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UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA
Facultad de Ciencias Biológicas
Área Académica de Microbiología
EL VIRUS DE LA FIEBRE AMARILLA:
Noelia Lujan Peña; Luz Maday Mallcco Rafael; Liseth Sandra Medrano Rojas;
Carol Aurora Morales Sulca; Noemí Alicia Nuñez Achalma; Olga Mirtha Orihuela
Ramírez. Estudiantes del curso de virología del Departamento Académico de
Ciencias Biológicas
Facultad de Ciencias Biológicas-Universidad Nacional de San Cristóbal de
Huamanga
INTRODUCCIÓN
El virus de la fiebre amarilla pertenece a
la familia Flaviviridae que pertenece al
género Flavivirus, presenta un genoma
de 9 a 13 kb de ARN monocatenario de
polaridad positivo, posee una cápside
icosaédrica.
Estos virus son transmitidos por
vectores como los mosquitos del género
Aedes aegypti, A. albopictus, A.
haemagogu. Son virus que infectan al
hombre y al mono.
La familia Flaviviridae se clasifican en 3
géneros: flavivirus, pestivirus y
hepacivirus (1). El objeto de estudio es
el Flavivirus. Este virus fue aislado en
1927 y Carlos Finlay descubrió el agente
transmisor en 1881. En la actualidad la
fiebre amarilla es considerada
endémico, fue causante de grandes
epidemias acompañado de fiebre
hemorrágica en África y en Norte,
Centro- y América del sur. (2)
El virus de la fiebre amarilla pertenece a
la familia flaviviridae según la
clasificación de Baltimore pertenece al
grupo IV (virus ARN monocatenario
positivo). (3)
ESTRUCTURA
Virus envuelto de 50 nm de diámetro, su
genoma es una cadena de ARN de
polaridad positiva de alrededor de 10
233 nucleótidos de longitud, 2
secuencias pequeñas no codificantes
5´UTR y 3´UTR con un tamaño de 100 y
de 400 a 700 nucleótidos de longitud
dependiendo del serotipo viral de los
flavivirus; con un solo marco de lectura
abierto generando una poliproteína de
3400 aminoácidos que se procesa en 10
proteínas: 3 proteínas estructurales
(core, PrM y E) y siete proteínas no
estructurales (NS) (NS1, NS2A-2B,
NS3, NS4A-B, y NS5). (2)
Figura 1: Representación esquemática
de ARN viral YFV y poliproteína. Cada
proteína viral se representa usando un
color distinto y las flechas indican los
sitios de corte en la poliproteína
procesados por las proteasas de origen
celular (flecha roja o negra) o viral
(flecha azul). (2)
Figura 2: Representación esquemática
de partículas de flavivirus y antígenos
del virus YF utilizados en este estudio.
(A) Modelo esquemático de una
partícula de flavivirus. Panel izquierdo:
virión inmaduro, panel derecho: virión
maduro. La cápside contiene el ARN
viral y múltiples copias de la proteína C.
La superficie de las partículas
UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA
Facultad de Ciencias Biológicas
Área Académica de Microbiología
inmaduras consta de 60 picos
compuestos por trímeros de
heterodímeros prM-E. Las partículas
maduras se forman después de la
escisión de prM y contienen
homodímeros 90E. La estructura de E
se determinó para las formas solubles
de E (sE), que se muestra
esquemáticamente en el panel de
viriones maduros, que carecen de las
denominadas regiones de anclaje de
tallo y membrana. (B) Representación
de la disposición de los dímeros E en la
superficie de los viriones maduros del
YFV. Treinta balsas de tres dímeros E
paralelos forman el icosaedro en forma
de espiga. (C) Representaciones
esquemáticas de antígenos
recombinantes de la fiebre amarilla.
