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生命機能設計学 レポート⑤
(2017/11/02 の講義分)
2017/11/09
ゆきひろ
【吸光度による核酸の検出】
サンプルに一定の波長の光を当て、抜けた光との光
量の減衰具合(程度)を吸光度(Optical Density=
OD(Absorbance=A))と定義され、以下のように求め
られる。
A = − log10 (
𝐼
𝐼₀
)
(A:吸光度, I(λ):透過光量, I₀(λ):入射光量)
水は波長約 240nm を境に吸光度が大きく下がり、そ
こに DNA を溶かして水溶液とした場合、DNA を構成す
る 4 種の塩基の吸収ピーク波長は A:259nm T:267nm G:
253nm C:267nm であり、これらが混ざった吸収を示す。
溶液中に別の物質が存在した場合、A260 の測定では
正確な核酸濃度は測定できない。
不純物のない状態での波長スキャンデータ(図 1)
図 1
と照らし合わせることでより正確な値を推定する。
タンパク質の混入の有無を判断するには、A260/A280
の値が有用であることが経験からわかっている。
核酸は A260 で吸光度がピークになるのに対してタン
パク質は A280 にピークを持つことから、A260/A280 比を求
めることで DNA の純度の指標とすることがでるといえ
る。
A280 に高い吸収がある場合、タンパク質が混入して
いることになる。DNA の場合は A260/A280≧1.8、RNA の場
合は A260/A280≧2.0 であれば純度が高いと判断できる
(図 2)。
図 2
【DNA の検出】
分光光度計で吸光度を測定すれば、溶液中の DNA の
純度と量を求めることができる。しかし、サンプル内
の溶質がプラスミドとゲノムの混合物だった場合、前
項で示したような原理上、正確な(プラスミドだけの)
吸光度を求めることができない。外来 DNA のみを識
別・検出したい。
【ハイブリダイゼーションとプローブ】
前項での問題の解決策として、ハイブリダイゼーシ
ョンという方法がある。
一本鎖にした DNA もしくは RNA に、相補的な一本鎖
DNA や RNA を混ぜ、2本鎖の雑種核酸を作ることを指
す。相補的な断片は蛍光物質、ラジオアイソトープ等
何らかの標識をつけたもの(プローブ)が用いられる。
この方法により、RNA-RNA、DNA-RNA、DNA-DNA の雑
種形成が可能である。
メンブレンにくっつけた RNA もしくは一本鎖 DNA
に、雑種形成を行わせるものを特にドットブロットハ
イブリダイゼーションという。
【プローブの検出】
ハイブリダイズするプローブを検出する方法は講
義では 3 つ紹介された。以下に示す。
1. 放射性同位元素(32P)を使う方法(DNA のリン酸
結合部に 32P を取りこませたプローブを作る)
2. Biotin-Avidin 系を使う方法
3. DIG 系を使う方法
【Dot blot 法によるターゲット DNA の検出】
以下に DIG 系を用いた Dot blot 法の具体例(結果のみ)
を示す(図 3)。
図 3
この実験系では、発色基質として
5-bromo-2-deoxyuridine(BrdU)が用いられており、図
3 からわかるとおり DNA スケールが(ng/dot)と非常
に高感度で精度が高いことがわかる。
しかし、Dot blot 法では規模に限界があるため電
気泳動による分離と検出が行われることも多い。
【アガロースゲル電気泳動】
数ある電気泳動の中でも、オーソドックスなものと
して、アガロースゲル電気泳動法が挙げられる。
この手法はその名のとおりアガロースゲルを使用
して泳動する方法であり、核酸をその大きさに応じて
分離する。
【DNA の可視化】
DNA は 2 本鎖の内部にインターカレートしたエチジ
ウムブロマイド分子(以下 EtBr)を持つと、核酸が吸
収した UV 光のエネルギーを EtBr に転移させる(図 4)。
エネルギーを受け取った EtBr は、励起されて蛍光を
放射する。
図 4
【サザンブロット解析法】
サザンブロッティング法とは、プローブと相補的な
塩基配列を持つ DNA 断片を特異的に検出する手法であ
る。
DNA を扱う際、サザンブロッティングを行い、特定
の DNA 配列に関しその場所、配列などを把握する。
方法は、制限酵素で処理した DNA 断片をアガロース
ゲルで電気泳動後、メンブレンへ拡散もしくは吸引す
ることによって転写する(図 5)。
転写後の膜に検出したい DNA 配列と相補的な塩基配
列をもつプローブ配列をハイブリダイズさせ、目的の
DNA 配列のみを検出する。
図 5
【参考文献・画像元 URL】
 Laser Create Coop:
http://www.lasercreate.com/useful/lineup/op
tical_density.html
 分光倶楽部 基礎講座 第 5 回:核酸の濃度測定:
https://www.gelifesciences.co.jp/technologi
es/spectro/spectclub/theo_05.html
 APS Journal:
http://ajpgi.physiology.org/content/288/4/G
842
 Chem-Station:
https://www.chem-station.com/blog/2017/09/t
cne.html
 Analysis of DNA by the Southern Blot
technique:
https://www.mun.ca/biology/scarr/Gr12-18.ht
ml

