2. ¿por qué es necesario
diagnosticar tuberculosis (TB) en
el siglo XXI?
¿cómo diagnosticarla?
¿dónde diagnosticarla?
3. ¿qué ocurre con la co-infección
por el VIH?
¿qué ocurre con la fármaco
resistencia?
¿cuál es la situación/capacidad de
los laboratorios?
4. Iniciativa Global de la Estrategia STOP TB
OMS para los Laboratorios
El cuidado del paciente con TB comienza en el proceso del
diagnóstico que debe basarse en el cultivo y la identificación
de Mycobacterium tuberculosis, a partir de materiales
clínicos, para confimar o excluir TB. Debe estar atravesado
en cada etapa por estándares de calidad
5. Situación global de TB en las Américas
Carga total TB
294.636
Perú
Bolivia Paraguay
Brasil
310.0 Uruguay
Chile
Tasa
Global Tuberculosis Control 2011. Epidemiology, Strategy, Financing. World Health Organization
6. La co-infección: VIH-TB
• Riesgo de desarrollar TB: 20-37 veces > en co-
infectados
• Año 2009:
– 9,4 millones de casos nuevos de TB
– co-infectados: 1,2 millones (13,0%)
– defunciones por TB: 1,7 millones
– co-infectados: 400.000 (24,0%)
– defunciones en VIH: 22,0% con TB
• TB es la causa mas importante de mortalidad entre
personas viviendo con VIH
Fuente: 1 Guidelines for intensified tuberculosis case finding and isoniazid preventive therapy for people living with HIV
in resource-constrained setting. World Health Organization, 2011. 2 Global tuberculosis control report. World Health
Organization, 2010. 3 UNAIDS 2010 Global Report Fact Sheet.
7. TB-M/XDR definiciones
MDR:
resistencia a INH y RIF
Incidencia mundial: ≈500.000 casos/año
XDR:
MDR+FQ+AG (AMK, KM) o CPM
Incidencia mundial: 25.000-35.000
casos/año
TDR: EXISTE OPERATIVAMENTE
N0 existe desde la definición
9. Situación de TB en Argentina
TOTAL DE CASOS
NUEVOS DE TB
ARGENTINA 2010
9993
TOTAL DE MUERTES DE TB
ARGENTINA 2009*
698 1 PUNTO = 5 CASOS
Fuente: Instituto Nacional de Enfermedades Respiratorias (INER) “Emilio Coni”, con base en los datos de los Programas de Control de las 25
Jurisdicciones. Ministerio de Salud y Ambiente. Argentina. Agosto de 2010.
*Dirección de Estadística e Información de Salud-Ministerio de Salud
10. Situación de TB en Argentina
TOTAL DE CASOS
NUEVOS DE TB
ARGENTINA 2010
9993
6.88%< 2009 IR: 25%000
TOTAL DE MUERTES DE TB
ARGENTINA 2009*
698 muertes, 0.85%<2008
698 1 PUNTO = 5 CASOS
Fuente: Instituto Nacional de Enfermedades Respiratorias (INER) “Emilio Coni”, con base en los datos de los Programas de Control de las 25
Jurisdicciones. Ministerio de Salud y Ambiente. Argentina. Agosto de 2010.
*Dirección de Estadística e Información de Salud-Ministerio de Salud
11. 33,95 4979
IR BAP: 1.5 >IR RA
IR GBA:1.2>IR BAP
IR GBA: 1.8>IR RA
12. 33,95 4979
HIV: 134.000
IR BAP: 1.5 >IR RA
IR GBA:1.2>IR BAP
IR GBA: 1.8>IR RA
13. Situación global de TB en
Buenos Aires
GBA
Habitantes
15.594.428 (39,0%) 9.910.202 (63,5%)
BA IR: 32.0%000 GBA IR: 40.7%000
MDR-HIV: 22/190 MDR/XDR: 200 cases
(11.6%) N: 190 TTO: 123
XDR-HIV: 1/22 (4.5%)
HIV: 55000
XDR: 10
14.
15. SITUACION DE LA TB: TENDENCIA DE LA MULTIRRESISTENCIA.
Argentina, 1968-2006
(sin considerar brote de 1994, marcado con punto).