Código de color E: dominio I - rojo,
dominio II - amarillo, dominio III - azul;
péptido de fusión (FP) - naranja; tallo -
púrpura; ancla transmembrana - gris
claro. Código de color prM: ectodominio
- verde, anclajes transmembrana - gris
oscuro. Código de color de las etiquetas
de proteínas recombinantes: negro. TR:
tiorredoxina. El asterisco indica la
posición de la mutación en el sitio de
escisión de furina de YF prM.(4)
PROTEÍNAS ESTRUCTURALES
(core, PrM y E)
Proteína core
Proteína de la cápside pesa 11 kDa
aprox. Su estructura secundaria
contiene 4 alfa que cumple diferentes
funciones: las hélices 3 y 4 son
hidrofóbicas y anclan la proteina a la
membrana del retículo
endoplasmático.(5)
La hélice 1 está ubicada en el extremo
terminal de la proteina posee
aminoácidos de carácter básico que se
asocian y se unen fuertemente al ARN
genómico recién sintetizado.(5)
La hélice 2 es de naturaleza hidrofóbica
que interviene durante el ensamblaje de
la ribonucleoproteína y de la partícula
viral.(5)
Proteína PrM
La proteína precursora de la membrana
tiene un peso molecular de 22 kDa y
está presente en los viriones inmaduros
y junto con la proteína M participan en el
proceso de maduración de la partícula
viral.(5)
Proteína E
La proteína de la envoltura tiene un peso
molecular de 50 kDa y posee 3 dominios
denominados I, II, III y se distribuye en
la superficie del virus. Los dominios II y
III son los encargados de la interacción
del virus con los receptores de las
células vulnerables.(5)
PROTEÍNAS NO ESTRUCTURALES
Son siete proteínas no estructurales:
(NS) (NS1, NS2A-2B, NS3, NS4A-B, y
NS5).
La proteína NS1 (46 kDa) forma dímeros
o hexámeros asociados a balsas
lipídicas (rafts) de la membrana
plasmática. También, se puede hallar
soluble en el citoplasma y en el espacio
extracelular; por esta razón, la NS1
puede estimular al sistema inmunitario.
La NS2A es una proteína de 22 kDa,
aproximadamente, que in vitro
promueve el ensamblaje y la replicación
viral. Al parecer, la NS2A coordina de un
modo aún no muy bien definido, si el
ARN genómico producido en cada ciclo
de replicación se utiliza como nueva
plantilla para generar las formas
replicativas y los intermediarios
replicativos o si se asocia dentro de la
nucleocápside durante el ensamblaje
viral. La proteína NS2B (14 kDa) posee
una región hidrofóbica que ancla a la
membrana del retículo endoplásmico el
complejo NS2B/NS3 y luego, por un
procesamiento proteolítico, un pequeño
dominio hidrofílico de NS2B recién
liberado interactúa con el dominio
proteasa de la proteína NS3 para actuar
como cofactor de ésta. La proteína NS3
(70 kDa) es una proteína bipartita que
posee en el extremo N-terminal un
dominio proteasa similar a la tripsina
(NS3pro) y en el extremo C-terminal
UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA
Facultad de Ciencias Biológicas
Área Académica de Microbiología
posee un dominio con diferentes
actividades enzimáticas, que actúa
como trifosfatasa de nucleótidos
estimulada por ARN (NTPase) y como
helicasa del ARN (NS3Hel); ambas
funciones son indispensables en la
replicación viral. La proteína NS5 es la
más conservada entre todos los
flavivirus. Esta proteína es
multifuncional, ya que el extremo N-
terminal posee actividad enzimática de
metiltransferasa y guanidiltransferasa,
responsables del capping y la metilación
del extremo 5´ del ARN genómico,
mientras que, en el extremo C-terminal,
se ubica el dominio de ARN polimerasa
dependiente de ARN (RdRps).(6)
REPLICACIÓN DEL VIRUS FIEBRE
AMARILLA
Figura 3: Replicación del virus de la
fiebre amarilla (YFV). 1) Accesorio de
partida.2) Unión al receptor. 3)
Compromiso de otros factores de
entrada.4) Endocitosis. 5) Fusión de
membranas 6) fusión de membrana,
liberación de ARN viral. 7) Traslado y
procesamiento de proteínas.8)
Replicación del ARN viral. 9) Formación
de nucleocapside.10) Desarrollo de
nucleocapside.11) Maduración de
partículas.12) Budding de virus. (2)
La proteína E es la responsable de las
fases iniciales (la unión e internalización
viral) a un motivo proteico que contiene
Arg- Gly-Asp (RGD) (1) involucrado en
la unión no especifica al
glicosaminglicano heparán sulfato
presente en la superficie de las células
hepáticas y dendríticas (DCs) (2), la
presencia de un motivo RGD clásico en
el DIII. En la proteína de la envoltura
YFV, surge un mecanismo de acción
con la integración con integrinas (3) al
que se une la Glicoproteína E del YFV.
