Este documento presenta un proyecto de investigación sobre la zoonosis causada por Echinococcus granulosus en perros y su transmisión a humanos. El objetivo es reproducir experimentalmente el ciclo biológico de E. granulosus en perros mediante la infección oral con protoescólices de quistes hidatídicos ovinos. El estudio evaluará la presencia de tenias en el intestino de perros sacrificados entre 28-39 días post infección. Los resultados ayudarán a comprender mejor la epidemiología de esta enfermedad y posibles

1. BENEMÉRITA UNIVERSIDAD
AUTÓNOMA DE PUEBLA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
SECCIÓN 002
MATRICULA: 201520196
CATEDRÁTICO: MVZ HERMINIO I. JIMENEZ CORTEZ
ALUMNO: CARRASCO CORTINA MISAEL
Desarrollo de Habilidades en el uso de
la Tecnología, la Información y la
Comunicación
PROYECTO
ZOONOSIS DE CANINOS A HUMANOS
ZOONOSIS POR ECHINOCOCCUS
GRANULOSUS EN PERROS

2. ZOONOSIS DE
CANINOS A
HUMANOS
 ZOONOSIS POR ECHINOCOCCUS GRANULOSUS EN
PERROS

3. INTRODUCCIÓN
 Una zoonosis es una enfermedad que puede transmitirse
de otros animales vertebrados a seres humanos o
viceversa. Aunque estrictamente hablando se tiende a
definir como zoonosis solo a las patologías
infectocontagiosas que se transmiten desde otros
vertebrados a los seres humanos antropozoonosis, en la
práctica el concepto amplio de zoonosis es el de toda
enfermedad que se transmite entre diversas especies
animales, atravesando la barrera específica.
 Se considera Zoonosis toda enfermedad transmitida por
insectos y animales (vectores) al ser humano.

4. La importancia de desparasitar a tu
canino
 ¿QUÉ ES LA DESPARASITACIÓN?
La desparasitación es eliminar mediante algún fármaco la
población de parásitos o bichos que viven dentro del intestino
de nuestras mascotas.
 ¿POR QUÉ ES IMPORTANTE DESPARASITAR?
Los animales con los que convivimos pueden albergar
parásitos tanto externos como internos. El tema de la
desparasitación es sumamente importante, y a pesar de esto,
generalmente no se pregunta al Médico Veterinario mucho
acerca de este tema

5. Tipos de parásitos
 PARASITOS INTERNOS
Estos parásitos como su nombre indica viven en el interior del
cuerpo. Los huevos de estos parásitos son eliminados con las
heces del animal.
 PARASITOS EXTERNOS
Como su nombre indica estos parásitos viven en el exterior del
cuerpo. En perros y gatos los que más nos preocupan son: las
pulgas, las garrapatas y los mosquitos.

6. Zoonosis por Echinococcus
granulosus
 Echinococcus granulosus, llamado
gusano de la hidátide, es
un cestodo parásito del intestino
delgado de cánidos (perros) en su
forma adulta, y del ganado ovino en
su fase larvaria, aunque de forma
secundaria o accidental ésta también
puede ser parásito de otros
animales, dentro de los que se
incluyen los primates y el hombre,
produciendo la hidatidosis o "quiste
hidatídico«.

7.  MORFOLOGÍA
El cestodo adulto Echinococcus granulosus, con localización
en el intestino delgado de los perros, mide alrededor de 2 - 6
mm de longitud, consta habitualmente de 3 - 4 proglótidos
(inmaduro, maduro y grávido), y un escólex con cuatro
ventosas y una doble corona de ganchos. Los huevos (30 - 40
µm), son la forma infectante para los hospederos
intermediarios (principalmente ungulados - ovejas, cerdos,
ganado vacuno, cabras, caballos) y otros que pueden tener un
papel en el ciclo biológico (marsupiales, roedores,
carnívoros). El humano es hospedero accidental.

