El documento proporciona un diagnóstico situacional del servicio de pediatría en un hospital regional. Describe los recursos materiales y humanos disponibles, así como las principales patologías tratadas. Identifica áreas de oportunidad como la falta de movilidad de algunos equipos y la necesidad de mejorar el aislamiento. El objetivo es planear acciones para brindar una mejor atención al paciente pediátrico aprovechando las fortalezas y abordando las debilidades encontradas.

1. 1
ADMINISTRACIÓN DE LOS SERVICIO DE
ENFERMERIA
LIC. ENF: SILVIA SERRA CHAVEZ
LIC. ENF: MA. DEL CARMEN PINEDA CRUZ
GRUPO: EASE
SEDE: COATZACOALCOS VERACRUZ
DIAGNOSTICO SITUACIONAL DELSERVICIO DE PEDIATRIA
PROFESORA: LIC. ENF. MA. MAGDALENA HERNANDEZ
ALVARADO.
Minatitlán Veracruz 10 de diciembre 2016

2. 2
INDICE
INTRODUCCION.................................................................................................................... 3
JUSTIFICACION..................................................................................................................... 3
OBJETIVO GENERAL............................................................................................................ 4
MISION. .......................................................................................Error! Bookmark not defined.
VALORES............................................................................................................................... 6
ORGANIGRAMA DEL SERVICIO DE PEDIATRIA ............................................................... 7
ORGANIGRAMA DE ENFERMERIA.................................................................................. 8
ANTECEDENTES HISTORICOS DEL HOSPITAL REGIONAL MINATITLAN..................... 9
UBICACIÓN GEOGRAFICA..............................................................................................10
DIAGNOSTICO SITUACIONAL ............................................................................................11
DESCRIPCION GENERAL DEL SERVICIO DE PEDIATRIA ..............................................12
RECURSOS MATERIALES: .................................................................................................13
RECURSOS HUMANOS................................................................................................15
TECNICO ADMINISTRATIVO .......................................................................................16
PATOLOGIAS MAS FRECUENTES EN EL SERVICIO DE PEDIATRIA ............................17
GRAFICA ...........................................................................................................................18
OCUPACION DEL SERVICIO ..............................................................................................19
NORMA OFICIAL MEXICANA CONLOS ESTADARES DE CALIDAD DEL SERVCIO DE
PEDIATRIA............................................................................................................................20
ANALISIS DE FODA Y DOFA.....................................................Error! Bookmark not defined.
PLANEACION ESTRATEGICA.............................................................................................22
PLANEACION ESTRATEGICA...............................................Error! Bookmark not defined.
PLAN DE MEJORA……………………………………………………………………………….24
CONCLUSION.......................................................................................................................25
SUGERENCIAS.................................................................................................................25
ANEXOS................................................................................................................................26
12 mejoras prácticas INTERNACIONALES DE SSPA..................................................28
PROCEDIMIENTOS INTRAHOSPITALARIOS .............................................................29

3. 3
INTRODUCCION
La atención de salud del niño está centrada en el cuidado integral de él y su
familia, así como también en el entorno que lo rodea, dedicando por tanto la
enfermera mayor tiempo en el desarrollo de técnicas y procedimiento que se
requieren para el cuidado específicos de cada niño de acuerdo a su problema de
salud, buscando con ello mejorar su calidad de vida.
Enfermería toma decisiones para lograr un rol activo en el proceso de
recuperación y rehabilitación, como también resolver las necesidades del servicio
de Pediatría, ucin, utin, analizando las fortalezas y debilidades, amenazas,
oportunidades, y así lograr un servicio de salud brindando calidad y calidez a los
niños pediátricos y prematuros.
JUSTIFICACION
El resultado de esta investigación tiene relevancia para el paciente pediátrico
ya que, de las precauciones en cuanto al uso de las medidas de protección, la
habilidad y destreza ejecutadas por la enfermera pediátrica, los principios éticos
aplicados en los procedimientos van a depender de una pronta recuperación.
Sin duda es de gran importancia ya que la información recopilada contribuirá a
identificar cuáles son los principales problemas y necesidades del servicio de
pediatría.

4. 4
OBJETIVO GENERAL.
Planear, coordinar y supervisar los recursos asignados al servicio para fomentar
y consolidar las acciones necesarias para brindar la mejor atención al paciente
pediátrico.
OBJETIVOS ESPECIFICOS.
 Definir la enfermería pediátrica.
 Identificar las necesidades básicas de los niños,
 Tener en cuenta la importancia de la familia en relación con la salud infantil.
 Enumerar las principales causas de la morbimortalidad durante la infancia.
 Describir algunas funciones de la enfermería pediátrica.

5. 5
MISION
Formar especialistas en pediatría de excelencia, altamente competitivos y con
una formación académica y asistencial sólida que permita reconocer la patología
del niño y del adolescente aplicando los recursos humanos y técnicos a su alcance
para promover, mantener y recuperar la salud.
VISION.
Ser un servicio modelo en el cuidado integral al niño reconocido por su cuidado
especializado y trato humanizado, logrando la excelencia en la atención de salud,
empleando técnicas de gestión orientadas a la plena satisfacción

6. 6
VALORES.
 Integridad. - honestidad, lealtad, ética.
 Calidad. - superar siempre las expectativas hacia el paciente pediátrico.
 Trabajo. - facilitar los labores y actividades de los médicos y enfermeras
para restaurar la salud de los pediátricos.
 Humanismo. - visión profunda del verdadero significado del cuidado y la
enfermería.
 Respeto. - a la vida, dignidad y derechos del paciente pediátrico.
 Responsabilidad. - en el desarrollo de los aspectos éticos.
 Eficiencia. - logro de los objetivos en menor tiempo y con menos recursos
 Excelencia. - en el cuidado y destreza en la atención.
FILOSOFIA.
Adoptar una postura en beneficio y prioridad para el paciente pediátrico.
Brindarles un trato humano personalizado a todos y a cada uno de nuestros
pacientes y esforzarnos continuamente para contar con la tecnología más
avanzada.
POLITICA.
El servicio de pediatría es el responsable de atender con prontitud a los niños
entre recién nacido hasta los 17 años con 363 días, de manera integral y continua
con el objetivo de cumplir la misión de la institución y la mejora continua de los
sistemas de gestión del servicio.

7. 7
ORGANIGRAMA DEL SERVICIO DE PEDIATRIA
Jefatura de pediatría
Dra. Teresa Camacho
JEFA DE
PEDIATRIA
DOCTORES
PEDIATRAS
NEONATOLOGOS
R1 DE
PEDIATRIA
DOCTORES
ESTUDIANTES
DE MEDICINA
SUPERVISORAS
ENFERMERAS
ESPECIALISTAS
PEDIATRICAS
ENFERMERAS
GENERALES
ASISTENTES
DOMESTICAS
JEFA DE PISO

8. 8
ORGANIGRAMA DE ENFERMERIA
Jefatura de pediatría
Dra. Teresa Camacho
JEFADESUPERVISORAS
SUPERVISORAS DE
ENFERMERIA JEFA DE PISO
ENFEMERAS
ESPECIALISTAS
LICENCIADAS DE
ENFERMERIA
ENFERMERAS
GENERALES
ASISTENTES DE
ENFERMERIA

9. 9
ANTECEDENTES HISTORICOS DEL HOSPITAL REGIONAL MINATITLAN.
La creación del departamento medico se realizó el 21 de marzo de 1938 y el de
previsión social el 4 de abril del mismo año. Permitiendo así la operación de los
servicios médicos en petróleos mexicanos, con la estructura y funcionamiento
acorde a las disposiciones legales para solucionar la asistencia médica de la
época.
En 1959 los servicios médicos son anexados formalmente a la industria petrolera
quedando dentro del organigrama estructural de Pemex.
Agosto de 1959 durante la revisión contractual efectuada entre el sindicato
petrolero, se pactó la construcción de una clínica hospital en la ciudad de
Minatitlán, se ubicó en la colonia primero de mayo, muy cerca de la refinería
GRAL.LAZARO CARDENAS.
Abril 1967 se inaugura el hospital regional de concentración de Minatitlán, ver.
Ubicándose en el corazón de la colonia petrolera de esta ciudad, muy bien
comunicado con amplias avenidas, construido al estilo de los hospitales francés su
forma es de una H.
En 1985 la gerencia de servicios médicos autoriza la remodelación y ampliación
del hospital regional Minatitlán. Dirigida a los servicios de pediatría, quirófanos,
urgencias, consulta externa, área administrativa y hospitalización con la finalidad
de incorporarlo a la medicina moderna, añadiendo áreas y secciones espaciosas
funcionales y correctamente equipadas. Los servicios que prestan son los
siguientes.
Consulta externa de medicina familiar, medicina preventiva, odontología,
urgencias, medicina preventiva, odontología, urgencias, hospitalización de
medicina interna, terapia intensiva, gineceo obstetricia, cirugía, pediatría,
laboratorio, radiología, ultrasonido y electroencefalogramas, farmacia y cocina.

10. 10
UBICACIÓN GEOGRAFICA
Avenida Colegio Militar, s/n
Colonia Petrolera
Minatitlán, Veracruz-Llave
Tel.: 01 (922) 225 0501

11. 11
DIAGNOSTICO SITUACIONAL
En el área de pediatría del Hospital Regional Pemex de Minatitlán Veracruz, se
encuentra ubicado en el segundo piso cuenta con tres áreas utin, ucin y escolares
El personal que labora es altamente capacitado.
En UCIN abarca desde RN prematuros hasta lactante menor, y en UTIN RN en
crecimiento y desarrollo tiene conexión con el área de toco quirúrgica, cuenta con
10 incubadoras el cual funcionan, 6 cunas radiantes y 3 bacinetes que se utilizan
en la terapia intermedia cuentan con central de enfermeras y lavado de manos.
Existen 3 ventiladores funcionales de presión y volumen.1 monitor empotrado
cerca de una cuna radiante.
En escolares es de lactante mayor hasta los 17 años 364 días, cuenta con dos
cuartos de aislamiento con baño integrado cada uno, 3 cunas y 5 camas.
Cuenta también con carro rojo con todo el material requerido, central de
enfermeras con computadora y línea telefónica, baño para el personal femenino y
masculino, vestidores.
En la entrada principal se encuentra la oficina de la jefa del servicio de pediatría,
el cuarto de máquinas de los pediatras y donde se realiza el tamiz auditivo, tamiz
neonatal.
Tiene 10 años que se remodelo el servicio de pediatría, se encontraba en el
primer piso del hospital general, actualmente se encuentra a lado de ginecología la
mayoría de material es nuevo únicamente las cunas de escolares continúan, no se
pueden trasladar con facilidad a los niños de preescolar sería recomendable que
las cunitas tuvieran ruedas para poder trasladar a los niños a un tipo de estudió de
gabinete.

12. 12
DESCRIPCION GENERAL DEL SERVICIO DE PEDIATRIA
En la entrada principal del servicio de pediatría se encuentran dos cuartos para
escolares y las oficinas de los doctores y a un costado la oficina de la jefa del
servicio (Dra. Camacho) a su vez se encuentra el área donde se realizan el tamiz
metabólico y auditivo, enfrente cuenta con cuarto de vestidores.
Posteriormente continua la sala de escolares donde existen 3 cunas y una cama
donde se instalan los pacientes críticos niños de 3 a 18 años de edad y se
encuentran 2 cuartos de aislamiento. Continua el transfer donde se divide el área
gris al área blanca e inicia la unidad utin que tiene un enlace con la unidad de
tocoquirurgico. Hay una cobacha donde se encuentra el material estéril y un
lavado se ocupa para el material limpio, posteriormente continua el área de ucin
cuenta con 4 cunas radiantes y una incubadora con sus respectivas tomas de
oxígeno y aire.
CROQUIS
Sala de escolares
tamiz
metabólico y
auditivo
escolares
escolares
área de pediatría
Lavado
Aislamiento
of.dres.
Jefatura
Sala de UTIN
SaladeUCIN
Cobacha
Tocoquirurgica
Vestidores
Aislamiento

13. 13
RECURSOS MATERIALES:
ESCOLARES FUNCIONAL NO FUNCIONAL OBSERVACIONES
4.-Camas en sala general si no hay privacidad
3.-Cunas pediátricas no No son
transportables
2.-Cuartos de aislamiento no No acto para RCP
1.-Carro de paro si
1.-Carro para preparación
de medicamentos si
1.-Anaquel para
medicamentos si
1.-carro de curaciones no Faltante de
material de
curación
7.- tomas de oxigeno si Mal ubicadas en
los aislamientos
3.-. ventiladores de
presión y volumen si
1.- bascula si