%
18
16
15,4
14
12 MR casos antes tratados
MR casos antes tratados
10
10,3 9,4
8
7,8
6
4
MR casos nuevos
MR casos nuevos
2 2,2
0,9 0,2 1,8
0 0 0
1968-78 1979-86 1987-92 1994 1999-2000 2005-2006
Fuente: Servicio Micobacterias. Instituto Nacional de Enfermedades
Infecciosas.ANLIS “Carlos G. Malbran”. Argentina
16. SITUACION DE LA TB: TENDENCIA DE LA MULTIRRESISTENCIA.
Argentina, 1968-2006
(sin considerar brote de 1994, marcado con punto).
%
18
16 9.8%-22.6%
15,4
14
12 MR casos antes tratados
MR casos antes tratados
10
10,3 9,4
8
7,8
6
4
MR casos nuevos
MR casos nuevos
2 2,2
1.2%-3.6%
0,9 0,2 1,8
0 0 0
1968-78 1979-86 1987-92 1994 1999-2000 2005-2006
Fuente: Servicio Micobacterias. Instituto Nacional de Enfermedades
Infecciosas.ANLIS “Carlos G. Malbran”. Argentina
17. Proporción de casos nuevos TB-XDR entre casos nuevos
TB-MDR. Argentina 2003-2010
46;
6,6%
XDR
MDR
652;
93,4%
18. Evolución de la MDR-TB Buenos
Aires. Periodo 1998-2010
70
60
N
ú 50
m
e 40
r
o 30
20
10 Total acumulado: 302
0
1998 1999 2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
Años
19. Casos acumulados VIH-TB MDR
12
10
N
ú
8
m
e
r 6
o
4
Total acumulado: 66 (21,8%)
2
0 1998 // // // 2010
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
Años
20. TB-XDR
Período 1998-2010
• VIH/TB-XDR: 10 casos (15,7%)
• Sin co-infección: 11 casos (4,6%)
21. Conclusión de la OMS
Iniciativa Global de la
estrategia STOP TB
para los Laboratorios
22. Iniciativa Global de la Estrategia STOP TB
OMS para los Laboratorios
Los laboratorios carecen de adecuada capacidad
diagnóstica:
Sólo el 5% de los casos M/XDR se diagostican en el
mundo
Reforzar la capcidad de los laboratorios
Identificar países y áreas donde la M/DRX y el HIV son
altamente prevalentes
Incrementar el uso del cultivo especialmente en áreas
prevalentes de ls co-infección
23. Iniciativa Global de la Estrategia STOP TB
OMS para los Laboratorios
• Locales: BS, mantenimiento, adecuación
• Validación y mantenimiento de equipos
• Transporte y delivery de muestras clínicas
• Provisión continua de equipos y rectivos
• Sistemas de manejo de datos
• Sistemas de controles de calidad y aseguramiento de la
calidad (QC y QA)
• Estrategias para capacitación continua del RRHH
• Coordinación y asistencia técnica
• Políticas basadas en algoritmos diagnósticos
24. ¿qué se puede/debe hacer
desde los laboratorios?
Los métodos convencionales de
detección de resistencia en medio
sólido pueden producir resultados
entre los 20-40 días de la
inoculación de la PS.
25. Herramientas DX
Source: Global Tuberculosis Control 2011. Geneva, World Health Organization, 2011.
Available at http://www.who.int/tb/publications/global_report/2011/gtbr11_full.pdf.
26. ¿Qué son los métodos rápidos para la
detección de resistencia a R y H?
¿Qué son los métodos rápidos?
– FENOTIPICOS
• MGIT automatizado y manual
• no comerciales
– Nitrato reductasa
– Resarzurina o MTT
– GENOTIPICOS
– comerciales (Line probe assays y Xpert)
27. Métodos rápidos de aislamiento y drogo
sensibilidad
MGIT 960® (Año 2000)
28. Determinación de CIM a DSL (2004)
SUBSIDIOS A LA INVESTIGACIÓN CIENTÍFICA
1. European Commission Proyecto Nº 201690: “Development of a two-approach plate
system for the fast and simultaneous detection of MDR and XDR M. tuberculosis”.
