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Metodos diagnosticos y terapeuticos en neumologia completa

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Metodos diagnosticos y terapeuticos en neumologia completa

  1. 1. Universidad de sonora Lic. En Medicina José Manuel Yepiz Carrillo Neumología 25 de Enero del 2014
  2. 2. • Espirometría • Flujometría •Gasometría •Oximetría de pulso •Polisomnografía
  3. 3. Análisis de los volúmenes pulmonares y flujos aéreos bajo circunstancias controladas. Es la técnica básica para la valoración del enfermo respiratorio desde el punto de vista funcional
  4. 4.  Espirometría simple es aquella en que el paciente expulsa todo el volumen de aire posible sin límite de tiempo  Espirometría forzada es aquella es aquella en que el paciente expulsa todo el aire contenido en los pulmones en el menor tiempo posible.
  5. 5.  El espirómetro es un instrumento capaz de medir volúmenes pulmonares.  El neumotacógrafo es un instrumento capaz de medir flujos aéreos.  Regularmente se integran en un solo equipo
  6. 6.  Técnica Se pide al paciente que realice una espiración lo más intensa, rápida y prolongada posible, tras una inspiración forzada. Con lo que se obtiene:  Una gráfica de volumen/tiempo  Una gráfica de flujos/volumen
  7. 7. Utilizar equipos que cumplan las normas de estandarización. Metodología adecuada:  Comienzo brusco y expulsión continuada hasta alcanzar un flujo cero  El tiempo de espiración a de ser de 6 segundos como mínimo.  No debe producirse amputación al final de la espiración  Son precisas al menos dos maniobras cuya variabilidad del FVC y FEV1 sea menor del 5% o 200 ml.
  8. 8. Los parámetros espirométricos más importantes son:  Capacidad vital forzada (FVC),  Volumen espiratorio forzado en el primer segundo (FEV1)  Relación FEV1/FVC (%)  Volumen espiratorio forzado a los seis segundos (FEV6)  Flujo espiratorio máximo (PEF)  Flujos espiratorios forzados (MEF25%, MEF50% y MEF75%)
  9. 9.  Técnica Se pide al paciente que realice una espiración lo más intensa, rápida y prolongada posible, tras una inspiración forzada. Con lo que se obtiene:  Una gráfica de volumen/tiempo  Una gráfica de flujos/volumen
  10. 10.  Técnica Se pide al paciente que realice una espiración lo más intensa, rápida y prolongada posible, tras una inspiración forzada. Con lo que se obtiene:  Una gráfica de volumen/tiempo  Una gráfica de flujos/volumen
  11. 11. RESULTADOS  Deben expresarse en forma numérica y gráfica.  Se consideraran patológicos cuando se encuentren por debajo de los valores que se establecen como normales. Normales:  FVC y FEV1 el 80%  FEV1/FVC entre el 70 y el 85%  FEFE 25-75 el 60%. INTERPRETACION CLÍNICA  El análisis de la espirometría nos permite establecer la existencia o no de una alteración ventilatoria y clasificarlas en:  obstructiva, restrictiva y mixta
  12. 12. Alteración restrictiva  Se caracteriza por disminución de la FVC y aumento de la relación FEV1/FVC (ha de ser mayor del 85%). Los flujos pueden estar normales o ligeramente disminuidos.
  13. 13. Alteración obstructiva  Corresponde a una reducción desproporcionada del flujo aéreo máximo en relación al máximo volumen que puede ser desplazado desde el pulmón (Relación FEV1/FVC debajo de lo normal)
  14. 14. CONTRAINDICACIONES  Imposibilidad de realización de maniobra correctamente (niños, ancianos, estado físico o mental deteriorado).  TBC pulmonar activa.  Angor reciente.  Neumotórax reciente.  Desprendimiento de retina o cirugía de cataratas reciente.
  15. 15. PRUEBA BRONCODILATADORA (PBD)  Consiste en la realización de una segunda espirometría 15 minutos después de la inhalación de un broncodilatador betaadrenérgico de acción rápida a dosis terapéuticas.  Estará indicada siempre que queramos valorar HRB o respuesta terapéutica a broncodilatadores.
  16. 16. Constituye en la práctica clínica diaria la técnica más importante para valorar el intercambio pulmonar de gases y el equilibrio ácido-base.