14. 14
UCIN FUNCIONALES NO FUNCIONALES OBSERVACIONES
1.- Incubadoras si
5.- Cunas
radiantes si
1.- monitor si
7.-tomas para
oxigeno si
7.- tomas para
aire
si
I.- Cuarto de
aislamiento con
cuna radiante
si
1.- Escritorio si
1.- Silla si
1.- Cama de
exploración si
UTIN FUNCIONALES NO FUNCIONALES OBSERVACIONES
6.- Incubadoras si
3.- bacinetes si
1.- lavabo de
manos si
9.- lebrillos si Para bañar a los
bebes
1.- covacha si Donde se guarda el
material estéril
1.- mesa de
exploración si
2.- lámparas de
chicote si
1.-lampara de
fototerapia si

15. 15
RECURSOS HUMANOS
PERSONAL
EXISTENTE
TURNO
MATUTINO
TURNO
VESPERTINO
TURNO
NOCTURNO
OBSERVACIONES
Lic. en
Enfermería
Pediátrica (7)
Enfermeras
especialistas
son 2
Enfermeras
especialistas
son 2
Enfermeras
especialistas
son 2
De bases,
solamente cubre
personal transitorio
en vacaciones o
ausencias
Pediatras
Neonatologo
(2)
Dr. Pediatra
son 1
Dr. Pediatra
son 1
Dr. Pediatra
Neuropediatra
1
1.-del t. vesp. es
eventual.
1.-t.noc es
neuropediatra.
Pediatras (2) Dr. Pediatra
Neonatologo
De base
Neuropediatra
(1)
R1 de
Pediatría
R1 de
Pediatría
eventuales
Jefe de
Pediatría (Dra.
Camacho)
Asistentes
de
enfermería
3
Asistentes de
enfermería
2
Asistentes de
enfermería
1
De bases,
solamente cubre
personal transitorio
en vacaciones o
ausencias
Asistentes de
Enfermería (6)
Domestica
1
Domestica
1
Domestica
1
De bases,
solamente cubre
personal transitorio
en vacaciones o
ausencias
R1 de
Pediatría (1)
Estudiantes
de medicina
Están durante sus
prácticas.
Estudiantes
de Medicina
(4)
Domesticas
(4)

16. 16
TECNICO ADMINISTRATIVO
 Libreta de electrolitos de doble verificación con la compañera de turno y la
supervisora de guardia.
 Se llevan 2 programas del recién nacido, el de tamiz metabólico y el
auditivo
 Existen bitácoras donde se checa el material del carro rojo y material de
instrumentación
 Se lleva acabo los estándares de calidad: lavado de manos, riesgo de
caída, comunicación efectiva, cirugía correcta, ulceras por presión.
 Códigos de emergencias: azul: paro cardiorespiratorio
Verde: llegada masiva de pacientes
Rojo: incendio
Rosa: robo de infantes/ fuga de pacientes
Café: sismo
Amarillo. Derrame de residuos peligrosos
Negro: agresión atentado terrorismo en la unidad
medica
Erío: atención a pacientes con emergencia
obstétrica
Blanco: procurador de órganos

17. 17
PATOLOGIAS MAS FRECUENTES EN EL SERVICIO DPEDIATRIA
MORBILIDAD: Es un alejamiento del estado de bienestar físico o mental como
resultado de una enfermedad o traumatismo del cual está enterado el individuo
afectado, excluyendo pacientes que por su edad. Estadísticamente se define la
morbilidad como el número proporcional de personas que enferman en población y
tiempos determinados.
MORTALIDAD: Es el número proporcional de muertes en una población y tiempos
determinados. Debemos señalar que la mortalidad infantil es el indicador más
sensible del estado de subdesarrollo de una comunidad
10 PRIMERAS CAUSAS DE MORBILIDAD Y MORTALIDAD INFANTIL.
CASOS FRECUENTES MES DE
NOVIEMBRE
Infección Respiratorias aguda 30
Gastroenteritis 40
Neumonía 15
Apendicitis aguda 40
Hipertensión pulmonar 3
Enterocolitis 40
Prematurez 5
Desnutrición 25
Síndrome de Dificultad
Respiratoria
15
Enfermedad Hemolítica 3

18. 18
GRAFICA
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
PRINCIPALES CAUSAS

19. 19
OCUPACION DEL SERVICIO
MES DE NOVIEMBRE
PORCENTAJE DE
OCUPACION EN EL
SERVCIO
LOCALIDADES OBSERVACIONES
20% LOCALES
10% NANCHITAL Los niños de estancia
prolongada son de
prematurez
5% EL PLAN
5% AGUA DULCE
15% COATZACOLACOS
5% CUICHAPA
Jefatura del servició de pediatría
Dra. Teresa Camacho

20. 20
NORMA OFICIAL MEXICANA CON LOS ESTADARES DE CALIDAD DEL
SERVCIO DE PEDIATRIA
NOM-045-SSA2 Para la vigilancia epidemiológica, prevención y control de las
infecciones nosocomiales.
NOM-004-SSA3 2012 Expediente clínico
NOM-032-SSA3 2010 Asistencia social, prestaciones de servicios de asistencia
social para niños, niñas y adolescentes en situaciones de riesgo y vulnerabilidad
prefacio
NOM-177-SSA1-2013 Que establece la pruebas y procedimientos para demostrar
que un medicamento es intercambiable. Requisitos a que deben sujetarse los
terceros autoridades que realicen las pruebas.
NORMA Oficial Mexicana NOM-025-SSA3-2013, Para la organización y
funcionamiento de las unidades de cuidados intensivos PEDIATRICOS Y
NEONATELES
PROYECTO de Norma Oficial Mexicana PROY-NOM-031-SSA2-2014, Para la
atención a la salud de la infancia.
Norma Oficial Mexicana NOM-016-SSA3-2012. Que establece las características
mínimas de infraestructura y equipamiento de hospitales y consultorios de
atención médica especializada. 08 de Enero de 2013.
Norma Oficial Mexicana NOM-220-SSA1-2012. Instalación y operación de la
farmacovigilancia.07 de Enero de 20103.
Norma Oficial Mexicana NOM-001-SSA3-2012. Educación en salud. Para la
organización y funcionamiento de residencias médicas.04 de Enero de 2013
Norma Oficial Mexicana NOM-024-SSA3-2012. Sistemas de información de
registro electrónico para la salud. Intercambio de información en salud.30 de
Noviembre de 2012.
Norma Oficial Mexicana NOM-240-SSA1-2012. Instalación y operación de la
tecnovigilancia.30 de Octubre de 2012.
Norma Oficial Mexicana NOM-253-SSA1-2012. Para la disposición de sangre
humana y sus componentes con fines terapéuticos.26 de Octubre de 2012.

21. 21
ANALISIS FODA Y DOFA
PROCESO
pediatría
FUERZAS (F) INTERIOR
 Contrato colectivo de
trabajo
 Personal profesional
calificado
 Responsabilidad
compromiso
 Ética profesional
 Prestaciones
económicas para
actualización
profesional
DEBILIDADES (D)
 Personal no motivado
 recursos biomédicos
insuficientes para la
población adscrita
 (ventiladores)
 Insumos insuficientes
neonatales (sipac
nasal, etc.)
 Tomas de oxigeno
insuficiente}}
 Cuarto de aislado
insuficientes para rcp
OPORTUNIDADES (O)
 Reordenamiento de
programas prioritarios
materno infantil
 Evaluación del
desempeño laboral
 Análisis epidemiológico
de morbimortalidad
neonatal
 Fondos fijos de
material e insumos x
servicios}
 Licitaciones para
remodelación
hospitalarias anuales
Uso de fuerzas para
aprovechar oportunidades
 Reestructuración de
procesos
 Exposiciones
resultados mensual en
reuniones de cuerpo
de gobierno.
Vencer debilidades
aprovechando
oportunidades
 Elaboración de
programa de
reconocimiento al
personal acorde al
desempeño laboral
 Actualización de
fondos fijos de
insumos y
medicamentos con
base a casuística de
morbimortalidad
AMENAZAS (A)
 Dispersión
geográfica de sedes
de capacitación
 Falta de programa
preventivo de equipo
biomédico
Demandas por
CONAMED
Demandas ante el
consejo general de
salubridad
Usar fuerzas para evitar
amenazas
 Difusión de ética
profesional
 Difusión de ley Gral. de
salud y
responsabilidad legal
 Código de conducta de
servidores públicos
Reducir a un mínimo las
debilidadesy evitar
amenazas
 Actualización de
indicadores de
recursos humanos y
 Actualización de
fondos fijos de material
y medicamentos

22. 22
PLANEACION ESTRATEGICA
Plan
Estratégico Objetivos Líneas de
acción
Indicadores
Quienes lo
van a realizar
En qué
tiempo
lo van a
realizar
Desarrollar y
caracterizar por
análisis e
identificación de
las ventajas
competitivas
para lograr
estrategias
internas en el
servicio de
pediatría
mediante
supervisión
Minimización
del riesgo de
sufrir un evento
adverso durante
el desarrollo del
plan de cuidado
y ético al
paciente
pediátrico
Supervisión y
evaluación
continua de
los procesos
de
enfermería
Prestar
servicios de
salud seguro
y eficiente
con los
mínimos
riesgo al
paciente
pediátrico
Coordinar
las
acciones
de
protección
y acciones
de
promoción
de la salud
Evolución
de
recursos e
insumos y
infraestruct
ura para
prevención
de eventos
adversos
Vigilar la
venoclísis
Lavado de
manos
Identificación
del paciente
Prevención
de caídas
Prevención
de ulceras
por decúbito
Prevención
de caídas
Prevención
de
infecciones
nosocomiales
Uso correcto
de
medicamento
Las
supervisoras y
enfermeras
especialistas
al personal de
salud
Coordinadores
de calidad
Supervisora de
guardia
Jefa de
enfermeras
En un
mes
En una
semana

23. 23
.
Plan
Estratégico Objetivos Líneas de
acción
Indicadores
Quienes lo
van a
realizar
En
qué
tiemp
o lo
van a
realiz
ar
Implementación
de manuales de
procedimientos
para una mejora
continua.
Realizar
acciones de
enfermería
atreves de
herramientas
que favorezcan
la eficiencia en
el cumplimiento
de las metas
institucionales
Informar de
manera
impresa
los ajustes,
avances y
resultados de
las
herramientas
y estrategias
implementad
as para la
calidad en el
cuidado de
enfermería.
Líneas de
acción
Procedimient
os con
estándares
de calidad
Enfermeras
pediátricas
Jefa de
enfermeras
Corto
plazo

24. 24
PLAN DE MEJORA
ESCOLARES
UTIN UCIN
UCIN
UTIN
comprometido
con su labor
Colaborador
competente
Proactivo e
innovador
Seguridad del
paciente
Eficiente uso
de recursos
Abastamiento adecuado y
oportuno de medicamentos
e insumos
Salud del
trabajador
Comunicación
eficaz

25. 25
CONCLUSION
A pesar de la falta de material, equipo y recursos humanos el personal de
enfermería se encarga de manera eficiente de cumplir con su trabajo dentro del
área de PEDIATRIA,
Dentro de la unidad del servicio de PEDIATRIA se tiene la garantía de
contar con personal de enfermería, preparado en su mayoría para hacer frente a
cualquier urgencia médica mediante la práctica y experiencia que han adquirido en
diversas oportunidades que se han presentado, a pesar de las limitaciones
existentes el personal trata de brindar los cuidados y un trato de calidad. Lo que
me parece que habla muy bien del personal que integra el departamento de
enfermería.
SUGERENCIAS
 Implementar un sistema de mejora continua de la calidad de atención en el
servicio de pediatría.
 Realizar una adecuada utilización de los recursos financieros, a través del
aprovechamiento de los procesos y tecnologías disponibles, que permitan
desarrollar las actividades de enfermería.
 Llevar a cabo revisión continua de los electromédico.
 Actualización del manual de procedimientos en corto plazos con los
estándares de calidad.

