Evolution de la résistance de Plasmodium falciparum aux médicaments antipaludiques. Conférence de la 8ème édition du Cours international « Atelier Paludisme » - CLAIN Jérôme
cardiac manifestations in auto-immune diseases by Dr Silini.pptx
Evolution de la résistance de Plasmodium falciparum aux médicaments antipaludiques
1. évolution de la résistance de Plasmodium falciparum
aux médicaments antipaludiques
jerome.clain@parisdescartes.fr
UMR216 ‘Santé de la mère et de l’enfant face aux infections tropicales’
Institut Pasteur de Madagascar, 29 mars 2011
2. histoire de la résistance aux antipaludiques
ART-T
SE Asia
Ato/Pg-R
travellers
adapted from Ekland & Fidock, 2008
4. • comment évoluent les allèles (gènes) de chimiorésistance ?
• combien d’origines de chimiorésistance ?
5. 1- brefs rappels de génétique des populations
2- gène pfdhfr et origine de la résistance à la pyriméthamine
3- gène pfcytb et résistance à la Malarone (atovaquone-proguanil)
6. les 2 échelles de l’évolution
• au sein d’1 espèce • entre plusieurs espèces
• au sein/entre populations • échelle : temps géologiques
• échelle : générations mutation
migration
dérive génétique
sélection naturelle
7. évolution des populations
changement des fréquences alléliques au sein d’une population
N individus diploïdes
2 allèles
0.75 génération 1
0.25
♀ ♂ Évolution si :
• mutation
urne des gamètes
effectifs infinis • migration
2N tirages
• dérive génétique
• sélection naturelle
N individus diploïdes
0.75
0.25
génération 2
8. marqueurs du polymorphisme génétique (1)
SNP : single nucleotide polymorphism
allèle sauvage : 5’-ATAACATGA-3’
allèles mutants :
ATAAAATGA 5’-ATAATATGA-3’ ATAAGATGA
« bénéfique » « délétère »
« neutre »
« avantageux » « désavantageux »
• ~ 1 SNP / 300 pdb
• ~ 100 000 SNPs (objectif : 350 000)
Mu et al. 2006
9. marqueurs moléculaires du polymorphisme (2)
• polymorphismes de séquences répétées en tandem : microsatellites
5’-ATCTAGCACACACACACACACATCCTG-3’ (CA)8
5’-ATCTAGCACACACACACACACACACATCCTG-3’ (CA)10
- très polymorphes : nombreux allèles différents dans une population
- neutres le plus souvent
10. diversité génétique et origine des mutations
: microsatellite
: séquence codante
kb -5.3 -4.4 -0.1
dhfr
(TA)n (TAA)n (CG)n phénotype
13 12 10 sensible
12 7 8 S
10 8 9 S
9 9 9 S
7 7 6 S
8 10 12 S
11 11 11 S
11. apparition d’un allèle de résistance par mutation
: séquences répétées en tandem (microsatellite)
: séquence codante
kb -5.3 -4.4 -0.1
dhfr
(TA)n (TAA)n (CG)n 51 59 108 phénotype
13 12 10 résistant
12 7 8 sensible
10 8 9 S
9 9 9 S
7 7 6 S
8 10 12 S
11 11 11 S
14. application 1 :
recherche de locus sélectionnés par approche genome-scan
identification du gène pfcrt, déterminant de la résistance à la chloroquine
Réduction de la diversité allélique
chromosomes
parasites résistants à la chloroquine
parasites sensibles à la chloroquine
Wooton 2001, Nature
15. application 2 :
origine de la résistance à la pyrimethamine en Afrique
> base génétique : 3 SNPs dans le gène dihydrofolate reductase
dhfr ts
51 59 108
wild type N C S
triple mutant I R N
> probabilité élevée d’échec thérapeutique
> origine unique en Asie du Sud Est 1978
> triple mutant asiatique importé dans le sud
et l’est de l’Afrique
? généralisation à l’ensemble du continent africain ? 15
16. stratégie
allèles dhfr
• sauvage (WT) n = 75
• triple mutant n = 204
: microsatellite
: séquence codante
dhfr ts
-3.9 -0.1 51 59 108 +0.5 +1.5 kb
WT - - N C S - -
triple mutant - - I R N - -
18. application 3 :
origine de la résistance à l’atovaquone + proguanil
(Ato-PG ou Malarone®)
• traitement et prévention des infections à P. falciparum
• Ato : inhibe le complexe mitochondriale : cytochrome bc1
• proguanil (PG) : augmente l’activité de l’atovaquone (Ato)
19. résistance à Ato-PG
• résistance à Ato
- base génétique simple
- 1 SNP mitochondrial : pfcytbY268S/C/N
0 2000 4000 6000 (pb)
cox I cytb
coding
cox III
4294a>c → Tyr268Ser
4294a>g → Tyr268Cys
- sensibilité in vitro à Ato : x102-103
- perte de la synergie entre Ato et PG synergy
Musset 2007, Microb Inf
20. paradoxe de la résistance à Ato-PG
• traitement cher (35-60 €)
- pas/peu utilisé dans les zones d’endémies
• allèle de résistance pfcytb268 extrêmement rare dans populations naturelles
- donc probablement non transmis par le moustique
• échecs thérapeutiques chez les voyageurs : 0,1 - 1 % !!
- résistance du parasite
- allèle mutant non détecté au début du traitement
? ces échecs sont-ils dus à un seul ou différents allèles de
résistance pfcytb268 ?