Seguidamente se da la entrada por
endocitosis mediada por la clatrina,
ocurre la liberación viral en le citoplasma
debido al cambio de pH en el endosoma
temprano; que permite la fusión de la
membrana viral con la del endosoma. El
ARN viral se traduce en una poliproteína
que es procesada por una peptidasa
señal de origen celular y por la proteasa
viral NS2B/3.(2)
Después de la reducción y
procesamiento de poliproteína. Se lleva
a cabo la formación del complejo
replicativo del ARN viral el cual ocurre
con el reclutamiento de NS1 y con el
complejo de replicasa NS3 y NS5 por el
anclaje a la membrana de NS2A, NS4A
y NS4B, todo ello en un ambiente de
reordenamiento de la membrana del RE
inducidos por NS4A. (2)
El ensamble de YFV es poco conocido,
pero se cree que las nucleocápsides de
YFV recién ensambladas, compuestas
de la proteína C y el RNA viral, geman
dentro de las membranas del RE que
albergan a las glicoproteínas E y PrM.
Estas partículas inmaduras migran a la
red trans-Golgi donde se glicosilan y la
PrM se corta en dos subunidades, M y
Pr, por la proteasa celular furina. La
liberación de Pr del complejo E-M es un
paso crítico para la exocitosis viral,
además de la furina, otros factores del
huésped son importantes para la
maduración de las partículas YFV en la
red trans-Golgi, como la bomba de
calcio SPCA1, involucrada en la
maduración de la glicoproteina. (2)
PATOGENIA
El Aedes hembra infectado puede
inocular durante su alimentación
aproximadamente 1.000 partículas
virales en el tejido subcutáneo. La
replicación viral se inicia en el sitio de la
inoculación y se disemina a través de
vasos linfáticos a linfonodos regionales
donde se replica especialmente en
UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA
Facultad de Ciencias Biológicas
Área Académica de Microbiología
monocitos-macrófagos. Por vía linfática
el virus alcanza a otros órganos,
incluidos bazo e hígado, donde se
replica intensamente produciéndose la
viremia y con ella, la siembra a otros
tejidos. (7)
La fiebre amarilla grave se caracteriza
por insuficiencia hepática, falla renal,
coagulopatía y shock. La injuria del
hepatocito es caracterizada por una
degeneración eosinofílica y en los casos
no fatales se produce una recuperación
completa sin fibrosis postnecrótica. El
daño renal se caracteriza por
degeneración eosinó-filica y grasa del
epitelio tubular, probablemente por daño
directo del virus en estas células y
también por cambios no específicos
secundarios a hipotensión y síndrome
hepatorenal. (7)
El mecanismo preciso de la patogénesis
inducida con el virus de la fiebre amarilla
es poco conocido, aunque muchos de
los efectos patogénicos se han
relacionado con la apoptosis de
hepatocitos causados tanto por efecto
citopático inducido por el virus como por
una respuesta inmune exacerbada del
huésped. En otros estudios sugieren
que la respuesta inmune en sí, a través
de una respuesta sistémica y
desequilibrada de citoquinas es el
principal responsable de la
hepatotoxicidad durante la infección con
el virus de la fiebre amarilla. Se ha visto
la presencia de linfocitos T Th1 CD4+ y
linfocitos T Th3 CD4+ en el hígado de
pacientes que sucumbieron por la
enfermedad.(8)
Figura 4. Patogenia del virus de la fiebre
amarilla.
EPIDEMIOLOGÍA DE LA
ENFERMEDAD
Según la OMS hay 42 países de África
(29) y américa central y Sudamérica (13)
en las que la enfermedad es
endémica.(9)
En América del Sur hubo un brote en
Perú y Bolivia de 2016 a 2017, que
produjo más de 85 casos con 32
muertes. Brasil ha padecido dos
grandes brotes de fiebre amarilla,
durante los períodos estacionales
(diciembre a mayo), en 2016-2017, con
778 casos humanos, incluidas 262
muertes y en 2017-2018, con 1376
casos humanos, incluidas 483 muertes.
