病理学诊断是病理医师应用病理学知识、有关技术和个人专业实践经 验，对送检的患者标本进行病理学检查，结合有关临床资料，通过分析、综合后，作出的关于该标本病理变化性质的判断和具体疾病的诊断。为提高病理学诊断质量，促进临床工作，依据《中华人民共和国执业医师法》精神，结合医院病理科工作的特点，制定本规范。更多精彩教程，请访问缤果网(http://www.bingomed.com)。

1. 《临床技术操作规范•病理学分册》
第1章 总 则
一、为提高病理学诊断质量，促进临床工作，依据《中华人民共和国执业医师法》精神，结合医
院病理科工作的特点，制定本规范。
二、医院病理科和承担医院病理科任务的医学院校病理教研室的主要临床任务是通过活体组织病
理学检查（简称活检）、细胞病理学检查（简称细胞学检查）和尸体剖检（简称尸检）等作出疾
病的病理学诊断（或称病理诊断）。具有一定规模的病理科，应积极开展教学、培训病理医师和
科学研究等项工作。
三、 病理学诊断是病理医师应用病理学知识、有关技术和个人专业实践经
验，对送检的患者标本（或称检材，包括活体组织、细胞和尸体等）进行病理学检查，结合有关
临床资料，通过分析、综合后，作出的关于该标本病理变化性质的判断和具体疾病的诊断。病理
学诊断为临床医师确定疾病诊断、制定治疗方案、评估疾病预后和总结诊治疾病经验等提供重要
的、有时是决定性的依据，并在疾病预防，特别是传染病预防中发挥重要作用。
四、病理学诊断报告书（或称病理诊断报告）是关于疾病诊断的重要医学文书。当涉及医、患间
医疗争议时，相关的病理学诊断报告书具有法律意义。病理学诊断报告书应由具有执业资格的注
册主治医师以上（含主治医师）的病理医师签发。各医院可酌情准予条件适宜的高年资病理科住
院医师试行签署病理学诊断报告书。低年资病理科住院医师、病理科进修医师和非病理学专业的
医师不得签署病理学诊断报告书。
五、病理学检查是临床医师与病理医师为确立疾病诊断而进行的合作行为，是有关临床科室与病
理科之间特殊形式的会诊。临床医师和病理医师双方皆应认真履行各自的义务和承担相应的责
任。
六、病理学检查申请单是临床医师向病理医师发出的会诊邀请单。病理学检查申请单的作用是：
临床医师向病理医师传递关于患者的主要临床信息（包括症状、体征、各种辅助检查结果和手术
所见等）、诊断意向和就具体病例对病理学检查提出的某些特殊要求，为进行病理学检查和病理
学诊断提供重要的参考资料或依据。病理学检查申请单是疾病诊治过程中的有效医学文书，各项
信息必须真实，应由主管患者的临床医师亲自（或指导有关医师）逐项认真填写并签名。
七、临床医师应保证送检标本与相应的病理学检查申请单内容的真实性和一致性，所送检材应具
有病变代表性和可检查性，并应是标本的全部。
八、患者或患者的授权人应向医师提供有关患者的真实信息（包括姓名、性别、年龄、病史和可
能涉及诊断需要的隐私信息）。病理医师应尊重和保护患者的隐私。患者或患者的授权人应保证
其自送检材的真实性、完整性和可检查性。
九、病理科应努力为临床、为患者提供优质服务，遵照本规范的要求加强科室建设，制订完善的
科室管理制度，并实施有效的质量监控。
十、病理科工作人员应恪尽职守，做好本职工作。病理医师应及时对标本进行检查和发出病理学
诊断报告书，认真对待临床医师就病理学诊断提出的咨询，必要时应复查有关的标本和切片，并
予以答复。病理科技术人员应严格执行本规范的技术操作规程，提供合格的病理学常规染色片、
特殊染色片和可靠的其他相关检测结果，并确保经过技术流程处理的检材真实无误。
第 2 章 病理学检查常规
第一节 普通活体组织病理学检查常规
一、申请单和标本的验收
(一)病理科应有专人验收普通活体组织病理学检查(常规活检)申请单和送检的标本。
(二)病理科验收人员必须：
1

2. 1． 同时接受同一患者的申请单和标本。
2． 认真核对每例申请单与送检标本及其标志（联号条或其他写明患者姓
名、送检单位和送检日期等的标记）是否一致；对于送检的微小标本，必须认真核对送检容器内
或滤纸上是否确有组织及其数量。发现疑问时，应立即向送检方提出并在申请单上注明情况。
3．认真检查标本的标志是否牢附于放置标本的容器上。
4．认真查阅申请单的各项目是否填写清楚，包括：①患者基本情况［姓名、性别、年龄，送检
单位（医院、科室）、床位、门诊号/住院号、送检日期、取材部位、标本数量等］，②患者临床
情况［病史（症状和体征）
、化验/影象学检查结果、手术（包括内镜检查）所见、既往病理学检
查情况（包括原病理号和诊断）和临床诊断等］
。
5．在申请单上详细记录患者或患方有关人员的明确地址、邮编及电话号码，以便必要时进行联
络，并有助于随访患者。
(三)验收标本人员不得对申请单中由临床医师填写的各项内容进行改动。
(四)下列情况的申请单和标本不予接收：
1．申请单与相关标本未同时送达病理科；
2．申请单中填写的内容与送检标本不符合；
3．标本上无有关患者姓名、科室等标志；
4．申请单内填写的字迹潦草不清；
5．申请单中漏填重要项目；
6．标本严重自溶、腐败、干涸等；
7．标本过小，不能或难以制做切片；
8．其他可能影响病理检查可行性和诊断准确性的情况。
病理科不能接收的申请单和标本一律当即退回，不予存放。
(五)临床医师采取的标本应尽快置放于盛有固定液（4%中性甲醛，即 10%中性福尔马林）的容
器内，固定液至少为标本体积的 5 倍。对于需作特殊项目检查（如微生物、电镜、免疫组织化
学、分子生物学等）的标本，应按相关的技术要求进行固定或预处理。
(六)病理医师只对病理科实际验收标本的病理诊断负责。
(七)病理科应建立与送检方交接申请单和标本的手续制度。具体交接方法由各医院病理科自行制
订。
二、申请单和标本的编号、登记
(一)病理科验收人员应在已验收的申请单上注明验收日期并及时、准确编号（病理号），并逐项
录入活检标本登记簿或计算机内。严防病理号的错编、错登。
(二)标本的病理号可按年编序，或连续性（不分年度）编序。
(三)同一病例同一次的申请单、活检标本登记簿（包括计算机录入）、放置标本的容器、组织的
石蜡包埋块（简称蜡块）及其切片等的病理号必须完全一致。
(四)病理科应建立验收人员与组织取材人员之间申请单和标本的交接制度。具体交接方法由各医
院病理科自行制订。
(五)在病理科内移送标本时，必须确保安全，严防放置标本的容器倾覆、破损和标本的散乱、缺
失等。
三、标本的预处理
标本验收人员对已验收的标本酌情更换适宜的容器，补充足量的固定液；
对于体积大的标本，值班取材的病理医师在不影响主要病灶定位的情况下，及时、规范地予以剖
开，以便充分固定。
四、标本的巨检、组织学取材和记录
对于核验无误的标本，应按照下列程序进行操作：①肉眼检查标本（巨检）；②切取组织块（简
2

3. 称取材）；③将巨检和取材情况记录于活检记录单上（活检记录单印于活检申请单的背面）。巨检
和取材的技术操作参见第 3 章第四节。
巨检和取材时的注意事项：
(一)巨检和取材必须由病理医师进行，应配备人员负责记录。
(二)巨检和取材过程中，应严防污染工作人员和周围环境。
(三)标本一般应经适当固定后再行取材。已知具有传染性（例如结核病、病毒性肝炎等）的标本，
应在不污染环境和／或不扩散传染的原则下，经必要的初步巨检或切开后，立即置于盛有足量固
定液的专用容器内，充分固定后再行常规巨检和取材。
(四)病理医师在对每例标本进行巨检和取材前，应与记录人员认真核对该例标本及其标志与申请
单的相关内容是否一致。若对申请单填写的内容或／和标本有疑问（例如患者姓名有误，标本内
容、数量、病变特征与申请单填写的情况不符等），应暂行搁置，尽快与送检方联系，查明原因，
确保无误后，再行巨检和取材。必要时，可邀请有关临床医师共同检查标本和取材。对于有疑问
的标本，在消除疑问前不得进行巨检和取材，应将有关标本连同其申请单一并暂时妥存。
(五)病理医师进行巨检和取材时，记录人员应根据病理申请单内容，向巨检医师报告患者的基本
临床情况、手术所见、标本情况（采取部位、数量等）和送检医师的特殊要求等，并如实、清楚
地将病理医师的口头描述记录于活检记录单上。必要时，应在活检记录单上（或另附纸）绘简图
显示巨检所见和标示取材部位。取材者应核对记录内容。
(六)具有医学学术价值的标本可摄影存档，并酌情妥为保存。
(七)病理科宜积极推行巨检和取材的录音记录。每次巨检和取材结束后，应由专人立即对录音内
容进行文字整理，记录于活检记录单上（手录或用计算机录入、打印）。有关的录音资料应保存
至病理诊断报告书发出后两周。
(八)细小标本取材时，可用伊红点染并用软薄纸妥善包裹。
(九)每例标本取材前、后，应用流水彻底清洗取材台面和所有相关器物，严防检材被无关组织或
其他异物污染，严防细小检材被流水冲失。
(十)巨检和取材必须按照本规范的要求进行操作（参见第 3 章第四节）。对
于由不同部位或不同病变区域切取的组织块，应在其病理号之后再加编次级号（例如：－1，－
2，－3，……；A,，B，C，……等）。
(十一)巨检／取材者和记录人员应相互配合、核查，确保所取组织块及其编号标签准确地置于用
于脱水的容器（脱水盒等）内。
(十二)标本巨检和取材后剩余的组织／器官应置入适当容器内，添加适量
4%中性甲醛并附有相关病理号和患者姓名等标志，然后按取材日期有序地妥为保存。取材剩余
的标本一般保存至病理诊断报告书发出后两周。
(十三)病理医师在每批标本巨检和取材后，应与记录人员共同核对取材内
容，并在活检记录单／取材工作单上签名和签署日期。
(十四)取材后剩余的病理标本属于污染源，应遵照有关规定处理。
(十五)巨检／取材医师或记录人员与制片的技术人员认真办理交接手续。具体交接方法由各医院
病理科自行制订。
五、组织切片制备的基本要求
(一)组织制片过程中，应确保切片号与蜡块号一致。
(二)制片工作一般应在取材后 2 个工作日内完成（不含需要脱钙、脱脂等特殊处理的标本）。
(三)制片完成后，技术人员应检查制片质量，并加贴标有本病理科病理号的标签。常规石蜡-HE
染色片的优良率应≥95%， 优秀率不<35％。不合格切片应立即重做。切片质量的基本标准参
见第 3 章第一节的附表。
(四)制片过程发生意外情况时，有关技术人员和技术室负责人应及时向科主任报告，并积极设法
3