8.  MECANISMOS DE TRANSMISIÓN
El humano se infecta por la ingestión de huevos
de Echinococcus presentes en alimentos, agua o
suelos contaminados, o por contacto directo con los
animales hospederos. Se ha observado que los
huevos se adhieren al pelaje de los cánidos,
principalmente alrededor del ano, hocico, muslos y
patas.
También se ha sugerido que contribuyen en la
diseminación de huevos el viento, moscas y
escarabajos.

9.  CICLO BIOLÓGICO:

10.  ESPECTRO CLÍNICO
La infección del humano por E. granulosus da lugar a la
formación de quistes en casi cualquier órgano, con mayor
frecuencia únicos. La ubicación más frecuente
es hígado (>65%) y pulmones (25%). Existen reportes de
parasitosis ósea, renal, muscular, en bazo, sistema nervioso
central y ojos.
Los sujetos infectados cursan asintomáticos durante meses,
años o permanentemente. Las manifestaciones dependen del
órgano afectado, el número de quistes, su tamaño, desarrollo
(actividad o inactividad) y la presión ejercida sobre tejidos u
órganos adyacentes.

11. Las manifestaciones clínicas son inespecíficas, y dentro de las
más frecuentes se encuentran: Hepatomegalia, dolor en
hipocondrio derecho, epigástrico, náusea, vómito, urticaria,
distensión abdominal, colestasis, hipertensión portal, cirrosis
biliar, ascitis y otros signos y síntomas asociados a la masa
ocupativa (tales como compromiso pulmonar).
Cuando el quiste llega a romperse, pueden presentarse
reacciones alérgicas de diversa magnitud, hasta un choque
anafiláctico. También es posible la diseminación de
protoescólices, lo que dará lugar a una hidatidosis secundaria.

12.  DIAGNÓSTICO
El diagnóstico de la equinococosis quística se basa en los
antecedentes epidemiológicos, los hallazgos clínicos, técnicas
imagenológicas y serología.
 Gabinete:
La ultrasonografía (US) es la base del diagnóstico de la
parasitosis de localización abdominal (número, tamaño y
vitalidad de los quistes) y también permite la visualización de
quistes en otros órganos.
Serología:
Los estudios serológicos confirman el diagnóstico
imagenológico. Independientemente de su localización, los
quistes intactos provocan una respuesta inmune mínima.

13.  Histopatología:
El diagnóstico histopatológico definitivo se realiza mediante
abordaje laparoscópico con la técnica
de Punción, Aspiración, Instilación, Reaspiración (PAIR), que
contempla la punción del quiste, aspiración de líquido del
mismo, instilación de agentes escolicidas y reaspiración del
contenido, con pericistectomía, cistectomía, e incluso
resección hepática.

14.  TRATAMIENTO
No existe el tratamiento idóneo. Las indicaciones dependen de
las características del quiste, la disponibilidad del equipo
adecuado y de personal médico con experiencia.
• Antiparasitarios (siempre se utilizan)
• Tratamiento percutáneo (PAIR)
• Resección quirúrgica.
• Observación
• Monitoreo posterior, cada 3 - 6 meses, durante años.

15.  EPIDEMIOLOGÍA.
El potencial biótico de Echinococcus es relativamente bajo. La
enfermedad más frecuente es la ocasionada por E.
granulosus.
El riesgo de infección, en ambiente urbano, raro, se asocia a la
convivencia con perros, los años de coexistencia con ellos, la
alimentación de los mismos con vísceras crudas. Constituye
un factor importante la presencia de perros en las calles.

17. JUSTIFICACIÓN
 Comportamiento de la enfermedad en la población canina
de Tehuacán, Puebla.
 Conocimiento del ciclo biológico del parásito Echinococcus
granulosus.

18. PLANTEAMIENTO DEL
PROBLEMA
 Es un problema de salud pública debido a las malas
prácticas de higiene y salubridad del hombre, relacionada a
la crianza extensiva de ganado, a los bajos niveles
socioeconómicos y a la escasa educación sanitaria de las
personas (Gonzáles et al., 1998). Los hospedadores
intermediarios se infectan cuando ingieren plantas
contaminadas con huevos. Las personas mayormente se
infectan por contacto directo con perros infectados, ya que
estos pueden transportar los huevos en el pelo o pueden
diseminar los huevos en el suelo donde los niños
acostumbran jugar.

