SIMPLE STAINING - Tutorial Semester 3

342 views

Published on

0 Comments
0 Likes
Statistics
Notes
  • Be the first to comment

  • Be the first to like this

No Downloads
Views
Total views
342
On SlideShare
0
From Embeds
0
Number of Embeds
1
Actions
Shares
0
Downloads
4
Comments
0
Likes
0
Embeds 0
No embeds

No notes for slide

SIMPLE STAINING - Tutorial Semester 3

  1. 1. Disusun oleh: Nur Pratiwi 1114040196 Sri Vianita 1114040195 ICP BIOLOGI B
  2. 2. Pewarnaan sederhana merupakan teknik pewarnaan yang paling banyak digunakan. Pewarnaan sederhana digunakan untuk melihat bentuk dan struktur sel bakteri dengan menggunakan satu jenis pewarna seperti safranin atau kristal violet
  3. 3. Dalam pewarnaan sederhana, olesan bakteri diwarnai dengan reagen tunggal, yang menghasilkan kontras yang khas antara organisme dan latar belakang. Pewarnaan dasar dengan kromogen bermuatan positif lebih disukai karena asam nukleat bakteri dan komponen dinding sel tertentu membawa muatan negatif yang sangat menarik dan mengikat kromogen kationik.
  4. 4. • Tujuan pewarnaan sederhana untuk menjelaskan morfologi dan susunan sel bakteri (gambar 9.1) pewarnaan dasar yang paling umum digunakan adalah metilen biru, violet kristal dan carbol fuchsin.
  5. 5. GAMBAR 9.1 BENTUK BAKTERI DAN PENGATURAN
  6. 6. BAHAN Kultur 24 jam nutrisi agar kultur miring dari Escherichia coli dan Bacillus cereus dan nutrisi kultur kaldu Staphylococcus aureus. Atau, gunakan sediaan olesan pada Percobaan 8. Reagen Metilen biru, kristal violet dan karbol fuchsin. Peralatan Pembakar bunsen, loop inokulasi, pewarnaan nampan, mikroskop, kertas lensa, kertas mabuk, dan kaca mikroskop.
  7. 7. 1. Siapkan terpisah olesan bakteri dari organisme mengikuti penjelasan prosedur dalam Percobaan 8. Catatan: Sebuah olesan ll harus tetap panas sebelum pewarnaan. 2. Tempatkan kaca mikroskop pada baki pewarnaan dan banjiri olesan dengan salah satu noda yang ditunjukkan, menggunakan eksposur waktu yang tepat untuk masing-masing: carbol fuchsin, 15 sampai 30 detik, kristal violet, 20 sampai 60 detik, metilen biru, 1 sampai 2 menit. 3. Basuhlah olesan dengan air keran untuk menghilangkan kelebihan noda. Selama langkah ini, terus sejajar geser ke aliran air, dengan cara ini Anda dapat mengurangi hilangnya organisme dari persiapan. 4. Menggunakan kertas mabuk, keringkanlah tapi tidak menghapus kaca miksroskop. 5. Ulangi prosedur ini dengan dua organisme yang tersisa, menggunakan noda yang berbeda untuk masing-masing. 6. Periksa semua kaca mikroskop bernoda di bawah minyak imersi.
  8. 8. THANK YOU

×