Acrónimo: FAST-XDR-DETECT. Febrero de 2008 (en curso).
H2O SC/GC ETH CS CPM KM AMK MOX LZ OFX RBT H2O
2. Desarrollo e innovación en el ámbito del Convenio Bilateral de Cooperación entre el CNPq
y la Agencia Nacional de Promoción Científica y Técnica (ANPCyT), de Argentina. Edital
MCT/CNPq Nº 10/2008. Proyecto de pesquisa: “Tuberculosis Multirresistente y
Micobacterias no tuberculosas: estudio molecular y virulencia”. Agosto de 2008 (en
curso).
3. Cooperación Iberoamericana. Ciencia y Tecnología para el desarrollo (CYTED), España:
“Red de epidemiología molecular de la tuberculosis multirresistente en Iberoamérica”.
Año 2006 (en curso).
4. South American Program for Science and Technology Support and Cooperation
(Programa Sul-Americano de Apoio a Cooperação em Ciência e Tecnologia) (PROSUL).
Project number 490514/2007-3: “Latinamerican network for Mycobacteria: development
and assessment of new tuberculosis diagnostic methods in Latin American countries”.
November 2007 (on going).
5. Specific Targeted Research Project European Commission: “Development of a molecular
platform for the simultaneous detection of Mycobacterium tuberculosis resistance to
rifampin and fluoroquinolones”. FP6-2003-LIFESCHIEALTH-3. March 24th 2004 (two years
grant). This project includes a trial for testing the clinical performance of the developed
platform.
6. Programa VIGI+A, PNUD, Proyecto Nº: 1012: “Riesgo de infección por tuberculosis en
relación con la transmisión reciente de Mycobacterium tuberculosis analizada por
métodos moleculares y epidemiológicos”. Año 2005.
7. Concerted Action for Financial Support from the European Commission, INCO Project No:
ICA4-CT 2001-10087: “RELACTB: New strategies for diagnosis drug resistance detection
and control of tuberculosis”. Febrero 2001. 28
29. ¿Qué son los métodos rápidos para la
detección de resistencia a R y H?
– GENOTIPICOS
– Comerciales: basados en Line probe assays
– Con equipamiento
Gene Xpert
– Sin equipamiento
» GenoType MTBDR®
» GenoType MTBDRPLUS®
30. GenoType MTBDR®
GenoType MTBDRplus® AÑO 2011
Detección del complejo M. tuberculosis y su resistencia a Rif , gen rpoB, e INH, gen
KatG, desde cultivos, en un único procedimiento. Duración de la prueba: 5hs.
CC
UC
Complejo MTB
rpoß uni
rpoß wt 1
rpoß wt 2
rpoß wt 3
rpoß wt 4
rpoß wt 5
rpoß D516V
Rpoß H526Y
rpoß H526C
rpoß S531L
katG uni
katG wt
katG mutation 1
katG mutation 2
31. Principios del algoritmo
•Diseño acorde con las necesidades de salud de la población y
las ecomendaciones nacionales e internacionales
•Herramientas técnicas con diferente grado de complejidad
•Racionalización de los recursos económicos
•Optimización del uso de los recursos económicos, materiales
y humanos
•Condiciones epidemiológicas y clínicas del paciente
32. Algoritmo diagnóstico
El algoritmo de laboratorio comprende
tres pasos principales
a) Detección de los bacilos ácido alcohol resistentes (BAAR)
y aislamiento de M. tuberculosis y/o micobacterias no
tuberculosas (MNT)
b) Identificación de la especie bacteriana y determinación de
la sensibilidad a drogas anti-TB
c) Epidemiología molecular de TB para estudios de vigilancia
epidemiológica y transmisión
35. Segundo paso:
b) Determinación de sensibilidad (DST) Gold Standard:
ILJ/M7H11
BD EpiCenter™ TB-eXiST Extended MTBC/MNT
Individual Susceptibility Testing
NRA I-CMM/REMA
D-CMM/REMA
DPL y DSL DPL Y DSL
DPL Y DSL
36. Tercer paso:
a) Estudios de Epidemiología molecular
Microsofts:
100 Spoligotyping BioNumerics®
Mt 878 Esquivel GelCompare®
Walter
Mt H37Rv
Mt 5108 Gimenez Juan Carlos
Mt 5099 Ordoñez Tamara
Mt 5201 Zalazar Leonela
Mt 3187 Zalazar Milagros
Mt 3982 Junka Marcela
Mt 3850 Esquivel Walter
Mt 2799 Coria Aurora
Mt 4319 Dotti Sebastian
