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Inseminacion artificial en ovinos y caprinos
1. 1
2 Ventajas, desventajas y limitantes de la inseminación artificial en
3 pequeños rumiantes.
4
5 Ariza Palacios Ana Maria1 Ramos Riquett Amanda2
7
8Fundación Universitaria San Martín Sede Caribe1 anna-ariza@hotmail.com
9Fundación Universitaria San Martín Sede Caribe2 amandaka-mvz@hotmail.com
10
11
12
13 Resumen
14Palabras Claves
15 Abstract
16Key Words
17 Introducción
18
19 Antecedentes de la Inseminación Artificial en Ovinos y Caprinos
20 La inseminación artificial (IA) como método reproductivo da espacio
21a sus primeras investigaciones en animales domésticos gracias al monje
22italiano Lázaro Spallanzani en 1 780, quien preña a una perra con semen
23obtenido por emisión espontanea de un perro. Luego de varios estudios en
24perras y yeguas se reconoce el método de IA como sistema zootécnico en la
25mejora de las crías, gracias al veterinario danés Sand en 1 902 cuyo
26alegato dice que la IA es el uso económico y eficiente de reproductores
27valiosos.
28 Hasta 1 900 se logra inseminar con éxito a los primeros bovinos y
29ovinos, cuando en Rusia se inicia el estudio con animales de granja. Es
2. 1el científico Ivanoff quien logra la primera fecundación exitosa. Este
2logro impulsa la formación de la primera asociación cooperativa de IA en
3Dinamarca en 1936, seguida por la creación de la primera cooperativa de
4IA en Estados Unidos en 1938 donde se cargan 1 050 vacas en el primer
5año.
6 Algunas invenciones elevan la IA a una nueva plataforma, como son la
7vagina artificial en 1914 diseñada por Amantea de la Universidad de Roma
8Amantea, el uso de pipetas de plástico para almacenamiento por Sorensen y
9el electroeyaculador a finales de 1 940 y los diluyentes fosfatados y de
10citrato de sodio. Estos últimos aumentan la vida de los espermatozoides a
11tres o cuatro días. A finales de 1 940 se inicia el uso del glicerol para
12evitar los cristales de agua durante la congelación y almacenaje de
13espermatozoides a temperaturas bajas. Unos años más tarde en 1 953, Pares
14publica informes sobre semen congelado en pajillas y en 1 957 se inicia
15el uso de nitrógeno liquido como refrigerante para la congelación y
16almacenamiento de semen (Bearden y Fuquay, 1 982; Foote, 2 002).
17 Junto con los materiales también se crearon nuevos métodos como el
18uso de espéculo y tubo de vidrio para la inseminación durante este
19periodo.
20 La pipeta ha sido modificada desde 1 940 y continua en el proceso,
21al igual que otros materiales utilizados en la IA como los tanques de
22almacenamiento de nitrógeno líquido, los cuales han sido rediseñados.
23
24Anatomía y fisiología del aparato reproductor de los caprinos
25Fisioanatomia de la hembra. El periodo de reproducción de estos animales
26depende de los fotoperiodos, en el trópico donde los cambios fototropicos
27son menores, el periodo de reproducción es más corto, por lo que depende
28más de las variaciones en la alimentación y de los cambios de temperatura
29(Baril, 1995). Durante el periodo de reproducción, cada hembra puede
3. 1presentar varios ciclos sexuales sucesivos siempre que no haya
2fecundación. La duración del ciclo depende del intervalo entre dos
3estros, por lo general, de veinte a veintiún días en la cabra.
4 La fase luteal en estos animales dura entre 13 y 15 días, periodo
5durante el cual se da la luteolísis y varios folículos cuyo diámetro es
6de 2 a 3 mm entran en fase de crecimiento final, estimulado por la FSH,
7pero solo 2 o 3 llegan al estadio preovulatorio, los demás se atresian.
8Estos folículos secretan estradiol-17β induciendo el desarrollo del celo
9y estimulando el eje Hipotálamo-hipofisario, lo que hace que se secrete
10GnRH y esta hace que se libere FSH y LH.
11 El intervalo entre el inicio del estro y el pico de LH varía según
12la especie y raza. Por ejemplo, en las ovejas razas Romanov es de 18.4 ±
132.4h, mientras que en las ovejas Ile-de-France es de 7.6 ± 1.1. El pico
14de la LH va seguido de ovulación 20 a 26 horas más tarde (Baril y
15Brebion, 1 995).
