Reproduccion en equinos (ofi)

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trabajo de reproduccion animal 2011

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Reproduccion en equinos (ofi)

  1. 1. Reproducción en Equinos Michael Ojeda La Serena, Julio 2011
  2. 2. Generalidades• Poliestrica estacional de dias largos• Gestacion 11 meses.• Monogástricos• Riñones de distinta forma• El macho posee glándulas anexas como Vesícula seminal, próstata y bulbo uretrales.• Ciego de gran tamaño• Testículos se presentan de forma horizontal• Hembra no presenta ligamento intercornual
  3. 3. Hembra• Ovarios El ovariouterina). extremo tubario (extremistas tubaria) que se relaciona con el inicio de las trompas uterinas (tuba tiene un• Trompas uterinas• Oviducto ( infundíbulo, zona ampular, itsmo )• Útero ( cuernos, cuerpo, cuello o cervix,)• Vagina• Vestíbulo vaginal• Vulva
  4. 4. Macho• Órganos primarios :• testículos (testosterona)• Epidídimo , conducto deferente• Glándulas anexas (vesicula seminal , prostata)• Órgano de copula (pene)
  5. 5. Fisiología del ciclo estral de la yegua• La actividad sexual empieza con la pubertad ocurre aproximadamente a los 18 meses (1 1/2 años).• La madurez sexual ocurre hacia los 3 años de edad cuando las yeguas pueden ser introducidas al servicio.• El ciclo estral es el periodo de tiempo que transcurre entre dos ovulaciones. Tiene una duración de 19-22 días en yeguas y de alrededor de 25 días en ponies.• La etapa de receptividad (estro) es de 3-7 días mientras que la etapa no receptiva (diestro) tiene una duración de 14-15 días. La duración tanto del ciclo estral como del estro es muy variable entre yeguas pero tiende a ser constante dentro de la misma yegua.
  6. 6. Etapas del Ciclo de la Yegua (día 0; inicio del Estro)
  7. 7. EstroAltos niveles de estrógeno (E2) causan incremento LH (↑E2 → ↑LH)Estrógeno de Folículos Graff estimulan aumento en GnRHque estimula aumento en LHIncremento LH causa ovulaciónGnRH aumenta para lograr un gran aumento en LH (liberación súbita)La ovulación ocurre durante el estro en yeguas.Incremento LH inicia formación CLLuego de la ovulación - LH estimula el desarrollo de células lutealesa partir de células granulosas y tecales de la pared del folículo ovulado.Células teca y granulosa se luteinizan por estimulación de LH paradiferenciarse a células luteales.
  8. 8. Etapas del Ciclo de la Yegua (día 0; día de la ovulación)
  9. 9. Diestro• Desarrollo del Cuerpo Lúteo (persistencia).• Llega a madurez al día 12 del ciclo estral.• Altos niveles de progesterona (P4) inhiben el desarrollo folicular final, la ovulación y el estro.• Se inhibe la maduración final de folículos y el estro.• Retroalimentación negativa sobre GnRH.• El embrión continua su desarrollo en el útero.• Si hay embrión señala al útero su presencia – no hay regresión CL.• Si NO hay embrión – el útero libera PGF2a para lograr la regresión del CL(se reduce el P4 en la sangre y el (los) folículo (s) Graaf comienza su desarrollo final que ocurre en pro-estro para la ovulación en el estro).
  10. 10. Resumen ciclo yeguaPico LH Oleada FSH LH CL CL (regresión)
  11. 11. Fotoperiodo
  12. 12. Fotoperiodo• Regula ciclo de las yeguas.• Mayor actividad ovulatoria en días largos (primavera-verano).• Manipulación: acelerar la época del ciclo mediante utilización de luz artificial.• Por 8 a 10 semanas, desde las 4:30 pm a las 11:00 pm.• También existe una forma de manipulación de la luz de manera gradual.