IS6110 RFLP
A B
Evidencia de transmisión
38. BAAR- BAAR+
BAAR+
BAAR-
NTP
HIV+/PPT
Niños
IC, CC
39. BAAR- BAAR+
BAAR+
BAAR-
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
40. Grupo B
BAAR- BAAR+
BAAR+
BAAR-
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
41. Grupo B GenoType
MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
AFB+
NTP BAAR-
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
42. D-NRA/
D-CMM
Grupo B GenoType
MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR- BAAR+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
43. MDS
MDR
D-NRA/
D-CMM
Grupo B GenoType
MTBDRplus®
BAAR BAAR +
- BAAR BAAR+
-
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
44. MGIT
SIRE MDR
D-NRA/
D-CMM
Grupo B GenoType
MTBDRplus®
BAAR BAAR +
- BAAR BAAR +
-
NTP
PPT/HIV+ Grupo A
Niños
IC, CC
45. MGIT
SIRE MDR
D-NRA/D-
CMM
C+
Grupo B GenoType
C+
MTBDRplus®
BAAR BAAR +
- BAAR BAAR +
-
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
46. MGIT
SIRE MDR
Grupo C
D-NRA/
D-CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ MTBDRplus®
BAAR BAAR +
- BAAR BAAR+
-
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
47. MGIT
SIRE MDR
Grupo C
D-NRA/
D-CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR +
BAAR BAAR +
-
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
48. I-NRA/
I-CMM MGIT
MDR
SIRE
Groupo
C D-NRA/
D-CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR +
BAAR BAAR +
-
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
49. I-NRA/ MDS
I-CMM MDR MGIT
SIRE MDR
Grupo C
D-NRA/D-
CMM MDS
C+ MDR
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR BAAR +
-
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
50. I-NRA/ MDS
I-CMM MDR MGIT
SIRE MDR
Grupo C
D-NRA/D-
CMM MDS
C+ MDR
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR- BAAR+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
51. I-NRA/
I-CMM MDR
MGIT
SIRE MDR
Grupo C
D-NRA/D-
CMM
C+ MDR
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
AFB- AFB+
AFB- AFB+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
52. MGIT 2nd
Line. TBexist
I-NRA/
MDR
I-CMM MGIT
SIRE MDR
Grupo C
D-NRA/D-
CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR- BAAR+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
53. MDR
XDR
MGIT 2nd
I-NRA/ Line. TBexist
MDR
I-CMM MGIT
SIRE MDR
Grupo C
D-NRA/D-
CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR- BAAR+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
54. Mol. Epi
MDR studies
XDR
MGIT 2nd
Line. TBexist
I-NRA/
MDR MGI
I-CMM
T MDR
SIRE
Grupo C
D-NRA/D-
CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR- BAAR+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
55. Mol. Epi
Contact MDR studies
tracing XDR
MGIT 2nd
Line. TBexist
I-NRA/
MDR MGI
I-CMM
T MDR
SIRE
Grupo C
D-NRA/D-
CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR- BAAR+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
56. Trans. Mol. Epi
Contact MDR studies
studies
tracing XDR
MGIT 2nd
Line. TBexist
I-NRA/
MDR
I-CMM MGIT
SIRE MDR
Grupo C
D-NRA/D-
CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR- BAAR+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
57. Trans. Mol. Epi
Contact MDR studies
studies
tracing XDR
MGIT 2nd
Line. TBexist
INRA/
MDR
I-CMM MGIT
SIRE MDR
Grupo C
D-NRA/D-
CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR- BAAR+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
AFB+/- Grupo E
C+ (MNT?)
58. Trans. Mol. Epi
Contact MDR studies
studies
tracing XDR
MGIT 2nd
Line. TBexist
I-NRA/
MDR
I-CMM MGIT
SIRE MDR
Grupo C MNT
D-NRA/D-
CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
BAAR- BAAR+
BAAR- BAAR+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
AFB+/- Grupo E
C+ (MNT?)