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生命機能設計学 レポート5

  • 1. 生命機能設計学 レポート⑤ (2017/11/02 の講義分) 2017/11/09 ゆきひろ 【吸光度による核酸の検出】 サンプルに一定の波長の光を当て、抜けた光との光 量の減衰具合(程度)を吸光度(Optical Density= OD(Absorbance=A))と定義され、以下のように求め られる。 A = − log10 ( 𝐼 𝐼₀ ) (A:吸光度, I(λ):透過光量, I₀(λ):入射光量) 水は波長約 240nm を境に吸光度が大きく下がり、そ こに DNA を溶かして水溶液とした場合、DNA を構成す る 4 種の塩基の吸収ピーク波長は A:259nm T:267nm G: 253nm C:267nm であり、これらが混ざった吸収を示す。 溶液中に別の物質が存在した場合、A260 の測定では 正確な核酸濃度は測定できない。 不純物のない状態での波長スキャンデータ(図 1) 図 1 と照らし合わせることでより正確な値を推定する。 タンパク質の混入の有無を判断するには、A260/A280 の値が有用であることが経験からわかっている。 核酸は A260 で吸光度がピークになるのに対してタン パク質は A280 にピークを持つことから、A260/A280 比を求 めることで DNA の純度の指標とすることがでるといえ る。 A280 に高い吸収がある場合、タンパク質が混入して いることになる。DNA の場合は A260/A280≧1.8、RNA の場 合は A260/A280≧2.0 であれば純度が高いと判断できる (図 2)。 図 2 【DNA の検出】 分光光度計で吸光度を測定すれば、溶液中の DNA の 純度と量を求めることができる。しかし、サンプル内 の溶質がプラスミドとゲノムの混合物だった場合、前 項で示したような原理上、正確な(プラスミドだけの) 吸光度を求めることができない。外来 DNA のみを識 別・検出したい。 【ハイブリダイゼーションとプローブ】 前項での問題の解決策として、ハイブリダイゼーシ ョンという方法がある。 一本鎖にした DNA もしくは RNA に、相補的な一本鎖 DNA や RNA を混ぜ、2本鎖の雑種核酸を作ることを指 す。相補的な断片は蛍光物質、ラジオアイソトープ等 何らかの標識をつけたもの(プローブ)が用いられる。 この方法により、RNA-RNA、DNA-RNA、DNA-DNA の雑 種形成が可能である。 メンブレンにくっつけた RNA もしくは一本鎖 DNA に、雑種形成を行わせるものを特にドットブロットハ イブリダイゼーションという。 【プローブの検出】 ハイブリダイズするプローブを検出する方法は講 義では 3 つ紹介された。以下に示す。 1. 放射性同位元素(32P)を使う方法(DNA のリン酸 結合部に 32P を取りこませたプローブを作る) 2. Biotin-Avidin 系を使う方法 3. DIG 系を使う方法 【Dot blot 法によるターゲット DNA の検出】 以下に DIG 系を用いた Dot blot 法の具体例(結果のみ) を示す(図 3)。
  • 2. 図 3 この実験系では、発色基質として 5-bromo-2-deoxyuridine(BrdU)が用いられており、図 3 からわかるとおり DNA スケールが(ng/dot)と非常 に高感度で精度が高いことがわかる。 しかし、Dot blot 法では規模に限界があるため電 気泳動による分離と検出が行われることも多い。 【アガロースゲル電気泳動】 数ある電気泳動の中でも、オーソドックスなものと して、アガロースゲル電気泳動法が挙げられる。 この手法はその名のとおりアガロースゲルを使用 して泳動する方法であり、核酸をその大きさに応じて 分離する。 【DNA の可視化】 DNA は 2 本鎖の内部にインターカレートしたエチジ ウムブロマイド分子(以下 EtBr)を持つと、核酸が吸 収した UV 光のエネルギーを EtBr に転移させる(図 4)。 エネルギーを受け取った EtBr は、励起されて蛍光を 放射する。 図 4 【サザンブロット解析法】 サザンブロッティング法とは、プローブと相補的な 塩基配列を持つ DNA 断片を特異的に検出する手法であ る。 DNA を扱う際、サザンブロッティングを行い、特定 の DNA 配列に関しその場所、配列などを把握する。 方法は、制限酵素で処理した DNA 断片をアガロース ゲルで電気泳動後、メンブレンへ拡散もしくは吸引す ることによって転写する(図 5)。 転写後の膜に検出したい DNA 配列と相補的な塩基配 列をもつプローブ配列をハイブリダイズさせ、目的の DNA 配列のみを検出する。 図 5 【参考文献・画像元 URL】  Laser Create Coop: http://www.lasercreate.com/useful/lineup/op tical_density.html  分光倶楽部 基礎講座 第 5 回:核酸の濃度測定: https://www.gelifesciences.co.jp/technologi es/spectro/spectclub/theo_05.html  APS Journal: http://ajpgi.physiology.org/content/288/4/G 842  Chem-Station: https://www.chem-station.com/blog/2017/09/t cne.html  Analysis of DNA by the Southern Blot technique: https://www.mun.ca/biology/scarr/Gr12-18.ht ml