  13. 13. Etapa reproductiva Transición de otoño Primavera – Verano ↓ Horas luz ↑ Melatonina ↓ GnRH ↑ Horas luz ↓ Melatonina ↑ GnRH Varios folículos Transición de primavera Folículo dominante – Expulsión – Ovocito - Fosa ovulatoria Septiembre-octubre ↑ FSH - Folículos - DesarrolloEtapa anovulatoria ↑ Lento LH Otoño – Invierno ↑ Oscuridad - ↑ Melatonina - ↓ GnRH
  14. 14. Manejo de luz
  15. 15. Manejo reproductivo
  16. 16. Primera ovulación 1 y 1.5 años de edadMejor edad para No se compromete PUBERTADcubrir a la yegua es a su desarrollolos 3 años (parto a corporallos 4) La edad reproductiva va desde los 3 a los 15-16 años (25).
  17. 17. Clasificación de la conducta receptiva de la yegua:a) Muy receptiva (celo fuerte).b) Receptiva (celo moderado).c) Poco receptiva (celo débil).d) Flemática.e) Pasivamente resistente.f) Medianamente resistente.g) Activamente resistente. Manifestaciones externas deManifestaciones externas del no celo: celo: a) Busca al semental a) Orejas hacia atrás. b) Adopta posiciónb) Aprieta o revolea la cola. característica. c) Levanta la cola. c) Patea. d) Relampaguea el clítoris. d) Relincha. e) Orina. e) Muerde. f) Se deja montar. f) No se deja montar.
  18. 18. Características de la yegua en Estro y en Diestro ORGANO ESTRO DIESTRO OVARIO Folículo al tacto Sin folículo UTERO Laxo al tacto Tenso al tacto CERVIX Abierto y rojo Cerrado y pálido Laxo al tacto Tenso al tacto VAGINA Húmeda y Pálida y seca congestionada Moco como cera Moco fluido filamentoso VULVA Tumefacta Normal Existen dos métodos por medio de los cuales puede determinarse el estado sexual exacto de la yegua: 1. La observación del comportamiento de la yegua. 2. Examen veterinario de los órganos reproductores con el fin de determinar el momento apropiado durante el ciclo estral
  19. 19. Detección de Celo Receptiva al Separa labios vulvares cemental Separa las Extremidades Engrosan - Dilatan Posteriores Levanta la Cola Músculos vulva (diámetro) Orina de Forma Intermitente Relampagueo clítorisLíquido Amarillento de la Vagina y Vulva. olor (feromonas) Parpadeo de los labios vulvares Excitación Macho Dejan ver clítoris (auto- estimulación y visual macho)
  20. 20. Manejo – estimular signos celo Prueba ó Recela Cemental detrás de una valla cerca del establo Cada mañana las yeguas se conducen hacia la valla presentándolas frente al recela El objeto de la recela es la excitación de la yegua para obligarla a manifestar los síntomas propios de su estado sexual, esto es, el comportamiento de la fase de estro o de diestro. El semental se acerca a la yegua y con sus sentidos de vista y olfato capta que está en celo, en caso contrario, suele dejarla sola
  21. 21. Examen reproductivo de yeguas Se clasifican generalmente en: a) Palpación(rectal) de los ovarios y del útero b) Examen del cérvix y vagina incluyendo técnicas bacteriológicas y citológicas. c) Examen con ultrasonidos (escáner). d) Análisis hormonales.El propósito del examen ginecológico es:a) Confirmar los signos observados de comportamiento sexual (EDG)b) Conocer el desarrollo folicular y el momento de ovulación (optimo)c) Detectar infecciones u otras causas patológicas de infertilidad paraque puedan ser tratadas.
  22. 22. Palpación RectalEtapa del ciclo Cuello Útero Ovarios ESTRO Relajado-Edematoso Edematoso-Flácido Folículos ˃ 25mm DIESTRO Firme –Estrecho Tono aumentado- Múltiples Folículos Tubular pequeños o uno ˃ 25 mm ANESTRO Moderadamente firme Flácido Sin estructuras o fino y abierto palpablesTRANSICION Sin cerrarse Flácido Múltiples folículos Firmemente hasta la pueden ser ˃ 30 mm primera ovulación InterpretaciónA veces es difícil diferenciar entre folículos y quistes (cavidad hueca conteniendo líquido)que pueden encontrarse en la membrana que soporta el ovario.Además, no puede distinguirse entre un folículo destinado a sufrir degeneración y unohemorrágico (distendido por un líquido sanguinolento)En ambos casos puede diagnosticarse por palpación como folículo verdadero (esto es,destinado a ovular).