59. Trans. Mol. Epi
Contact MDR studies
studies
tracing XDR
MGIT 2nd
Line. TBexist
I-REMA/
MDR ID+CMM
I-CMM MGIT
MDR MNT
SIRE
Grupo C MNT
D-NRA/D-
CMM
C+
Grupo B GenoType
C+ Grupo D MTBDRplus®
AFB- AFB+
AFB- AFB+
NTP
Grupo A
PPT/HIV+
Niños
IC, CC
AFB+/- Grupo E
C+
60. Hallazgos en el período 2008-2011
• SR analizados: 32.351
• Casos diagnosticados: 1833
• DST por métodos fenotípicos: 1690
• Diagnóstico molecular: 1era. fase: 780 casos de TB
• Diagnóstico molecular: 2da. fase: resistencia a INH y RIF
• 2da. fase: GenoType: 100 E+
• 2da. Fase: GenoType: 52 C+
• Métodos moleculares de resistencia
por métodos experimentales:
– 200 aislamientos clínicos
– 40 cepas codificadas
• Estudios de epidemiología molecular: 590 M. tuberculosis DS
– 169 MDR/XDR y DR strains
• MNT: 108 casos (2006-2010)
– Especies: 17
61. Evaluación del MGIT SIRE y el MMC
Resultados obtenidos sobre 1690 aislamientos clínicos
Drug-resistance DR-isolates/DST N° (%)
INH 286/1,532 (18.7)
EMB 71/1,532 (4.6) MGIT
LX 10/1,532 (0.7) SIRE
RIF 156/1,532 (10.2)
SM 195/1,532 (12.7) I-REMA/
I-CMM
AMK 25/94 (26.6)
CPM 8/94 (8.5)
CS 19/94(20.2)
ETH 25/94 (26.6)
KM 29/94 (30.9)
LZ 1/94 (1.1)
MOX 3/94 (3.2)
OFX 13/94 (13.8)
PAS 4/94 (4.3)
Morcillo N., Imperiale B., Di Giulio B. Evaluation of MGIT 960® and the colorimetric-based
method for tuberculosis drug-susceptibility testing". Int J Tuberc Lung Dis. 2010; 14: 1169-
1175
62. Evaluación del MGIT SIRE y el MMC
Drug Method/drug-concentration (µg/mL) MGIT
SIRE
First-line CMM MGIT960 ILJ
I-REMA/
1.00 to 0.03 0.10 0.20 I-CMM
INH
EMB 32.00 to 1.00 5.00 2.00
LX 4.00 to 0.13 - 4.00
RIF 2.00 to 0.06 1.00 40.00
SM 8.00 to 0.25 1.00 4.00
Second-line PM-M7H11
AMK 8.00 to 0.25 8.00, 4.00, 2.00 5.00
CPM 10.00 to 0.65 10.00, 5.00, 2.50 30.00
CS 120.00 to 3.75 60.00, 30.00, 15.00 5.00
ETH 10.00 to 0.065 10.00, 5.00, 2.50 5.00
KM 10.00 to 0.65 10.00, 5.00, 2.50 5.00
LZ 2.00 to 0.06 2.00, 1.00, 0.50 1.00
MOX 1.00 to 0.03 10.00, 5.00, 2.50 0.50
OFX 4.00 to 0.13 2.00, 1.00, 0.50 2.00
PAS 8.00 to 0.25 - 1.00
Morcillo N., Imperiale B., Di Giulio B. Evaluation of MGIT 960® and the colorimetric-based
method for tuberculosis drug-susceptibility testing". Int J Tuberc Lung Dis. 2010; 14: 1169-
1175
63. Evaluación del MGIT SIRE y el MMC
DST method/Nº of isolates and correlation coefficient
Method/Drug ILJ r MGIT9601 r
717 2 0.97 368 3 0.96
CMM1
INH 0.98 0.96
SM 0.92 0.93
RIF 0.99 1.00
EMB 0.95 0.96
LX 0.99 -
MGIT9601 10524 0.97
INH 0.98 - -
SM 0.99
RIF 1.00
EMB 0.90
PMM7H11 MGIT9602
CMM2 94 0.96 94 0.94
AMK 1.00 1.00
CPM 1.00 1.00
CS 0.78 0.70
ETH 0.94 0.90
KM 0.96 0.95
LZ 1.00 1.00
MOX 1.00 1.00
OFX 1.00 1.00
PAS 1.00 -
MGIT9602 94 0.97
- - MGIT
AMK 1.00 SIRE
CPM 1.00
CS 0.82
ETH 0.94 I-REMA/