4. 予以补救。
(五)制片完成后，技术人员应将所制切片与其相应的活检记录单／取材工作单等进行认真核对，
确认无误后，将切片连同相关的活检申请单／活检记录单／取材工作单等一并移交给病理医师。
双方经核对无误后，办理移交签字手续。具体交接方法由各医院病理科自行制订。
(六)常规活检组织切片制备技术的基本要求参见第 3 章第一节。
六、组织切片的光学显微镜检查和病理诊断
(一)病理医师进行病理诊断时：
1．应认真阅读申请单提供的各项资料，必要时（尤其是疑难病例）
，应向
有关临床医师了解更多的临床信息。
2．应认真阅读活检记录单中关于标本巨检的描述；负责复检的病理医师必要时亲自观察标本，
补充或订正病变描述，指导或亲自补取组织块。
3．应了解患者既往病理学检查情况（包括切片的病理诊断和有关文字记录）：①由本病理科既
往受理者，必须及时调阅相关切片等病理学检查资料；②非本病理科既往受理者，应积极协助患
者从有关病理科商借相关切片等病理学检查资料参阅。
4．应在活检记录单上签署“医嘱”，告知技术人员进行必要的深切片、连切片、特殊染色和其他
相关技术检测。
5．应全面、细致地阅片，注意各种有意义的病变。
(二)进行初检的病理医师，应提出初诊意见，送交主检病理医师复查。
(三)主检病理医师对难以明确诊断的病例,可以：
1．提请科内上级医师会诊或进行科内读片讨论（会诊）；
2．与有关临床医师进行临床－病理会诊；
3．必要时约见患者（尤其门诊患者）或患者亲属（或其他患方相关人员），了解病情，说明病
理诊断的疑难情况和延期签发病理学诊断报告书的原因等；
4．于签发病理学诊断报告书前进行科外病理会诊(“诊断报告前病理会诊”)，应将各方面会诊意
见的原件（或复印件）作为档案资料贴附于有关患者的活检记录单中备查；
5．必要时，建议临床医师重复活检，或密切随查。
(四)主检病理医师根据常规切片的镜下观察，结合标本巨检、相关技术检查结果、有关临床资料
和参考病理会诊意见等，作出病理诊断或提出病理诊断意见（意向）
，清楚地书写于活检记录单
的有关栏目中、并亲笔签名。各方会诊意见不一、难以明确诊断时，主检医师可参考会诊意见酌
情诊断，或在病理学诊断报告书中将各方会诊意见列出，供临床医师参考。
(五)对打印的病理学诊断报告书，主检病理医师应与活检记录单上的病理诊断文字进行核对，并
亲笔签名。［参见本节下文：“八、常规活检病理学诊断报告书及其签发”］
七、相关诊断技术的选用
病理医师可借助于组织化学染色（包括特殊染色）、免疫组织化学染色、电子显微镜技术、分子
生物学技术、流式细胞技术等相关诊断技术检查提供的佐证，对某些病例（尤其是疑难病例）进
（参见第 4 章）
行病理诊断。
八、病理学诊断报告书及其签发
(一)病理诊断表述的基本类型
Ⅰ类：检材部位／疾病名称／病变性质明确和基本明确的病理诊断。
Ⅱ类：不能完全肯定疾病名称/病变性质，或是对于拟诊的疾病名称／病变
性质有所保留的病理诊断意向，可在拟诊疾病／病变名称之前冠以诸如病变可“符合为”、“考虑
为”、“倾向为”、“提示为”、“可能为”、“疑为”、“不能排除（除外）”之类的词语。
Ⅲ类：检材切片所显示的病变不足以诊断为某种疾病（即不能做出Ⅰ类或
Ⅱ类病理诊断），只能进行病变的形态描述。
4

5. Ⅳ类：送检标本因过于细小、破碎、固定不当、自溶、严重受挤压（变形）
、
被烧灼、干涸等，无法做出病理诊断。
(二)病理学诊断报告书的基本内容
1．患者的基本情况，包括病理号，姓名，性别，年龄，送检医院／科室（住院／门诊），住院
号／门诊号，送检／收验日期等。
2．巨检病变和镜下病变要点描述（一般性病变和细小标本可酌情简述或省略）。
3．与病理诊断相关技术的检查结果。
4．病理诊断的表述（参见上文“病理诊断表述的基本类型”）
。
5．对于疑难病例或作出Ⅱ、Ⅲ类病理诊断的病例，可酌情就病理诊断及其相关问题附加：①建
议（例如进行其他有关检查、再做活检、科外病理学会诊、密切随诊／随访等）；②注释／讨论。
6．经过本病理科或／和科外病理会诊的病例，可将各方病理会诊意见列于该例患者的病理
学诊断报告书中。
(三)病理学诊断报告书的书写要求
1．病理学诊断报告书的文字表述力求严谨、恰当、精练、条理和层次清楚。
2．病理学诊断报告书应为一式二份，一份交予送检方，另一份随同患者的病理学检查申请单／
病理学检查记录单一并存档。主检病理医师必须在每一份病理学诊断报告书上签名，不能以个人
印章代替签名，不能由他人代为签名；主检病理医师签名的字迹应能辨认。
3．手书的病理学诊断报告书必须二联复写，必须文字规范、字迹清楚，不得潦草、涂改。
4．手书和计算机打印的病理学诊断报告书中的关键性文字，例如“癌”、“瘤”、“阳性”、“阴性”
和数字等，要认真核对，不得有误。
5．计算机打印的图文病理学诊断报告书提供的病变图象要准确，具有典型（代表）性，放大倍
数适当。
6．患者的基本情况项目必须严格按照送检临床医师填写的文字抄写或用计算机输录于病理学诊
断报告书中，并认真核查无误，签发报告书的病理医师和病理科的其他人员都不得改动。
7．病理医师不得签发虚假的病理学诊断报告书，不得向临床医师和患方人员提供有病理医师签
名的空白病理学诊断报告书。
(四)病理学诊断报告书的发送
1．病理科自接受送检标本至签发该例病理学诊断报告书的时间，一般情况
下为 5 个工作日以内；
2．由于某些原因（包括深切片、补取材制片、特殊染色、免疫组织化学染色、脱钙、疑难
病例会诊或传染性标本延长固定时间等）延迟取材、制片，或是进行其他相关技术检测，不能如
期签发病理学诊断报告书时，应以口头或书面告知有关临床医师或患方，说明迟发病理学诊断报
告书的原因。
3．病理科应有专人发送病理学诊断报告书。住院患者的病理学诊断报告书
应发送至有关临床科室。病理科所在医院门诊患者和外院患者病理学诊断报告书的发送方法，由
各医院病理科自行制订。
4．病理学诊断报告书的经收人员（包括患方人员）必须履行签收手续。
5．病理科已发出的病理学诊断报告书被遗失时，一般不予补发；必要时，
经病理科主任同意可以抄件形式补发。
九、资料管理
普通活体组织病理学检查的资料必须妥善管理，有关规定参见本章第五节。
十、会 诊
病理学会诊是普通活体组织病理学诊断过程的重要环节，有关规定参见本章第六节。
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6. 第二节 手术中快速活体组织病理学检查常规
一、概 述
(一) 手术中快速活体组织病理学检查（快速活检）是临床医师在实施手术
过程中，就与手术方案有关的疾病诊断问题请求病理医师快速进行的急会诊，尤其需要临床医师
与病理医师间的密切合作。
(二)快速活检要求病理医师在很短时间内，根据对切除标本的巨检和组织块快速冷冻切片（或快
速石蜡切片）的观察，向手术医师提供的参考性病理诊断意见。与常规石蜡切片的病理诊断相比，
快速活检会诊具有更多的局限性和误诊的可能性。有的病例难以快速诊断，需要等待常规石蜡切
片进一步明确诊断。因此，应向临床医师说明快速活检的：①局限性、②适用范围、③慎用范围
和④不宜应用范围。
(三)有关临床医师应于手术前向患者和／或患者授权人说明快速活检的意义和局限性等，取得患
者和／或患方的知情和理解。患者和／或患者授权人应在由医院制定的《手术中快速活检患方知
情同意书》签署意见和签名。
(四)主持手术的临床医师应在手术前一天向病理科递交快速活检申请单，填写患者的病史，重要
的影象学、实验室检查结果和提请病理医师特别关注的问题等。尽可能不在手术进行过程中临时
申请快速活检。
(五)手术中快速活检应由经过该项工作训练的主治医师以上的病理医师主持。尚不具备相应条件
的病理科不应勉强开展手术中快速活检。
(六)负责快速活检的主检病理医师应了解患者的①临床情况，②手术所见，③既往有关的病理学
检查情况。
二、适用范围
(一) 需要确定病变性质（如肿瘤或非肿瘤／良性肿瘤或恶性肿瘤等），以
决定手术方案的标本。
(二) 了解恶性肿瘤的扩散情况，包括肿瘤是否浸润相邻组织、有无区域淋
巴结转移等。
(三)确定肿瘤部位的手术切缘有无肿瘤组织残留。
(四)确认切除的组织，例如甲状旁腺、输卵管、输精管及异位组织等。
三、慎用范围
涉及截肢和其他会严重致残的根治性手术切除的标本。需要此类手术治疗
的患者，其病变性质宜于手术前通过常规活检确定。
四、不宜应用范围
(一)疑为恶性淋巴瘤。
(二)过小的标本（检材长径≤0.2cm 者）
。
(三)术前易于进行常规活检者。
(四)脂肪组织、骨组织和钙化组织。
(五)需要依据核分裂象计数判断良、恶性的软组织肿瘤。
(六)主要根据肿瘤生物学行为特征而不能依据组织形态判断良、恶性的肿瘤。
(七)已知具有传染性的标本（例如结核病、病毒性肝炎、艾滋病等）
。
五、申请单和标本的验收、编号和登记
手术中快速活体组织病理学检查申请单和标本的验收、编号和登记参照本章第一节中“一”至“三”
项的有关规定。
六、标本的巨检、取材和记录
(一)病理科验收快速活检申请单和标本后，应参照本章第一节中“四”项的有关规定，立即进行标
6