  17. 17.  Realizar la punción en la arteria radial de la mano no dominante.  Debe limpiarse la piel con alcohol e inyectar a nivel subcutáneo 0.3 ml de anestésico local sin vasoconstrictor  Emplear jeringas para la práctica de gasometría  Anticoagulación de la muestra con heparina sódica  Entre la extracción y el análisis no deben pasar  más de 10-15 minutos.
  18. 18. Parámetros / Valores normales  Presión parcial de oxígeno (PaO2): >80 mmHg  Presión parcial de dióxido de carbono (PaCO2) entre 35 y 45 mmHg  pH entre 7,35 y 7,45
  19. 19. Resultados anormales: PaO2 < 80 mmHg – hipoxemia PaCO2 > 45 mmHg – hipercapnia PaCO2 < 35 mmHg – hipocapnia pH inferior a 7,3 – acidosis pH mayor de 7,45 – alcalosis PaCO2 > 50 mmHg – Insuficiencia respiratoria o PaO2 < 60 mmHg (a nivel del mar en reposo)
  20. 20.  Saturación arterial de la oxihemoglobina (SaO2) depende la PaO2, grandes variaciones en éste dan lugar a cambios pequeños en la SaO2.  Gradiente alveolo-arterial de oxígeno (AaPO2): diferencia entre la presión parcial de oxígeno a nivel alveolar (PAO2) y arterial (PaO2). Formula: PAO2 = [ FIO2 x (PB-PH2O] – PaCO2/R Valor normal: < 10-15 mmHg Valores anormales: - > 20 mmHg indica enfermedad intrapulmonar que modifica el intercambio gaseoso - < 15-20 mmHg indican insuficiencia respiratoria de origen extrapulmonar (enfermedad de caja torácica, neuromuscular, sedantes, etc).
  21. 21. Constituye una técnica no invasiva para medir la saturación arterial de oxihemoglobina
  22. 22. OXIMETRO  El método utiliza dos haces luminosos (uno rojo y otro infrarrojo) y detectores de luz,  La luz pasa a través del tejido que contenga sangre arterial. (Reconocimiento y análisis de sangre arterial)
  23. 23. Fundamento de la prueba:  La saturación de oxigeno esta ligada a la absorción de la luz roja. La luz roja es comparada ya que no esta sujeta a cambios por efecto de la saturación de oxigeno
  24. 24.  Monitorización SaO2 en pruebas de esfuerzo, evaluación de oxigenoterapia Poco específica para valorar de forma adecuada la eficacia del intercambio gaseoso.  Factores de interferencia: Perfusión, niveles de oxihermoglobina y carboxihemoglobina, Grosor de los tejidos, ictericia
  25. 25. •Radiografía •Tomografía Computarizada •Ultrasonido
  26. 26. . Debe ser el estudio inicial en todos los pacientes con sospecha de patología torácica POSTEROANTERIOR Y LATERAL IZUIERDA
  27. 27. PATOLOGIAS PULMONARES Enfermedades del parénquima pulmonar: las que producen un aumento patológico de la densidad pulmonar las que producen una disminución anormal de la densidad pulmonar
  28. 28. ATELECTASIA •Obstructiva o por reabsorción •Pasiva (tórax ocupado como neumotorax o derrame pleural) •Compresiva: (Relacion a una masa pulmonar) •Cicatricial (fibrosis pulmonar secundaria a lesiones inflamatorias crónicas, como la tuberculosis, silicosis) PATOLOGIAS PULMONARES DE MAYOR DENSIDAD
  29. 29. Manifestaciones radiológicas PATOLOGIAS PULMONARES DE MAYOR DENSIDAD
  30. 30. Patologías de patrón Alveolar Agudas. •1. Edema pulmonar •2. Neumonía de etiología no habitual •3. Hemorragia pulmonar •4. Aspiración •5. Distress respiratorio del adulto Crónicas. •1. Ca bronquioloalveolar •2. Tuberculosis •3. Sarcoidosis •4. Linfoma •5. Neumonitis PATOLOGIAS PULMONARES DE MAYOR DENSIDAD
  31. 31. Manifestaciones radiológicas: 1. Márgenes mal definidos y borrosos 2. Tendencia a la coalescencia 3. Distribución lobar o segmentaria 4. Broncograma aéreo: (visibilidad anormal del aire de los bronquios en el seno de la opacidad) 5. Alveolograma aéreo: Corresponde a alveolos respetados en el seno de la opacidad (pequeñas imágenes radiolúcidas) 6. Nódulo acinar: Es la opacidad elemental de la enfermedad del espacio aéreo. Es redondeado y mal definido. PATOLOGIAS PULMONARES DE MAYOR DENSIDAD