KM 0.96
LZ 1.00 I-CMM
MOX 1.00
OFX 1.00
65. Características de las técnicas
Técnica TAT Dific Aut Costo Uso
(días)
ZN 1-2 2 0 1 Microscopía y
Dec+concentración cultivo
Cultivos en 15-60 3 0 2 aislamiento
medios sólidos
MGIT 960 12-23 2 1 3 aislamiento
ICROM 7-25 1 0 4 ID
BCHID 45-65 4 0 2 ID
GenoType® 15-20 2 0 5 ID
Mycobacterium CM
ZN: Ziehl-Neelses stain; TAT: includes time for administrative procedures; DIFF: Compelxity of the
technique; IID: immunodifussion identification; BCHID: biochemical identification: genus or species
identification
66. Características de las técnicas
Técnica TAT Dif Aut Costo* Uso
(días)
D-REMA 10-21 2 0 2 DST
D-NRA 10-21 3 0 2 DST
I-REMA 25-42 4 0 3 DST
I-NRA 25-42 3 0 3 DST
MGIT SIRE 25-35 1 1 4 DST
D-GenoType MTBDR 3 2 0 5 DST
plus
I-GenoType MTBDR 17-22 2 0 5 DST
plus
Cost estimated on the bases on:
Acuna-Villaorduna C, Vassall A, Henostroza G, Seas C, Guerra H1, Vasquez L, Morcillo, N, Saravia
J, O’Brien R, Perkins MD, Cunningham J, Llanos-ZavalagaL, Gotuzzo E. Cost-Effectiveness Analysis of the
Introduction of Rapid, Alternative Methods to Identify Multidrug-Resistant Tuberculosis in Middle-Income
Countries. Clin Infectious Diseases 2008; 47:487–95
67. Estrategias para combatir la XDR-TB
Control básico de TB
Capacidad para el manejo clínico de MDR/XDR-TB
Incremento de la capacidad de los laboratorios para el diagnóstico de
MDR/XDR-TB
Implementación de las medidas prácticas del control de la infecciones
Acceso a ARVs
Gestión para la disponibilidad de recursos
Incremento de la investigación epidemiológica
Vigilancia epidemiológica para determinar la magnitud real del problema
Desarrollo de pruebas rápidas de diagnóstico
Desarrollo de nuevas drogas
68. Flujograma propuesto en Buenos Aires
Procedimiento de
diagnóstico de MDR-TB Elemento:
Planilla PPCTB notificación del
Niveles:
caso de MDR-TB
NOTIFICACIÓN
Regional
Diagnóstico Responsable municipal de TB
NOTIFICACIÓ Notificación
Confirmado N
Elementos: Hoja de
derivación/planilla
Centros hospitalarios notificación-ficha rosa
Información Provincial
CAPS
referenciales local para
(1er o 2do nivel de TDO
complejidad) Centros hospitalarios de DERIVACIÓN
DERIVACIÓN referencia local del PACIENTE
del PACIENTE para TDO
(2do nivel de complejidad) Nacional
Clínica DERIVACIÓN del PACIENTE para TDO
Laboratorio
69.
70.
71. Graduate implementation
1952 • ZN, culture on solid media: LJ and SB;
DST by PM in LJ
1992 • IS6110 RFLP; GelCompare®
• MGIT manual version
1995
1996
•Spoligotyping, Rifoligotyping
1998 •LCx Abbott, molecular diagnosis of TB
•CMM for first and second line drugs
1999
2000 • MGIT 960, EpiCenter Microsoft, DST:
MGIT 960 SIRE; BioNumerics®; IID;
2011 • GenoType MDRTBplus, TBeXIST (SL-
DST)