7. 本的巨检、取材和记录。
(二)主持快速活检的病理医师应亲自参与标本的巨检和取材（或指导取
材）。
(三)通常选取具有代表性的病变组织 1～2 块，需要时，增加取材块数。
七、组织切片的制备
(一)冷冻切片
1．完成冷冻 HE 染色切片制备的时间通常应为 20～25 分钟。
2．恒冷箱切片机制片：至少应于切片前 1 小时开机预冷，冷室温度一般为-15～-20℃。常规开
展冷冻切片快速病理学诊断的病理科，恒冷箱切片机宜处于 24 小时恒温待机状态。
3．其他方法的冷冻切片制备参见第 3 章第一节。
(二)快速石蜡切片
1．完成快速石蜡－HE 染色切片的时间通常为 30 分钟。
2．快速石蜡切片的制备方法参见第 3 章第一节。
(三)制备好的冷冻／快速石蜡-HE 染色切片，加贴标有本病理科病理号的
标签后，立即交由主检病理医师进行诊断。
八、手术中快速活检会诊意见及其签发
(一)有条件的病理科宜由两位中／高级称职的病理医师共同签署快速活检的病理诊断意见。对于
病变疑难、手术切除范围广泛和会严重致残的手术中快速活检，应由两位高级称职的病理医师共
同签署会诊意见。主检病理医师签名的字迹应能辨认。
(二)快速活检诊断意见一般在收到送检标本后 40 分钟内发出；同一时间段内相继收到的多例患
者标本或是同一例患者的多次标本，其发出报告的时间依次类推。对于疑难病变，可酌情延时报
告。
(三)对于难以即时快速诊断的病变（例如病变不典型、交界性肿瘤病变或送检组织不足以明确诊
断等），主检病理医师应向手术医师说明情况，恰如其分地签发病理诊断意见或告知需要等待常
规石蜡切片进一步明确病理诊断。
(四)主检病理医师签署的快速活检病理诊断意见，宜以文字形式报告（具体发出方式由各医院自
行决定）。快速活检病理诊断意见报告书发出前应认真核对无误。
九、冷冻切片后剩余组织的处理
(一)冷冻切片后剩余的冷冻组织（简称 “冻对”）和冷冻切片取材后剩余、未曾冷冻的组织（简
称“冻剩”），均应保存，用以制备常规石蜡切片，以便与冷冻切片进行对照观察。
（二）“冻对”／“冻剩”组织的蜡块和切片需与同一病例手术后送检的切除标本编为同一病理号，
并作出综合性诊断。
(三)当冷冻切片病理诊断意见与其“冻对”组织的常规石蜡-HE 片的
病理诊断不一致时，该例的病理诊断一般应以石蜡-HE 片诊断为准。
十、资料管理
手术中快速活体组织病理学检查的资料必须妥善管理，有关规定参见本章第五节。
第三节 细胞病理学检查常规
一、申请单和标本的验收、编号和登记
(一) 病理科应参照本章第一节（常规活体组织病理学检查常规）中“一”
和“二”项的规定，进行细胞病理学检查(细胞学检查)申请单和标本的验收、编号和登记。
(二)用于细胞学检查的标本必须新鲜，取材后应尽快送至病理科(或细胞病理学室,下同)；病
理科核验检材无误后，应尽快进行涂片和染色。
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8. (三)病理科验收标本人员不得对申请单中由临床医师填写的各项内容进行改动。
二、细胞涂片、组织印片和压片的基本要求
(一)细胞涂片、组织印片和压片（参见第 3 章第二节）。
(二)肿物细针穿刺物涂片
1. 应由掌握细针穿刺技术的注册医师或注册助理医师，按照细针穿刺技术操作常规，亲自对确
有适应症且无禁忌症的患者采取穿刺物。
2. 适应症：通常为：
(1)浅表肿物：乳腺、甲状腺、涎腺、淋巴结、前列腺、皮下软组织和骨等。
(2)胸腔肿物：肺、胸膜和纵隔等。
(3)腹腔肿物：肝、胰、肾、肾上腺、腹腔内、腹膜后和盆腔内等。
(4)颅内肿物。
3．禁忌症：患者有难以控制的咳嗽、肺动脉高压症、进行性肺气肿、出血
性体质及“晕针史”等。
（三）对于核验无误的送检标本，应立即依序进行：①涂片、印片或
压片，②固定和③染色。
三、细胞病理学诊断报告书及其签发
(一) 细胞病理学诊断可为临床医师诊断疾病（尤其是肿瘤）提供重要参考
依据。
(二)细胞病理学诊断报告书必须由具有主检资格的注册病理医师签署后发出。主检病理医师签名
的字迹应能辨认。
(三)细胞病理学诊断表述的基本类型
1.直接表述性诊断：适用于穿刺标本的细胞病理学诊断报告。根据形态学观察的实际情况，
对于某种疾病／病变做出肯定性（Ⅰ类）
、不同程度意向性（Ⅱ类）细胞学诊断，或是提供形态
描述性（Ⅲ类）细胞学诊断，或是告知无法做出（Ⅳ类）细胞学诊断。[参考本章第一节的八(一)
项：“病理学诊断表述的基本类型”]
2.间接分级性诊断：用于查找恶性肿瘤细胞的诊断。
Ⅰ级：未见恶性细胞
Ⅱ级：查见核异质细胞
Ⅱa：轻度核异质细胞
Ⅱb：重度核异质细胞
Ⅲ级：查见可疑恶性细胞
Ⅳ级：查见高度可疑恶性细胞
Ⅴ级：查见恶性细胞
(四)细胞病理学诊断的局限性（假阴性或假阳性诊断）
1.假阴性：是指在恶性肿瘤患者的有关标本中未能查见恶性细胞。假阴性
率一般为 10%左右。因此，细胞病理学检查的阴性结果并不能否定临床医师的恶性肿瘤诊断。
2.假阳性：是指在非恶性肿瘤患者的有关标本中查见了“恶性细胞”。假阳
性率通常≤1%。因此，细胞病理学诊断应密切结合患者的临床资料，对于临床上未考虑为恶性
肿瘤患者的阳性细胞学诊断应持慎重态度。
(五)细胞病理学诊断报告书的基本内容
1．患者的基本情况项目，包括病理号、姓名、性别、年龄、送检医院／科室（住院／门诊）、
住院号／门诊号、送检／收验日期等。
2.细胞病理学诊断的表述（参见上项“细胞病理学诊断报告表述的基本类型”）。
3.必要时或条件允许时，可酌情就细胞病理学诊断及其相关问题附加：①
8

9. 某些建议（例如进行其他有关检查、再做活检、病理科外病理学会诊、密切随查/随访等）；②注
释／讨论。
4.经过本病理科或/和科外病理会诊的病例，可将各方的细胞病理学诊断意见附于该例的细胞
病理学诊断报告书中。
(六)细胞病理学诊断报告书的书写要求
1. 参照本章第一节（“常规活体组织病理学检查常规”）中“八（二）”项的有关规定。
2.计算机图文打印的细胞病理学诊断报告书提供的细胞学图象应具有典型（代表）性，放大倍数
适当。
(七)细胞病理学诊断报告书的发送
1.病理科自接受送检标本至签发细胞病理学诊断报告书的时间，一般情况
下为 1～2 个工作日。
2.因某些原因（包括特殊染色、免疫组化染色、疑难会诊等）不能如期签发细胞病理学诊断报告
书时，应以口头或书面告知有关临床医师或患方，说明迟发报告书的原因。
3．病理科应有专人发送细胞病理学诊断报告书。住院患者的细胞病理学诊
断报告书应发送至有关临床科室；本院门诊患者和外院患者的细胞病理学诊断报告书的发送方法
由各医院病理科自行制定。
4．细胞病理学诊断报告书的经收人员（包括患方人员）必须履行病理科规
定的签收手续。
5．已由病理科发出的细胞病理学诊断报告书被遗失时，一般不予补发；必
要时，经病理科主任同意可以抄件形式补发。
四、资料管理
细胞病理学检查的资料必须妥善管理，有关规定参见本章第五节。
五、会 诊
细胞病理学会诊是细胞病理学诊断过程的重要环节，有关规定参见本章第六节。
第四节 尸体剖检（尸检）的诊断常规
一、尸检的受理
(一)必须遵照国家有关规定受理尸检。
(二)受理尸检范围：①普通病理尸检；②涉及医、患争议的尸检（由卫生
行政主管部门指定的尸检机构实施）。
(三)受理尸检部门：具备独立尸检能力的①医院病理科，②医学院校的病理学教研室，③经医政
部门注册的病理诊断中心。
(四)主持尸检（主检）人员：应是接受过尸检训练、具有中级以上专业职称的病理学医师或病理
学教师。必要时，邀请法医参与尸检。
(五)申请或委托尸检方：①有关医院，②卫生行政部门，③司法机关，④死者的亲属或代理
人，或⑤被受理尸检方认可的其他申请或委托方。
(六)申请或委托尸检方必须向受理尸检方递交：①死者的死亡证明，②有申请或委托方当事人签
名、负责人签名和加盖委托单位公章的尸检申请书或委托书，③逐项认真填写的尸检申请书（包
括死者的临床资料要点和其他需要说明的情况）
。
(七)死者亲属或代理人签署说明尸检有关事项的《死者亲属或代理人委托
尸检知情同意书》（由受理尸检方制定）
，确认以下事项：
1．同意有关受理尸检机构对于死者进行尸检。
2．授权主持尸检人员根据实际需要确定尸检的术式、范围、脏器或组织的取留及其处理方式。
9

10. 3．主持尸检人员负责遗体尸检后的体表切口缝合，不参与尸检后遗体的其
他安置事项。
4．明确新生儿和围生期胎儿尸检后的尸体处理方式。
5．同意对尸检过程进行必要的摄影、录像，并确认是否同意教学示教。
6．尸检病理学诊断报告书可提供死者所患的主要疾病和死因；难以作出明
确结论时，可仅提交病变描述性尸检报告。
7．尸检病理学诊断报告书发送给委托尸检方。
(八)下列情况的尸检可不受理：
1．委托尸检手续不完备者（包括未按规定交纳尸检费用者）
；
2．拒签《死者亲属或代理人委托尸检知情同意书》者（包括对于尸检的术
式、范围、脏器或组织的取留及其处理方式等持有异义从而影响尸检实施和尸检结论形成者）；
3．委托尸检方与受理尸检方就涉及尸检的某些重要问题未能达成协议者；
4. 死者死亡超过 48 小时未经冷冻、或冷冻超过 7 日者；
5．疑因或确因烈性传染病死亡的病例，尸检方不具备相应尸检设施条件者；
6．因其他情况不能受理者。
二、尸检前的准备工作
(一)尸检室环境的准备。
(二)尸检基本器材和工作服的准备。
(三)安排实施尸检的专业人员和技术人员。
(四)将拟行剖验的尸体移送至尸检室。
(五)主持尸检人员确认尸检手续完备（死亡证明、尸检申请书或委托书、
死者的临床资料要点等），并请死者亲属或委托代理人确认尸体。
(六)主持尸检人员认真阅读、熟悉有关死者的临床资料要点（必要时阅读死者的生前病历），了
解申请或委托方对于尸检的要求和尸检时需要注意的问题。
(七)进行尸检编号并登录于尸检登记薄上。
(八)尸检过程现场文字（或语音）记录、摄影或录象工作的准备。
三、尸检的卫生管理
(一)制订尸检室卫生管理制度并认真实施。
(二)尸检人员和尸检室内其他人员必须认真做好个人和工作环境的卫生防护。
(三)疑为或确诊为烈性传染病死者的尸检，必须遵照传染病尸检的有关规
定进行操作。
(四)尸检结束后卫生处置
1．认真清洗尸检台和尸检室，并进行环境消毒。
2．认真清洗尸检工作服和器械等，并进行消毒。
3．按照有关规定认真处理尸检污物。
4．尸检人员在专用卫生间内淋浴。
5．进行上述各项卫生处置过程中必须严防污染有关人员和尸检室内、外环境。
四、尸检的技术操作
尸检的技术操作规范参见第 3 章的第三节。
五、尸检组织的切片制备
尸检组织切片制备的技术操作规范参见第 3 章第一节。
六、尸检组织的病理学相关技术检查
尸检组织病理学相关技术检查的规范参见第 4 章。
七、尸检组织切片的光学显微镜检查和病理学诊断
10

11. (一) 光镜检查切片，客观地描述和记录各系统、器官的病变要点；
(二)在综合镜检和巨检（肉眼检查）所见的基础上，结合死者生前的临床资料等形成尸检的病理
诊断。
(三)有关镜检诊断的其他事项参见本章第一节的一（六）项（“组织切片的光学显微镜检查和病
理学诊断”）。
八、尸检档案资料
(一)基本内容
1. 一般资料：包括死者的尸检号、姓名、性别、年龄、籍贯、民族、出
生地、住址、死亡时间、尸检时间和地点、相关医院（临床科室、住院号／门诊号／急症号）
、
委托或申请尸检单位及主持尸检人员和助手等。
2. 尸检申请书或委托书。
3. 有关的临床资料。
4. 由死者亲属或代理人签署的《死者亲属或代理人委托尸检知情同意书》
。
5. 尸检所见（附有必要的图像资料）。包括：
(1)对有关尸体及其死亡征象的确认。
(2)体表检查所见。
(3)体腔（胸腔、心包腔、腹腔）检查所见。
(4)脏器检查所见：依序逐个描述各脏器的肉眼检查和光学显微镜检查所见。
(5)特殊检查结果。例如毒物、病原生物学等检查（附有关检查报告）。
6. 病理学诊断和尸检病理学诊断报告书副本（参见下项“尸检病理学诊断报告书及其签发”）
。
7. 死亡原因。
8. 小结。
9．讨论。包括：
(1)主要疾病及其诊断依据、发生和发展特点。
(2)主要疾病／病变之间、主要疾病与继发／伴发疾病之间的相互关系。
(3)从临床与病理相结合的角度，参考有关文献，进行讨论。
10. 其他资料。包括照片及其底片、幻灯片、图表、临床病理讨论记录、参考文献和电子信
息资料等。
(二)受理尸检单位，应积极实施尸检档案资料的计算机管理。
九、尸检病理学诊断报告书及其签发
(一)尸检病理学诊断报告书(简称尸检报告书或尸检报告)是关于尸检的正式病理学报告。
(二)尸检病理学诊断报告书的基本内容：①主要疾病（与死亡直接相关的疾病）；②继发疾病（与
主要疾病密切相关的疾病） ③伴发疾病
； （与主要疾病无密切关系的疾病） 可酌情进行死因分析、
。
小结和讨论。疾病诊断力求使用国际医学规范术语，并按各疾病的致死重要性和因果关系排序。
(三)尸检病理学诊断报告书必须由主检人员签名后发出。主检人员签名的字迹应能辨认。
(四)尸检病理学诊断报告书应一式两份（正本和副本）
，两份报告书具有
同等效力。报告书的正本随同其他尸检资料一并归档，报告书的副本发给委托尸检方。手书的尸
检病理学诊断报告书应二联复写，必须文字规范、字迹清楚，不得涂改。
(五)尸检病理学诊断报告书通常在尸检后 45 个工作日内发出。由于病变复
杂或其他原因不能按时发出尸检病理学诊断报告书时，可酌情延迟发出并应向委托尸检方说明迟
发原因。
十、尸检资料的管理
尸检资料必须妥善管理，有关规定参见本章第五节。
11