26. 26
ANEXOS

27. 27
UTIN
OFICINA MEDICA
COBACHA DE MATERIAL ESTERIL

28. 28
12 mejoras prácticas INTERNACIONALES DE SSPA.
(seguridad, salud en el trabajo y protección ambiental)
1. Compromiso visible y demostrado
2.
3. Política del sspa
4. Responsabilidad de la línea de mando
5. Organización estructurada
6. Metas y objetivos agresivos
7. Altos estándares de desempeño
8. Papel de la función de sspa
9. Auditorias efectivas
10.Investigación y análisis de incidente
11.Capacitación y entrenamiento
12.Comunicación efectiva
13.Motivación progresiva.
Hospital regional Minatitlán

29. 29
PROCEDIMIENTOS INTRAHOSPITALARIOS
SECCION DE FIRMAS DE AUTORIZACION
ELABORO: REVISO: APROBÓ:
LIC. ENF. MARIA
CANDELARIA
MARTINEZ PEREZ
SUPERVISORA
03-03-08
DR. DELFINO HEREDIA
JAUREGUI
REPRESENTANTE DE
CALIDAD
05-06-08
DR. JAVIER A. G.
ARISTIGUE
DIRECTOR
06-06-08
RECOLECCION DE MUESTRAS PARA LABORATORIO
SUBDIRECCION DE SERVICIOS
MEDICOS
GERENCIA DE SERVICIOS DE
SALUD
HOSPITAL REGIONAL MINATITLAN
Clave:119-78560-PI-OP-ENF O8-1
Revisión: 1
Fecha: 01-06-07-01-06-09
Hoja: 1 de 4

30. 30
MUESTRAS SANGRES VENOSA.
Concepto: Es la toma de una cantidad de sangre, a través de una punción venosa
para su estudio cuantitativo, cualitativo o ambos.
Objetivos:
 Valorar las características físicas de los componentes sanguíneos.
 Investigar la presencia de elementos extraños, como bacterias, metales,
medicamentos y otros.
 Establecer o confirmar el diagnóstico clínico.
 Administrar, valorar o controlar el tratamiento médico.
Principios:
 Se denomina producto, muestra o espécimen de laboratorio, a todo líquido
vital, secreción o sección de un tejido orgánico que se toma con el propósito
de analizarlo.
 La sangre es un líquido del cuerpo, cuya función consiste en trasportar el
calor, gases y oxígeno a las células del organismo.
 En la sangre se realiza una gran variedad de estudios porque en ella se
encuentra entre otros elementos: hematíes, leucocitos, albúmina, globulina,
fibrinógeno, hormonas, anticuerpos y aminoácidos.
Material y equipo:
 Mesa Pasteur o charola.
 Gradilla, tubos de ensaye con y sin anticongelante.
 Jeringas desechables estériles de 5, 10, y 20 ml, (en algunas unidades
se utilizan los microtainers).
 Agujas hipodérmicas estériles de diferentes calibres (19 al 21).
 Recipiente con torundas impregnadas de alcohol.
 Lancetas hematológicas.
 Ligaduras.
 Gasas.
 Membretes o tela adhesiva para elaborarlos.
 Sábana clínica (para sujeción).
Procedimiento:
 Preparar el equipo, considerando el o los exámenes de laboratorio
solicitados y la edad del niño.
 Explicar al paciente sobre el procedimiento, si su edad y estado de salud
lo permiten.

31. 31
 Verificar que el paciente se encuentre en ayuno si el tipo de muestra así
lo requiere.
 Preparar físicamente al paciente, considerar el sitio de punción que se
ha elegido: aplicar restricción tipo momia, para punción de yugular, bajar
la cabeza del niño, sobre la orilla de la cama, sujetar la cabeza con las
manos haciendo ligera extensión y rotación del cuello.
 Colocar al niño en decúbito dorsal, para efectuar venopunción femoral,
el paciente es acostado con las piernas abiertas a modo de rana.
 Aplicar sujeción tipo momia modificada para la venopuntura de media
cefálica, basílica o del dorso de manos y pies sobre todo cuando se
requiera de continuar con soluciones intravenosas.
 Aplicar la ligadura 5 cm. Por arriba del sitio por puncionar.
 Puncionar el vaso sanguíneo seleccionado con jeringa y aguja de
acuerdo al calibre del vaso tratando de aplicar cierta presión en la piel
para tensionarla. Si se va a continuar con venoclisis, la punción debe
realizarse con el punzocath que se dejará instalado.
 Puncionar con lanceta el área de talón, yema del dedo o lóbulo de la
oreja, para obtener muestras para determinación por macroquímica.
 Obtener el volumen de sangre requerido para el tipo de estudio
solicitado y pasar de la jeringa a los tubos de ensaye, dejándola resbalar
sobre la pared del tubo o colocar en las minillas cuando se va a realizar
macroquímica.
 Suspender la ligadura si esta se utilizó.
 Ejercer presión sobre el sitio de la punción al retirar la aguja.
 Continuar con las soluciones parentales indicadas, en caso de que así
sea, conectar el equipo previamente preparado y realizar la fijación.
 Dejar al paciente cómodo en su unidad. Informar a quien corresponda
que el procedimiento ha concluido.
 Etiquetar los tubos con el nombre, registro, servicio y número de cama
dl paciente.
 Enviar las muestras al laboratorio previo registro en la libreta de control.
Colocar el material en el sitio correspondiente.

32. 32
HEMOCULTIVO.
Concepto: Conjunto de maniobras que se realizan para obtener una muestra de
sangre libre de pirógenos que pudieran encontrarse en dermis o epidermis o en
catéter venoso.
Principios:
Las venas funcionan como conductos para el trasporte de sangre de los tejidos en
su regreso hacia el corazón; en forma igualmente importante sirven como un
reservorio mayor de sangre.
Indicaciones:
o Procesos febriles para determinar el agente causal.
o Confirmar o descartar diagnóstico de sepsis y otras patologías.
Terapéutica farmacológica específica.
Material y equipo:
 Mesa Pasteur.
 Material estéril:
 Jeringa de 3 y 5 cm.
 Agujas de diferentes calibres.
 Agua inyectable.
 Bata.
 Guantes y equipo que contenga dos vasos de aceros.
 Pinza y campo hendido.
 Material no estéril:
 Cubre bocas.
 Isodine solución.
 Torundas con isodine solución.
 Etiqueta o tela adhesiva para el membrete.

33. 33
Procedimiento:
 Corroborar si el hemocultivo forma parte del conjunto de cultivos que
se solicitan de manera simultánea o se esta se realizará de manera
independiente.
 Verificar que se cumpla con las condiciones para la toma de la
muestra, en algunas instituciones se solicita que el paciente este
cursando con pico febril y que no se haya administrado antibióticos.
 Preparar el material y equipo y trasladarlo al sitio donde se realizará
la toma de la muestra.
 Colaborar en el vestido estéril del médico.
 Inmovilizar al paciente exponiendo la región de la que será tomada la
muestra o solicitar ayuda para realizar la sujeción (las venas que se
puncionan con mayor frecuencia son las yugulares).
 Solicitar a quienes colaboran en la toma el uso de cubrebocas.
 Abrir el equipo estéril en la mesa Pasteur y verter en los vasos de
acero, isodine y agua estéril, colocar en el campo una jeringa y dos
agujas.
 Aplicar presión manual o con ligadura a unos centímetros de la zona
por puncionar una vez que se realizó la asepsia y antisepsia.
 Observar la forma en que se realiza la punción venosa (igual que en
muestra sanguínea) para ofrecer el medio de cultivo en el que se
depositara la muestra previo cambio de aguja.
 La muestra se puede tomar de un catéter ya instalado al que se
realiza asepsia y lavado con agua estéril, la muestra que contiene
agua y sangre se desecha. Con una jeringa nueva se toma una
nueva, se conecta una aguja estéril y se deposita la muestra en el
medio de cultivo.
 Recolectar la cantidad mínima para la muestra, que es de 1 mL.
 Colocar la tapa al medio del cultivo, dejarlo sobre una superficie
segura (no es necesario homogeneizar) y membretar.
 Anotar en la hoja de enfermería y en la libreta de laboratorio.
 Verificar el numero de hemocultivos que se han tomado y anotar el
número que le corresponde a la muestra.
 Dejar cómodo al paciente y proporcionar los cuidados posteriores al
equipo.

34. 34
HEMOCULTIVO A TRAVÉS DE CATÉTER.
Material y equipo:
 Mesa Pasteur.
 Material estéril:
 Gasas chicas dos paquetes.
 Una jeringa de 1 ml, una de 3 ml y una de 5 ml.
 Bata quirúrgica.
 Guantes.
 Equipo de curación.
 Aguja de cualquier calibre.
 Otro material como:
 Solución de isodine, sol. Fisiológica.
 Dos ampolletas de agua inyectable.
 Heparina.
Procedimiento:
 Retirar la grasa que cubre la unión del equipo gotero con el catéter o
bien el lumen del catéter que se encuentra heparinizado.
 Colocarse cubre bocas, abrir el equipo de curación y utilizar la
compresa como campo estéril para depositar las jeringas y gasas,
vaciar en un recipiente solución fisiológica y en el otro isodine.
 Colaborar en el vestido quirúrgico de quien tomará la muestra.
 El médico prepara una jeringa de 3 ml. Con agua inyectable y la
jeringa de insulina con heparina.
 Realizar asepsia y antisepsia, en algunas instituciones se sugieren,
tres tiempos de alcohol y tres tiempos de isodine, en el último
tiempo se desconecta la extensión y se adapta la jeringa con agua
inyectable. Se inyecta suavemente el total de solución y se aspira
para obtener por lo menos 1 ml de sangre, se retira la jeringa y se
inserta una de 3 ml vacía.
 Aspirar suavemente para obtener la cantidad de sangre deseada, se
cierra el paso del catéter con la pinza de seguridad y se retira la
jeringa, se le adapta la aguja y se deposita la muestra en el medio de
cultivo.
 Conectar la jeringa con solución, despinzar el catéter y permeabilizar
el catéter. Conectar la extensión y abrir el paso de la solución. Cubrir
la unión de la extensión y el catéter con una gasa y fijar con un
micropore.

35. 35
 Heparinizar, si fuera el caso, la luz del catéter con la jeringa
preparada, colocar el tapón y pinzar.
 Retirar el equipo y dejar cómodo al paciente.
GASOMETRÍA ARTERIAL.
Concepto: Consiste en la obtención de sangre arterial para conocer las cifras de
gases sanguíneos, presión de oxígeno, de CO2 y pH.
Objetivo:
Determinar las presiones parciales de oxígeno y dióxido de carbono, pH,
bicarbonato y saturación de hemoglobina principalmente, conociendo de esta
manera la situación de oxígeno y equilibrio ácido básico del paciente.
Indicaciones:
Todos aquellos enfermos en los que aparezca dificultad respiratoria, o la
valoración indiquen la existencia de problemas respiratorios o compromiso
cardiovascular.
Principios:
 La arteria radial derecha es la más accesible para la obtención de sangre
arterial debido a que los valores de la tensión de oxígeno son más
representativos de las cantidades de oxígeno que llegan al cerebro.
 El adecuado pulso de la arteria cubital puede ser valorado por palpación o
con el uso de doppler.
 Arterioespasmo, trombosis o embolismo pueden producir blanqueamiento
de la mano y evolucionar la necrosis de los dedos.
Material y equipo:
Para punción arterial:
 Guantes.
 Jeringa de insulina.

36. 36
 Aguja de 25 mm. Miniset (mariposa).
 Torundas con isodine.
 Gasas.
 Un recipiente con hielo y heparina.
Para punción capilar:
 Capilares heparinizados.
 Lancetas estériles.
 Torundas con isodine.
 Compresa o bolsa con agua caliente.
 Recipiente con hielo.
Por línea arterial:
 Jeringa de insulina.
 Gasas estériles.
 Heparina.
 Jeringa de 3 ml y aguja de cualquier calibre estéril.
 Ámpula de agua inyectable.
 Recipiente con hielo.
Procedimiento:
 Preparar el material y equipo y trasladarlo a la unidad del paciente.
Por punción de arteria radial:
 Localizar la arteria por puncionar; generalmente la radial (también se
utilizan la humeral o femoral).
 Realizar la prueba de Allen o de verificación de la circulación
colateral de la mano para valorar la punción arterial. Consiste en
elevar la mano del paciente empuñada y ejercer compresión
directamente en las arterias radial y cubital al mismo tiempo para
obstruirlas, enseguida abrir la mano, la piel aparecerá pálida. Se
descomprime la arteria cubital y se observa el cambio de coloración,
la que en 10 segundos debe tornarse totalmente rosada (cuando se
llenan los capilares provenientes de la arteria cubital). (Medina
Rocha. En Desarrollo Científico de Enfermería. Vol. 7, Nº9, octubre,
1999).
 Palpar el recorrido de la arteria, NO se debe aplicar ligadura.
Localizar entre el tendón del músculo palmar mayor y la apófisis
estiloides del radio la arteria.
 Fijar el antebrazo y la mano del paciente con la muñeca en extensión
y supinación.
 Realizar asepsia de la piel con torunda yodada. Calzarse los
guantes.