16 Una vez liberado el ovocito, las células del folículo pasan a ser
17células luteales y segregan progesterona, la cual mantiene un nivel
18elevado durante la fase luteal y frena la actividad de descarga de GnRH
19por el hipotálamo bloqueando así la ovulación hasta la luteolísis
20siguiente.
21Fisioanatomia del macho. Las gónadas masculinas se encuentran en el
22escroto, que es la primera estructura visible de sus genitales. Ademas de
23producir los gametos masculinos o espermatozoides los testículos producen
24hormonas sexuales, las cuales producen una serie de efectos y conductas
25en el carnero como la presencia de libido o deseo sexual. Para realizar
26IA en un hato se debe tener muy en cuenta el manejo de los machos ya que
27esta se basa en la seguridad de que las hembras sean preñadas por el
28semen del macho utilizado, por lo que es vital realizar, en los machos
29que no son seleccionados para el procedimiento, la deferectomía.
4. 1 Además de los criterios genéticos existen otros factores que se
2deben considerar al seleccionar a los machos para dichos programas. Entre
3estos encontramos el estado de salud y el buen estado de carnes. El macho
4seleccionado debe de carecer de cualquier enfermedad y por lo tanto los
5animales recién comprados, así como los ya presentes, deben ser sometidos
6a un completo examen físico, en el que se debe incluir la toma de las
7constantes fisiológicas y la evaluación de los diferentes aparatos, como
8son el respiratorio, digestivo, locomotor, así como los diferentes
9sentidos, de la vista, del oído, olfato y la piel.
10 La evaluación reproductiva del semental es útil en el diagnóstico de
11problemas de infertilidad en el rebaño. Al encontrar a los sementales
12como reproductores satisfactorios, pueden considerarse otros factores
13que influyen sobre la fertilidad.
14 Entre las características del semen encontramos el color que debe
15tener un tono blanco cremoso nacarado, el volumen cuyo valor puede variar
16entre 0.8 y 1.5 ml, la motilidad en la cual se valora la masa que oscila
17entre 0 y 4 y progresivo que varía entre 60 y 80%; también se analiza la
18concentración que tiene un promedio de 4 x 109 y por último la morfología
19en la cual se observan las anormalidades de los espermios y no debe tener
20un valor mayor al 20% (Angulo, 2003).
21
22Preparación de las hembras para la inseminación artificial
23 El éxito del programa de IA depende de la fertilidad de las hembras
24y de la calidad del semen utilizado en la inseminación, por lo que es
25importante que el procedimiento se realice a tiempo, con relación a la
26ovulación o la aparición del estro. Por eso es necesario detectar el
27estro en las hembras que naturalmente sean cíclicas o inducirlo a través
28del llamado “efecto macho” que incrementa la producción de LH en ovejas
5. 1sensibles e inicia la ovulación sin estro (estro silencioso) en pocos
2días o por sincronización.
3Detección del estro. Puede realizarse a corral o campo. La proporción de
4retajos o machos con deferectomía respecto a las hembras debe ser de 1 a
520. (Gibbons, Cueto y Wolff, s.f)
6Sincronización. Este método tiene la ventaja de acortar el tiempo
7necesario para inseminar a rebaños enteros y facilitar el manejo durante
8la gestación y el parto. Existen dos métodos de sincronización basados en
9diferentes principios fisiológicos.
10- Aplicar progestágenos sintéticos, para estimular la acción del cuerpo
11 lúteo natural suprimiendo la liberación de las gonadotropinas
12 hipofisarias. Cuando se suprime el tratamiento el estro aparece a los
13 2 o 3 días ya que se incrementa la liberación de gonadotropinas. La
14 administración de los progestágenos se realiza insertando un aparato
15 liberador de progesterona o se pueden aplicar por vía subcutánea pero
16 esta última es más dispendiosa ya que se colocan debajo de la piel y
17 el retiro se realiza con un escalpelo y pinzas estériles, causando
18 estrés al animal por la incisión.
19Los progestágenos aplicados en esponjas por vía vaginal son depresivos de
20la progresión espermática según Hawk, 1982. La causa no es conocida pero
21se supone que existe algún factor espermicida o ausencia de elementos que
22protegen al espermatozoide.