12. 第五节 病理学检查资料的管理
一、概 述
(一)常规活检、手术中快速活检、细胞病理学检查和尸检等的文字资料（含电子信息资料）、非
文字资料（组织的石蜡包埋块、切片等）以及其他相关资料均为有价值的医学资料，皆由受理病
理学检查的病理科按照本规范规定的期限妥为保存。病理科必须设立病理档案资料室和制订病理
档案资料管理制度（包括病理检查资料的归档、借用和归还手续等）
，并有专人管理。应积极实
行病理学检查资料的计算机管理。
(二)各种病理学检查的文字资料应装订成册保存。
(三)据以做出常规活检、快速活检、尸检病理学诊断的原始组织学切片和
查见肿瘤细胞或可疑肿瘤细胞的玻片必须妥善保存。未查见恶性肿瘤细胞的玻片，于诊断报告书
发出后保存 2 周。
二、患者查询病理学检查资料的期限
(一)门诊患者为送检后 15 年。
(二)住院患者为送检后 30 年。
三、活检、尸检大体标本的保存期限
(一) 活检：自签发病理学诊断报告书之日起保存 2～4 周，具体保存期限由
各医院自行规定。
(二)尸检
1. 普通病理尸检：自签发病理学诊断报告书之日起保存 3 个月。
2. 涉及医、患争议的尸检：按照尸检前有关各方签署的协议办理。
四、病理学检查资料的借用
(一)医院必须制订关于借用病理学检查资料的办法并严格实施。
(二)关于患方借用病理组织学切片，应注意：
1．患方人员申请借用有关患者的活检切片、尸检切片时，应按照医院制定
的有关规定办理手续。
2．申请借用切片的患方人员必须：①出示本人身份证等有效证件并保留其复印件；②填写借片
申请单并签名；③支付规定的借片押金（待归还切片时退还）
。
3． 病理科据以作出诊断的原始切片一般不外借，通常借出（或售出）相关
病例的复制切片。复制切片借出（或售出）前，应确认该切片的病变与原切片相同或基本相同。
4． 患方借出的切片应妥善保存，必须在规定的期限内归还。患方借出的切
片若有破损、丢失等，应按规定支付赔偿金，并承担相应责任。
5．病理科因故不能向患方出借或出售有关切片时，由双方协商解决病理学会诊问题。病理科可
酌情允许患方邀请外院的病理医师前来病理科阅片；有条件的单位可酌情进行远程病理会诊。
(三)关于患方借用细胞病理学玻片
1．一个病例的同一次检查有多张查见恶性肿瘤细胞的“阳性片”或“可疑
阳性片”时，可允许患方借用其中的一张。借用手续参见上项(二)。
2．一个病例仅有一张为查见恶性肿瘤细胞的“阳性片”或“可疑阳性片”时，该阳性片或可疑阳性
片原则上不予外借。其会诊问题由双方协商解决。病理科可酌情允许患方邀请外院的病理医师前
来病理科阅片。
(四)关于借用检材组织的石蜡包埋块
1. 活检和尸检检材组织的石蜡包埋块（简称蜡块）是无法复制的病理学检
查资料，属于诊断病理学的重要基础档案，原则上不外借。必要时，可由病理科向患方提供未经
染色的切片（通称白片）。
3． 患方外借病理切片会诊时，受理会诊的病理科若确实需要有关病例病理
12

13. 检材的蜡块，可由有关病理科双方协商解决。
第六节 病理学会诊
一、具有一定规模的病理科应定期举行科内病理会诊或读片讨论会。
二、积极推动建立地域性病理会诊中心。
三、加强临床－病理会诊。
四、应由具有高级职称的病理医师接受病理科内、外的病理学会诊。
五、接受外院的病理会诊时，由会诊的病理医师签发《病理学会诊咨询意见书》
，并在该《意见
书》上写明：“病理医师个人会诊咨询意见，仅供原病理诊断的病理医师参考”。由作出原病理诊
断的病理医师自行决定是否采纳病理会诊咨询意见和采纳的程度。做出原诊断的病理科应将《病
理会诊咨询意见书》的原件或其复印件贴附于有关患者的病理检查记录单上，一并归档。
六、加做相关技术检测方能作出诊断的会诊病例，会诊医师应在《意见书》中予以说明，并向患
方进行适当解释。
七、对病理诊断时间较为长久病例的会诊，应考虑到做出原诊断时期的诊断病理学理论、技术水
平、相应病变／疾病的定性诊断标准和原诊断病理科当时的客观条件。
八、有条件的病理科可开展远程病理会诊。
第七节 病理科的基本设施
一、病理科基本设施的指导原则
(一)保证病理科完成基本工作任务。
(二)保护病理工作人员免受污染。
(三)保护环境免受污染。
二、病理科的基本工作空间
(一)病理科的常规工作需要在下列的各自独立的房间内进行：
1．收发室（检材的接收、登记，病理诊断报告书的发放，病理资料查询等）
2．巨检和取材室（检材的肉眼检查和切取组织块，贮存取材后的剩余检材）
3．常规切片前的预处理室（组织块的脱水、透明和浸蜡）
4．制片室（石蜡切片／冷冻切片／细胞学涂片的制做和染色）
5．病理组织学诊断室
6．细胞病理学诊断（酌情附设组织穿刺室）
7．病理会诊室
8．病理档案资料室
9．大体标本制作室和陈列室
10．尸检室及其配套空间（三级医院建立，包括准备室、尸检室、肉眼检查和取材室、更衣／
淋浴室、标本储藏室等）
11．储藏室
12．淋浴室
13．办公室
(二) 较高技术层次的病理科还应设置：
1．特殊染色和免疫组织化学染色实验室
2．细胞遗传和分子病理学实验室
13

14. 3．其他特殊检测实验室（例如超薄切片制备、电镜检测、细胞培养、流式细胞术和其他新技术
实验室）
4．图书／电子信息／学术活动室
5．进修病理医师教室。
三、病理科常规活检和快速活检工作的基本设施
(一) 收发室
1． 办公设施
2． 紫外线消毒柜（用于活检申请单等消毒）
3． 合于个人和环境防污染要求的上、下水系统
4． 其他相关设备
(二)病理标本巨检和取材室
1．便于清洗、消毒的屋顶、室壁和地面装修
2．室内紫外线消毒设备
3．室内高效通风设施
4．封闭式高效能通风柜厨(用于巨检和取材，应便于清洗、消毒，并安装足够照明和紫外线消毒
设备)
5．合于个人和环境防污染要求的上、下水系统（包括独立的污水排泄系统和污水处理池）
6．流水冲洗装置
7．冷水和热水供给系统
8．自动录音设备（酌情安装，用于记录医师巨检标本时的语言描述）
9．标本储存柜（安装排风设备）
10．隔离服装（消毒后使用）
11．其他相关设备。
(三)常规切片的预处理室和常规/快速制片室
1．排放有毒物质的室内高效通风设施（用于组织块和石蜡切片的
人工脱水流程）
2．符合个人和环境防污染要求的上、下水系统（包括独立的污水排泄系统和污水处理池）
3．室内紫外线消毒设备
4．封闭式高效能通风柜厨（用于人工脱水流程）
5．实验台
6．脱水设备：①人工脱水器具或/和②半自动或全封闭自动脱水机
7．组织块石蜡包埋机
8．石蜡切片机
*9．恒温冷冻切片机
*10．石蜡快速切片机 ［* 9 和 10：两项皆配备或配备一项］
#11．一次性切片刀及其配套部件
#12．切片刀和磨刀机 ［# 11 和 12：两项皆配备或配备一项］
13．冰箱
14．恒温箱
15．烤箱
16．有关试剂和试剂柜
17．天平
18．染色用器具
19．普通光学显微镜（用于染色质量控制）
14

15. 20．其他相关设备
(四)特殊染色和免疫组织化学染色实验室
1．用于染色的实验室环境设施和染色的常规设备［参见上文：(三)常规切片的预处理室和制片
室］
2．微波炉或其他抗原修复设备
3．有关试剂和试剂柜
4．自动免疫组化染色仪（具有一定规模的病理科，酌情）
5．其他相关设备
(五)病理组织学诊断室和病理会诊室
1．双筒显微镜（每名病理医师配备一台）
*2．双头和／或多头显微镜（用于共览会诊和培训示教）
*3．计算机和打印机（酌情连接局域网，用于病理学检查资料的储存和调阅）
*4．显微摄影设备，计算机图像分析、电子图像存储和放映设备
[* 2～4：具有一定规模的病理科配置]
5．远程会诊系统（酌情）
6．其他相关设备
(六)病理档案资料室
1．用于储存切片、蜡块和文字资料的柜具
2．计算机和打印机（酌情连接局域网，用于病理学检查资料的储存和调阅）
3．秘书办公设施（具有一定规模的病理科）
4．其他相关设备
(七)必要的专业参考书和基本的专业期刊（具有一定规模的病理科应设立
图书资料室）
(八)病理大体标本制作室和陈列室
1．制作病理大体标本的工具
2．用于陈列病理大体标本的展览柜（配备照明装置）
3．其他相关设备
(九)办公室：必要的办公设备
(十)储藏室：必要设施
(十一)淋浴室：必备设施
四、细胞病理学检查工作的基本设施
(一) 肿物穿刺取材室：
1．便于清洗、消毒的屋顶、室壁和地面装修
2．室内紫外线消毒设备
3．用于实施穿刺术的检查床、椅
4．穿刺用器械和器械柜
5．穿刺用、急救用药物和药品柜
6．其他相关设备
(二)细胞学涂片制片室：
1．用于染色的实验室环境设施和常规设备［参见本节的三(三)项：“常规切片的预处理室和常规
／快速制片室”］)
2．可调速离心机
3．自动细胞病理学检查系统（具有一定规模的病理科，酌情）
4．其他相关设备
15

16. (三)细胞病理学诊断室：参见本节的三(五)项（病理组织学诊断室和病理会诊室）。
(四)独立设置（不隶属于病理科）的细胞病理学科室：需要其他必要空间的基本设备（参见本节
的 “三、病理科常规和快速活检工作的基本设备”）。
五、尸检工作的基本设施
(一) 尸检准备室
1． 尸检专用器械和柜具
2． 参与尸检人员用隔离用衣物和消毒器物
3． 办公设施
4． 消毒设施
5． 其他相关设备
(二) 普通尸检室
1．便于清洗、消毒的屋顶、室壁和地面装修
2．室内紫外线消毒设备
3．室内高效通风设施
4．设计合理、适用的尸检台［具有合于个人和环境防污染要求的上、下水系统（包括独立的污
水排泄系统和污水处理池）
，便于清洗、消毒。
］
5．适宜的照明装置
6．冷水和热水供给系统
7．阶梯式看台（示教用）
8．其他相关设备
(三)传染病用尸检室：严格按照关于传染病管理法规的要求建设。
(四)更衣／淋浴室：必备设施
(五)病理标本巨检和取材室［参见本节的三(二)项：“病理标本巨检和取材室”］
(六)常规切片室：隶属于病理科的尸检室可不另设（参见本节的三(三)项：“常规切片的预处理室
和常规／快速制片室”）
(七)标本储藏室：必要设施
六、病理学相关技术实验室的基本设施
应用特殊染色和组织化学、免疫组织化学、塑料包埋组织切片制备、电子显微镜超微病理诊断检
材制备、图像分析、流式细胞分析（FCM）、聚合酶链反应（PCR）
、细胞和分子细胞遗传学、病
理学摄影技术和其他新开发、引进的病理学相关技术的病理科，应个根据有关技术要求，建立具
有必备基本设施的实验室。
《临床技术操作规范•病理学分册》/ 第三章 病理学基本技术规范
第一节 病理组织学诊断检材的制备技术
一、组织的固定
㈠凡需要进行病理组织学检查的标本（器官或组织），于离体（活体或尸体）后，应尽快置放（浸
泡）于装有足够量固定液的容器中固定。固定液量应为被固定标本体积的 5~10 倍。置放标本的
容器大小视标本和固定液的体积而定，应适当大一些。临床科室切取的标本置放于容器中固定后，
应尽快送交病理科继续固定。未能及时、充分固定的干涸或腐败标本不能再进行固定和用于制做
切片。
㈡常规固定液为 4%中性甲醛（10%中性福尔马林），应预先多量配制贮存，以备随时使用。小
标本的固定时间为 4~6 小时，大标本为 18~24 小时或更久。
㈢根据病理学特殊检查（特殊染色和组织化学染色、免疫组织化学染色和原位核酸分子杂交染色、
16