37. 37
 Puncionar sobre el área n el que se localizo el pulso, con la aguja
bañada en heparina (heparinizada). Introducir la aguja a un lado de
la apófisis estiloide del radio en un ángulo de 30 a 45 grados y con el
bisel de la aguja hacia arriba.
 Mantener aspiración suave y continua hasta que fluya sangre en el
cuerpo de la jeringa.
 Recolectar la cantidad mínima necesaria para el análisis, 0.5 ml.
 De no refluir la sangre, sacar un poco la aguja con suavidad y volver
a introducirla lateralizándola.
 Asegurarse que la sangre obtenida es arterial observando su color
(rojo vivo).
 Retirar la aguja con la jeringa comprimiendo fuertemente el lugar de
punción durante al menos tres minutos.
 Verificar la existencia de un adecuado flujo sanguíneo de la mano
interesada.
 Evitar que la muestra se ponga en contacto con el aire por lo que se
coloca el protector de la aguja inmediatamente. Realizar las
maniobras necesarias para retirar cualquier burbuja de aire del
interior de la jeringa y doblar la aguja.
 Colocar la jeringa en un recipiente o bolsa con hielo, si la medición
no se realizará inmediatamente.
 Identificar la muestra y enviar al laboratorio. Registrar en la hoja de
enfermería y en la solicitud de laboratorio: FiO2, temperatura, TcPO2,
saturación de oxígeno del paciente, hora y cantidad de sangre
extraída.
 Desechar en el contenedor específico el material utilizado, el material
que no se utilizó colocarlo en el anaquel correspondiente.
Por punción capilar (sangre arterializada):
 Procedimiento que se realiza por punción del talón en recién nacidos
a término y pretérmino.
 Aplicar calor local en el área por puncionar.
 Realizar asepsia con torunda yodada.
 Inmovilizar colocando el índice y el pulgar alrededor del talón.
 Puncionar con lanceta, realizando un movimiento rápido, en el borde
interno o externo del talón.
 Ejercer ligera presión para estimular la salida de la sangre. Colocar
el extremo heparinizado del capilar en un ángulo de 45o junto al sitio
de punción y en contacto con la piel, sin que se introduzcan burbujas
de aire.
 Ejercer presión en el sitio de punción, manualmente o por medio de
una pequeña torunda seca y una tira de micropore.
 Sellar los tubos capilares con un poco de plastilina.

38. 38
 Enviar la muestra al laboratorio anotando en la solicitud de examen y
en la hoja de enfermería: FiO2, temperatura, TcPO2 y saturación de
oxígeno.
 Mantener la muestra en el hielo cuando no sea posible su
procesamiento inmediato.
Por línea arterial:
 Verificar que se encuentra instalado un catéter arterial por punción o
arteriodiseeción.
 Impregnar las paredes de la jeringa de un mililitro (de insulina) con
heparina.
 Colocar por debajo de la llave de tres vías una gasa o campo estéril.
 Identificar el lumen del que se tomara la muestra, en el caso de
catéter con varios lúmenes (luces).
 Cerrar el paso de la solución al paciente. Las líneas arteriales están
conectadas en todos los casos a bomba de infusión o se heparinizan
para mantenerse cerradas.
 Conectar la jeringa con agua bidestilada para lavar el trayecto del
catéter.
 Abrir el paso hacia la jeringa y extraer suavemente el embolo para
obtener la sangre y solución acumuladas en el trayecto del catéter.
 Cerrar la llave de tres vías para retirar la jeringa y colocarla sobre la
gasa estéril. Conectar la jeringa heparinizada y abrir la llave, aspirar
para obtener 0.5 ml. De sangre.
 Cerrar la llave, retirar la jeringa con la muestra y conectar
nuevamente el equipo de solución o la jeringa con la que se realizó
el lavado inicial y colocar el tapón heparinizado. Abrir la llave de tres
vías.
 Colocar la aguja con protector a la jeringa de la muestra y poner
sobre hielo.
 Enviar al laboratorio una vez que se hayan anotado en la hoja de
solicitud y de enfermería la temperatura corporal del paciente en el
momento de la toma.

39. 39
OBTENCIÓN DE MUESTRA DE ORINA.
Concepto: Recolección de una porción de orina para estudiar sus características
físicas y químicas.
Objetivos:
 Estudiar la cantidad y presencia de componentes normales y
anormales en orina.
 Valorar la excreción urinaria de proteínas, glucosa, pH, osmolaridad
y densidad.
 Orientar el diagnóstico de enfermedades donde se involucre la
función renal.
 Establecer y evaluar el tratamiento.
Principios:
 La micción es el proceso por el cual la vejiga vacía su contenido
después de haberse llenado.
 La orina es un producto de desecho de la función renal. Necesario
para el equilibrio de los líquidos orgánicos.
 La orina contiene productos orgánicos como urea, ácido úrico y
creatinina, además de compuestos inorgánicos, siendo el amoniaco
el más abundante.
 Para que el organismos funcione eficazmente es necesario que se
eliminen las substancias tóxicas a través de la orina.
 La vejiga es una cámara de músculo liso que se componen de dos
partes principales, el cuerpo y el cuello.
Material y equipo:
 Mesa Pasteur o charola.
 Cubrebocas.
 Equipo de aseo (pinza, vaso y riñón de acero).
 Guantes.
 Recipientes de boca ancha, limpios o estériles según el caso.
 Bolsas colectoras.
 Orinal o cómodo.
 Etiquetas o tela adhesiva.
Procedimiento:
 Preparar el equipo y material a utilizar.
 Explicar al niño el procedimiento a realizar, si esta en edad de
comprender.

40. 40
 Proceder a recolectar la muestra de acuerdo al estudio solicitado.
Estos pueden ser: examen general de orina, urocultivo o recolección
de 24 horas.
Examen general de orina (EGO):
 Colectar la primera orina de la mañana. Colocar al paciente en
semifowler con las piernas en posición de rana.
 Colocar orinal, bolsa colectora o cómodo, de acuerdo a la edad y
sexo del paciente.
 Utilizar tubo de ensaye, cuando los niños son pequeños o cuando no
se dispone de bolsas colectoras. Forrar la “boca” del tubo con tela
adhesiva, introducir el pene en el tubo y pegar la tela adhesiva al
pubis.
 Revisar al niño frecuentemente para evitar que la orina se derrame.
 Proporcionar, a los niños mayores, el orinar o el cómodo, indicarles
que orinen una pequeña cantidad en el orinar, detengan el chorro y
depositen el segundo chorro en la bolsa colectora, frasco o tubo que
proporcionar el laboratorio.
 Estimular la micción, se recomienda abrir la llave del agua para que
el niño escuche como corre o realizar maniobra de “crede”
ejerciendo presión por arriba de la sínfisis del pubis.
 Etiquetar la muestra y enviarla al laboratorio. Realizar la anotación
correspondiente en la hoja de enfermería y en la libreta de control.
Urocultivo (URO):
 Por aseo:
 Colocar al paciente en posición de cúbito dorsal con las piernas
abiertas.
 Usar cubrebocas para realizar limpieza del área genital con técnica
aséptica.
Niñas:
 Utilizar guantes estériles y torundas con solución antiséptica,
separar los labios mayores con los dedos pulgar e índice y hacer
aseo de arriba hacia abajo (desde el clítoris hacia el ano). Utilizar la
torunda una sola vez. Repetir este pasó con agua estéril. Limpiar el
borde de los labios menores. Secar la región con gasas o torundas
estériles.
Niños:
 Utilizar guantes estériles para limpiar el pene perfectamente con
solución antiséptica realizando movimientos circulares en dirección
al escroto. Retraer el prepucio y asear con solución antiséptica y
agua, repetir dos o tres veces. Secar la región con gasa estéril.
 Indicar al paciente que orine y desechar el primer chorro. Colectar el
segundo chorro en el frasco estéril y cerrarlo (ciertos centros
corticales son capaces de controlar la micción después de los dos o
tres años de edad.

41. 41
 Si el paciente no coopera, colocar la bolsa colectora y mantenerlo
sin pañal con los pies sujetos a nivel de los tobillos, tan pronto como
se presente la micción (cantidad necesaria para el análisis uno a dos
ml.), retirar la bolsa y cerrarla inmediatamente.
 Etiquetar la muestra, registrar en la libreta de control y enviar al
laboratorio.
 Verificar si se realizará “protocolo de sepsis” y preparar el material,
en caso necesario.
Por punción suprapúbica:
Indicaciones:
Menores de dos años.
Material y equipo:
Mesa Pasteur con:
 Material estéril:
 Bata quirúrgica.
 Guantes.
 Bolsa colectora.
 Jeringa de 3 y 5 ml.
 Aguja hipodérmica calibre 22.
 Gasas y torundas.
 Equipo para punción integrado por dos vasos de acero.
 Un campo hendido y una pinza.
 Material no estéril:
 Cubrebocas.
 Hoja de registro.
 Bolígrafo.
 Solución de isodine y agua estéril.
Procedimiento:
 Procedimiento que se realiza con mayor frecuencia en neonatos.
 Verificar la hora en que se ingirieron líquidos y que no se haya presentado
micción.
 Retirar el pañal para descubrir la región de la sínfisis del pubis y abdominal.
 Palpara para localizar la vejiga, si este contiene orina rebasará el borde de
la sínfisis del pubis.
 Aplicar algún método de sujeción o contar con un colaborador que
inmovilice al niño del tórax y los muslos.
 Colaborara en el vestido quirúrgico del médico. Quien sujeta al niño deberá
usar cubrebocas.

42. 42
 Utilizar presión recta anterior en el sexo femenino y comprensión en el
tercio medio del pene en el masculino para impedir la micción durante el
procedimiento o antes de este.
 Clocar al paciente en posición supina y sostener las piernas en posición de
rana, el ayudante lo inmovilizará.
 Quien realizará la punción conectará la aguja a la jeringa, la introducirá en
un ángulo de 20o inclinada caudalmente en la línea media de la pared
abdominal y 0.5 o un centímetro por arriba de la sínfisis del pubis, para
aspirar suavemente hasta obtener orina, retirará la aguja rápidamente y
colocará una gasa estéril en el sitio de punción.
 Desconectar la aguja de la jeringa y depositar la muestra en un frasco
estéril.
 Verificar que no existan datos de sangrado que indiquen la presencia de
complicaciones como: perforación, hemorragia (punción del plexo venoso
prevesical) o punción intestinal.
 Colocar el pañal y dejar cómodo al paciente. Membretar la muestra, enviar
a laboratorio y realizar las anotaciones correspondientes.
Recolección de orina de 24 horas:
Procedimiento:
 Verificar la edad y condiciones generales del niño, para elegir el
procedimiento por medio del cual se recolectara la orina, considerando que
si se tira una orina, los resultados de la recolección no serán precisos e
incluso podrá suspenderse la recolección.
 Iniciar el periodo de recolección en el horario especifico, generalmente las
8:00 horas, siempre debe desecharse la primera orina.
 Colocar una tarjeta en la cabecera de la cama del paciente con la leyenda
“recolección de orina de 24 horas”.
 Membretar el frasco colector (proporcionado por el laboratorio) y
mantenerlo tapado en lugar seguro y fresco.
 Cuando el niño es pequeño:
Colocar una bolsa colectora de orina e introducir una sonda de alimentación
en su borde superior para obtener la orina con una jeringa las veces que
sea necesario.
 Cuando el niño es mayor:
Solicitar al niño y familiares que depositen la orina obtenida en el frasco
colector.
 Anotar en el membrete la hora y la cantidad total de orina colectada al
terminar el periodo de 24 horas, anotar en la línea de control y enviar de
inmediato al laboratorio.

43. 43
OBTENCIÓN DE MUESTRAS DE MATERIA FECAL.
Concepto: Es la recolección de materia fecal con el fin de realizar examen
macroscópico, microscópico, parasitológico, químico o bacteriológico.
Objetivos:
 Comprobar la presencia de sangre, parásitos o bacterias en materia fecal.
 Contribuir a establecer el diagnóstico y tratamiento de algunas
enfermedades.
 Evaluar la eficacia del tratamiento.
Principios:
 La materia fecal se genera en el tracto intestinal al final del proceso de la
digestión de los alimentos.
 Normalmente las heces fecales contienen bacterias (la mayor parte
muertas), células epiteliales descamadas, residuos alimenticios, pigmentos
biliares, moco y sales inorgánicas.
 En procesos patológicos las heces pueden contener moco, sangre, pus,
parásitos adultos o huevecillos.
 La materia fecal es un producto orgánico que se altera si se mantiene por
largo tiempo en el medio ambiente.
Material y equipo:
 Mesa Pasteur o charola clínica que contenga:
 Abatelenguas.
 Tubos para coprocultivo.
 Guantes desechables.
 Etiquetas.
 Cómodo.
 Papel sanitario.
 Pañales y ropa de cama.
Procedimiento:
 Preparar el equipo y trasladarlo a la unidad del paciente.
 Explicar al niño, si su edad y condición de salud lo permiten, el tipo de
muestra que se necesita y la forma precisa de participar en el
procedimiento.
Coproparasitoscópico (CPS):
 En niños mayores se ofrece el cómodo y se pide al niño que evacue. En
niños pequeños se espera a que defequen en el pañal para obtener la
muestra.

44. 44
 Retirar el cómodo o poner al niño un pañal limpio, según el caso. Dejarlo
seguro en su cama o cuna.
 Tomar el cómodo o pañal, con los guantes puestos, llevarlo al cuarto
séptico y tomar con el abatelenguas una porción del excremento y
depositarla en el recipiente. Sellar el envase.
 Solicitar apoyo para el aseo del séptico, desechar guantes y demás
consumibles y realizar lavado de manos.
 Etiquetar el envase de la muestra con los datos siguientes: nombre, número
de cama, registro, número de muestra y el examen a realizar.
 Registrar en la libreta de control y enviar la muestra al laboratorio
inmediatamente.
Coprocultivo:
 Verificar si esta muestra forma parte del denominado “trabajo de sepsis” en
el que también se toma urocultivo, hemocultivo y cultivo de cualquier
secreción.
 Descubrir la región perianal.
 Colocar al niño en posición de simso decúbito dorsal con las rodillas
flexionadas sobre el abdomen y sujetarlo firmemente.
 Colocarse guantes.
 Mojar el algodón del aplicador en el medio de cultivo, y ya húmedo
introducirlo de 3 a 5 cm en la región anal, haciendo un movimiento rotatorio
rápido.
 Introducir el aplicador en el tubo, procurando que el algodón quede dentro
del medio de cultivo.
 Cubrir al niño, si es el caso, cambiar el pañal y dejarlo cómodo. Retirar los
guantes.
 Membretar la muestra y registrarla en la libreta de control, enviar al
laboratorio inmediatamente.