23- En caso de que las hembras se encuentren en la fase lútea del ciclo
24 estral, siempre que este ciclando normalmente, el cuerpo lúteo se
25 puede destruir administrando prostaglandina-F2α, así se inhibe el
26 efecto de la progesterona liberada por este y se aumenta la liberación
27 de gonadotropinas. Las prostaglandinas se administran por vía
28 intramuscular. Se debe tener en cuenta que el cuerpo lúteo solo
29 responde a la prostaglandina entre los días 5 y 14 del ciclo estral de
6. 1 la oveja y los días 6 y 17 en la cabra. Para sincronizar es necesario
2 aplicar dos inyecciones con un intervalo de 10-14 días en ovejas y
3 cabras. El estro aparece en la mayoría de hembras a los 2 o 3 días
4 después de la segunda inyección (Córdova y col., 2 008).
5 Dado que el tamaño promedio de una camada es menos de dos crías, se
6estimula el índice de ovulación de las hembras en estro. Para que el
7promedio de nacidos sea de dos se debe estimular el índice de ovulación a
8unos tres óvulos, ya que posteriormente nos encontraremos con
9subsiguientes perdidas de fertilización y mortalidad embrionaria. Se debe
10cuidar de no estimular mas alla de un grado medio para evitar
11superovulaciones excesivas.
12 Entre los métodos farmacológicos se encuentra la suplementación de
13gonadotropinas y las técnicas de inmunización que aun no han sido
14experimentados en cabras. La suplementación de gonadotropinas se trata de
15el uso de extractos hipofisarios de corta duración requiere inyecciones
16frecuentes para mantener el estímulo. La gonadotropina sérica de la yegua
17preñada (PMSG) es más utilizada porque es de larga duración y sólo se
18requiere una inyección y sincronizar el estro. Se debe inyectar dos días
19antes de retirar el tratamiento de prostágenos o la inyección de
20prostaglandina. La PMSG liofilizada puede administrarse por vía
21subcutánea o intramuscular en 1 o 2 ml de solución salina o agua estéril
22en una dosis de 400 a 500 UI en estación reproductiva y 600 a 750 UI
23fuera de estación.
24 Las tasas de inmunización aumentan el ritmo de ovulación de la oveja
25al suprimir la inhibición que ejercen los esteroides ováricos y la
26inhibina, sobre el hipotálamo e hipófisis, lo que aumenta la secreción de
27gonadotropinas, principalmente FSH que estimula el desarrollo folicular.
28Se aplica 2 ml por vía subcutánea de Fecundin® cinco semanas antes de la
29inseminación y se repite 3 semanas después.
7. 1 Entre los métodos naturales están el efecto macho y el efecto
2hembra. El efecto macho se trata de a introducción de machos celadores en
3grupos de hembras, en el momento de administrar prostaglandina, para
4inducir el estro y la ovulación; las feromonas sexuales actúan
5directamente coordinando la oleada de gonadotropinas, sincronizando la
6interacción macho-hembra y la ovulación.
7 El efecto hembra, por su parte, se trata de introducir un porcentaje
8significativo de hembras anovulatorias ante la presencia de cabras en
9estro son inducidas a ovular.
10
11 Inseminación Artificial
12 Los programas de IA están normalmente destinados a las hembras de
13alto valor genético del establecimiento. Antes de incorporar los animales
14a un programa de inseminación, es necesario tener en cuenta los
15siguientes aspectos de nutrición, sanidad y reproductivos.
16- Las hembras deben tener al menos dos puntos de condición corporal a la
17 inseminación.
18- Deben estar libres de enfermedades y parasitos.
19- El destete de las crías debe realizarse de 6 a 8 semanas antes de la
20 inseminación.
21- Se apartan las hembras viejas, con problemas de ubre y las que no han
22 retenido servicio por dos años consecutivos.
23-
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26 Conclusiones
27 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
8. 1Angulo R. Mejía O. 2 003. Memorias del curso teórico-práctico
2“Inseminación artificial en ovinos”. Asociación mexicana de médicos
3veterinarios especialistas en bovinos, A.C.
4Baril G. Brebion P. Chesné P. 1 995. Manual de formación práctica para el
5trasplante de embriones en ovejas y cabras. Estudio FAO producción y
6sanidad animal 115.
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