul ghafoor sajjadHeadDPT
 
Innovative Sample Size Methods For Clinical Trials
Innovative Sample Size Methods For Clinical Trials Innovative Sample Size Methods For Clinical Trials
Innovative Sample Size Methods For Clinical Trials nQuery
 
Biostatistics_Unit_II_ResearchMethodologyBiostatistics.pptx
Biostatistics_Unit_II_ResearchMethodologyBiostatistics.pptxBiostatistics_Unit_II_ResearchMethodologyBiostatistics.pptx
Biostatistics_Unit_II_ResearchMethodologyBiostatistics.pptxPrachi Pandey
 
Biostatistics_Unit_II_Research Methodology & Biostatistics_M. Pharm (Pharmace...
Biostatistics_Unit_II_Research Methodology & Biostatistics_M. Pharm (Pharmace...Biostatistics_Unit_II_Research Methodology & Biostatistics_M. Pharm (Pharmace...
Biostatistics_Unit_II_Research Methodology & Biostatistics_M. Pharm (Pharmace...RAHUL PAL
 
Methods of randomization final
Methods of randomization finalMethods of randomization final
Methods of randomization finaldollie22
 
Mb0050 “research methodology answer
Mb0050 “research methodology  answerMb0050 “research methodology  answer
Mb0050 “research methodology answerRohit Mishra
 
Mb0050 “research methodology answer
Mb0050 “research methodology  answerMb0050 “research methodology  answer
Mb0050 “research methodology answerRohit Mishra
 
How Randomized Controlled Trials are Used in Meta-Analysis
How Randomized Controlled Trials are Used in Meta-Analysis How Randomized Controlled Trials are Used in Meta-Analysis
How Randomized Controlled Trials are Used in Meta-Analysis Pubrica
 
Sample size estimation
Sample size estimationSample size estimation
Sample size estimationHanaaBayomy
 
scope and need of biostatics
scope and need of  biostaticsscope and need of  biostatics
scope and need of biostaticsdr_sharmajyoti01
 
Randomised controlled trials : the basics
Randomised controlled trials : the basicsRandomised controlled trials : the basics
Randomised controlled trials : the basicsHesham Al-Inany
 
Antonio Gasparrini: Open access: a researcher's perspective
Antonio Gasparrini: Open access: a researcher's perspectiveAntonio Gasparrini: Open access: a researcher's perspective
Antonio Gasparrini: Open access: a researcher's perspectiveNeilStewartCity
 
Response of Watermelon to Five Different Rates of Poultry Manure in Asaba Are...
Response of Watermelon to Five Different Rates of Poultry Manure in Asaba Are...Response of Watermelon to Five Different Rates of Poultry Manure in Asaba Are...
Response of Watermelon to Five Different Rates of Poultry Manure in Asaba Are...IOSR Journals
 
Application Of Single Subject Randomization Designs To Communicative Disorder...
Application Of Single Subject Randomization Designs To Communicative Disorder...Application Of Single Subject Randomization Designs To Communicative Disorder...
Application Of Single Subject Randomization Designs To Communicative Disorder...Courtney Esco
 
A Bayesian Industry Approach to Phase 1 Combination Trials in Oncology
A Bayesian Industry Approach to Phase 1 Combination Trials in OncologyA Bayesian Industry Approach to Phase 1 Combination Trials in Oncology
A Bayesian Industry Approach to Phase 1 Combination Trials in OncologyCytel USA
 
2014-10-22 EUGM | ROYCHAUDHURI | Phase I Combination Trials
2014-10-22 EUGM | ROYCHAUDHURI | Phase I Combination Trials2014-10-22 EUGM | ROYCHAUDHURI | Phase I Combination Trials
2014-10-22 EUGM | ROYCHAUDHURI | Phase I Combination TrialsCytel USA
 
Using Value-of-Information methodology to inform the design of clinical trial...
Using Value-of-Information methodology to inform the design of clinical trial...Using Value-of-Information methodology to inform the design of clinical trial...
Using Value-of-Information methodology to inform the design of clinical trial...cheweb1
 

Similar to ResearchReportwithproYves.docx (2) (20)

RESEARCH METHODOLOGY PPT............pptx
RESEARCH METHODOLOGY PPT............pptxRESEARCH METHODOLOGY PPT............pptx
RESEARCH METHODOLOGY PPT............pptx
 