19. OBJETIVOS
 General
Estudiar el comportamiento de la enfermedad en la población
canina y en el ser humano
 Específico
Reproducir experimentalmente el ciclo biológico del
Echinococcus granulosus en perros.

20. HIPÓTESIS
 Se tiene cierto conocimiento de que una vacuna aplicada a
los hospedadores definitivos podría ser efectiva en
programas de control de la hidatidosis por las
características del ciclo del parásito, reduciendo la cantidad
de huevos que infectan al humano. La Inoculación de
protoescólices de quistes hidatídicos ovinos, vía oral,
puede ser efectiva en la reproducción del ciclo biológico del
Echinococcus granulosus en perros.

21. MATERIAL Y MÉTODOS
 Tipo de estudio
Epidemiológico y experimental
 Diseño general
El estudio se realizará en Laboratorios de Medicina Veterinaria
de la Facultad de Medicina Veterinaria de la Benemérita
Universidad Autónoma de Puebla, con dirección en el Salado,
Tecamachalco, Puebla. En un lapso de tiempo de Septiembre
de 2015 a Diciembre de 2015.

22. Se emplearan 12 perros cruzados, de ambos sexos, entre 4 y 50
meses de edad. Se alojaran en caniles y se les suministrará
concentrado comercial y agua ad libitum. Se les desparasitara tres
veces en un lapso de 15 días con la combinación de Praziquantel
(50 mg/kg), Febantel (150 mg/kg) y Emboato de Pirantel (50
mg/kg), con la finalidad de evitar la interferencia de otros parásitos
en el desarrollo del E. granulosus. Dos meses después de su
llegada serán vacunados contra parvovirus, distemper,
parainfluenza, hepatitis y leptospira, y se les aplicará una dosis de
refuerzo a los 15 días. Los perros serán infectados al 3er mes con
80,000 a 308,000 protoescólices de quistes hidatídicos de pulmón
e hígado de origen ovino. Los quistes tenían una viabilidad de 75
a 85%.

23. LOGÍSTICA
 Recursos humanos
• Dr. Rubén Ramírez Aquino
• Laboratorios Facultad de Medicina Veterinaria de la
Benemérita Universidad Autónoma de Puebla.

24.  Recursos materiales
• Concentrado comercial
• Agua ad libitum
• Praziquantel (50 mg/kg)
• Febantel (150 mg/kg)
• Emboato de Pirantel (50
mg/kg)
• Protoescólices de quistes
hidatídicos de pulmón e
hígado de origen ovino
• Jeringas 10 ml y agujas
20x1”
• Tubo Falcon de 50 ml
• Colorante vital eosina
• Jeringas dosificadoras
• Xylacina (2 mg/kg)
• Ketamina (10 mg/kg)
• Embutramida, mebezonio y
tetracaína (3 mg/kg)
• Suero fisiológico
• Láminas de corcho
• Agitador
• Placas Petri
• Lupas

25.  Recursos financieros
Presupuesto
Material $7,000.00
Viáticos $3,000.00
TOTAL: $10,000.00

26. Etapas de Investigación Tiempo
Fecha Septiembre Octubre Noviembre Diciembre Enero / / / /
Formulación de
Anteproyecto

Formulación de Protocolo 
Recolección de datos 
Procesamiento de datos 
Aplicación de pruebas
estadísticas

Análisis de datos 
Presentación de avances
de investigación

Presentación de Informe
final

Presentación pública 
Presentación de artículo
para publicación

Cronograma de actividades

27.  Infección Experimental
Los quistes hidatídicos se evaluaran físicamente y aquellos
calcificados o menores de 1 cm de diámetro serán
descartados. El lugar donde se irá a punzar el quiste será
desinfectado con alcohol y se extraerá el líquido hidatídico con
una jeringa de 10 ml y aguja 20 x 1". El líquido será devuelto
suavemente de manera que la arenilla hidatídica quede
suspendida en el fluido y, finalmente, será extraído y colocado
en un tubo Falcon de 50 ml, donde se esperará que ocurra la
sedimentación para retirar el sobrenadante.