17. 电镜观察等）的需要，应选用其他适宜的固定液进行固定［参见后述的“㈦固定液的常用种类和
制备”］
。
㈣器官、组织固定的基本方法
［另参见本章第四节（病理标本的肉眼检查和组织学切片取材技术）
］
1．食管、胃、肠、胆囊、膀胱等空腔器官：依规范方法剪开后，按其自然状态平铺于硬纸板上
（重点暴露黏膜面或内表面的病变处），并用大头针将标本边缘处固定于纸板上，然后放入 4%
中性甲醛中固定（黏膜面或内表面朝向容器的液面，并覆盖薄层脱脂棉）。
2．肝、脾：由器官背面，沿其长轴每间隔 1.5~2.0cm 纵向平行剖开，切成数片。将每片肝或脾
轻轻地平放于装有 4%中性甲醛的容器中，容器底面衬以脱脂棉。应避免标本弯曲和相互间的叠
压。
3．肺叶：放入固定液中的肺叶漂浮于液面，需在肺表面覆盖薄层脱脂棉。必要时从支气管注入
适量 4%中性甲醛。
4．肾：沿肾外缘中线朝肾门方向作一水平切面（深达于肾盏），再行固定。
5．淋巴结：先用 4%中性甲醛固定 1 小时后，再沿其长轴切成数片（厚 2 ~3mm），继续固定。
6．骨组织：先锯成小片（若是长骨应作横向锯片），在 4%中性甲醛中固定 24 小时后，再进行
脱钙。
7．微小组织或液体沉淀物：先用拭纸或滤纸妥为包裹（需用大头针扎牢），然后放入专用小盒
内进行中性 4%甲醛固定，以防检材遗失。
8．凡进入固定程序的标本必须连带其正确无误的病理检验号（病理号）。
㈤多数固定液对人体有害，需要防护，必须在封闭的通风条件下进行操作。
㈥组织块的切取和固定：①由较大标本切取用于制作切片的组织块（取材）时，应与标本的断面
平行，组织块厚度一般为 0.3 cm(不应>0.5cm)，面积一般在 1~1.5×1~1.5 以内。②切取组织块
的形状，在充分包括肉眼病变的前提下尽量规则些（例如方形、矩形、三角形等）
；由一个标本
切取的多块组织的形状有所不同，便于蜡块与其相应切片的核对。 ③固定组织块的固定液量，
一般应为组织块总体积的 5~10 倍以上。④室内常温（25℃左右）下的固定时间为 3~24 小时；
低温（4℃）下的固定时间应延长。⑤固定组织块的容器要大一些。⑥组织块固定期间需要间断
地轻摇或搅动固定液以利于固定液的渗入。
㈦常用固定液
1．4%中性甲醛（10%中性福尔马林）固定液
甲醛（40%） 100 ml
无水磷酸氢二钠 6.5g
磷酸二氢钠 4.0g
蒸馏水 900ml
2．乙醇－甲醛（酒精－福尔马林，AF）固定液
甲醛（40%） 100ml
95%乙醇 900ml
［说明］一般组织块经乙醇－甲醛固定 1～2 小时后，即可移入 95%乙醇内脱水。
3．Carnoy 固定液
无水乙醇 60ml
氯仿 30ml
冰醋酸 10ml
［说明］组织化学染色的常用固定液，组织经 Carnoy 液固定 1～2 小时后，即可移入无水乙醇
中脱水。
4．Zenker 固定液
17

18. 升汞 5.0g
重铬酸钾 2.5g
硫酸钠 1.0g
蒸馏水（加至） 100ml
［说明］配制本液时，先将升汞溶于蒸馏水中、加温至 40～50℃溶解后，再加入重铬酸钾，最
后加入硫酸钠，贮存待用。使用前加入 5ml 冰醋酸，混合。组织块需固定 12~24 小时。切片染
色前，需进行脱汞沉淀处理。
5．Bouin 固定液
饱和苦味酸水溶液（约 1.22%） 75ml
甲醛（40%） 25ml
冰醋酸 5ml
［说明］本液临用时配制。组织块置于 Bouin 液固定 12～24 小时即可（小块组织只需固定数小
。经 Bouin 液固定的组织被苦味酸染成黄色，可用水洗涤 12 小时后进入乙醇脱水（兼脱色）
时） 。
不必将组织中的黄色除净（残存于组织中的苦味酸无碍染色）
6．过碘酸－赖氨酸－多聚甲醛固定液（PLP）
A 液：赖氨酸 1.827g
蒸馏水 50ml
0.1mol/L 磷酸盐缓冲液(pH7.4) 50ml
B 液：8%多聚甲醛水溶液 100ml
［说明］本液临用时配制：取 A 液 3 份、B 液 1 份，混合后，加入过碘酸钠，使液体终浓度为
2%。组织块在 4℃下固定 36~54 小时。本液对细胞结构和抗原性保存较好。
7．B5（醋酸钠－升汞－甲醛）固定液
无水醋酸钠 1.25g
升汞 6.0g
蒸馏水 90ml
［说明］将以上物质混合、溶解，使用前加入甲醛 10ml。本液多用于固定淋巴组织。染色前应
进行脱汞沉淀处理。如不加甲醛称为 B4 固定液（蒸馏水为 100 ml）
。
8．丙酮固定液
冷丙酮（4℃）固定液用于酶组织化学染色。细胞标本的免疫组化染色也常用冷丙酮固定 10 分
钟。
二、常规石蜡包埋组织切片（常规切片）的制备
㈠组织块依序进行：①水洗，②脱水，③透明，④浸蜡，⑤包埋和⑥切片。
㈡组织切片制备及其 HE 染色过程中使用的乙醇、丙酮、二甲苯、石蜡等为
易燃、有毒物，必须专人管理，2m 以内不得有明火，局部环境应有良好的通风和消防设施。
㈢常规切片的手工操作（步骤次序和各步骤的持续时间）
1．水洗：用流水冲洗已经固定的组织块 30min。
2．脱水（常温下）
（1）乙醇－甲醛（AF）液固定 60~120min
（2）80%乙醇 60~120min
（3）95%乙醇Ⅰ 60~120min
（4）95%乙醇Ⅱ 60~120min
（5）无水乙醇Ⅰ 60~120min
（6）无水乙醇Ⅱ 60~120min
（7）无水乙醇Ⅲ 60min
18

19. ［注意事项］①未经充分固定的组织不得进入脱水程序。②用于脱水的试剂容积应为组织块总体
积的 5～10 倍以上。③自低浓度乙醇向高浓度乙醇逐级移进脱水。④脱水试剂应及时过滤、更
换（500ml 乙醇可用于 500 个组织块脱水；加入硫酸铜的无水乙醇变蓝时，提示需要更换）。⑤
较大组织块的脱水时间长于较小者，应将两者分开进行脱水。⑥组织置于无水乙醇内的时间不宜
过长（以免硬化）。⑦丙酮脱水性能强，会使组织块过缩、硬脆，不宜用以替代无水乙醇。
3．透明
（1）二甲苯Ⅰ 20min
（2）二甲苯Ⅱ 20min
（3）二甲苯Ⅲ 20min
［注意事项］①二甲苯的容积应为组织块总体积的 5～10 倍以上。②组织块在二甲苯中透明的
时间不宜过长（以防组织硬、脆），并依不同种类组织及其大小而异；组织呈现棕黄或暗红色透
明即可。③二甲苯应及时过滤、更换。④组织经二甲苯适度处理后不显透明时，常提示该组织的
固定或脱水不充分，应查找原因并妥善处理。
4．浸蜡
（1）石蜡Ⅰ（45~50℃） 60min
（2）石蜡Ⅱ（56~58℃） 60min
（3）石蜡Ⅲ（56~58℃） 60min
［注意事项］①熔化石蜡必须有专人负责，必须在熔蜡箱内或水浴中（70
℃）进行，不得用明火加温。②熔蜡的容积应为组织块总体积的 5～10 倍以上。③组织块经二
甲苯适度透明后方可转入浸蜡过程，应尽可能减少将透明后组织块表面的二甲苯带入熔蜡中。④
浸蜡时间适宜，过短时浸蜡不充分（组织过软）
，过长时组织硬脆。⑤熔蜡应及时过滤、更换。
5．包埋
（1）先将熔化的石蜡倾入包埋模具中，再用加热的弯曲钝头镊子轻轻夹取已经过浸蜡的组织块，
使组织块的最大面或被特别指定处的组织面向下埋入熔蜡中；应将组织块平正地置放于包埋模具
底面的中央处；包埋于同一蜡块内的多块细小组织应彼此靠近并位于同一平面上；腔壁、皮肤和
黏膜组织必须垂直包埋（立埋）。
（2）将与组织块相关的病理号小条置入包埋模具内熔蜡的一侧。
（3）待包埋模具内的熔蜡表面凝固后，即将模具移入冷水中加速凝固。
（4）从包埋模具中取出凝固的包埋蜡块（简称蜡快），用刀片去除组织块周围的过多石蜡（组
织块周围保留 1~2mm 石蜡为宜）。将包埋蜡块修整成为规则的正方形或长方形。
（5）将病理号小条牢固地烙贴在蜡块一侧（编号应清晰可见）。
（6）把修整好的蜡块烙贴在支持器上，以备切片。
（7）使用包埋机的方法按有关厂商的说明书操作。
（8）注意事项
①应将组织块严格分件包埋。包埋时一定要首先认真核对组织块的病理号（包括亚号）、块
数和取材医师对包埋面的要求，准确地包入相应的病理号小条。发生包埋差错时，必须立即与取
材医师和病理科当班负责人取得联系，及时处置。
②必须严防各种异物污染，勿将无关组织（包括缝线、纸屑或其他异物（尤其是硬质异物）埋入
蜡块内。
③包埋过程要操作迅速，以免组织块尚未埋妥前熔蜡凝固。
④包埋用的熔蜡应纯净，熔点适宜。浸蜡Ⅰ用软蜡（熔点为 45~50℃）
，浸蜡Ⅱ、Ⅲ和包埋用蜡
均用硬蜡（熔点为 56~58℃）。
⑤包埋用熔蜡使用前应将先静置沉淀、过滤。
⑥熔蜡时不得使用明火，以防燃烧。包埋用熔蜡的温度应<65℃；包埋用的镊子不可加温过高，
19