45. 45
OBTENCIÓN DE MUESTRAS DE LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO.
Para la obtención de líquido cefalorraquídeo se requiere de realizar la punción
lumbar por lo que se explicará este procedimiento.
Concepto: procedimiento médico en el cual se introduce un catéter en el espacio
subaracnoideo con fines diagnósticos y/o terapéuticos.
Objetivos:
 Conocer la presión del líquido cefalorraquídeo (LCR).
 Obtener líquido cefalorraquídeo para realizar pruebas de laboratorio.
 Introducir medio de contraste o fármacos en el espacio subaracnoideo.
 Disminuir la presión intracraneal.
Principios:
҉ El LCR se forma en los ventrículos del encéfalo, circula sobre su
superficie, bañando el encéfalo, la medula espinal y las raíces nerviosas, y
se resorbe por las vellosidades aracnoideas.
҉ No hay comunicación directa entre el LCR y el abasto sanguíneo cerebral
(barrera hematoencefálica) en la persona sana normal. Las sustancias
pueden cruzar estas barreras por medio de un trasporte activo (iones
químicos de K, H, Mg y Ca). Varios mecanismos patológicos abren la
barrera por ejemplo, hipertensión aguda e hipercapnia.
Indicaciones:
Ö Sospecha de meningitis, encefalitis, absceso encefálico, hemorragia
subaracnoidea, leucemia que infiltra a SNC, esclerosis múltiples, síndrome
de Guillain Barré y tumor de la médula espinal (no tumores intracraneales).
Ö Documentar deterioro en el flujo de LCR.
Ö Diagnostico diferencial de síndromes hemorrágicos respecto a los
isquémicos en enfermedades vasculares cerebrales o en diagnostico
diferencial de infarto cerebral respecto a hemorragia intracerebral.
Ö Introducción de anestésicos, medio de contraste radiográfico o ciertos
medicamentos (por ejemplo metrotexate).
Contraindicaciones: Presencia o sospecha de tumores intracraneales debido al
potencial de herniación tentorial con cambios de presión. En la mayoría de los
casos, cuando hay aumento de la presión intracraneal y papiledema.

46. 46
Material y equipo:
∆ Mesa Pasteur con:
Material estéril:
∆ Campos.
∆ Gasas.
∆ Bata.
∆ Guantes y equipo de punción lumbar que contiene aguja para infiltración.
∆ Trocar para punción o aguja de punción raquídea.
∆ Jeringa de 5 y 10 ml.
∆ Agujas de diferentes calibres.
∆ Llave de tres vías y manómetro de Claude.
Otro material:
∆ Tubos con tapón de rosca de baquelita.
∆ Solución de iodopavidona (isodine).
∆ Agua inyectable.
∆ Micropore.
∆ Tela adhesiva.
∆ Tira reactiva de destrostix.
∆ Xilocaina al 1 y 2 por ciento.
Procedimiento:
ø Integrar el material y equipo, trasladarlo al cuarto clínico o sitio en el que se
realizará la punción.
ø Preparar psicológicamente al niño de acuerdo con su edad y condición
clínica.
ø Colocarse cubrebocas, abrir el equipo de punción lumbar y agregar el
material necesario.
ø Realizar funciones de circulante, ayuda l medico a vestir con ropa estéril.
ø Colocar al paciente en posición de cúbito lateral derecho o izquierdo
manteniéndolo a unos diez centímetros del borde de la cama.
ø Colocar una almohada debajo de la cabeza y solicitar al niño que flexione la
nuca, hombros y rodillas. Puede requerirse de dar la posición colocando
una mano de quien sujeta en el hueco popítleo, apoyando el cuerpo en el
tronco del niño y la otra mano en la nuca.
ø Utilizar la posición de sentado en niños mayores, al borde de la cama y con
el tronco flexionado al máximo, pidiéndole que intente mantener la cabeza
entre sus rodillas.
ø Sujetar al paciente con firmeza, vigilando sus funciones vitales,
especialmente la respiratoria.
ø Preparar la piel con antiséptico, removiendo este con alcohol al 70%, el
médico infiltra una pequeña cantidad de anestésico para puncionar entre la
3a y 4a o entre la 4a y 5a vértebra lumbar, tomando como referencia una
línea imaginaria a la altura de las crestas iliacas. Marca la dirección de las

47. 47
apófisis espinosas e introduce el trocar perpendicularmente a través de las
fibras del ligamento interespinoso.
ø Retira el estilete y coloca una llave de tres vías para conectar el
raquimanómetro y registrar la presión inicial de LCR, de ser necesario. La
presión normal de LCR varía entre 8 y 16 centímetros de agua; entre 17 y
20 se considera dato dudoso y arriba de 20 hay certeza de hipertensión.
ø Deja fluir el líquido por la aguja hasta obtener un promedio de nueve
milímetros. La cantidad necesaria para citoquímico es de 6 ml y 3 ml para
cultivo. Los exámenes especiales deben especificarse, por ejemplo
aglutinación de látex para antígenos bacterianos o BAAR.
ø Observar las condiciones del líquido: no debe salir a presión (goteará), ha
de ser claro (como agua de roca) y no se debe mezclar con ningún otro
fluido (sangre o pus).
ø Tomar una gota de LCR para realizar la prueba de glucemia. Contiene de
manera normal de 50 a 75 mg % de glucosa.
ø Medir la presión final.
ø Retirar la guja rápidamente, puede desconectarse el manómetro o
mantenerse fijo a la de tres vías.
ø Colocar una gasa estéril en el sitio de punción, ejerciendo presión durante 5
minutos, retirar el excedente de iodopavidona y fijar la gasa con micropore
o tela adhesiva.
ø Membretar los tubos de las muestras con los datos del paciente y enviarlos
inmediatamente al laboratorio.
ø Trasladar al paciente a su cama y mantenerlo en posición de decúbito
dorsal por lo menos durante 30 min.
ø Tomar signos vitales y vigilar signos neurológicos.
ø Dar cuidados posteriores al equipo y realizar anotaciones en la hoja de
enfermería.
ø Verificar que no existan datos de complicaciones inmediatas al
procedimiento como pueden ser: dolor en miembros inferiores durante la
punción, cefalea de varios días de duración o parestesias.

48. 48
OBTENCIÓN DE MUESTRAS DE MÉDULA ÓSEA.
Concepto:
 Aspiración. Extracción, por punción y a través de una aguja colocada en la
cavidad medular del hueso, de una muestra de médula ósea para estudiar
los elementos figurados de la sangre y sus precursores.
 Biopsia. Toma de un trozo pequeño de tejido medular a través de una aguja
colocada en la cavidad medular del hueso.
Objetivo: Obtener médula ósea con fines diagnósticos para observación al
microscopio (padecimientos hematológicos, metabólicos, y de la colágena) o para
cultivos (CMN siglo XXI, 1998:699).
Principios:
» El sistema hematopoyético incluye a la sangre, los sitios en los que se
produce ésta y sus componentes, como médula ósea y ganglios linfáticos.
» La médula ósea ocupa el interior de los huesos esponjosos y la cavidad
central de los huesos largos. Le corresponde a 5% del peso corporal total y,
en consecuencia, es uno de los órganos más grandes. Puede ser de dos
tipos, roja o amarilla. La medula roja es el sitio de producción activa de
elementos celulares de la sangre y el órgano hematopoyético (productor de
sangre) principal, en tanto que la médula amarilla se compone ante todo de
grasa y no participa en la formación de los elementos celulares de la
sangre.
» Aunque es posible identificar precursores hematopoyéticos en diversos
tejidos, solo en la médula ósea tienen lugar en forma simultánea
mielopoyesis, eritropoyesis y linfopoyesis.
» La arteria nutricia, por donde llega el aporte principal de sangre a los
huesos, penetra en la cavidad medular a través del foramen nutricio. Las
ramas de este vaso dan lugar a capilares corticales que, a su vez, unen a
los sinusoides de la médula ósea, drenando en el seno central.
» La hematopoyesis se produce en los espacios intersinusoidales y las
células sanguíneas en vías de maduración penetran en la circulación
sistémica pasando entre las células endoteliales y atravesando la fina
membrana basal que la separan de la luz. Por tanto, la médula ósea es un
órgano muy compatimentalizado ; sus dos compartimientos principales
son el vascular y extravascular (hematopoyético).

49. 49
Indicaciones:
Θ Diferenciación de la anemia crónica por deficiencia de hierro de la anemia
producida por enfermedad crónica.
Θ Diagnóstico de ciertas invasiones de células tumorales en medula ósea,
como en la enfermedad de Hodgkin, linfomas no Hodgkin, mielomas,
leucemia, carcinoma broncogénico de células pequeñas, neuroblastoma,
rabdomiosarcoma embrionario y en el carcinoma de mama.
Θ Todos los casos de tumores sólidos que se acompañen de anemia de
origen no determinado.
Θ Diagnóstico, pronóstico y evaluación de la respuesta terapéutica en las
hemopatías (leucemia mieloide crónica, leucemias agudas).
Material y equipo:
Mesa Pasteur con:
♣ Material estéril:
♣ Torundas.
♣ Aguja para médula ósea No. 18 y 19.
♣ Aguja para punción lumbar No. 21.
♣ Jeringa de 20 y 3 ml.
♣ Compresas.
♣ Gasas.
♣ Guantes del número correspondiente.
♣ Ocho laminillas (portaobjetos) y cubreobjetos.
♣ Fuente huminosa.
♣ Isodine.
♣ Xilocaina.
♣ Tela adhesiva.
Para la biopsia además de este equipo:
♣ Aguja de Vim-Silverman.
♣ Jamshi.
♣ Ilinois o Mesterman- Jensen.
♣ Solución de ácido acético de Zenkers o formaldehido.
Procedimiento:
Reunir el material y trasladar al niño al sitio en el que se realizará la
punción.
Explicar al niño y su familiar el procedimiento y la forma en que podrá
cooperar durante este.
Asistir al vestido estéril de quien realizará la punción.
Elegir el sitio por puncionar, se prefieren la cresta iliaca anterior, posterior o
tibia. La punción esternal se practica en raras ocasiones.

50. 50
Colocar en posición de acuerdo con el sitio elegido: cresta iliaca extremo
posterior. Decúbito lateral, con el cuello, rodillas y caderas flexionados o en
decúbito prono, con una almohada bajo la pelvis para elevarla ligeramente.
Cresta iliaca extremo anterior, decúbito supino o lateral.
El médico realizará la asepsia y antisepsia de la región. Inyectará el
anestésico local y colocará los campos quirúrgicos.
Insertará a la aguja de bisel corto, con el estilete en su lugar, colocándola
perpendicularmente a la piel, y atravesará ésta y los tejidos subcutáneos,
hasta el periostio. Empujará la aguja a través de la corteza, con presión
firme y bien controlada.
Posterior. La aguja se introduce varios centímetros por fuera de la unión
iliosacra, ya sea entrando al plano óseo de la cresta con la aguja dirigida
hacia abajo y hacia la espina iliaca anteroinferior, o bien entrando pocos
centímetros por debajo de la cresta en ángulo recto con la superficie ósea.
Anterior. La aguja entra dos centímetros por detrás y debajo de la espina
iliaca anterosuperior y en ángulo recto con la superficie del hueso.
Al penetrar la aguja dentro de la médula se percibe un ruido especial.
Retirará el estilete y conectará a la aguja una jeringa vacía de 20 ml, al
aspirar intensamente durante algunos segundos, una pequeña cantidad de
médula aparecerá en la jeringa (no aspirar más de 0,2 ml para evitar la
dilución con sangre sinusoidal). Extraerá la aguja.
Ejercer presión local en el sitio de la punción, durante 3 a 5 minutos, o
cuando haya desaparecido toda evidencia de sangrado; cubrir con gasa
estéril realizando compresión.
La muestra se extiende en laminillas.
Biopsia:
El médico introduce la aguja especial en el periostio y la empuja
sostenidamente hasta que atraviesa la corteza del hueso y penetra a la
cavidad medular. La aguja se dirige hacia la cavidad medular girando
alternativamente la aguja interior hacia derecha e izquierda. Se saca la
aguja exterior, el tejido se saca de la aguja y se coloca en un frasco para
muestra.
Trasladar al paciente a su unidad y dejarlo cómodo.
Membretar las muestras, realizar el registro en la libreta y enviarlas al
laboratorio.
Anotar en la hoja de enfermería lo relacionado con el procedimiento.

