003 vaneamiento del arroz en panama, patricia guzman

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003 vaneamiento del arroz en panama, patricia guzman

  1. 1. Vaneamiento d l V i t del arroz en  Panamá Myriam Patricia Guzmán G.
  2. 2. La estructura del modelo de negocio en Panamá es de producción concentrada y  elevado consumo  PRODUCCION DE  80% Secano ARROZ 20% Riego 20% Riego 6% 4% 12% 57% 14% 1% 6% DEMANDA DE  72Kg/persona ARROZ 320 mil qq/mes
  3. 3. Productores y Hectáreas sembradas de Arroz  Productores y Hectáreas sembradas de Arroz Hectáreas. Productores 90,000 2,500 80,000 70,000 2,000 60,000 1,500 50,000 40,000 1,000 30,000 20,000 500 10,000 0 0 00‐01, 01‐02, 02‐03, 03‐04, 04‐05, 05‐06, 06‐07, 07‐08, 08‐09, AÑO Productores Ha. Sembradas Ha. Cosechadas
  4. 4. Producción Nacional a través del tiempo p Área Ha 76,699 2003 ‐ 2003 2004 Producción Kg/Ha 4,499 28.85% Área Ha 77,209 2004 ‐2005 Producción Kg/Ha 3,201 Área Ha 68,354 2005‐2006 Producción Kg/Ha 4,072 Área Ha 59,613 2006‐2007 Producción Kg/Ha 4,138 2007‐2008 Área Ha 59,603 Producción Kg/Ha 4,511 Área Ha 60,778 2008‐2009 Producción Kg/Ha 4,725
  5. 5. Nuestro Grupo CALESA Producción, Procesamiento  y comercialización de azúcar CEGRACO CAMACO Producción, Procesamiento Producción y Procesamiento  y comercialización de arroz de camarones SECOSA Producción de semillas  INASA de arroz Producción de alimentos balanceados CASA GANACO Distribuidora de agroquímicos Producción de Ganado y veterinaria de carne
  6. 6. La diferenciación en calidad nos ha permitido obtener una ventaja en  participación de mercado del doble con respecto a los principales competidores ti i ió d d d l d bl t l i i l tid % Fuente: Analmo 2008
  7. 7. Hectáreas de Arroz. CEGRACO S A Arroz S.A. 5,000 4,500 4,000 3,500 3,000 2,500 2 500 2,000 2003 ‐ 2003 2004  2004 ‐ 2005 ‐ 2005 2006 ‐ 2006 2007  2007 ‐ 2008 ‐ 2008 2004 2005 2006 2007 2008 2009
  8. 8. Los resultados de rendimiento en el área de campo han evolucionado  positivamente durante los últimos años 5,000 4,500 4,000 3,500 3,000 3 000 2,500 , 2,000 2003 ‐ 2004 ‐ 2005 ‐ 2006 ‐ 2007 ‐ 2008 ‐ 2004 2005 2006 2007 2008 2009 CEGRACO NACIONAL Fuente: Cegraco, Mida
  9. 9. En Busca De  La Solución Del Vaneamiento En Busca De La Solución Del Vaneamiento Acaro  Sarocladium No hay una identificación única es  una mezcla de todos estos factores  Bacterias  Clima  Clima
  10. 10. LO MAS IMPORTANTE ES  REALIZAR UN BUEN  DIAGNOSTICO
  11. 11. N.A.Hummel et. Al./Crop Protection (2009). Fotos E.Erbe USDA-ARS-EMU