Los estados de Rio de Janeiro y Sao
Paulo notificaron numerosos casos.(9)
Figura 4: Países y regiones endémicos
para la fiebre amarilla.(9)
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
1. Prada-Arismendy J, Castellanos JE.
GENES DE
SUSCEPTIBILIDAD/RESISTENCIA
A Flavivirus, IMPLICACIONES EN
LA SEVERIDAD DE LA
INFECCIÓN. Acta Biológica
Colomb. 2006;11(2):21-30.
2. SSIT0016146.pdf [Internet]. [citado
30 de agosto de 2020]. Disponible
en:
https://repositorio.cinvestav.mx/bitst
ream/handle/cinvestav/1108/SSIT0
016146.pdf?sequence=1
3. El sistema de clasificación de
Baltimore [Internet]. News-
Medical.net. 2018 [citado 28 de
septiembre de 2020]. Disponible en:
https://www.news-medical.net/life-
UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA
Facultad de Ciencias Biológicas
Área Académica de Microbiología
sciences/The-Baltimore-
Classification-System-
(Spanish).aspx
4. Vratskikh O, Stiasny K, Zlatkovic J,
Tsouchnikas G, Jarmer J, Karrer U,
et al. Dissection of Antibody
Specificities Induced by Yellow
Fever Vaccination. PLOS Pathog.
20 de junio de 2013;9(6):e1003458.
5. Velandia ML, Castellanos JE. Virus
del dengue: estructura y ciclo viral.
Infectio. marzo de 2011;15(1):33-43.
6. Velandia ML, Castellanos JE. Virus
del dengue: estructura y ciclo viral.
Infectio. marzo de 2011;15(1):33-43.
7. Fiebre amarilla. Rev Chil Infectol.
2001;18(1):64-8.
8. SSIT0016146.pdf [Internet]. [citado
31 de octubre de 2020]. Disponible
en:
https://repositorio.cinvestav.mx/bitst
ream/handle/cinvestav/1108/SSIT0
016146.pdf?sequence=1
9. Porudominsky R, Gotuzzo EH.
Yellow fever vaccine and risk of
developing serious adverse events:
a systematic review. Rev Panam
Salud Pública [Internet]. 2018
[citado 3 de octubre de 2020];42.
Disponible en:
http://iris.paho.org/xmlui/handle/123
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Fiebre amarilla

  • 1. UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA Facultad de Ciencias Biológicas Área Académica de Microbiología EL VIRUS DE LA FIEBRE AMARILLA: Noelia Lujan Peña; Luz Maday Mallcco Rafael; Liseth Sandra Medrano Rojas; Carol Aurora Morales Sulca; Noemí Alicia Nuñez Achalma; Olga Mirtha Orihuela Ramírez. Estudiantes del curso de virología del Departamento Académico de Ciencias Biológicas Facultad de Ciencias Biológicas-Universidad Nacional de San Cristóbal de Huamanga INTRODUCCIÓN El virus de la fiebre amarilla pertenece a la familia Flaviviridae que pertenece al género Flavivirus, presenta un genoma de 9 a 13 kb de ARN monocatenario de polaridad positivo, posee una cápside icosaédrica. Estos virus son transmitidos por vectores como los mosquitos del género Aedes aegypti, A. albopictus, A. haemagogu. Son virus que infectan al hombre y al mono. La familia Flaviviridae se clasifican en 3 géneros: flavivirus, pestivirus y hepacivirus (1). El objeto de estudio es el Flavivirus. Este virus fue aislado en 1927 y Carlos Finlay descubrió el agente transmisor en 1881. En la actualidad la fiebre amarilla es considerada endémico, fue causante de grandes epidemias acompañado de fiebre hemorrágica en África y en Norte, Centro- y América del sur. (2) El virus de la fiebre amarilla pertenece a la familia flaviviridae según la clasificación de Baltimore pertenece al grupo IV (virus ARN monocatenario positivo). (3) ESTRUCTURA Virus envuelto de 50 nm de diámetro, su genoma es una cadena de ARN de polaridad positiva de alrededor de 10 233 nucleótidos de longitud, 2 secuencias pequeñas no codificantes 5´UTR y 3´UTR con un tamaño de 100 y de 400 a 700 nucleótidos de longitud dependiendo del serotipo viral de los flavivirus; con un solo marco de lectura abierto generando una poliproteína de 3400 aminoácidos que se procesa en 10 proteínas: 3 proteínas estructurales (core, PrM y E) y siete proteínas no estructurales (NS) (NS1, NS2A-2B, NS3, NS4A-B, y NS5). (2) Figura 1: Representación esquemática de ARN viral YFV y poliproteína. Cada proteína viral se representa usando un color distinto y las flechas indican los sitios de corte en la poliproteína procesados por las proteasas de origen celular (flecha roja o negra) o viral (flecha azul). (2) Figura 2: Representación esquemática de partículas de flavivirus y antígenos del virus YF utilizados en este estudio. (A) Modelo esquemático de una partícula de flavivirus. Panel izquierdo: virión inmaduro, panel derecho: virión maduro. La cápside contiene el ARN viral y múltiples copias de la proteína C. La superficie de las partículas
  • 2. UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA Facultad de Ciencias Biológicas Área Académica de Microbiología inmaduras consta de 60 picos compuestos por trímeros de heterodímeros prM-E. Las partículas maduras se forman después de la escisión de prM y contienen homodímeros 90E. La estructura de E se determinó para las formas solubles de E (sE), que se muestra esquemáticamente en el panel de viriones maduros, que carecen de las denominadas regiones de anclaje de tallo y membrana. (B) Representación de la disposición de los dímeros E en la superficie de los viriones maduros del YFV. Treinta balsas de tres dímeros E paralelos forman el icosaedro en forma de espiga. (C) Representaciones esquemáticas de antígenos recombinantes de la fiebre amarilla. Código de color E: dominio I - rojo, dominio II - amarillo, dominio III - azul; péptido de fusión (FP) - naranja; tallo - púrpura; ancla transmembrana - gris claro. Código de color prM: ectodominio - verde, anclajes transmembrana - gris oscuro. Código de color de las etiquetas de proteínas recombinantes: negro. TR: tiorredoxina. El asterisco indica la posición de la mutación en el sitio de escisión de furina de YF prM.(4) PROTEÍNAS ESTRUCTURALES (core, PrM y E) Proteína core Proteína de la cápside pesa 11 kDa aprox. Su estructura secundaria contiene 4 alfa que cumple diferentes funciones: las hélices 3 y 4 son hidrofóbicas y anclan la proteina a la membrana del retículo endoplasmático.(5) La hélice 1 está ubicada en el extremo terminal de la proteina posee aminoácidos de carácter básico que se asocian y se unen fuertemente al ARN genómico recién sintetizado.(5) La hélice 2 es de naturaleza hidrofóbica que interviene durante el ensamblaje de la ribonucleoproteína y de la partícula viral.(5) Proteína PrM La proteína precursora de la membrana tiene un peso molecular de 22 kDa y está presente en los viriones inmaduros y junto con la proteína M participan en el proceso de maduración de la partícula viral.(5) Proteína E La proteína de la envoltura tiene un peso molecular de 50 kDa y posee 3 dominios denominados I, II, III y se distribuye en la superficie del virus. Los dominios II y III son los encargados de la interacción del virus con los receptores de las células vulnerables.(5) PROTEÍNAS NO ESTRUCTURALES Son siete proteínas no estructurales: (NS) (NS1, NS2A-2B, NS3, NS4A-B, y NS5). La proteína NS1 (46 kDa) forma dímeros o hexámeros asociados a balsas lipídicas (rafts) de la membrana plasmática. También, se puede hallar soluble en el citoplasma y en el espacio extracelular; por esta razón, la NS1 puede estimular al sistema inmunitario. La NS2A es una proteína de 22 kDa, aproximadamente, que in vitro promueve el ensamblaje y la replicación viral. Al parecer, la NS2A coordina de un modo aún no muy bien definido, si el ARN genómico producido en cada ciclo de replicación se utiliza como nueva plantilla para generar las formas replicativas y los intermediarios replicativos o si se asocia dentro de la nucleocápside durante el ensamblaje viral. La proteína NS2B (14 kDa) posee una región hidrofóbica que ancla a la membrana del retículo endoplásmico el complejo NS2B/NS3 y luego, por un procesamiento proteolítico, un pequeño dominio hidrofílico de NS2B recién liberado interactúa con el dominio proteasa de la proteína NS3 para actuar como cofactor de ésta. La proteína NS3 (70 kDa) es una proteína bipartita que posee en el extremo N-terminal un dominio proteasa similar a la tripsina (NS3pro) y en el extremo C-terminal