  23. 23. Conductas Reproductivas del Macho• Mira a la hembra en celo de • Lame y olfatea la zona genital de manera insistente. la yegua, luego estira el cuello y• Relincha constantemente levanta el labio superior• Levanta las orejas mostrando sus dientes (reflejo• Trata de mostrar mayor de Flehmen). volumen corporal doblando su • Golpea a la yegua con el pecho cuello. para cambiarla de posición• Abre los ojos de manera • Mordisquea con suavidad la crin excesiva y se frota contra ella.• Dilata los ollares • La erección del caballo aumenta• Marcha elegantemente delante cuanto más guiña la vulva la de la hembra yegua.• Se acerca de frente a la yegua • El semental se excita aún más• Olfatea los ollares, las orejas, el cuando la hembra aparta la cola cuello, las axilas y el bajo y deja el paso libre, ya que esto vientre de la yegua significa que la sumisión es total,• Lame los miembros posteriores eliminando completamente el de la yegua temor al rechazo.
  24. 24. La conducta de flehmen: el caballo levanta el labio superior, al igualque la cabeza; esto le permite captar las feromonas, por medio de unórgano ubicado en la parte superior de la mucosa oral (órgano vomero-nasal) y que conduce señales químicas iniciadas por las feromonas hastael cerebro con el fin de estimular la conducta sexual.Celo del Potro: Estro post-parto que suele ocurrir de 5 a 15 díasdespués de este, y que puede llegar a durar 45 días como máx., elcual puede haber sido precedido por una ovulación silenciosa. Estecelo es solamente percibido por el macho.El apareamiento en el estro post-parto puede causar un numeromayor de abortos, distocias, mortinatos y retención placentaria. Estopuede deberse a la introducción de bacterias en el útero antes queeste haya involucionado por completo, y mientras aun carece decontractilidad.
  25. 25. Alteraciones reproductivas en yeguasQuistes ovárico• Quiste folicular :- Varios en ambos ovarios.- Por falta de LH y exceso de FSH• Quiste luteal:- Insuficiencia de LH.- Único en un ovario.• Cuerpo lúteo retenido- CL no involucionado
  26. 26. Hiperplasia endometrial quística• Por cuerpo lúteo persistente  [P4]• Embriones sin implantación• Por estímulo prolongado de la progesterona o estrógenos
  27. 27. • Brucelosis equina (mal de cruz)• presentación subclínica.• Procesos fistulosos, bursitis (de la nuca, cuello y cruz), tendinitis y artritis crónica deformante.• Brucella abortus y eritritol.• Pocos casos de aborto en yegua.• Metritis contagiosa equina• Taylorella equigenitalis.• Esterilidad temporal Endometritis, cervicitis, y vaginitis• nada de abortos• No hay registros en chile
  28. 28. Alteraciones reproductivas en potros • Incapacidad de erección  ruptura de la túnica albugínea. • Disminución de libido  exantema coital equino  herpesvirus tipo 3. • Lesiones  dolor  falla en la penetración. • Masturbación  estrés.
  29. 29. Alteraciones espermáticas.Teratospermia alteración de las del 85% en la morfología de los espermatozoides• Oligozoospermia baja concentración de espermatozoides.• Azoospermia  falta de producción de espermatozoides• Hemospermia  sangre en el semen
  30. 30. INSEMINACIÓN ARTIFICIAL DE LA YEGUALa calidad del semen: tasas de preñez ♂1. monta directa2. semen refrigerado3. semen congelado(refrigerado o congelado: es importante conocer los tipos de empaques utilizados para transportar semen)
  31. 31. Procedimiento de Inseminación ArtificialInseminación con Semen fresco:• inmovilizarse (protección inseminador)• lavar área alrededor de la vulva (evitar infecciones)• Se utiliza una manga de palpación, lubricada, se inserta en la vagina y el dedo índice se inserta en el cuello uterino. El catéter de inseminación se guía fácilmente hacia el útero, donde se depositan de 20 a 50 ml de semen crudo o diluido.• Semen fresco; 500 millones de espermatozoides móviles con la inseminación.Inseminación con Semen Refrigerado: (4-60C) por 24-48h. (0% y 70% variación efectividad según manejo, experiencia)
  32. 32. • Se pueden utilizar agonistas de la GnRH/LH, deben imitar el prolongado pico de LH (natural).• Solo moléculas de larga vida son efectivas en inducir la ovulación.• Gonadotropina Coriónica Humana (hCG): IV, IM, SC• La Deslorelina: implante (generalmente no se retira)“la ovulación ocurre en ambos casos en 36-48 hrs, en un 80-90% de los casos. siempre y cuando el pico endógeno de LH no haya ocurrido antes de la inyección o el implante”.• Examen 48 horas post inseminación (determinar la ovulación)• Otras:• Inseminación con Semen Congelado.• IA Intracornual Profunda (IAIP): (<cantidad).• Transferencia de Embriones.• Monitoreo Ecográfico: Las donantes se evalúan cada 24 horas o cada 6 horas mediante examen ecográfico.