  12. 12. Monitoreo secuencial GANACO,S.A. MONITOREO DE ACAROS, 2009‐2010. CAMPO ÁREA 38 42 46 50 54 58 62 66 70 74 78 82 86 90 94 98 981‐TEMP. 22.75 0.00 0.00 0.00 1.47 0.00 1.47 1.47 8.82 0.00 1.47 1.47 1.47 0.00 1.47 1.47 923‐F‐2000 30.00 1.10 0.00 1.10 0.00 4.40 0.00 1.10 6.60 15.50 11.10 37.90 24.40 33.30 31.10 31.10 38.80 935‐F‐2000 22.00 3.03 3.03 6.06 3.03 10.60 7.57 15.10 3.00 1.50 1.50 16.60 22.70 27.20 43.90 57.50 50.00 908‐F‐2000 24.49 0.00 1.30 2.60 5.30 2.60 6.60 6.60 21.30 1.30 1.30 0.00 0.00 1.30 1.30 4.00 10.60 973‐I‐5405 6.71 4.76 4.76 0.00 0.00 4.76 9.52 19.04 23.80 19.04 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 4.76 973‐F‐473 19.29 3.40 1.72 1.72 1.72 5.17 15.50 13.70 29.30 15.50 0.00 0.00 0.00 0.00 3.40 3.40 5.17 903‐F‐2000 20.74 3.17 4.76 4.76 7.90 14.20 36.50 34.90 19.04 47.60 0.00 3.17 0.00 6.30 15.80 23.80 25.30 924‐F‐2000 7.02 0.00 0.00 0.00 9.52 14.20 14.20 14.20 14.20 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 9.52 19.04 19.04 984‐F‐2000 23.80 2.80 1.40 5.63 9.85 16.90 33.80 23.90 36.60 39.40 5.60 1.40 5.60 12.60 11.20 11.20 14.08 989‐E‐71 49.50 2.00 0.66 6.60 3.30 10.00 12.00 17.30 13.30 0.60 0.00 2.00 0.60 3.30 3.30 4.60 983‐E‐71 34.08 1.90 1.90 0.95 4.76 7.61 9.52 9.52 11.40 13.30 0.00 0.00 1.90 0.00 0.95 0.95 2.85 988‐F‐2000 35.92 0.92 0.92 0.92 5.55 3.70 10.10 10.10 19.40 20.30 0.00 0.00 0.00 1.85 0.92 1.85 5.50 982‐F‐2000 30.00 3.30 2.20 1.10 4.44 8.80 11.10 17.70 17.70 18.80 0.00 0.00 1.10 4.40 4.40 6.60 5.50 987‐E‐71 32.00 1.02 2.04 1.02 2.04 6.12 11.20 17.30 19.30 18.30 0.00 2.04 1.02 0.00 0.00 1.02 6.12 986‐F‐2000 48.75 2.05 2.05 10.90 6.16 14.38 17.10 18.40 31.50 39.04 2.05 2.05 4.79 3.42 4.10 13.01 22.60 907‐F‐9738 13.50 7.14 9.52 0.00 7.14 0.00 16.60 14.20 14.20 16.60 42.80 2.30 0.00 0.00 9.50 11.90 16.60 909‐E‐71 17.99 7.40 14.80 22.20 18.50 0.00 1.80 0.00 7.40 22.20 14.80 3.70 7.40 0.00 1.85 5.50 7.40 943‐TEMP 12.00 10.00 2.50 2.50 10.00 7.50 2.50 5.00 5.00 0.00 0.00 2.50 5.00 0.00 17.50 22.50 7.50 911‐E‐71 27.46 7.30 1.20 1.20 6.09 10.90 13.40 12.10 3.60 3.60 0.00 0.00 0.00 12.10 10.90 18.20 7.40 981‐E‐71 22.75 25.00 13.20 1.40 2.94 2.94 1.47 0.00 0.00 1.47 1.40 1.40 2.94 14.70 14.70 922‐E‐71 26.00 0.00 1.28 1.28 3.84 6.41 14.10 20.50 15.30 2.50 7.69 5.50 16.60 11.10 16.60 15.00 19.20 986‐F‐2000 48.75 8.90 7.60 16.60 16.60 26.90 32.05 33.30 0.00 0.00 1.28 3.84 3.84 6.40 11.50 12.80 982‐F‐2000 30.00 4.40 11.10 14.40 17.70 18.80 22.20 21.10 5.50 2.20 1.10 1.10 7.70 13.30 20.00 23.30 8.8 983‐F‐2000 18.41 5.40 9.09 9.09 14.50 21.80 45.40 3.60 1.80 3.63 1.81 1.81 0.00 10.90 12.70 20.00 903‐E‐71 20.74 7.93 14.28 25.30 28.50 0.00 0.00 4.76 0.00 4.76 11.10 19.04 26.70 3.10 14.28 987‐E‐71 32.00 17.50 19.50 5.15 13.40 26.80 4.12 0.00 3.09 5.15 3.09 5.15 8.24 5.15 8.24 973‐F‐473 6.71 0.00 5.00 15.00 5.00 25.00 25.00 10.00 25.00 0.00 0.00 0.00 0.00 20.00 10.00 40.00 973‐E‐71 19.29 12.60 12.06 8.62 8.60 32.70 20.60 5.17 29.30 3.44 3.44 1.72 0.00 5.17 10.30 25.80