  • 3. UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA Facultad de Ciencias Biológicas Área Académica de Microbiología posee un dominio con diferentes actividades enzimáticas, que actúa como trifosfatasa de nucleótidos estimulada por ARN (NTPase) y como helicasa del ARN (NS3Hel); ambas funciones son indispensables en la replicación viral. La proteína NS5 es la más conservada entre todos los flavivirus. Esta proteína es multifuncional, ya que el extremo N- terminal posee actividad enzimática de metiltransferasa y guanidiltransferasa, responsables del capping y la metilación del extremo 5´ del ARN genómico, mientras que, en el extremo C-terminal, se ubica el dominio de ARN polimerasa dependiente de ARN (RdRps).(6) REPLICACIÓN DEL VIRUS FIEBRE AMARILLA Figura 3: Replicación del virus de la fiebre amarilla (YFV). 1) Accesorio de partida.2) Unión al receptor. 3) Compromiso de otros factores de entrada.4) Endocitosis. 5) Fusión de membranas 6) fusión de membrana, liberación de ARN viral. 7) Traslado y procesamiento de proteínas.8) Replicación del ARN viral. 9) Formación de nucleocapside.10) Desarrollo de nucleocapside.11) Maduración de partículas.12) Budding de virus. (2) La proteína E es la responsable de las fases iniciales (la unión e internalización viral) a un motivo proteico que contiene Arg- Gly-Asp (RGD) (1) involucrado en la unión no especifica al glicosaminglicano heparán sulfato presente en la superficie de las células hepáticas y dendríticas (DCs) (2), la presencia de un motivo RGD clásico en el DIII. En la proteína de la envoltura YFV, surge un mecanismo de acción con la integración con integrinas (3) al que se une la Glicoproteína E del YFV. Seguidamente se da la entrada por endocitosis mediada por la clatrina, ocurre la liberación viral en le citoplasma debido al cambio de pH en el endosoma temprano; que permite la fusión de la membrana viral con la del endosoma. El ARN viral se traduce en una poliproteína que es procesada por una peptidasa señal de origen celular y por la proteasa viral NS2B/3.(2) Después de la reducción y procesamiento de poliproteína. Se lleva a cabo la formación del complejo replicativo del ARN viral el cual ocurre con el reclutamiento de NS1 y con el complejo de replicasa NS3 y NS5 por el anclaje a la membrana de NS2A, NS4A y NS4B, todo ello en un ambiente de reordenamiento de la membrana del RE inducidos por NS4A. (2) El ensamble de YFV es poco conocido, pero se cree que las nucleocápsides de YFV recién ensambladas, compuestas de la proteína C y el RNA viral, geman dentro de las membranas del RE que albergan a las glicoproteínas E y PrM. Estas partículas inmaduras migran a la red trans-Golgi donde se glicosilan y la PrM se corta en dos subunidades, M y Pr, por la proteasa celular furina. La liberación de Pr del complejo E-M es un paso crítico para la exocitosis viral, además de la furina, otros factores del huésped son importantes para la maduración de las partículas YFV en la red trans-Golgi, como la bomba de calcio SPCA1, involucrada en la maduración de la glicoproteina. (2) PATOGENIA El Aedes hembra infectado puede inocular durante su alimentación aproximadamente 1.000 partículas virales en el tejido subcutáneo. La replicación viral se inicia en el sitio de la inoculación y se disemina a través de vasos linfáticos a linfonodos regionales donde se replica especialmente en