51. 51
ACCESOS VENOSOS Y ARTERIALES.

52. 52
VENOCLISIS.
Concepto: Es la introducción de líquidos al torrente sanguíneo a través de un
dispositivo colocado en una vena periférica.
Objetivo:
Introducir en venas periféricas tubos de silastic o de polivinilo para el paso de
tratamiento (líquidos intravenosos, medicamentos, sangre o sus componentes)
directos al torrente circulatorio.
Principios:
Ω La presión sanguínea es mayor que la atmosférica.
Ω El sistema venoso almacena cerca de 65% del total del volumen de sangre
del sistema circulatorio. Las vénulas reciben sangre procedente de los
capilares y hacen de conductores recolectores y vasos de capacitancia
(almacenamiento).
Ω Las venas son vasos de capacitancia que conducen sangre al corazón en
un sistema de baja presión. Están rodeadas de músculos estriados. Cuando
los músculos se contraen, comprimen las venas impiden el flujo retrógrado.
En condiciones normales, la bomba venosa mantiene la presión venosa en
las extremidades inferiores en 25 mm. Hg o menos. La gravedad tiene un
efecto importante en el individuo inmóvil y erguido.
Material y equipo:
€ Solución indicada preparada en un equipo gotero (microgotero-metriset,
macrogotero o normogotero) previamente purgado, con tira horaria y
membrete. Solución para mantener vena permeable (glucosa al 5%) en
equipo gotero que será utilizando temporalmente, purgado.
€ Tintura de benjuí, ligadura, torundas con alcohol o iodopavidona, avión
previamente acolchonado (férula para fijación), 2 o 3 punzocat del No. 19 al
23.
€ Tiras de tela adhesiva cortadas en: 2 tiras largas, 4 pequeñas (corbatas), 2
rectangulares, una con 2 incisiones en la parte superior, todo proporcional
al tamaño del paciente, rectángulo cortado en “H”, tramo al que se adhiere
en el centro un rectángulo para dejar sin adhesivo esta área.
€ Tijera, pinza, micropore, carro cuna para trasladarlo con tripie, bolsa de
desechos, lámpara de pie o fuente de luz, material para sujeción del
paciente en caso necesario (una sabana clínica o huata y venda de gasa de
5 cm).

53. 53
Procedimiento:
 Tener listo el material y equipo en el cuarto clínico.
Preparar solución para vena permeable en un metriset y en otro la solución
indicada, purgar ambos equipos. Colocar las soluciones en un tripie
(portasueros).
Cortar las tiras de tela adhesiva que se utilizarán para la fijación.
 Explicar al niño y familiar el procedimiento a realizar y la forma precisa de
participar en él.
 Trasladar al paciente al cuarto clínico y solicitar la ayuda de otra persona de
enfermería.
 Seleccionar la vena que se va a puncionar, de preferencia venas periféricas
de brazo o pie. Como regla general debe intentarse el abordaje venoso en
la zona más distal.
 Identificar por palpación de la vena: trayecto, movilidad y diámetro.
Seleccionar preferentemente una vena completamente recta. Las venas del
dorso de la mano no son adecuadas cuando se van a administrar fármacos
por esta vía. Elegir el catéter con el que se realizará la punción.
 Evitar puncionar venas que se ubiquen en sitios de flexión, que hayan sido
puncionadas recientemente, de una extremidad dañada o muy cerca de un
herida quirúrgica.
 Hablar al niño con tono suave durante todo el procedimiento, tranquilizarlo y
explicar los beneficios que tendrá. Usar caricias y evitar los movimientos
bruscos.
 Aplicar inmovilización mediante una técnica de sujeción, dejando libre
únicamente el miembro que se va a puncionar, el cual debe sujetarse
firmemente por quien colabora en el procedimiento.
 Dilatar la vena, lo que puede lograrse al presionar en forma moderada con
ligadura, de preferencia usar presión manual, cinco a siete centímetros por
arriba del sitio que se va a puncionar; pidiendo al paciente que abra y cierre
el puño repetidas veces, golpear ligeramente la vena con la punta de los
dedos.
 Destapar el punzocath (sin sacarlo de la envoltura). Realizar el aseo de la
región con solución antiséptica de acuerdo con los protocolos
institucionales, dejar secar.
 Fijar la piel con la mano no dominante, sacar el punzocat de su envoltura.
 Existen tres métodos para realizar la punción venosa:
Directo: con el bisel de la guja hacia arriba, colocarla directamente sobre la
vena en la dirección del flujo sanguíneo, insertar el catéter en un ángulo de
10 a 30 grados. Bajar el catéter casi paralelo a la piel y avanzarlo.
Indirecto: con el bisel de la aguja hacia arriba puncionar la piel adyacente a
la vena, dirigir la aguja hacia un lado de la pared de la vena y luego
enderezar el ángulo para entrar a la vena.
Flotación: entrar a la vena con alguno de los métodos anteriores, con los
dedos aplicar presión sobre la vena (más allá de la punta del catéter), retirar
la aguja del catéter, conectar el equipo gotero, dejar pasar el fluido a una

54. 54
velocidad moderada para dilatar la vena y avanzar el catéter a la posición
deseada.
 Bajar el ángulo de inserción y avanzar el catéter con el estilete siguiendo el
trayecto de la vena.
 Observar la presencia de sangre en el punzocat o en el trayecto del tubo
del miniset.
 Verificar la permeabilidad pasando agua inyectable con una jeringa. Esta
debe pasar sin resistencia y al aspirar debe obtenerse sangre.
 Retirar lentamente la aguja guía del punzocat al tiempo en que se introduce
la guía de plástico, de ser posible, en su totalidad, en el trayecto venoso.
 Retirar la ligadura, para permitir el paso de solución.
 Pedir al ayudante que con un movimiento rápido conecte el equipo gotero
que contiene la solución para mantener vena permeable al punzocath y que
abra las dos pinzas (carretilla y pinza).
 Verificar que la solución pase a goteo rápido y que no exista edema o
enrojecimiento en el sitio de punción.
 Ver paso lento de la solución aún en ausencia de edema puede indicar: que
se requiere de dar mayor altura al frasco de solución, que se está
ejerciendo demasiada presión manual en el punzocat, que la parte exterior
del punzocat se ángulo, entre otras.
 Aplicar benjuí en la periferia de la zona puncionada, nunca en el sitio de
punción y proceder a fijar.
 Colocar la tela adhesiva rectangular con dos cortes sobre la línea que
dibuja el trayecto del punzocat, con la tela adhesiva que comprende los
cortes se cubrirá la mayor parte de la base del pabellón (boquilla de color)
envolviéndolo.
 Pasar por debajo del punzocath las telas tiras pequeñas (corbatas)
manteniendo el adhesivo hacia arriba, cruzarlas a manera de “abrazar” el
punzocath.
 Colocar la segunda tela rectangular sobre las ya colocadas.
 Colocar la férula (avión) previamente acojinada, solicitar al niño que la
sujete con la mano para valorar que sea adecuada al tamaño de la mano
del niño.
Fijación en cruz:
 Sujetar la mano con las tiras largas; cruzándolas por debajo de la entrada
del punzocat, nunca por arriba.
 Usar micropore antes de colocar las telas adhesivas largas, en recién
nacidos, en niños con lesiones de piel, o en niños que han sido
multipuncionados.
 Colocar el tramo de tela adhesiva que tiene un rectángulo pegado en el
centro para fijar el extremo de la férula.
 Colocar el cuadro de la tela adhesiva por encima del punzocat con los
siguientes datos: fecha, hora y nombre o iníciales de la persona que lo
instalo.

55. 55
 Fijar el tubo del metriset formando círculos o siguiendo el trayecto del avión
con la tela adhesiva cortada en “H”.
 Cambiar el frasco de solución, retirar el que contiene soluciones para
mantener vena y colocar el de las soluciones preparadas.
 Trasladar al niño a su cuna e inmovilizar el miembro canalizando
sujetándolo con las vendas al tambor de la cuna, permitiéndole cierta
movilidad al brazo.
 Sujetar, si es necesario, el brazo o pie contrario colocando primero un
tramo de venda de huata y abajo un tramo de tela adhesiva para formar una
pulsera, antes de cerrarla colocar una venda de gasa atravesada.
 Dejar cómodo y limpio al paciente.
 Realizar las anotaciones específicas en la hoja de enfermería y en la libreta
de vigilancia epidemiológica o de control de catéteres.
 Revisar el sitio de punción en búsqueda de signos de infiltración como son:
edema, dolor, rubor, aumento de la temperatura local.
 Realizar rotación (cambio) del sitio de punción de venoclísis conforme lo
establezca en Comité de Infecciones Hospitalarias. En pacientes
pediátricos no se recomiendan las rotaciones sistemáticas, ni aun en casos
de transgresión de las medidas de asepsia en el momento de la colocación.
 Cambiar el o los equipos de infusión cada 72 horas cuando se administren
soluciones isotónicas o hipotónicas (dextrosa al 5%, cloruro de sodio al
0.9% y ringer con lactato) ealizar.
Cambiar los equipos de infusión cada 24 horas si se está infundiendo
solución hipertónica (dextrosa al 10%, 20% o nutrición parenteral).
 Evitar desconexiones innecesarias del equipo gotero para realizar
procedimientos habituales como bañar al paciente, deambulación asistida,
traslados, entre otros.

56. 56
ONFALOCLISIS.
Concepto: caracterización de una arteria o vena umbilical (Instituto
Nacional de Pediatría, 1994: 526).
Objetivo:
∑ Ministrar cantidades necesarias de líquidos, para mantener el
equilibrio hidroelectrolítico y la presión sanguínea normal.
∑ Mantener una vía venosa permeable en el recién nacido menor de
cinco días de vida.
∑ Realizar exanguineotransfusión.
Principios:
› Los cuerpos extraños ocasionan lesiones tisulares que originan una
respuesta inflamatoria.
› Los microorganismos penetran a la circulación en forma directa
cuando se realizan procedimientos invasivos sépticos.
› En el recién nacido, el agua constituye el 80 % del componente de
su organismo.
› Los niños requieren de un ingreso diario hasta de 150ml. De agua
por kilogramo de peso.
› Se necesitan concentraciones adecuadas de potasio intracelular y de
sodio extracelular para mantener el equilibrio hídrico y ácido base.
Indicaciones:
Ф En el recién nacido, antes de las primeras 72 horas de vida.
Ф Cateterización arterial: monitorización frecuente de gasometrías
arteriales y monitoreo de presión sanguínea arterial.
Ф Cateterización venosa: exanguineotransfusión, monitorización de
presión venosa central, infusión de soluciones (cuando es central),
acceso vascular urgente para infusión de soluciones, sangre o
medicamentos.
Material y equipo:
Equipo estéril:
ж Catéter para canalizar vena umbilical (polivinilo o silastic).
ж Equipo para venodisección.
ж Equipo gotero (metriset preferentemente) .
ж Bata quirúrgica.

57. 57
ж Guantes.
ж Gasas.
ж Hoja de bisturí.
ж Seda dos y tres ceros.
Otro material:
ж Gorro.
ж Cubrebocas.
ж Micropore.
ж Tela adhesiva.
ж Anestésico local.
ж Solución antiséptica.
ж Solución o mezcla de soluciones indicada.
Procedimiento:
♪ Lavarse las manos y preparar el equipo.
♪ Llevar el equipo al área cercana a la unidad del paciente
(incubadora, cuna de calor radiante, etcétera).
♪ Sujetar al niño, dejando descubierta la región abdominal. Aplicar una
fuente de calor extra (lámpara de chicote o encender las lámparas de
la de calor radiante).
♪ Ayudar al médico a vestirse con bata quirúrgica. Abrir la carpeta de
guantes y presentarlos.
♪ Abrir el equipo, tomar el punto de referencia, sin atravesar el brazo
sobre él, llevando la punta del campo hacia atrás.
♪ Proporcionar las soluciones con las que se realizará la asepsia de la
región. Hacer la asepsia del frasco de anestesia local y presentarlo.
♪ Utilizar pinzas de Bard Parker para el manejo del material estéril de
ser necesario.
♪ El médico medirá la distancia deseada para la colocación del catéter
con base en el monograma de Dunn. Aseará el cordón y la piel
circundante con solución antiséptica para cubrir con campos. Fijará
la base del cordón y lo cortará a una distancia de 1 a 1.5 de base,
utilizando el bisturí.
♪ Conectar el adaptador del equipo de venoclísis al catéter una vez
canalizada la vena y en el momento que lo indique el médico. En
ocasiones se solicita permeabilizar con solución fisiológica
heparinizada.
♪ Regular el goteo o iniciar el paso de solución con bomba de infusión
(debe prepararse con anticipación).
♪ Cooperar con el médico en la fijación del catéter. La fijación utilizada
requiere del uso de dos gasas cortadas por un lado hasta el centro y
dos cuadros de micropore que fijaran las gasas, cortados de la
misma forma.