  13. 13. Umbrales para Ácaro 6% 6%- 6%-10% 30 35 40 45 50 55 60 65 70 75 80 90 115 Inicio d Primordio- I i i de P i Primordio- di Primordio Embuchamiento 1  =   1 a 5 acaros 2  =   6 a 10 acaros 3  =  11 a 15 acaros 4  =  16 a 20 acaros 5  =  mayor a 20 acaros
  14. 14. Cada Época, Cada Finca, Cada Campo, Es Diferente 20 18 30 34 16 38 14 42 46 12 50 10 54 58 8 62 6 66 70 4 70 74 2 50 78 0 30 82
  15. 15. Sarocladium oryzae
  16. 16. Sarocladium oryzae •Tratamiento de Semillas •Evitar Estrés de herbicidas •Nutrición de plantas •Protección de la Panícula
  17. 17. Bacterias
  18. 18. Sintomatología similar Rush, 2003 Panamá, desde 2004
  19. 19. 1er PROYECTO SENACYT – CEGRACO – F C A 1er. F.C.A. Localidades y Patógenos Evaluados •Bayano (Chepo) Panamá •La Cabezona (Alanje) Chiriquí •Ganaco (Natá) Coclé •Sierra (El Roble) Coclé Sierra •Santa Rita (Santa María) Herrera PCR Patógeno # muestras (campo) Burkholderia glumae 620 Burkholderia gladioli 670 Pseudomonas avenae P d Pseudomonas fuscovaginae 290 430 Total T t l: 3494 Pseudomonas syringae 373 Xanthomonas oryzae pv. oryzae 370 Xanthomonas oryzae pv. oryzicola X th i l 330 Nested-PCR RHBV 411
  20. 20. Muestreo - Recolección al azar de plantas sintomáticas y asintomáticas. -CCampos en etapa d fl t de floración ió - Época lluviosa Diferentes partes de la planta : Espiga, Espiga hoja bandera vaina de la hoja bandera espiguilla, raíz semilla bandera, bandera, espiguilla raíz, semilla.
  21. 21. Evaluación de las metodologías para la extracción de ácidos nucleicos (ADN ARN) (ADN, A partir de diferentes tejidos de planta (Raíces, tallos, hojas, vainas, espigas) A partir de cultivos puros de bacterias Evaluación de las metodologías para la extracción de ácidos nucleicos Selección de primers y condiciones de amplificación.
  22. 22. Selección de primers y amplificación por PCR Burkholderia glumae Primer 1 amplicon de 227 pb Primer 2 amplicon de 528 pb Pruebas de sensibilidad: Diluciones del ADN (desde 10-1 hasta 10-6 ) ( C- 10-1 10-2 10-3 10-4 10-5 10-6 C+ Primer 1 10¯1 10¯2 10¯3 10-4 10-5 10-6 C+ Primer 2 El juego de primers 2 ha sido seleccionado por ser el más sensible de los demás, tanto a partir de bacterias crecidas en agua de peptona como en LB.