Advanced Biostatistics and Data Analysis abdul ghafoor sajjad
Advanced Biostatistics and Data Analysis abdul ghafoor sajjadAdvanced Biostatistics and Data Analysis abdul ghafoor sajjad
Advanced Biostatistics and Data Analysis abdul ghafoor sajjad
 
Innovative Sample Size Methods For Clinical Trials
Innovative Sample Size Methods For Clinical Trials Innovative Sample Size Methods For Clinical Trials
Innovative Sample Size Methods For Clinical Trials
 
Biostatistics_Unit_II_ResearchMethodologyBiostatistics.pptx
Biostatistics_Unit_II_ResearchMethodologyBiostatistics.pptxBiostatistics_Unit_II_ResearchMethodologyBiostatistics.pptx
Biostatistics_Unit_II_ResearchMethodologyBiostatistics.pptx
 
Biostatistics_Unit_II_Research Methodology & Biostatistics_M. Pharm (Pharmace...
Biostatistics_Unit_II_Research Methodology & Biostatistics_M. Pharm (Pharmace...Biostatistics_Unit_II_Research Methodology & Biostatistics_M. Pharm (Pharmace...
Biostatistics_Unit_II_Research Methodology & Biostatistics_M. Pharm (Pharmace...
 
Methods of randomization final
Methods of randomization finalMethods of randomization final
Methods of randomization final
 
Mb0050 “research methodology answer
Mb0050 “research methodology  answerMb0050 “research methodology  answer
Mb0050 “research methodology answer
 
Mb0050 “research methodology answer
Mb0050 “research methodology  answerMb0050 “research methodology  answer
Mb0050 “research methodology answer
 
Research methodology
Research methodologyResearch methodology
Research methodology
 
How Randomized Controlled Trials are Used in Meta-Analysis
How Randomized Controlled Trials are Used in Meta-Analysis How Randomized Controlled Trials are Used in Meta-Analysis
How Randomized Controlled Trials are Used in Meta-Analysis
 
Sample size estimation
Sample size estimationSample size estimation
Sample size estimation
 
DSRG report 2001
DSRG report 2001DSRG report 2001
DSRG report 2001
 
scope and need of biostatics
scope and need of  biostaticsscope and need of  biostatics
scope and need of biostatics
 
Randomised controlled trials : the basics
Randomised controlled trials : the basicsRandomised controlled trials : the basics
Randomised controlled trials : the basics
 
Antonio Gasparrini: Open access: a researcher's perspective
Antonio Gasparrini: Open access: a researcher's perspectiveAntonio Gasparrini: Open access: a researcher's perspective
Antonio Gasparrini: Open access: a researcher's perspective
 
Response of Watermelon to Five Different Rates of Poultry Manure in Asaba Are...
Response of Watermelon to Five Different Rates of Poultry Manure in Asaba Are...Response of Watermelon to Five Different Rates of Poultry Manure in Asaba Are...
Response of Watermelon to Five Different Rates of Poultry Manure in Asaba Are...
 
Application Of Single Subject Randomization Designs To Communicative Disorder...
Application Of Single Subject Randomization Designs To Communicative Disorder...Application Of Single Subject Randomization Designs To Communicative Disorder...
Application Of Single Subject Randomization Designs To Communicative Disorder...
 
A Bayesian Industry Approach to Phase 1 Combination Trials in Oncology
A Bayesian Industry Approach to Phase 1 Combination Trials in OncologyA Bayesian Industry Approach to Phase 1 Combination Trials in Oncology
A Bayesian Industry Approach to Phase 1 Combination Trials in Oncology
 
2014-10-22 EUGM | ROYCHAUDHURI | Phase I Combination Trials
2014-10-22 EUGM | ROYCHAUDHURI | Phase I Combination Trials2014-10-22 EUGM | ROYCHAUDHURI | Phase I Combination Trials
2014-10-22 EUGM | ROYCHAUDHURI | Phase I Combination Trials
 
Using Value-of-Information methodology to inform the design of clinical trial...
Using Value-of-Information methodology to inform the design of clinical trial...Using Value-of-Information methodology to inform the design of clinical trial...
Using Value-of-Information methodology to inform the design of clinical trial...
 

ResearchReportwithproYves.docx (2)