58. 58
♪ Colocar tira horaria al frasco de las soluciones parenterales, regular
el goteo. También las soluciones que pasan con bomba de infusión
deben tener su membrete.
♪ Dejar cómodo al niño. Recoger el equipo y lavarlo.
♪ Observar, durante el tiempo que dure instalado el catéter:
frecuentemente el goteo calculado, coloración y temperatura de la
zona pélvica. Realizar curación cada vez que se requiera, llevar un
registro del tiempo de permanencia del catéter y revisar el área cada
vez que el niño micciones o evacue.
♪ Verificar datos de complicaciones como son: formación de vía falsa y
perforación, hemorragia, infección, alteración en el pulso o coloración
de una extremidad o de ambas, embolización, trombosis de vena
hepática, necrosis hepática, entre otras.
♪ Enviar al laboratorio la punta del catéter al suspender el tratamiento
para que se realice cultivo.
♪ Retiro del catéter: colocar tela adhesiva o micropore en forma de
sutura de bolsa de tabaco alrededor del extremo umbilical, retirar el
catéter lentamente, permitiendo el espasmo del vaso a la vez que se
oprime la tela adhesiva.

59. 59
OSTEOCLISIS.
Concepto: infusión que se realiza dentro de la médula ósea a través de una
aguja.
Objetivo: conseguir acceso venoso en pacientes con shock hipovolemico o
insuficiencia cardiopulmonar.
Indicaciones:
◊ Cuando no se pueden aplicar las técnicas convencionales para la infusión
de líquidos, cristaloides o fármacos en niños menores de 6 años.
◊ En el medio hospitalario se debe intentar la vía intraósea cuando el acceso
vascular no se ha logrado en un periodo de 5 minutos o más, o bien,
cuando se han realizado 3 punciones fallidas.
◊ Niños en situaciones prehospitalarias de paro o lesiones críticas que
precisan de tiempo de traslado relativamente largo (superior a 15 minutos).
Principios:
ö La cavidad intramedular se comunica directamente con la circulación
venosa sistémica.
ö Los huesos largos contienen numerosas sinusoides medulares que drenan
hacia los canales venosos medulares grandes y se vacían directamente en
la circulación sistemática a través de venas nutricias o emisarias. Estos
sinusoides intramedulares y canales venosos se sostienen en la matriz
ósea y por ello son no colapsables.
ö Los vasos intramedulares se hallan protegidos por la arquitectura ósea.
ö En el niño menor de 6 años la médula de la tibia todavía produce
activamente hematíes.
ö La velocidad de flujo sanguíneo a través de la médula ósea varía con la
presión de perfusión.
Material y equipo:
Estéril:
@ Agujas intraóseas especiales o agujas de punción lumbar de calibre 18 a 20
con estilete o agujas de trepanación de médula ósea de calibre 15 a 18 o
aguja hipodérmica calibre 16 a 18.
@ Guantes.
@ Gasas.
Otros:
@ Solución parental con equipo gotero.
@ Benjuí.
@ Micropore.
@ Tela adhesiva.

60. 60
@ Férula.
Procedimiento:
† Seleccionar el lugar más adecuado, puede ser el extremo proximal de la
tibia o distal del fémur. Considerar la condición clínica del paciente para la
elección del sitio a puncionar.
† Realizar asepsia y antisepsia de la región.
† El médico realizará la infiltración local con lidocaína (en paciente
consciente) para introducir la aguja perpendicular a la piel o en ángulo de
45 a 60o, alejándose del cartílago epifisario. Si se utiliza la tibia, la aguja se
introduce a 2 o 3 traveses de dedo por debajo de la tuberosidad. Aplicando
un movimiento de rosca se atraviesa la cortical.
† Percibir que la aguja está dentro de la médula cuando no se advierte
resistencia una vez atravesada la cortical y la guja se mantiene recta sin
necesidad de apoyo, se aspira médula ósea, ingreso rápido de los líquidos
infundidos.
† Fijar la aguja no es necesario, pero si se requiere, hacerlo.
† Utilizar de manera transitoria, este procedimiento, ya que se reemplazará
una vez obtenida una vía estable.
† Verificar datos de complicaciones como son osteomielitis o absceso (en
inserción prolongada), síndrome compartimental, lesión de la cavidad
medular, embolismo graso o medular.

61. 61
ARTERIALES.
Concepto: Es la introducción de un catéter a una arteria.
Indicación: pacientes inestables o con posibilidad de inestabilidad y que precisan
monitorización frecuente de gases arteriales, control continúo de presión arterial
sistémica, muestras frecuentes de sangre o pacientes que serán sometidos a
exanguineotransfusión.
Principios:
† Los vasos sistemáticos aportan oxígeno y nutrientes a los tejidos y retiran
desechos metabólicos. El diámetro de los vasos (ante todo de las arteriolas)
y la viscosidad de la sangre provocan la resistencia vascular sistemática. La
perfusión hística es regulada a través de reacciones químicas locales y de
la acción de nervios que dilatan o constriñen los vasos sanguíneos.
† Las arterias son circuitos de alta presión formados por vasos de fuertes
paredes distensibles y elásticas que conducen sangre desde el corazón
hasta los lechos capilares. Las fibras elásticas dentro de las paredes
arteriales hacen posible que las paredes se estiren durante la sístole y se
encojan durante la diástole.
Material y equipo:
‡ Mesa Pasteur.
Material estéril:
‡ Bata.
‡ Guantes.
‡ Punzocat o equipo largo.
‡ Equipo de venodisección con dos vasos de acero.
‡ Dos pinzas mosco rectas y dos curvas.
‡ Tijeras.
‡ Porta agujas.
‡ Agua inyectable.
‡ Frasco de heparina.
‡ Jeringa de i, 3 y 5 ml.
‡ Conexión en “T”.
‡ Frasco de Xilocaina con epinefrina.
‡ Agujas calibre 18, 20 y 25.
‡ Bolsa con solución parenteral (arterial) indicada o bomba de infusión.
Otro material:
‡ Cubrebocas.
‡ Isodine solución.
‡ Bomba de infusión.
‡ Monitor electrocardiográfico de pantalla osciloscópica.
‡ Micropore.

62. 62
‡ Tela adhesiva y tabla de fijación.
Procedimiento:
♫ Elegir la arteria en la que se colocará el catéter. En orden de importancia,
los sitios periféricos incluyen las arterias radial, tibial posterior, pedia dorsal
y temporal. En el recién nacido se puede usar la arteria umbilical, arteria
branquial se utiliza poco debido a que es final y tiene áreas de distribución
mayores.
Percutáneos:
♫ Palpar la arteria y colocar la extremidad en una tabla de fijación.
♫ Limpiar la piel con iodopovidona.
♫ Colocar en el vestido estéril del médico, los ayudantes utilizarán
cubrebocas.
♫ El médico infiltrara el área utilizando una aguja de calibre 25 y lidocaína son
epinefrina. Palpa la arteria, hace una pequeña incisión con la punta de la
aguja del 20. Introduce el catéter en un ángulo de 30 a 45o. Retira el catéter
lentamente, cuando observa sangre en la luz, sujeta el estilete y une una
conexión en “T” ligada a una jeringa con solución heparinizada. Aspira la
sangre y lava el catéter para asegurar la permeabilidad.
♫ Fija el catéter en su sitio utilizando seda dos o tres ceros.
♫ Unir la conexión en “T” al sistema transductor de flujo. Unir el cable del
monitor al trasductor, ajustar a cero y calibrar el sistema.
♫ Evaluar la permeabilidad y la colocación una vez más, observando la onda
de presión y el retorno de sangre de flujo libre. Comprobar que la bolsa de
presión está inflada y pinzada.
Por colocación quirúrgica:
♫ El médico palpa la arteria y hace una pequeña incisión en la piel
(perpendicular al curso de la arteria). Identifica la arteria y la diseca. Coloca
una seda alrededor de la arteria en sus puntos de exposición proximal o
distal. Eleva la arteria con cuidado, aplica retracción suave, introduce el
catéter y el estilete en la luz del vaso. Interrumpe el avance del estilete en
cuanto la punta del catéter en la luz. Sujeta el estilete y hace avanzar el
catéter aplicando retracción distal suave con la sutura. Retira el estilete.
♫ Observa la sangre en el trayecto del catéter y une el tubo de presión.
♫ Aspira sangre y lava el tubo y el catéter con solución de cloruro de sodio
heparinizada.
♫ Fija el catéter en su sitio con un punto de cada lado.
♫ NUNCA introducir aire en el catéter.
♫ Unir el sistema de monitorización desechable (intraflow o Bentley) la fuente
de líquido y el transductor de presión.
♫ Comprobar la onda de presión arterial en el osciloscopio.
♫ Mantener la temperatura de la región puncionada utilizando una protección
de plástico que envuelva al sistema de infusión en sus partes que no serán
manipuladas.

63. 63
Mantenimiento:
♫ Mantener un flujo constante de solución heparinizada o mantener ocluido el
sistema con el dispositivo ideado para este fin.
♫ Comprobar frecuentemente en la pantalla del osciloscopio la onda de
presión arterial.
♫ Valorar la presencia de complicaciones como son: hemorragias por
conexiones sueltas, infección local sistemática, isquemia local.
CATERIZACIÓN PERCUTÁNEA O TRANSCUTÁNEA.
Material y equipo:
Kit que incluye:
 Catéter.
 Una funda introductoria y dilatador.
 Alambre guía recto o de punta en “J”.
 Agujas y campos estériles desechables.
 Pinzas y tijeras desechables.
 Sobre con gasas estériles y con soluciones antisépticas.
 Cubrebocas.
 Guantes.
Procedimiento:
 Reunir el material y equipo, trasladarlo a la unidad del paciente.
 Examinar los posibles lugares de Cateterización, lo que puede requerir de
la aplicación de torniquetes a las extremidades para identificar el sitio más
accesible.
 Aplicar algún método de sujeción con el que mantenga libre la extremidad
interesada. En algunos casos se prefiere sedar al paciente.
 Monitorizar estrechamente los signos vitales. En caso de contar con
monitoreo electrónico asegurarse de su correcto funcionamiento.
 Colaborar en el vestido quirúrgico de quien realizará el procedimiento.
Quienes colaboran utilizarán cubrebocas.
 Quien realiza el procedimiento: realiza asepsia con solución de
iodopavidona (isodine). Aplica torniquete por arriba del sitio de punción.
Desplaza lateralmente la piel justo encima del lugar propuesto para
canalización. Punciona con la aguja el vaso, hasta que fluye sangre
libremente por el eje de la aguja. Hace avanzar el alambre-guía hacia el
vaso, hasta más allá del extremo de la aguja. Retira la aguja lentamente,
asegurándose de que el alambre permanece en el vaso. Cuando ve la
punta de la aguja en la piel, sujeta el alambre en el lugar de inserción para
evitar su deslizamiento.
 Saca totalmente la aguja del alambre, se enfila en éste un dilatador, a
través de la piel y hacia el vaso. Retira el dilatador del mismo modo que la

64. 64
aguja y se avanza el catéter o funda de tamaño apropiado, sobre el alambre
guía, hacia el vaso.
Retira el alambre guía y asegura la colocación del catéter aspirando y
lavándolo. Se conecta el equipo gotero o de infusión deseado.
Solicita una placa de rayos “X” para comprobar la posición del catéter y
fijarlo con puntos de sutura.
 Vigilar la presencia de complicaciones asociadas al procedimiento, al lugar
de cateterización y la edad del paciente, como pueden ser la perforación de
la pared auricular derecha, embolias, disritmias secundarias a irritación
ventricular y bacteriana.
 Verificar la presencia de eritema, inflamación o por pérdida de solución por
la periferia del sitio de inserción del catéter.
 Realizar aseo diario con agua oxigenada al 50% y toques de iodopovidona.
 Fijar el catéter con micropore y/o tela adhesiva.
Curación de venodisección:
 Lavarse las manos.
 Palpar el punto de salida y el trayecto del catéter, observando la presencia
de eritema o dolor.
 Colocarse el cubrebocas, cubriendo nariz y boca.
 Retirar el cuadro de tela adhesiva que marca la fecha de la curación
anterior, el nombre de la persona que la realizó y los centímetros que mide
el catéter (del sitio de inserción al sitio de unión con el equipo gotero).
 Quitar los adhesivos que protegen el apósito de base (que cubre el sitio de
entrada del catéter) y los que cubren el catéter.
 Retirar el apósito que protege el sitio de inserción del catéter (de base) y
revisar en busca de sangre, pus y otro tipo de sustancias. Buscar la
presencia de olores característicos.
 Abrir el equipo de curación, en caso de no contar con este, abrir un
paquete de gasas y utilizar la envoltura como campo estéril para colocar
más gasas.
 Calzarse guante en la mano dominante.
 Limpiar con agua oxigenada, con movimiento circular desde el punto de
inserción hacia fuera, incluyendo el trayecto del catéter.
 Limpiar la zona con tres tiempos de torundas humedecidas en
iodopovidona, con un movimiento circular desde el punto de inserción hacia
fuera. Se deja secar, no se limpia.
 Investigar la presencia de fiebre, hipotermia o distermia, aumento local de la
temperatura, induración de los tejidos, enrojecimiento de los mismos o del
vaso, dolor o presencia de secreción.
El Comité de Infecciones Hospitalarias decidirá la toma de hemocultivo,
retiro del catéter, cultivo de secreción, empleo o cambio de antibióticos.
 Colocar una gasa estéril a la que se realiza una hendidura de uno de los
extremos hacia el centro para colocarla en el área de inserción del catéter.
 Aplicar en la periferia de la gasa (de base) benjuí.