20. 以免烫伤组织。
6．切片
（1）切片刀或一次性切片刀片必须锋利。使用切片刀时，必须精心磨备（在低倍显微镜下确认
刀刃无缺口）
；使用一次性切片刀片时，应及时更新。
（2）载玻片必须洁净、光亮。
（3）将切片刀或刀片安装在持刀座上（以 15°为宜）
。
（4）将蜡块固定于持支持器上，并调整蜡块和刀刃至适当位置（刀刃与蜡块表面呈 5°夹角）。
（5）细心移动刀座或蜡块支持器，使蜡块与刀刃接触，旋紧刀座和蜡块支持器。
（6）修块（粗切）：用右手匀速旋转切片机轮，修切蜡块表面至包埋其中的组织块完整地全部
切到。修块粗切片的厚度为 15～20μm。［注意：对于医嘱再次深切片（特别是在原切片中发现
了有意义病变而进行的深切片），应尽量少修块，以尽量好地获得有关病变的连续性。］
（7）调节切片厚度调节器（一般为 4~6μm），进行切片，切出的蜡片应连续成带，完整无缺，
厚度适宜（3～5μm）
、均匀，无刀痕、颤痕、皱折、开裂、缺损、松解等。
（8）以专用小镊子轻轻夹取完整、无刀痕、厚薄均匀的蜡片，放入伸展器的温水中（45℃左右），
使切片全面展开。
［注意：必须水温适宜、洁净（尤其是水面）；每切完一个蜡块后，必须认真清
理水面，不得遗留其它病例的组织碎片，以免污染。］
（9）将蜡片附贴于涂有蛋白甘油或经 3－氨丙基－三乙氧基硅烷(3-aminopropyltriethoxy
silane，APES)处理过的载玻片上（HE 染色时酌情使用，可省略，必要时）
。蜡片应置放在载玻
片右（或左）2/3 处的中央，留出载玻片左（或右）1/3 的位置用于贴附标签。蜡片与载玻片之
间无气泡。
（10）必须立即在置放了蜡片的载玻片一端（待贴标签的一端），用优质记号笔或刻号笔准确、
清楚标记其相应的病理号（包括亚号）［注意：必须确保载玻片上的病理号与相关组织石蜡包埋
。
块的病理号完全一致，不得错写或漏写病理号。
］
（11）将置放了蜡片的载玻片呈 45℃角斜置片刻；待载玻片上的水分流下
后，将其置于烤箱中烘烤（60～62℃，30～60min），然后即可进行染色。
（12）注意事项
①组织块固定、脱水、透明和浸蜡的质量直接影响切片制备。切片过程中遇到的困难首先应注意
从切片前的上述各环节中寻找原因。
②切片机的质量是制备优质切片的重要前提。要使用质量好的切片机，规范地切片，精心维护切
片机。
③经由内窥镜、穿刺等获取的细小组织，应间断性连续切片多面（一般至少制备 6 张蜡片，必
要时制备更多张）。需作特殊染色、免疫组化染色等的病例，可预制蜡片备用。
④切片人员应细心操作，防范被切片刀具割伤。
㈣常规切片的自动组织处理机操作（步骤次序和各步骤的持续时间，总计需要 14 小时）
1．乙醇－甲醛（AF）固定液 2×60min
2．95%乙醇Ⅰ 2×60min
3．95%乙醇Ⅱ 2×60min
4．无水乙醇Ⅰ 60min
5．无水乙醇Ⅱ 60min
6．二甲苯Ⅰ 30min
7．二甲苯Ⅱ 30min
8．石蜡Ⅰ 30min
9．石蜡Ⅱ 60min
10．石蜡Ⅲ 90min
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21. 11．包埋
（1）手工常规包埋：参见上述的“㈠手工操作”项。
（2）用组织包埋机时，按有关厂商说明书的规定操作。
13．切片：参见上述的“㈠手工操作”项。
14．注意事项
（1）必须按有关说明书的规定，使用和维护自动组织处理机、包埋机、磨刀机、封盖玻片机等
仪器等。
（2）要严防因停电、机械故障等造成的组织块损坏。一旦发生此类事故，必须及时向科主任报
告，尽快采取应急措施妥善处置。
（3）使用自动组织处理机时：①合理设定的运行时间（充分利用夜间）。②固定、脱水的环境
温度不得>30℃。③乙醇、二甲苯和熔蜡的容积，要大于组织块总体积的 5～10 倍以上，并应经
常过滤，保持清洁；应经常检查试剂的浓度，及时更新。④对于多量组织块，可按其大小分批进
行处理；小块组织可适当缩短处理时间。
三、快速石蜡包埋组织切片的制备
㈠煮沸固定切片法
1．固定：切取大小适宜（厚度<2mm）的组织块，尽快置入装有 5~8ml 10%中性 4％甲醛的试
管中煮沸 1min，然后已入冷水中。
2．脱水
（1）将已经煮沸固定的组织块取出，用刀片将其厚度修切至<1.5mm，随
即置入盛有 5~8 ml 丙酮的试管中，煮沸 2 min，然后将丙酮倾弃。
（2）再向该试管中重新加入 5~8 ml 丙酮并煮沸 2min。如此重复 3~4 次。
3．浸蜡：将已经丙酮脱水的组织块由试管中取出，用吸水纸去除其表面液体，随即置入 75~80
℃熔化的石蜡中，待组织块下沉、不再出现气泡时（约需 30s），即可包埋。
4．包埋、切片和染色。
（1）用热镊子将预制的蜡块表面熔化，埋入已经浸蜡的组织块。
（2）待埋入组织块的蜡块表面凝固后，即用载玻片轻压蜡块表面片刻，使
蜡块表面平整。
（3）将蜡块置入冰水中，使其变硬。
（4）迅速切片，裱片后用吸水纸去除载玻片上的水分。
（5）将载玻片用火焰烘干（勿距火焰太近）。
（6）迅速进行 HE 染色。
5．注意事项
（1）为了尽量缩短制片时间，必须预先作好有关准备工作，备齐取材用具、试管、固定液、丙
酮、酒精灯、火柴（或其他引火器）、包埋用蜡块、载玻片和染色试剂等，放在固定部位待用。
（2）全部制片过程一般在 20~25min 内完成。
（3）制片后剩余组织块应作常规石蜡包埋切片染色，进一步诊断。
（4）含脂肪较多的组织，须经多次丙酮处理。
（5）用于组织固定、脱水、透明的试剂和浸蜡用的石蜡应及时过滤、更换。
（6）丙酮、乙醇、二甲苯等为易燃物，进行上述各项流程时，2m 距离内不得存在明火。加温
脱水和浸蜡过程必须应用隔水温箱，不得使用干烤箱操作。
㈡超声波快速处理仪石蜡切片法（参照有关厂商的说明书操作）。
四、冷冻组织切片的制备
㈠应用恒冷箱切片机制备切片：是目前最适用方法。恒冷箱切片机种类较多，应严格按有关厂商
的说明书操作。用于切片的标本必须未曾固定。
21

22. ㈡应用开放式冷冻切片机制备切片
1．二氧化碳制冷切片
（1）将组织块放在冷冻台上，滴加 OCT 或羟甲基纤维素液于组织块周围（将组织块包埋）
，
使固定在切片机上的切片刀接近组织块表面。
（2）间断开放液态二氧化碳桶的开关，喷冻组织块和切片刀，使组织块冻结和切片刀制冷。
（3）迅速移动切片刀进行切片：先将组织块修平，然后调节厚度至 8~12μm 处进行切片。
（4）用毛笔将切片展开，贴附于载玻片上，稍干后，置于冷冻切片固定液中固定 1min，随即进
行 HE 染色。也可用毛笔将切片托入水中，再用玻璃弯针将切片移至染色皿中进行染色。
（5）组织块也可先在 4%中性甲醛中煮沸固定 1min，水洗后再行冷冻切片。
2．半导体致冷切片
（1）切片刀与持刀器之间要间隔一层云母片或硬纸片。将冷刀致冷器粘在刀面上。
（2）将组织冷冻台安装在半导体切片机上。
（3）将冷冻台和切片刀致冷器上的导线连接在控制台直流电源上（注意：正负电极不可接反）
。
（4）连接致冷器的冷却水管并开始放水，然后开启电源；冷却水管中的水流量不宜过大，在使
用过程不得断水。
（5）调整冷冻温度调节器，至切片刀和冷冻台呈现霜冻。
（6）将新鲜组织块或已固定的组织放在冷冻台中央，滴加水或 OCT，或用水调成糊状的甲基纤
维素于组织块周围（将组织块包埋）。
（7）待组织块冷冻适当后，进行切片。
（8）对于未经固定的新鲜组织，用毛笔将制作满意的切片展平，立即裱贴于盖玻片或载玻片上，
待冷冻的切片刚要融化时，立即将其置于冷冻切片固定液中固定 1min。对于已经固定的组织块，
可用毛笔将制作满意的切片托入水中，再用玻璃弯针将切片移至染色皿中进行染色。
（9）切片完毕后，先关闭电源，再关闭冷却水，待冰霜融化后擦干机器，加罩。
3．甲醇致冷切片（按有关厂商的仪器说明书操作）。
4．氯乙烷致冷切片
（1）将新鲜的或已经固定的组织块置于支持器中央，加少许水或 OCT。
（2）连续喷射氯乙烷于组织块上，待组织块冻结后，改为间歇喷射，使冻结适度，立即切片。
使用氯乙烷时应注意防火、防爆。
（3）进行组织切片的裱贴、固定和染色（与上述方法相同）
。
㈢注意事项
1．制作冷冻切片所需的试剂和设备等应处于随时可供使用状态。
2．切取的组织块大小适宜（厚度<2mm），并尽快置于冷冻组织切片机上制备切片。
3．调节冷冻程度，试切合适时便迅速切片。冷冻不足无法切片，冷冻过度
切片易碎。
4．冷冻切片固定液
（1）乙醚-乙醇液
无水乙醚 1份
95%乙醇 1份
（2）乙醇-冰醋酸液
95%乙醇 100ml
冰醋酸 3～5 滴
五、脱钙方法
骨和其他钙化组织，通常需要脱去钙盐后进行切片。骨组织脱钙前需先行固定。
㈠常规脱钙法：
22

23. 1． 将骨组织锯成薄片（约 1×1×0.3cm）。
2． 在 AF 中或 4％中性甲醛中固定 6～12h。
3． 将骨片置于 5%硝酸（急需时可置于 37℃温箱）中脱钙，至用针轻刺可
入时为止，约需 12~24h（小块骨组织脱钙仅需 2~3h）
，其间可更新脱钙液 2～3 次。
4． 流水冲洗 1~2h。
5． 移入 5%甲明矾液，2~4h。
6． 流水冲洗 2~3h。
7． 按常规脱水。
8．石蜡包埋。
㈡电解脱钙法：
将骨片置于装有 8%硝酸和 10%甲酸混合液的电泳槽（有盖的方形玻璃标本
缸或烧杯）内的阳极处，6V 直流电源下持续电解 30min~3h，至用针轻刺可入时为止。
㈢骨髓组织脱钙：可浸泡于苦味酸乙醇饱和液（占 85%）、甲醛（占 10%）和冰醋酸（占 5%）
的混合液中（同时进行固定和脱钙）。
㈣注意事项
1．骨片等脱钙组织的厚度适宜。
2．脱钙组织与脱钙液的体积比>1:30。
3．脱钙过程中应不时摇动，多次更换脱钙液。
4．脱钙时间不可过长。
5．微波处理可加速脱钙过程。
6．脱钙后的组织必须用流水充分冲洗。
7．用于包埋的石蜡硬度适中（不要过软或过硬）。
六、苏木素－伊红（HE）染色
HE 染色是应用最广泛的组织病理学常规染色技术。
㈠染色程序
1．石蜡切片 HE 染色（常规 HE 染色）
（1）二甲苯Ⅰ 5～10min
（2）二甲苯Ⅱ 5～10min
（3）无水乙醇Ⅰ 1～3min
（4）无水乙醇Ⅱ 1～3min
（5）95%乙醇Ⅰ 1～3min
（6）95%乙醇Ⅱ 1～3min
（7）80%乙醇 1min
（8）蒸馏水 1min
（9）苏木素液染色 5～10min
（10）流水洗去苏木素液 1min
（11）1%盐酸-乙醇 1～3s
（12）稍水洗 1～2s
（13）返蓝（用温水或 1%氨水等） 5～10s
（14）流水冲洗 1～2min
（15）蒸馏水洗 1～2min
（16）0.5%伊红液染色 1～3min
（17）蒸馏水稍洗 1～2s
（18）80%乙醇 1～2s
23