  32. 32. Patologías de patrón Intersticial Linear.- opacidades lineales sobreañadidas al pulmón (Edema pulmonar, Infecciones virales, Colagenosis, Enfermedades granulomatosas, Linfangitis carcinomatosa, asbestosis) PATOLOGIAS PULMONARES DE MAYOR DENSIDAD
  33. 33. Patologías de patrón Intersticial Nodular.- acumulo de lesiones esféricas en el intersticio (Micosis, Sarcoidosis, Neumoconiosis) PATOLOGIAS PULMONARES de mayor densidad pulmonar PATOLOGIAS PULMONARES DE MAYOR DENSIDAD
  34. 34. NODULOS Y MASAS Nódulo Pulmonar Solitario.- lesión redondeada u oval, menor de 4 cm. de diámetro de contorno cavitado o calcificado. (granuloma y el carcinoma broncogénico) Benigno.- contorno nítido y redondeado Maligno.- lobulado mal delimitados PATOLOGIAS PULMONARES DE MAYOR DENSIDAD
  35. 35. Síndrome cavitario: espacio que contiene gas rodeado por una pared de más de 1 mm de espesor. (bulla, quiste, nódulo, absceso) Hiperclaridad pulmonar: Bronquitis crónica Enfisema PATOLOGIAS PULMONARES DE MENOR DENSIDAD
  36. 36. TC Helicoidal: actual estándar TC de alta resolución: de indicaciones especificas
  37. 37. Indicaciones de TC helicoidal •Evaluación de patología torácica oculta sospechada clínicamente •Evaluación de alteraciones descubiertas en la Rx. de tórax. •Detección de nódulos pulmonares (En caso de Rx. sospechosa) •Detección precoz de cáncer de pulmón •Determinar estadio y seguimiento del Carcinoma de pulmón •Evaluación de anormalidades torácicas vasculares •Enfisema pulmonar y Tromboembolismo pulmonar
  38. 38. Indicaciones de TC de alta resolucion • Enfermedad pulmonar infiltrativa crónica. • Enfermedad parenquimatosa pulmonar focal •Enfermedad de la vía aérea focal o difusa. (Ej. Bronquiectasias) •Pacientes inmunocomprometidos. (Sospecha de aspergilosis)
  39. 39. Fundamental para la valoración en patologías de la pleura, de la pared torácica, en algunas masas pulmonares y mediastínicas y en las lesiones endobronquiales.
  40. 40. Patología pleural • Derrames, engrosamientos y tumores pleurales Hemotórax pueden detectarse zonas hiperecoicas Trasudado o exudado isoecoico o escasamente hipoecoico No solo es método diagnostico sino también auxiliar del tratamiento: • Aspiración de derrames • Colocación de tubos de drenaje pleural • Punciones o biopsias de las masas pleurales
  41. 41. Patología de la pared torácica •Los abscesos podría detectarse se percibe hipoecoicas •Las lesiones tumorales sólidas se aprecian hipoecoicas. •Las calcificaciones aparecen como imágenes hiperecoicas
  42. 42. Patología del pulmón y mediastino En estas regiones la ecografía se limita a lesiones en contacto con la pared torácica. Útil para discernir entre lesiones sólidas o líquidas (Auxiliar en punciones) Seguimiento evolutivo de las masas, en especial en •niños para evitar las radiaciones ionizantes.
  43. 43. Es útil. Inconveniente cvc La muestra obtenida debe proceder del tracto respiratorio inferior, evitando la contaminación orofaríngea. Tanto los resultados de la sensibilidad (60- 100%),como de la especificidad (14 100%) derivados de este tipo de muestra son muy variables.
  44. 44. • Es un examen de laboratorio en el que se utilizan una serie tinciones o colorantes para verificar si hay bacterias en una muestra de esputo. • Expectoración • Es el material que se expulsa por la boca, desde el tracto respiratorio inferior, por medio de la tos. • Tincion de Gram • Técnica que se emplea con más frecuencia para el diagnóstico rápido de infecciones bacterianas.