  23. 23. Selección de primers y amplificación por PCR Burkholderia glumae Confirmación de las secuencias detectadas La comparación entre la secuencia del producto de amplificación y secuencias publicadas en GenBank permite confirmar su pertenencia a Burkholderia glumae. Burkholderia glumae
  24. 24. Amplificación por PCR de Otros Patógenos Sondeo epidemiológico de la finca La Cabezona para Burkholderia l di li B kh ld i gladioli Pseudomonas avenae
  25. 25. Tropismo Tisular P t l í Patología Tejido T jid Burkholderia glumae Espiga Xanthomona oryzae pv oryzae pv. Vaina RHBV Hoja y Vaina Pseudomona avenae Espiga X. oryzae pv.oryzicola Vaina B. gladioli g Hoja, Vaina, Espiga j , , pg P. fuscovagine Espiga P. syringae Espiga
  26. 26. Identificación y determinación de la frecuencia de bacterias en l fi b t i las fincas d CEGRACO de %  % 30 25 20 15 10 5 0 B. glumae B. gladioli P. fuscovagine P.avenae P. syringe X. oryzae X orizicola BAYANO GANACO CABEZONA SIERRA STA RITA
  27. 27. 2o. 2o PROYECTO SENACYT – CEGRACO – U P U.P. Estudio Epidemiológico y Diagnóstico Molecular de Burkholderia glumae y B. gladioli en las principales zonas arroceras de Panamá Diagnosticar mediante g Determinar los posibles biología molecular las agentes diseminadores de bacterias B. glumae y B. las bacterias Burkholderia gladioli en las 16 etapas g p glumae y B gladioli B. fenológicas del arroz.
  28. 28. Electroforesis para el diagnóstico de B. glumae y B. gladioli a partir de tejidos de espiga y vaina. l di li ti d t jid d i i Determinación de B. glumae en espiga y vaina. M     v    E1   E2   E3   E4   E5   E6   E7   E8  E9  E10   v   V1  V2  V3   V4   V5  V6   V7  V8  V9   V10  v   P+ Determinación de B. gladioli en espiga y vaina M    v    E1    E2   E3  E4   E5   E6  E7   E8  E9  E10   v   V1  V2  V3   V4   V5  V6   V7   V8  V9  V10  v  P+
  29. 29. Posibles agentes diseminadores Suelo Semillas Agua Posibles Agentes Posibles Agentes  Diseminadores Malezas Ácaros
  30. 30. Actividades Realizadas Recolección  R l ió Extracción de  E t ió d PCR Electroforesis El t f i de muestras ADN • Primers para  • B. glumae:  • Tomadas al azar • Validación de  B.glumae 528 pb • 4 zonas protocolos  • Primers para  • B. gladioli:  • 3 Fincas para cada  B. gladioli 471 pb • 5 diseminadores                                 posible  diseminador
  31. 31. Extracción de ADN en posibles diseminadores AGUA (1) Extracción con buffer de lisis y proteinasa K (AP) según Poutou et al., 2001 (2) Modificación del método anterior aplicando, pero utilizando filtración con membrana (FM) de acetato de celulosa de 0.45 μm. SUELO (1) Mét d d sucrosa con cloruro d calcio con volumen original (SC1) y volumen reducido Método de l de l i l i i l l d id (modificación) (SC2) según Pillai et al., 1991 ( 2) Método de bead beating con cloruro de calcio precipitado con isopropanol (BC1) o etanol y acetato de sodio (modificación) (BC2) según Sagova-Mareckova et al., 2008 ( ) (3) Método de bead beating ( ) según Yeates et al., 1998 g (B) g , (4) Método de lisis enzimática (K1) según Yeates et al., 1998 ACARO (1) Método de buffer de lisis con CTAB (BL) según Desloire et al., 2006 (2) Mét d d papel filt (F) según D l i et al., 2006 Método de l filtro ú Desloire t l (3) Digestión enzimática con proteinasa K y sin PK (4) Extracción orgánica según Ausubel et al., 1992 MALEZAS Y SEMILLAS (1) Buffer de lisis con CTAB (BL2) (2) Utilizando el reactivo comercial Trizol de Invitrogen (T)
  32. 32. PCR a partir de ADN de muestras de ácaros extraídos por cuatro métodos á t íd t ét d A BL1 F M1      v     P‐1   P‐2   P+1   P+2      v     E‐1      1       2        3       4       5      v      E‐2      6       7       8       9      10    M1 v P‐1 P‐2 P+1 P+2 v E‐1 1 2 3 4 5 v E‐2 6 7 8 9 10 B K2 KP M1     v     E‐1      1        2        3       4        5       v      E‐2       6        7        8        9       10 A. Amplificación de ADN de ácaros. Línea 1 – 5: Método de Buffer de Lisis con CTAB (BL1). Línea 6 – 10: Método de Papel Filtro (F). B. Amplificación de ADN de ácaros. Línea 1 – 5: Método de Proteinasa K crudo para á ácaros (K2) Lí (K2). Línea 6 – 10 Mét d d P t i 10: Método de Proteinasa K con F Fenol Cl f l Cloroformo Alcohol Isoamílico (KP). E-1 y E-2 controles negativos de extracción para cada método P-1 y P-2 controles negativos de PCR g P+1 y P+2, controles positivos de PCR (ADN de bacteria).