24. （19）95%乙醇Ⅰ 2～3min
（20）95%乙醇Ⅱ 2～3min
（21）无水乙醇Ⅰ 3～5min
（22）无水乙醇Ⅱ 3～5min
（23）石炭酸-二甲苯 3～5min
（24）二甲苯Ⅰ 3～5min
（25）二甲苯Ⅱ 3～5min
（26）二甲苯Ⅲ 3～5min
（27）中性树胶封固
注：①（12）和（13）项可省去，但（14）的冲水时间需延长至 10～15min（细胞核显示更清
晰）。
②（23）项可用无水乙醇代替；北方地区可省略。
2．冰冻切片 HE 染色
（1）冰冻切片固定 10～30s
（2）稍水洗 1～2s
（3）苏木素液染色（60℃） 30～60s
（4）流水洗去苏木素液 5～10s
（5）1%盐酸-乙醇 1～3s
（6）稍水洗 1～2min
（7）返蓝（用温水或 1%氨水等） 5～10s
（8）流水冲洗 15～30s
（9）0.5%伊红液染色 1～2min
（10）蒸馏水稍洗 1～2min
（11）80%乙醇 1～2min
（12）95%乙醇 1～2min
（13）无水乙醇Ⅰ 1～2min
（14）无水乙醇Ⅱ 1～2min
（15）石炭酸-二甲苯 2～3min
（16）二甲苯Ⅰ 2～3min
（17）二甲苯Ⅱ 2～3min
（18）中性树胶封固
注：①（7）和（8）项可省去，但（9）的冲水时间需延长至 10～15min（细胞核显示更清晰）
。
②（15）项可用无水乙醇代替；北方地区可省略。
㈡染色结果：细胞核呈蓝色，细胞浆、肌纤维、胶原纤维和红细胞呈不同程度的红色。钙盐和细
菌可呈蓝色或紫蓝色。
㈢染色注意事项
1．切片染色前，应彻底脱蜡。
2．用含有升汞液体固定的组织，其切片染色前应先脱去汞盐：
（1）石蜡切片脱蜡至水洗
（2）Lugol 液 20min
（3）流水冲洗 5min
（4）95%乙醇 10min
（5）水洗 1min
（6）5%次亚硫酸钠水溶液 5min
24

25. （7）流水冲洗 5min
（8）显微镜观察除汞满意后，转入 HE 染色
3．脱除福尔马林色素（必要时）
：
（1）石蜡切片脱蜡至水洗
（2）1%NaOH(1ml)与 80%乙醇（99ml）混合液 10min
（3）流水冲洗 5min
（4）转入 HE 染色
4．严格执行 HE 染色流程，用显微镜控制细胞核的苏木素染色质量。HE 染片应着色鲜艳，红、
蓝分明，对比清晰。
5．载玻片自二甲苯中取出后，应立即用洁净、光亮的盖玻片和稠度适宜的中性树胶湿封载玻片。
封盖处内无气泡，外无溢胶。封片时必须进行操作人员和局部环境的二甲苯污染防护。不应将组
织切片烤干或风干后再行封片。
6．必须在载玻片的一端牢贴标签。标签上应印有病理科所在的医院名称。标签上应清楚显示有
关的病理号及其亚号；标签上的病理号应准确无误，无涂改。
7．制片完成后，技术人员应对切片与其相应的病理学检查记录单或取材工作记录单认真进行核
对；确认无误后，将制备好的切片连同相关的活检申请单/活检记录单以及取材工作单等一并移
交给有关的病理医师；交接双方经核对无误后，办理移交签字手续。
8．石蜡切片-HE 染色的优良率（甲、乙级切片所占的比率）应≥85%。石蜡切片-HE 染色质量
的基本标准列于附表。
9．制片工作一般应在取材后 2 个工作日内完成（不含进行脱钙、脱脂等需要特殊处理的标本）
。
10．制片过程出现意外情况时，技术室人员应及时向病理医师和科主任报告，设法予以补救。
附表 常规石蜡包埋-HE 染色切片质量的基本标准
优 质 标 准 满 分 质 量 缺 陷 减 分
⒈组织切面完整， ①组织稍不完整：减 1～3 分 ②不完整：减 4～10 分
内镜咬检、穿刺标本切面数 10 ③未达到规定面数：减 5 分
⒉切片薄(3～5μm)，厚薄均匀 10 ①切片厚(细胞重叠)，影响诊断：减 6～10 分
②厚薄不均匀：减 3～5 分
⒊切片无刀痕、裂隙、颤痕 10 ①有刀痕、裂隙、颤痕，尚不影响诊断：减 2 分
②有刀痕、裂隙、颤痕，影响诊断：减 5 分
⒋切片平坦，无皱褶、折叠 10 ①有皱褶或折叠，尚不影响诊断：各减 2 分
②有皱褶折或折叠，影响诊断：各减 5 分
⒌切片无污染 10 有污染：减 10 分
⒍无气泡（切片与载玻片间/ 10 ①有气泡：减 3 分
盖片与切片、载玻片间）
， ②胶液外溢：减 3 分
25

26. 盖片周围无胶液外溢
⒎透明度好 10 ①透明度差：减 1～3 分
②组织结构模糊：减 5～7 分
⒏细胞核与细胞浆染色对比清晰 10 ①细胞核着色灰淡或过蓝：减 5 分
②红(细胞浆)与蓝(细胞核)对比不清晰：减 5 分
⒐切片无松散，裱贴位置适当 10 ①切片松散：减 5 分
②切片裱贴位置不当：减 5 分
⒑切片整洁， ①切片不整洁：减 3 分
标签端正粘牢，编号清晰 10 ②标签粘贴不牢：减 3 分
③编号不清晰：减 4 分
合 计 100
切片质量分级标准： ①甲级片： ≥90 分 （优）
②乙级片：75～89 分（良）
③丙级片：60～74 分（基本合格）
④丁级片： ≤59 分 （不合格）
㈣HE 染色试剂的配制
1．苏木素染液
（1）Harri 苏木素染液
苏木素 1g
无水乙醇 10ml
硫酸铝钾 20g
蒸馏水 200ml
氧化汞 0.5g
冰醋酸 8ml
先用无水乙醇溶解苏木素，用蒸馏水加热溶解硫酸铝钾；然后将该两液合并煮沸，加入氧化汞，
继续加热和搅拌溶液至深紫色，随即用冰水冷却，恢复至室温后过滤备用。使用前加入冰醋酸并
混匀、过滤。
（2）Gill 改良苏木素液
苏木素 2g
无水乙醇 250ml
硫酸铝钾 17g
蒸馏水 750ml
碘酸钠 0.2g
冰醋酸 20ml
先用无水乙醇溶解苏木素，用蒸馏水溶解硫酸铝钾；然后将该两液混合，再依次加入碘酸钠
和冰醋酸。使用前过滤。
（3）Mayer 改良苏木素液
A 液：苏木素 2g
26

27. 无水乙醇 40ml
B 液：硫酸铝钾 100g
蒸馏水 600ml
将苏木素溶于无水乙醇中（A 液）；稍加热，使硫酸铝钾溶于蒸馏水中（B 液）。将 A 液与 B
液混合后煮沸 2min，再用蒸馏水补足至 600 ml，加入 400mg 碘化钠充分混匀。染液呈紫红色。
2. 盐酸－乙醇分化液
浓盐酸 1 ml
70%乙醇 99 ml
3．伊红液
（1）0.25～0.5%伊红 Y 水溶液
伊红 Y 0.25～0.5 g
蒸馏水 100 ml
冰醋酸 1滴
（2）0.5%伊红 Y-氯化钙水溶液
伊红 Y 0.5 g
蒸馏水 100 ml
无水氯化钙 0.5 g
（3）0.25～0.5%伊红 Y-乙醇溶液。
伊红 Y 0.25~0.5 g
80%乙醇 100 ml
4．石炭酸-二甲苯混合液
石炭酸 1份
二甲苯 3份
第二节 细胞学诊断检材的制备技术
一、细胞涂片、组织印片和压片的制备
（一）涂片质量的基本要求
1．将检材涂布于载玻片的右（或左）2/3 处，另 1/3 部位粘贴标签。
2．单向涂布检材，避免细胞变形。
3．均匀涂布检材，涂片厚薄适当。
4．红细胞过多的涂片，可酌情进行溶解红细胞处理。
（二）涂片方法
1．涂抹法：用棉签或针头将标本单向、均匀地涂抹于载玻片上。
2．拉片法：将一滴检材置于一张载玻片上，再用另一张载玻片叠加其
上并予轻压，再将该两张载玻片朝反向拉动，从而获得两张涂片。
3．推片法：将一滴检液置于载玻片的右端，再用另一张窄边光滑的载
玻片作为推片，并以与滴液载玻片成 40°夹角、自右向左匀力推动检液，形成涂片。
（三）痰涂片的制作
1．送检的痰液应是由肺内咳出，最好是清晨空腹时自肺内深咳出的痰液。
2．核查无误的收验痰液，应立即制作涂片（通常为 2～3 张）。
3．用细签或无钩镊子挑取痰液置于载玻片上，并左右往复薄涂，随即投入固定液中。
4．痰液中呈现下列性状的成分可能含有癌细胞，应注意挑取制作涂片：①血丝；②灰白色痰丝
（形如白色细线，微细螺旋状，牵引时可伸长）；③透明痰液（可拉成较长细丝）［及时在细胞
。
学检查申请单上记录痰液性状］
5．检查痰液中的肿瘤细胞，一般应连续送检 3 次。
27

28. （四）黏膜、皮肤表面刮取（刷取、拉取）物和分泌物的涂片的制作
1．阴道排出物、子宫颈刮取物涂片：通常由妇产科医师将已制作、固定后的涂片送交病理
科检查。［注意由子宫颈外口上皮移行带刮取细胞涂片］
2．支气管镜、胃镜等内腔镜的黏膜刷取物涂片（黏膜刷片）：刷片通常由内腔镜医师制作、
固定后送交病理科检查。
3．食管、胃拉网涂片：由食管拉出的套网气囊适量放气后，将气囊套网在载玻片滚动涂片，
尤应将套囊上血丝、灰白色物制作涂片；涂片通常由有关临床医师将已制作、固定后的刷片送交
病理科检查。套网中的小块组织可用来制作石蜡包埋切片。
4．眼、耳、鼻、咽、口腔、皮肤等处病变（溃疡性病变等）的分泌物涂片。
（五）液体涂片的制作
液体标本（检材）包括乳头溢液、胸水、腹水、尿液、胃液、脑脊液、穿
刺液、冲洗液、灌注液等。除乳头溢液外，其他液体检材一般均应先行离心（2000r/min，10～
20min）后，取其沉淀物制作涂片；液体检材也可用细胞涂片离心机（cytospin）直接制作细胞
涂片。制作好的涂片应立即固定和染色。
［及时在细胞学检查申请单上记录液体标本的性状和数
量］
液体标本的离心沉淀物较多时，将制作涂片后剩余的沉淀物固定于 4％中性甲醛中 1h，然后
用檫镜纸或绸布将其包裹，制作石蜡包埋切片。
1．乳头溢液：直接滴于载玻片上制作涂片。
（1）患者乳腺触及肿物时：用手指自肿物远方沿乳腺导管引流方向轻力按
模挤压，获取溢液，宜取中段溢液和血性溢液涂片。
（2）患者乳腺未触及肿物时：可自乳晕周围向乳腺外周轻力按模挤压，获取溢液。
2．胸水和腹水
（1）由患者体内抽取的胸水或腹水应尽快送交病理科验收，检液量以 200～500ml 为宜。因故
（例如远途）延时送达时，需在标本中加入 40%的甲醛（加入量为送检胸水、腹水量的 1/5）
，
或加入等量的 50％乙醇－生理盐水。
（2）胸水、腹水的离心：采取容器底部的液体 10ml（包括可能存在的沉淀物）
，移入离心管内
进行离心。
（3）离心后，倾去全部上清液，将离心管底部含有沉淀物的液体摇匀并用吸管吸出适量，滴注
于载玻片上，制作涂片。
3．尿液
（1）制作方法同胸、腹水。
（2）尿液含有胶状物时，应先将其除去。清除方法：用 0.5ml/L 氢氧化钠调节尿液 Ph 至 6.0；
离心后，倾去上清液，再向沉淀物中加入 95%乙醇 5～10ml／L（固定细胞）
，静置 5min 后加入
蒸馏水并轻摇（溶去胶状物）；再次离心后，取沉淀物制作涂片。检查尿液中的肿瘤细胞，一般
应连续送检 3 次。
4．胃液、胃冲洗液：制作方法同胸、腹水。
5．脑脊液
（1）制作方法同胸、腹水。
（2）脑脊液内细胞一般较少，可用微孔滤膜过滤法、沉淀法或纤维捕捉法收集细胞，制作涂片。
6．冲洗液、灌洗液、穿刺液涂片的制作：参见上述的胸水、腹水项。
二、肿物细针穿刺物涂片的制备
（一）实施细针穿刺术前的准备工作
1．实施细针穿刺术的病理医师应先了解患者临床情况，向患者和/或患者授权人说明实施穿刺术
的意义、局限性和其他相关问题等，取得患者和/或患方的知情和理解，并签署由各医院制订的
28