  45. 45. Permite el examen directo del esputo Tiene valor orientativo en el diagnóstico de infecciones bacterianas Técnica rápida y sencilla > 10 leucocitos PMN < 25 células de descamación por campo
  46. 46. Gram Negativas Gram Positivas
  47. 47. Es una coloración diferencial útil en la identificación de Micobacterias, aunque no permite la diferenciación de distintas especies. La característica de ácido-resistencia de estos microorganismos hace de esta coloración un método rápido en el diagnóstico. Las micobacterias son coloreadas de rojo por la Fucsina.
  48. 48. Etiología Tuberculosa Numero de muestras recogidas Al menos 10.000 BAAR / ml No diferencia M.tuberculosis de otras micobacterias Fácil y rápida
  49. 49. Mycobacterium tuberculosis usando la tinción de Ziehl-Neelsen.
  50. 50. Toma de muestra:  El esputo procederá de una expectoración profunda preferentemente matinal por lo cual hay que instruir al paciente para que no expectore saliva o descarga postnasal dentro del contenedor.  Recoger 3 esputos en 3 días consecutivos. En los medios de cultivo micológicos, los antimicrobianos se utilizan tanto para inhibir el crecimiento bacteriano como el de otros hongos ambientales. Examen es usado para ayudar diagnostican una infección de vías respiratorias o una infección sistémica causada por un hongo
  51. 51.  Agar Sabouraud con glucosa . Medio de cultivo general y fundamentalmente para la realizar la descripción de las características morfológicas de la mayoría de los hongos. Agar Sabouraud + Glucosa modificado por Emmons: es el medio estándar para el aislamiento, esporulación y conservación de muchos hongos. Su pH y la concentración de glucosa favorecen la esporulación.
  52. 52.  Cultivo de Mycobacterium spp. Util en el diagnóstico de tuberculosis pulmonar pausibacilar y especialmente en las formas extrapulmonares. Actualmente está indicado, además del cultivo en medio sólido, el cultivo en medios líquidos, disminuyendo así los tiempos de desarrollo.  El medio de Löwenstein-Jensen: medio de crecimiento utiliza especialmente para el cultivo de Mycobacterium tuberculosis . Colonias granulares marrón (a veces llamados "piel de ante, áspera y dura"). Los medios de comunicación debe ser incubado por cuatro semanas, debido al tiempo de duplicación lento de M. la tuberculosis (15-20 horas)
  53. 53. Agar infusión de cerebro corazón:  Mantenimiento de la fase levaduriforme de algunas micosis sistémicas  Aislamiento de una gran variedad de patógenos, incluyendo levaduras, mohos  Enriquecido con sangre de carnero al 10%, se utiliza para el aislamiento de todos los hongos, incluyendo los hongos dimórficos.  En algunas ocasiones también puede completarse con cicloheximida (facilita el aislamiento de Histoplasma capsulatum y Blastomyces dermatitidis).
  54. 54. Agar inhibidor de mohos:  Medio enriquecido que contiene cloranfenicol o gentamicina, pero no actidiona.  Se utiliza en el aislamiento de hongos sensibles a la cicloheximida ( Cryptococcus, zigomicetos,) a partir de muestras contaminadas.  Permite el desarrollo de la mayoría de los mohos y de las levaduras. Agar Czapek Dox: Se utiliza en el cultivo de hongos saprofitos, especialmente Aspergillus spp. y Penicillium spp. Es el medio de referencia para la identificación de Aspergillus spp.
  55. 55. Agar harina de maíz con/sin Tween 80: Se utiliza en el cultivo y diferenciación de especies de Candida basándose en las características miceliales. El Tween 80 se incorpora para demostrar la formación de clamidoconidias. Si se le añaden 10 g de glucosa puede utilizarse en la diferenciación de T. rubrum y T. mentagrophytes basándose en la producción de pigmento
  56. 56. Examen de hidróxido de potasio (KOH); Frotis para hongos en muestra de esputo.
  57. 57.  En los montajes húmedos, la adición de KOH y dimetil-sulfóxido (DMSO) permiten la clarificación de la muestra, mientras que la adición de glicerol, mejora la conservación de las estructuras fúngicas.  Tinciones fijas e histológicas, las tinciones argénticas y el PAS son las más adecuadas para la observación de estructuras fúngicas.