  33. 33. Frecuencia de B. glumae y B. gladioli en los posibles di diseminadores d acuerdo a l zona i d de d la 80 70 60 50 40 30 20 10 0 B.glumae B. gladioli B.glumae B. gladioli B.glumae B. gladioli ACARO MALEZA SEMILLA NATA STA MARIA ALANJE CHEPO
  34. 34. Frecuencia de B. glumae y B. gladioli en la evaluación de l d los posibles diseminadores ibl di i d Fr% 12 10 8 6 4 2 0 B. glumae B. gladioli j Porcentaje de frecuencia de B. g gladioli tomado del total de glumae y B. g muestras de los diseminadores evaluados
  35. 35. Frecuencia de B. glumae y B. gladioli en Malezas g g 9 8 recuencia 7 6 5 4 % Fr 3 2 1 0 B. glumae B. gladioli M    v     1      2      3      4      5      6      7      8      9     10   11    12    13   14    15   16   17    18   19  20  500 pb 500 pb Electroforesis de productos de PCR de muestras malezas de la zona Chepo, Panamá Este para la detección de B. gladioli . Línea 1 – 20: Amplicones de ADN extraído a partir p g p p de distintas especies de malezas, entre las cuales destacan como positivas las especies Leptochloa spp., Echinocloa spp., Ciperaceae spp. y el arroz rojo.
  36. 36. Frecuencia de B glumae y B gladioli en Semillas B. B. 7 6 5 ecuencia 4 % Fre 3 2 1 0 B. glumae B. gladioli M      v      1      2      3      4      5       6       7      8       9     10     11    12     v     E‐ P‐ v       P+  Análisis molecular de semillas de la zona de Santa María, Herrera para la patología de B. gladioli
  37. 37. Electroforesis para el diagnóstico de B. glumae y B. l di li B gladioli en 21 lotes de Semillas l t d S ill Determinación de B. gladioli mediante PCR en muestras de semillas. Línea 3-7: Lote 17 Línea 9-13: Lote 9, se observa barrido. Línea 15-19: Lote 16. Línea 21-25: Lote 21. Determinación de B. glumae mediante PCR en muestras de semillas. Línea 3-7: Lote 17 Línea 9-13: Lote 9 Línea 15-19: Lote 16 Línea 21-25: Lote 21 9. 16. 21.
  38. 38. Frecuencia de B. glumae y B. gladioli  en 21 lotes de semilla  % Fr.
  39. 39. Frecuencia de B glumae y B gladioli en Acaros B. B. 70 60 50 ecuencia 40 % Fre 30 20 10 0 g B. glumae g B. gladioli
  40. 40. Electroforesis para el diagnóstico de B. glumae y B. gladioli a partir de ácaros M v 1 2 3 4 5 6 v E‐ P‐ v P+ v 1 2 3 4 5 6 v E‐ P‐ v P+ B. glumae B. gladioli Muestra de ácaros de varias fincas. M    v    1   2    3    4    5    6    7    v    v    v     8    9   10   11  12  13  14  15   v   E­ P­ v   P+  500 pb Muestras de ácaros de las zonas de Natá, Coclé y Santa María, Herrera para la detección de B. gladioli Línea 1 – 7, muestras de la zona de Natá. Línea 8 – 15. zona de Santa María. E- control negativo de extracción P- P+ control negativo y positivo de PCR (ADN de bacteria). Las bandas muy tenues se muestran encerradas en un círculo.