29. 《申请实施细针穿刺术细胞病理学诊断患方知情同意书》。
2．合格的手术操作环境。
3．必备的适用手术器械和其他相关设施。
（二）肿物穿刺术的操作要点：
1．确认肿物部位并估计其大小、与皮表距离和质地（实／囊性、硬度等），以指导穿刺的方
向、深度和用力程度。
2．必须严格实行无菌操作。
3．根据肿物大小及其血供情况选择适用型号的穿刺用针头。穿刺用针头的外径为 0.6～
0.9mm，安置在 2ml 或 10ml 的一次性空注射器上。
4．针吸法穿刺术操作要点
（1）进行穿刺前，先将安装了穿刺用针头的空注射器管芯外拉 2cm；然后，用手固定肿物，将
安装在空注射器上的穿刺用针头刺入肿物（注射器内无空气）
。
（2）迅速上下提插注射器管芯 10～20 次（其间变换针头方向 3～4 次），遂使肿物不同部位的
多较内容吸进入针头和注射器内。
（3）将注射器与针头分离（管内负压因而解除）；随后，再将该注射器与仍插于肿物内的针头
相接，拔出针头，穿刺结束。
（4）迅速推动注射器的管芯，尽快地将位于穿刺针头内的少量吸出物排射在 2～3 张清洁的
载玻片上，进行涂片。
5．涂片方法：用针头将载玻片上的吸出物轻轻均匀拨开，或用推片法朝一个方向展开（不可双
向往返推移）
。
6．吸出物过少时，可用向离心管内冲洗穿刺针头；再将冲洗液离心，然后取其沉淀物涂片［参
见上述一（五）项“液体涂片的制作”］。
7．吸出物较多时，可适量 50％乙醇－生理盐水液将涂片后注射器和针头内剩余的吸出物冲洗至
离心管中，离心后，取其沉淀物制作常规石蜡包埋切片。
8．吸出物中含有细小组织块时，应将其制作常规石蜡包埋切片。
9．内脏肿物穿刺时，必须在影象学检查的引导下用较长细针进行穿刺。
10．穿刺操作完成后，即在细胞病理学检查单上书写穿刺记录。
三、组织印片、压片的制备
（一） 组织印片：
1．用锋利刀片剖开刚切取的新鲜肿瘤组织或淋巴结等，然后用清洁载玻片轻压于组织剖面处，
将组织表面的细胞成分印在玻片上。用稍微加温的载玻片制备印片时，可印得较多细胞。
2．制作淋巴结印片前，应先用滤纸吸去淋巴结切面上的血液、组织液。
（二）压片：
1．选取微小薄片组织平铺于一张载玻片上，再用另一张载玻片叠加其上并予轻压。
2．脑组织质软，易于制作压片；稍硬的组织需切成细碎薄片制作压片。
四、涂片的固定
（一）用于 HE 染色和巴氏染色的涂片必须湿固定，即涂片后立即进行固定。乳头溢液涂片和液
体标本离心沉淀物涂片，应待涂膜潮干（即周膜稍干而其中央区域未干）时进行固定。用于瑞氏
染色、May-Grünwald 姬姆萨染色和免疫细胞化学染色的涂片，必须干固定，即待涂片稍干后再
进行固定。
（二）固定液
1．乙醇－冰醋酸液：95%乙醇∶冰醋酸＝99∶1。常用。
2．乙醇－乙醚液：95%乙醇 49.5ml, 乙醚 49.5ml, 冰醋酸 1ml。较常用。
3．甲醇：滴加在干燥涂片上，用于瑞氏染色、May-Grünwald 姬姆萨染色
29

30. 和免疫细胞化学染色。
4．丙酮：适用于酶类染色。
5．Carnoy 液：由无水乙醇、氯仿、冰醋酸按 6:3:1 比例混成，适用于显
示核酸、糖原、黏液染色。涂片在 Carnoy 液固定 3～5min 后，应移入 95%乙醇中继续固定。
6．对于液体标本的离心沉淀物、食管拉网获取的小块组织或吸出物中的细小组织块等，固定于
4%中性甲醛液中 1h，然后制作常规石蜡包埋切片。
（三）固定方法
1．浸入法：
（1）将稍为干燥（不能完全干燥）的涂片直接浸泡于固定液内至少 15 ～
30min。
（2）因细胞容易脱落，宜以一个盛有固定液的容器只固定一例标本的涂片；一个容器固定多例
涂片时，有可能造成的肿瘤细胞交叉污染。
（3）必要时可将标本涂在硅化载玻片上，以防脱落。
（4）固定液重复使用时，应先用滤纸过滤。
（5）95%乙醇固定液多次重复使用时，需测定其浓度比重，乙醇浓度低于 90%时应予弃用。
2．滴加法：将固定液滴加于平放的干燥涂片上，应避免因固定液挥发造成沉淀。
（四）固定后未染色涂片的保存或邮寄：涂片固定 15min 后取出，立即滴加数滴甘油于涂膜上。
对该涂片进行染色前，应先将其置于 95%乙醇中溶去甘油。
五、涂片的染色
最常用于细胞病理学涂片检查的是苏木素－伊红（HE）染色和巴氏染色。
一些特殊染色、组织化学染色和免疫组织化学染色也用于细胞病理学的涂片检查（参见第 4 章
第一、二节）
。
（一）苏木素－伊红（HE）染色（参见本章第一节的“六”项）。
（二）巴氏（Papanicolaou）染色
巴氏染色时，细胞透明度好，细胞结构清晰，色彩丰富而鲜艳，主要用于妇科细胞学涂片、
痰涂片和富含鳞状上皮细胞的涂片检查。
1．试剂配制
（1）Harri 苏木素液（参见本章第一节的“六”项）
（2）盐酸－乙醇液
浓盐酸 1ml
70%乙醇 99ml
（3）橙黄 G6 液
橙黄 G6 0.5g
蒸馏水 5ml
无水乙醇 95ml
磷钨酸 0.015g
先将橙黄 G 溶于蒸馏水中，再加入无水乙醇，然后加入磷钨酸。
（4）EA36 染液
①EA36 储备液
A 液：亮绿 0.5g，溶于 5ml 蒸馏水中，溶解后加入无水乙醇至 100ml。
B 液：伊红 0.5g，溶于 5ml 蒸馏水中，溶解后加入无水乙醇至 100ml。
C 液：俾士麦棕 0.5g，溶于 5ml 蒸馏水中，溶解后加入无水乙醇至 100ml。
②EA36 工作液
EA36 储备液的 A 液 45 ml
30

31. EA36 储备液的 B 液 45 ml
EA36 储备液的 C 液 10 ml
磷钨酸 0.2 g
碳酸锂饱和水溶液 1 滴
2．染色程序
（1）将已经固定的涂片置于 80%乙醇中 2 min。
（2）蒸馏水洗 2 min。
（3）苏木素液染核 10～12 min，自来水洗。
（4）盐酸-乙醇液分化约 20～30s，至涂片呈淡橙红色。
（5）流水冲洗 10～15min，蒸馏水洗。
（6）依次用 80%、95%乙醇脱水，各 2min。
（7）橙黄 G6 液染色 3～5min。
（8）95%乙醇洗 2～3 次，洗去多余染液。
（9）EA36 工作液染色 3～5 min。
（10）95%乙醇洗 2～3 次，洗去多余染液。
（11）无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封片。
3．染色结果：细胞核呈深蓝色，核仁呈红色；不同分化类型的鳞状上皮细胞，其胞浆颜色
各异：角化细胞呈粉红色，不全角化细胞呈橙黄色，角化前细胞呈淡蓝或淡绿色；红细胞呈橙红
或鲜红色，白细胞的胞浆呈淡蓝绿色；粘液呈淡蓝或粉红色。
（三）瑞氏（Wright）染色
瑞氏染色一般用于血液涂片，也可用于检查肿瘤细胞。
1．试剂配制
（1）瑞氏染液
瑞氏染料 1g
甲醇 600ml
将瑞氏染料放入研钵内，加入适量甲醇与之混合研磨，使染料逐渐溶解。将溶解的染液倾入另一
玻璃瓶内，然后再加入适量甲醇继续研磨；未溶解的染料如此反复多次，直至染料完全溶解、甲
醇用完为止。染液避光保存备用。
（2）磷酸盐缓冲液
无水磷酸氢二钠 6.5g
磷酸二氢钠 4g
蒸馏水 1 000ml
pH：6.5～7.0
2. 染色程序
（1） 涂片自然干燥。
（2）滴加瑞氏液染色 1min。
（2） 滴加等量的磷酸缓冲液，轻轻摇荡玻片或用洗耳胶球在玻片上轻轻吹
气，使两液体混合均匀，持续 10～15min。
（4）流水洗去染液。
（5）涂片风干后，二甲苯透明，中性树胶封片。
3. 染色结果：胞核呈紫红色，胞浆呈紫蓝色，粘液呈粉红色或淡蓝色。
（四）May-Grünwald-姬姆萨（Giemsa）染色
May-Grünwald-姬姆萨染色适用于造血系统的细胞涂片和鉴别恶型淋巴瘤的类型。May-Grünwald
原液和姬姆萨原液配制繁琐，可直接购买。
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32. 1．试剂配制
（1） May-Grünwald 工作液
May-Grünwald 原液 1份
蒸馏水 6～10 份
使用前配制。
（2）姬姆萨工作液
姬姆萨原液 1份
蒸馏水 6～10 份
使用前配制。
2．染色程序
（1）涂片自然干燥，蒸馏水洗 1～2min。
（2）May-Grünwald 工作液染 15～30min。
（3）自来水冲洗，洗去载玻片上的染液，蒸馏水稍洗。
（4）姬姆萨工作液染 15～30min。
（5）自来水冲洗，洗去载玻片上的染液。
（6）涂片风干后，二甲苯透明，中性树胶封片。
3．染色结果：胞核呈紫红色，胞浆和核仁呈蓝紫色。
（五）Rakoff 染色
Rakoff 染色用于阴道细胞学涂片快速测定雌激素水平。
1． 试剂配制
（1）5%淡绿水溶液 83ml
（2）1%伊红水溶液 17ml
将两液混合后使用。
2．染色程序
（1）用细胞刷沿阴道侧壁刷取黏膜鳞状上皮细胞，放入装有 1~2ml 生理盐水的试管内。
（2）在试管内滴入 3 滴 Rakoff 染液，用细胞刷在染液中轻摇混合。
（3）将 1~2 滴混合液滴于载玻片上，制成涂片。
（4）待涂片干燥后，用中性树胶封片。
染色结果：鳞状上皮细胞的嗜酸性和嗜碱性胞浆区分明显。角化前细胞的核呈网状，角化细胞的
固缩核呈基本不着色的空泡状。
（六）猩红－固绿染色
猩红－固绿染色用于显示性染色体。
1．试剂配制
（1） 猩红染液
水溶性比布里西猩红 1.0g
磷钨酸 0.3g
冰醋酸 5.0ml
50%酒精 100ml
（2）固绿染液:
固绿 0.5g
磷钼酸 0.3g
磷钨酸 0.3g
冰醋酸 5.0ml
50%乙醇 100ml
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