  33. 33. Cuerpo luteo de 7 días post ovulación Examen con UltrasonografíaDeterminación grado de estrogenización
  34. 34. MedicamentosDalmalerin: •FORMULA: Acetato de lecirelin................. 25mcg Excipiente, c.b.p. 1 ml. análogo de la hormona GnRH. Sus características le permiten ser mucho más eficaz que la hormona natural para estimular la liberación de LH y para óptima secreción de FSH. evita el retraso de la ovulación estimulando mejor sincronía en el proceso de fertilización y con ello mejora el índice de fertilidad. Generalmente es suficiente una dosis para propiciar la regresión de los quistes foliculares y con ello obtener la regularización del ciclo estral.
  35. 35. Dosis• Yeguas: Inducción de la ovulación 4 ml repetir en caso necesario después de 24-48 hrs Persistencia del calor 4 ml repetir en caso necesario prolongado después de 2 semanas Ausencia de ciclo estral 2 ml dos veces (a intervalo de 24 hrs.) Incrementar el índice de 2 ml repetir en caso necesario concepción después de 10- 12 días
  36. 36. Lutalyse: • COMPOSICION ( prostaglandina) Dinoprost, trometamina:………..5 mg. Excipientes c.s.p.:……………....9,45 mg. • ACCION Luteolítico y uterotónico. • Control de la presentación del celo en yeguas cíclicas, • para el tratamiento de yeguas infértiles, vírgenes • lactancia que no exhiban estro en la estación reproductiva, a pesar de poseer un cuerpo lúteo funcional • como abortivo dentro de los 35 días de gestación.
  37. 37. Dosificación• Vacas y yeguas: 25 mg (5 ml) para las indicaciones anteriores, a excepción de inducción de aborto e inducción de parto, donde la dosis efectiva es de 25 y 35 mg (5-7 ml).
  38. 38. Bioestrogen: • Fórmula: Benzoato de estradiol...............1 mg • Indicaciones: • Sincronización del celo • Tratamiento de afecciones toco-ginecológicas como abortos, • para expulsar material purulento en casos de metritis y piométras. • retención placentaria, cuerpos lúteos persistentes, • tratamiento de pseudopreñez en caninos. Dosis: Equinos: 2 a 10 ml
  39. 39. Bibliografía1. Garrido A., Fisiología, Inseminación y Uso de la Biotecnología en Reproducción Equina, Córdoba, Argentina, 2009, 62pp.2. E.S.E. Hafez y B. Hafez, Reproducción e Inseminación Animal, Cap 4; Ciclos reproductivos, Pág., 56-68.3. Ramírez M. y José A., “Determinación del fotoperiodo sobre la actividad ovárica en yeguas durante el año, En diferentes haras, en los departamentos de Guatemala, Sacatepequez y Escuintla”,Universidad de San Carlos de Guatemala, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Escuela de Medicina Veterinaria, Guatemala,2006. Pág. 36-45.4. El Manual de Merck de Veterinaria, Quinta Edición, edit. Océano. Barcelona, España 2000. Pág.163-165.5. Cecilia Fuenzalida, Médico Veterinario, Entrevista “útero, ovario y oviducto”, 10-17.06.2011, Anatomía Patológica, Medicina Veterinaria.
  40. 40. • Gracias por su atención, y exito este semestre.

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