  • 4. UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA Facultad de Ciencias Biológicas Área Académica de Microbiología monocitos-macrófagos. Por vía linfática el virus alcanza a otros órganos, incluidos bazo e hígado, donde se replica intensamente produciéndose la viremia y con ella, la siembra a otros tejidos. (7) La fiebre amarilla grave se caracteriza por insuficiencia hepática, falla renal, coagulopatía y shock. La injuria del hepatocito es caracterizada por una degeneración eosinofílica y en los casos no fatales se produce una recuperación completa sin fibrosis postnecrótica. El daño renal se caracteriza por degeneración eosinó-filica y grasa del epitelio tubular, probablemente por daño directo del virus en estas células y también por cambios no específicos secundarios a hipotensión y síndrome hepatorenal. (7) El mecanismo preciso de la patogénesis inducida con el virus de la fiebre amarilla es poco conocido, aunque muchos de los efectos patogénicos se han relacionado con la apoptosis de hepatocitos causados tanto por efecto citopático inducido por el virus como por una respuesta inmune exacerbada del huésped. En otros estudios sugieren que la respuesta inmune en sí, a través de una respuesta sistémica y desequilibrada de citoquinas es el principal responsable de la hepatotoxicidad durante la infección con el virus de la fiebre amarilla. Se ha visto la presencia de linfocitos T Th1 CD4+ y linfocitos T Th3 CD4+ en el hígado de pacientes que sucumbieron por la enfermedad.(8) Figura 4. Patogenia del virus de la fiebre amarilla. EPIDEMIOLOGÍA DE LA ENFERMEDAD Según la OMS hay 42 países de África (29) y américa central y Sudamérica (13) en las que la enfermedad es endémica.(9) En América del Sur hubo un brote en Perú y Bolivia de 2016 a 2017, que produjo más de 85 casos con 32 muertes. Brasil ha padecido dos grandes brotes de fiebre amarilla, durante los períodos estacionales (diciembre a mayo), en 2016-2017, con 778 casos humanos, incluidas 262 muertes y en 2017-2018, con 1376 casos humanos, incluidas 483 muertes. Los estados de Rio de Janeiro y Sao Paulo notificaron numerosos casos.(9) Figura 4: Países y regiones endémicos para la fiebre amarilla.(9) REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 1. Prada-Arismendy J, Castellanos JE. GENES DE SUSCEPTIBILIDAD/RESISTENCIA A Flavivirus, IMPLICACIONES EN LA SEVERIDAD DE LA INFECCIÓN. Acta Biológica Colomb. 2006;11(2):21-30. 2. SSIT0016146.pdf [Internet]. [citado 30 de agosto de 2020]. Disponible en: https://repositorio.cinvestav.mx/bitst ream/handle/cinvestav/1108/SSIT0 016146.pdf?sequence=1 3. El sistema de clasificación de Baltimore [Internet]. News- Medical.net. 2018 [citado 28 de septiembre de 2020]. Disponible en: https://www.news-medical.net/life-
  • 5. UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA Facultad de Ciencias Biológicas Área Académica de Microbiología sciences/The-Baltimore- Classification-System- (Spanish).aspx 4. Vratskikh O, Stiasny K, Zlatkovic J, Tsouchnikas G, Jarmer J, Karrer U, et al. Dissection of Antibody Specificities Induced by Yellow Fever Vaccination. PLOS Pathog. 20 de junio de 2013;9(6):e1003458. 5. Velandia ML, Castellanos JE. Virus del dengue: estructura y ciclo viral. Infectio. marzo de 2011;15(1):33-43. 6. Velandia ML, Castellanos JE. Virus del dengue: estructura y ciclo viral. Infectio. marzo de 2011;15(1):33-43. 7. Fiebre amarilla. Rev Chil Infectol. 2001;18(1):64-8. 8. SSIT0016146.pdf [Internet]. [citado 31 de octubre de 2020]. Disponible en: https://repositorio.cinvestav.mx/bitst ream/handle/cinvestav/1108/SSIT0 016146.pdf?sequence=1 9. Porudominsky R, Gotuzzo EH. Yellow fever vaccine and risk of developing serious adverse events: a systematic review. Rev Panam Salud Pública [Internet]. 2018 [citado 3 de octubre de 2020];42. Disponible en: http://iris.paho.org/xmlui/handle/123 456789/49083