21. stratégie expérimentale
échantillon : CNR Paludisme (Paris, France)
• 7 isolats provenant d’échecs thérapeutiques (portant l’allèle mutée pfcytb268)
- Ato-PG (6)
- atovaquone seule (1)
• 28 isolats appariés provenant de succès thérapeutiques par Ato-PG (portant
l’allèle mutée pfcytbY268)
analyses :
• séquençage du génome mitochondrial : analyse de la diversité
moléculaire autour du locus pfcytb268
• génotypage de polymorphes nucléaires (microsatellites)
0 2000 4000 6000 (pb)
cox I cytb
cox III
22. Mitochondrial genome nucleotide position
cox3 cox1 cytb
1 1 1 1 1 2 3 3 4 4 4 4 4 4 5
6 7 7 8 8 1 5 6 7 9 6 1 6 2 3 5 6 7 9 4
8 1 1 6 9 6 0 9 7 1 4 6 1 9 8 5 2 8 5 5
4 0 1 9 1 5 9 4 8 3 9 7 9 6 9 2 4 0 4 4
r r r n n s r i i i s s n n n s s i i r
Haplotype Origin n A - - G T G A G T C C C A A G C A G C -
R1 IVC 1 . - - . . . . . . . . . . G . . . . . -
R2 IVC 1 . - - T . . T . . . . . . C . . . . T T
R3 UPV 1 . - - . . . . . . . . T . C . . . . . -
R4 UPV 1 . - - . . . . . . . . . . G A . . . . -
R5 UPV 1 . - - . . . . . . . . . . C . . . . . -
R6 GUI 1 . - - . . A . T . . . . . C . . G . . -
R7 THA 1 . - - . . . . . C . . . . C . . . . . -
S1 IVC/UPV/GUI 13 . - - . . . . . . . . . . . . . . . . -
S2 IVC/UPV/GUI 9 . - - . . . . A . . . . . . . . . . . -
S3 IVC 1 . - - . . . . C . . . . T . . . . . . -
S4 UPV 1 . - - . C . . A . . . . . . . . . . . -
S5 UPV 1 . - - . . . . A . . T . . . . T . . . -
S6 GUI 1 . - - . . . . A . . . . . . . . . T . -
S7 GUI 1 . A T . . . . A . . . . . . . . . . . -
S8 GUI 1 G - - . . . . . . T . . . . . . . . . -
Musset , Mol Biol Evol 2007
23. relations entre les haplotypes mitochondriaux
minimum-spanning network
R2 R4
R3
R7
R : pfcytbY268C
S1
R : pfcytbY268S R1 R5 S8
S3
S2
• diversité génétique des sauvages et R6
des résistants comparables S4 S6
• pas compatible avec une origine
unique et récente de la résistance
S5 S7
24. variations de séquence avant et après traitement
Ato-PG
D0 Déchéc
(length, bp)
Mitochondrial genome nucleotide position Microsatellite
1 1 1 1 1 2 3 3 4 4 4 4 4 4 5
T T A P T
6 7 7 8 8 1 5 6 7 9 6 1 6 2 3 5 6 7 9 4 A A f A
R
8 1 1 6 9 6 0 9 7 1 4 6 1 9 8 5 2 8 5 5 A A A P A
4 0 1 9 1 5 9 4 8 3 9 7 9 6 9 2 4 0 4 4 8 6 K 8
2
7 0 2 1
Time Hap A - - G T G A G T C C C A A G C A G C -
D22 R4 . - - . . . . . . . . . . G A . . . . - 80 71 98 165 175
D0 . - - . . . . . . . . . . . A . . . . - 80 71 98 165 175
• 5 patients : identité moléculaire parfaite entre D0 et Déchec
• 1 patient : séquence D0 incomplète, identité nucléaire
• 1 patient : D0 non collecté
25. interprétation des données
mutation
~ 105
*
reproduction
*
asexuée
*
traitement ~ 108-1012
*
*
*
*
*
*
*
• mutation se produit et est sélectionnée
chez les patients indépendamment
26. conclusions sur la résistance à Ato-PG
• multiples origines de l’allèle de résistance à Ato-PG
• cas unique : observer en situation naturelle la phase initiale de
l’évolution la résistance, avant la transmission de l’allèle mutant
par le moustique
• Ato-PG non recommandé pour un usage massif en zone
d’endémie
27. évolution de la résistance aux antipaludiques
• origines rares pour SP et CQ (≥ 3 SNPs)
• sélection intense sur les populations
• migrations intra et intercontinentales
• échecs thérapeutiques liés à la transmission de parasites
chimiorésistants
• origines multiples pour Ato-PG
• échecs thérapeutiques liés à la sélection de mutations de
novo (SP, CQ)
• signatures de sélection naturelle peuvent être recherchées
dans les génomes de populations
- diminution de la diversité génétique
- différenciation génétique entre populations
28. UMR216
Collaborateurs
• Pr Jacques Le Bras
• Dr Abdoulaye Djimdé (MRTC, Bamako)
• Dr Oumou Maïga
• Dr Milijaona Randrianarivelojosia (IPM)
• Dr Lise Musset
• Dr JF Lepère (Bandraboua, Mayotte)
• Emmanuelle Renard
• Dr Agnès Aubouy (Gabon)
• Dr Jérôme Clain
• Dr Sabah Omar (Kenya)
CNR Paludisme
• Pr Jacques Le Bras
• Véronique Hubert
• Dr Sandrine Houzé