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 Retirarse el guante y colocarlo en el depósito correspondiente.
 Cubrir, con cuadros de micropore cortados en el centro, la gasa de base.
 Elegir la forma en que se cubrirá el trayecto del catéter.
Utilizar dos tiras de tela adhesiva o micropore de dos centímetros de ancho
y el largo del catéter, para cubrir todo lo largo del catéter y un centímetro
del primer adhesivo colocado. Colocar un cuadro de micropore cortado por
el centro de la base de derecha a izquierda y otro cuadro igual con entrada
de izquierda a derecha.
 Utilizar un cuadro de micropore o tegaderm que cubra al catéter enrollado
sobre sí mismo y sobre el sitio de inserción.
 Anotar en un cuadro de tela adhesiva: fecha de curación, nombre de quien
realizó el procedimiento y los centímetros que mide el catéter.

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CATETERIZACIÓN POR VENODISECCIÓN.
Concepto: Incisión quirúrgica de una ven para la inserción de un catéter de
silastic o polivinilo en su luz para el paso de soluciones y/o medicamentos en
pacientes en quienes han fallado los intentos de instalación de venoclísis, así
como en aquellos pacientes en gravedad tal, que necesiten grandes volúmenes de
soluciones en corto o largo plazo (CMN siglo XX, 1998: 708).
Objetivos:
 Infundir rápidamente líquidos y fármacos.
 Monitorizar la presión venosa central, facilitar la toma de muestras de
sangre, la capacidad de administrar simultáneamente fármacos
incompatibles con soluciones nutricionales y la de administrar
hemoderivados y otras soluciones coloidales.
 Conseguir una vía de infusión cuando no es posible canalizar una vía
periférica.
 Reducir el índice de infecciones nosocomiales relacionadas con la
multipunción para la instalación de catéteres periféricos.
Principios:
 La presión venosa central no depende únicamente del volumen sanguíneo
circulante sino que también refleja la función miocárdica y la complianza del
sistema venoso.
 La infusión de líquidos parenterales debe realizarse a través de un sistema
cerrado.
 Las soluciones parenterales deben ser preparadas siguiendo los principios
de asepsia y antisepsia.
 La punta del catéter debe ser cultivada en todos los casos de retiro de
catéter.
 La Norma Oficial Mexicana NOM-026-SSA2-1999 para la vigilancia
epidemiológica, prevención y control de la infecciones nosocomiales
establece los criterios para el diagnostico de bacteriemias relacionadas a
tratamiento endovenoso, mismo que se establece en paciente que presente
fiebre, hipotermia o dispotermia con hemocultivo positivo, en ausencia de
focalización infecciosa. Puede presentarse en pacientes con menos de 48
horas de estancia hospitalaria si se realizan procedimientos invasivos o
reciben terapia intravascular.

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Indicaciones:
ↂ Paciente en estado crítico, para administración de líquidos.
ↂ Uso de medicamentos durante tiempo prolongado.
ↂ Toma de muestras sanguíneas frecuentes.
ↂ Administración de nutrición parenteral.
ↂ Administración de soluciones hiperosmolares.
ↂ Paciente candidato a cirugía.
ↂ Registro de presión venosa central (PVC).
Descripción: Existen básicamente dos tipos de catéteres permanentes, los que
tienen el acceso para medicamentos en un extremo que queda por fuera del
paciente después de la instalación y los que están unidos a un dispositivo que
queda colocado subcutáneamente. Los primeros pueden ser de una, dos o tres
vías y tener diferentes calibres. Están hechos de silicón polimerizado, con un
diámetro interno de 1.6 mm. Y cuentan con un pequeño cilindro de dacrón que
permite la fijación del catéter al tejido celular subcutáneo al producir reacción
fibrosa. En su extremo libre cuentan con un conector y un “candado” que se
heparinizada, así como un clip que abre o cierra el catéter según sea conveniente.
El segundo tipo de catéteres pueden tener en su extremo un dispositivo con una
membrana, que al quedar instalado en el espacio subcutáneo se tiene que
puncionar para su uso, o bien, los hay unidos a una bomba de infusión continua
portátil.
Los catéteres más utilizados en nuestro medio son el Broviac y el Hickman. El
diámetro de los catéteres puede ser medido en dos tipos de unidades, el French
(Fr), medida francesa que equivale a 0.33 mm., y el Gauge (G) medida inglesa
que es utilizada en catéteres periféricos.
Material y equipo:
€ Equipo estéril para venodisección o para cirugía menor: pinzas de anillos,
dos pinzas Halsted curvas, dos pinzas Halsted rectas, pinza Addson con
dientes, pinza Addson sin dientes, mando de bisturí, dos vasos de acero,
tijeras de mayo, porta agujas, aguja atraumática curva, seda calibre 4-0,
jeringa de cristal de 10ml, jeringa de cristal de 3 ml, campo hendido, gasas,
torundas y dos vasos metálicos.
€ Otros: gorro, cubrebocas, bata y guantes estériles, catéter de silastic de
diferentes calibres y largos, frasco de Xilocaina inyectable, solución
antiséptica, equipo gotero, tela adhesiva, micropore, tegaderm, suturas,
hoja de bisturí.
€ Para la preparación del sitio de punción se sugiere utilizar: isodine al 1-2%,
yodoforos al 10%, alcohol isopropílico al 70% y clorhexidina al 2%.

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Procedimiento:
≈ Preparar al niño para ser trasladado al cuarto clínico o al área quirúrgica.
≈ Seleccionar la vena, las vías de acceso en orden prioritario son:
Recién nacidos y lactantes menores: yugular externa, basílica, yugular
interna, cefálica, safena interna.
Lactantes mayores, preescolares y escolares: basílica, yugular externa,
cefálica, yugular interna, safena interna.
Se puede canalizar la vena cava superior a través de las yugulares
internas, las externas o las subclavia.
≈ Aplicar un método de sujeción. Descubrir la región en que se realizará el
procedimiento.
≈ Monitorizar estrechamente los signos vitales durante todo el procedimiento.
En caso de contar con monitoreo electrónico asegurarse de su correcto
funcionamiento.
≈ Colocar en posición de acuerdo con la vena elegida:
Yugular. Posición trendelemburg con una inclinación de 20 a 30o, la cabeza
girada hacia el lado contrario al de la punción (se refiere el lado derecho).
≈ Abrir el equipo estéril:
Colaborar en el vestido estéril del cirujano.
≈ El cirujano prepara la zona interesada, realiza asepsia y antisepsia. Infiltra
Xilocaina, realiza una incisión en la piel con el bisturí (perpendicular al
trayecto del vaso, no mayor de un centímetro), con una pinza amplia la
disección a toda la circunferencia de la vena, fija la vena sobre una pinza
en sus extremos proximal y distal y realiza un corte en el 50% de su ancho,
ata la sutura proximal. Introduce el catéter hasta la marca, comprueba la
posición de sangre, fija a la piel con jaretas.
≈ Otro procedimiento quirúrgico llamado por contraabertura requiere de:
Practicar un segunda incisión a un centímetro de la anterior en dirección
distal, lo suficientemente grande para que permita el paso de una pinza de
Kelly, se pasa esta hasta el sitio de la incisión primaria y se extrae la punta
del catéter (contraabertura) se sutura la herida y el catéter se fija a la piel
vecina con seda tres ceros.
≈ Conectar el equipo gotero al catéter para iniciar el paso de líquidos.
≈ Trasladar a la sala de Rx o solicitar el control de catéter con equipo portátil.
En los casos en que se requiera catéter centra puede ser utilizado medio
de contraste. Los catéteres utilizados en la actualidad son radiolúcidos.
≈ Elegir la forma en que se cubrirá el trayecto del catéter:
Utilizar dos tiras de tela adhesiva o micropore de dos centímetros de ancho
y el largo del catéter, para cubrir todo lo largo del catéter y dos centímetros
más. Colocar un cuadro de micropore cortado por el centro en la base de
derecha a izquierda y otro cuadro igual que entre de izquierda a derecha.
Utilizar un cuadro de micropore o tegaderm que cubra al catéter enrollado
sobre sí mismo y sobre el sitio de inserción.

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≈ Anotar en un cuadro de tela adhesiva los datos de: calibre del catéter,
centímetros de catéter que quedan fuera, fecha de instalación, cirujano que
instaló.
≈ Identificar cualquier signo de infección, infiltración o extravasación. Las
soluciones vesicantes son aquellas que pueden producir lesión o
destrucción tisular si pasa a los tejidos circundantes. Ejemplo de estos son
los medicamentos de quimioterapia, cloruro de potasio, gluconato de
calcio, algunos medios de contraste y los vasopresores.
≈ Colocar, de ser necesario, filtro extra al del equipo gotero (membrana con
poro de 0.22µ).
≈ El filtro de cuarta generación está compuesto de una carcasa de acrílico
transparente, membrana de 9.7 cm2 de área de filtrado con malla de 0.22µ
de espesor.
≈ Seguir las indicaciones del comité de vigilancia epidemiológica en lo
relacionado con la frecuencia y tipo de soluciones a utilizar en la curación.

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TERAPIA HÍDRICA.

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TERAPIA HÍDRICA.
Concepto: Terapéutica que se basa en la administración de fluido (s) por vía
eneteral o parenteral para mantener el equilibrio hidroelectrolítico.
Objetivos: Mantener o restablecer el volumen normal de líquidos y el equilibrio
electrolítico, además de proporcionar un medio de administrar medicamentos de
forma rápida y eficaz.
Principios:
 Las células grasas contienen poco agua, a medida que aumenta la grasa
corporal desciende la cantidad de agua.
 El agua corporal disminuye a medida que aumenta la edad. Además del
agua, los líquidos corporales contienen dos tipos de sustancias disueltas
(solutos): electrolitos y no electrolitos.
 Los electrolitos son sustancias que se disocian (separan) en solución y son
capaces de conducir una corriente eléctrica. Los electrolitos se disocian en
iones positivos y negativos y se miden por su capacidad para combinarse
entre sí (miliequivalentes/litro) o por su peso molecular (milimoles/litro).
 Los cationes son iones que desarrollan una carga positiva en solución. El
principal catión extracelular es el sodio (Na+). Existe un sistema de bomba
en la pared de las células del organismo que bombea el sodio hacia fuera y
el potasio hacia dentro.
 Los aniones desarrollan una carga negativa en solución. El principal anión
extracelular es el cloruro (CI-) y el intracelular es el fosfato (PO43-).
 El líquido intracelular se encuentra dentro de las células. En un lactante
solo la mitad del líquido corporal es intracelular.
 La presión hidrostática es la presión creada por el peso del líquido. Es
importante para dirigir el líquido fuera del extremo arterial de los capilares.
Clasificación de las soluciones por su composición:
Las soluciones intravenosas se clasifican en coloides y cristaloides. Los coloides
contienen partículas en suspensiones de alto peso molecular que no atraviesan
las membranas capilares, de forma que son capaces de aumentar la presión
osmótica plasmática y retener agua en el espacio intravascular. Incrementan la
presión oncótica y la efectividad del movimiento de fluidos desde el
compartimiento intersticial al compartimiento plasmático deficiente.
Isotónicas, ejercer la misma presión osmótica que la del plasma sanguíneo 280-
310 mOsm/L. Dentro de este tipo de soluciones están: cloruro de sodio al 0.9% y
ringer con lactato (Hartmann). Presentan un alto índice de eliminación.

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Hipotónicas. Soluciones que ejercen una menor presión osmótica que la del
plasma sanguíneo, provocan que las células se distiendan, se distribuyen a través
del agua corporal total. Consisten fundamentalmente en agua isotonizada con
glucosa para evitar lisis hemática. Solo el 8% del volumen prefundido permanece
en la circulación, ya que la glucosa pasa a formar parte del metabolismo general
generándose CO2 y H2O. Ejemplos: glucosada al 5% y sol. Mixta (1:1).
Hipertónicas. Soluciones que ejercen mayor presión osmótica que la del plasma.
Aumentan la concentración de solutos del plasma, llevan el agua de las células un
comportamiento extracelular para restituir el equilibrio osmótico y así las células
disminuyen su tamaño.