28. Se evaluará la viabilidad de los proto-escólices (p.e.) con el
colorante vital eosina en solución acuosa al 0.1% y se
determinará el número de p.e. totales y vivos. El número
mínimo de p.e. administrados a los canes será de 80,000 y se
hará en base a p.e. vivos/ml. Los perros quedaran en ayunas
por 24 horas previo a la infección experimental y la dosis
infectiva se colocará en una jeringa dosificadora con 5 ml de
agua.

29. Los animales se sacrificaran entre los 28 y 39 días de la infección;
para esto, se dejarán en ayuno de 24 horas y se les anestesiará
con xylacina (2 mg/kg) y ketamina (10 mg/kg). Se realizará una
laparotomía medial, se ligaran los extremos del intestino delgado y
se extraerá. Luego de esto, se sacrificara al animal con una
inyección letal de embutramida, mebezonio y tetracaína (3 mg/kg).
El intestino delgado se dividirá en tres porciones iguales (anterior,
media y posterior) y se realizará una incisión longitudinal en cada
sección. Cada una de ellas será fijada en láminas de corcho y
sumergidas en bandejas con suero fisiológico. Estas se colocaran
en un agitador por 30 min, se retirará el suero fisiológico con los
parásitos suspendidos y se procederá a raspar la mucosa
intestinal. La solución con los E. granulosus se colocara en placas
Petri, se observaran con lupas y se contabilizará el número de
tenias.

30. CONCLUSIONES
 A pesar de los avances en estas áreas, equinococosis /
hidatidosis sigue siendo un problema grave de salud
pública en varios países.
 En los últimos años, han surgido líneas de investigación
para desarrollar nuevas herramientas terapéuticas para el
tratamiento de la hidatidosis. La más promisoria de éstas
es el desarrollo de una vacuna para controlar la infección
de los hospederos intermediarios naturales del parásito.
Aún no se ha desarrollado una vacuna para aplicarse en
humanos.

31.  En conclusión, creemos que si bien la terapia quirúrgica
continúa siendo la elección, se debería tender a
perfeccionar y estandarizar otras estrategias terapéuticas
que resulten más efectivas.
 La infección experimental, vía oral, con protoescólices de
quistes hidatídicos ovinos es efectiva para reproducir el
ciclo biológico del E. granulosus en perros.

32. BIBLIOGRAFÍA
 Cook, BR. 1989. La epidemiología de Echinococcus granulosus en Gran
Bretaña. Ann. Trop. Med. Parasitol., 83 (1): desde 51 hasta 61.
 Gasser, RB, Lightowlers, MW, Rickard, MD y Dawkins, HJS. 1990. El
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granulosus infección en una región endémica. Aust. Vet. J., 67 (4): 145-147.
 Soulsby, EJL. 1982. Los helmintos y protozoos, artrópodos de
animales domesticados, 7ª ed. p. 119-127
 Rosales, S. y Gavidia, C. y Lopera, L. y Barrón, E. y Ninaquispe, B. y Calderón,
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infectados experimentalmente con protoescólices de quistes hidatídicos.
Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú. v. 19, n.1, p 37-42.
 Casas, N. y Costas, S. y Céspedes, G. y Sosa, S. y Santillán, G. (2013).
Detección de coproantígenos para el diagnóstico de echinococosis canina en
la zona fronteriza de La Quiaca-Villazón. Revista Argentina de Microbiología. v.
45, n. 3, p 154-159.
 Vallenas, G. y Alvarado, J. y Barrón, E. y Perales, R. y Gavidia, C. (2013).
Modelo de infección experimental para la obtención de E. granulosus adultos y
quistes hidatídicos secundarios en el hámster dorado (Mesocricetus auratus).
Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú. v. 24, n.2, p 233-239.