  41. 41. Etapas Fenológicas Semilla Inicio de  Primordio Floral Grano Maduro Embuchamiento Germinación Inicio de  Embuchamiento Grano Pastoso Primordio Floral  Plántula  Máximo  Máximo  Grano Lechoso Macollamiento Embuchamiento Inicio de  Inicio de  Macollamiento Macollamiento Floración Floración 
  42. 42. Actividades Realizadas Recolecta de  Muestras Extracción de  ADN PCR Electroforesis 60 muestras  por etapa
  43. 43. Electroforesis para el diagnóstico de B. glumae y B gladioli en dif B. l di li diferentes etapas fenológicas t t f ló i Detección, mediante PCR de B. gladioli en 60 muestras de la etapa de máximo macollamiento del campo 922. Línea 1 – 18: Muestras de ADN en la etapa de macollamiento. La letra E- indica el control negativo de extracción. La letra P- corresponde al control negativo de PCR; y P+, al control p g ; , positivo de PCR ((ADN de bacteria). La letra M ) corresponde al marcador de ADN de 100 pb. La letra “v” señala los pocillos vacíos
  44. 44. f % % Frecuencia a 25 0 5 10 15 20 SEMILLA ló i GE ERMINACION fenológicas PLANTULA I. MACO OLLAMIENTO CAMPO 907 MACO OLLAMIENTO MAX. MACO OLLAMIENTO I. . PRIMORDIO CAMPO 922 PRIMORDIO I. EMBU UCHAMIENTO EMBU UCHAMIENTO CAMPO 943 MAX.EMBU UCHAMIENTO I I. FLORACION FLORACION Frecuencia de B. glumae en las diferentes etapas GRA ANO LECHOSO TENDENCIA GRANO PASTOSO NO MADURO GRAN
  45. 45. f % % Frecuencia a 0 5 10 15 20 25 30 SEMILLA ló i GERMINACION fenológicas PLANTULA I. MA ACOLLAMIENTO 907 MA ACOLLAMIENTO MAX. MA ACOLLAMIENTO 922 I. PRIMORDIO PRIMORDIO 943 I. EMBUCHAMIENTO EMBUCHAMIENTO MAX.EMBUCHAMIENTO TENDENCIA I. FLORACION FLORACION Frecuencia de B. gladioli en las diferentes etapas GR RANO LECHOSO GR RANO PASTOSO GR RANO MADURO
  46. 46. Acaro, B. glumae y B. gladioli B. gladioli en las dif diferentes etapas f t t ló i fenológicas 25 C- 907 20 g 3,673 Kg/Ha 15 % Fr. 10 5 0 r. % Fr C-943 4,443 Kg/Ha
  47. 47. Clima
  48. 48. Temperaturas Mínimas La Estrella Mínimas. 25 24 Temperaturas mínimas 23 Grados Centígrados g 22 21 20 19 ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC 2009 2008 100 80 60 Frecuencia de días con temperatura mínima mayor a 40 23 Grados Centígrados 20 0 ENE FEB MARZ ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC 2009 2008
  49. 49. Factores Climáticos. Finca La Cabezona 800 Precipitación Anual mm 600 400 200 0 ENE FEB MARZ ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC 2009 2008 Temperaturas mínimas Fr. Temp. mínima mayor a 23 C 25 80 70 24 60 50 23 40 22 30 20 21 10 20 0 ENE FEB MARZ ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC ENE FEB MARZ ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC 2009 2008 2009 2008
  50. 50. Prácticas de Manejo del Cultivo • Mantener períodos libres de arroz el campo, como períodos de veda veda. • Eliminar por completo los restos de cosecha y de malezas • Sembrar los campos cercanos en un período de tiempo definido.
  51. 51. Estrategia de Siembra Radiación 20 Años. Canal. Panamá 500 450 400 cal/cm2/día m 350 300 JUL AGO SEP OCT NOV DIC ENE FEB MAR ABR MAY JUN
  52. 52. •Semilla Certificada •Semilla Tratada S ill T t d
  53. 53. Manejo del cultivo de Acuerdo a las Etapas Fenológicas Control de Malezas, Fertilización, Riego
  54. 54. La clave en la disminución del vaneamiento es el Manejo Integrado del Cultivo Nutrición  Destrucción  Destrucción Época de  Época de Monitoreo  Control de  Control de de plantas   de plantas de Residuos  Siembra. de Plagas ,  Escoger la  Semilla  malezas y  de  Protección  de cosecha. Enfermeda Siembra  Variedad Certificada limpieza  acuerdo   de Espiga des y   Vedas en bloque de bordes análisis de  Ácaro suelo
  55. 55. Muchas Gracias Sus Preguntas Son Bienvenidas!! g

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