  58. 58. Un examen directo negativo nunca descarta una infección fúngica. El examen microscópico puede originar falsos positivos al confundirse ciertas estructuras con elementos fúngicos (linfocitos lisados se confunden con C. neoformans en la tinción con tinta china, fibras de colágeno o del hisopo que se confunden con elementos fúngicos, gotas de grasa con levaduras en gemación, etc.).  Posee una relativamente baja sensibilidad diagnóstica.  En la mayoría de los casos, no es posible identificar la especie fúngica VALOR ANORMAL DE FROTIS PARA HONGOS EN ESPUTO.  Blastomicosis  Coccidioidomicosis  Criptococo  Histoplasmosis
  59. 59. Células escamosas Células caliciformes
  60. 60.  Células cubicas
  61. 61.  Linfocitos
  62. 62.  Neutrófilos
  63. 63.  Neumocitos tipo II
  64. 64.  Macrófagos
  65. 65.  Moco  Espirales de Curschmann  Cristales de Charcot- Leyden  Cuerpos Ferruginosos  Cuerpos Amiláceos  Material Alimentario
  66. 66.  Cristales Charcot -Leyden
  67. 67.  Concreciones Calcarea Bandas Fibrilares
  68. 68. nllamada toracocentesis diagnóstica Extraer liquido de la cavidad pleural Procedimiento transtorácico Tipos: -Diagnóstica -Terapéutica
  69. 69. Toracocentesis diagnóstica: - Análisis citológico - Análisis bioquímico - Análisis microbiológico  Se suelen 50-100ml de líquido pleural para realizar los siguientes estudios, individualizando siempre en cada paciente, según la sospecha clínica. Cultivo de bacterias, hongos y micobacterias Citologia Proteinas, glucosa, LDH y amilasa Hemoglobina, hematocrito y recuento de células rojas Leucocitos y recuento diferencial Concentración de lípidos pH
  70. 70. Derrames pleurales Insuficiencia cardiaca con derrame Neumonía con derrame Cirrosis hepática con derrame con infeccion INDICACIONES
  71. 71.  Toracocentesis terapéutica o evacuadora: - Aliviar los síntomas del paciente - Permitir la expansión pulmonar
  72. 72.  Técnica: 1. Paciente sentado en el borde de una silla o cama, brazos cruzados y cabeza apoyados. Pierna y muslo en ángulo de 90º 2. No toser, no inspiración profunda ni moverse. 3. Desinfectar la zona y aplicar anestesia local 4. Introducir catéter con sistema de aspirado 5. Desinfectar la zona y colocar apósito estéril 6. Tomar placa de tórax para comprobar que no se haya dañado el pulmón. Punción pleural diagnóstica
  73. 73. Riesgos y complicaciones:  No presenta grandes dificultades y tiene una buena rentabilidad tanto diagnóstica como terapéutica. El mayor riesgo es la producción de un neumotórax y también puede haber hemorragias aunque no suelen ser importantes. Contraindicaciones: - Diátesis hemorrágica - Ventilación mecánica - Tratamiento anticoagulante - Infecciones locales cutáneas. - Incapacidad del paciente para colaborar - Derrames de pequeña cuantía.
  74. 74. Procedimiento mediante el cual se introduce por la nariz o por la boca un tubo flexible (broncofibroscopio) que permite visualizar el árbol bronquial asi como la exploración y tomar muestra de secreciones o tejido para aproximarnos a un diagnóstico y agente etiológico específico.
  75. 75.  Procedimiento: - Aplicación de anestesia local en las zonas de paso - Introducir el broncoscopio - Identificar bronquios y estructuras Toma de muestras: mediante aspirado Lavado broncoalveolar Cepillado bronquial Punción transbronquial Biopsia
  76. 76.  Riesgos: A pesar de la adecuada realización de la técnica puede haber posibles riesgos - Tos, fiebre, dolor local, náuseas, mareos - Hemoptisis autolimitada - Hemorragia - Hipertensión - Neumotórax - Depresión respiratoria
  77. 77. Método quirúrgico utilizado para extraer una pequeña muestra de tejido pulmonar del paciente La muestra debe ser suficiente Esclarecer la etiología Conocer su topografía, extensión y su gravedad o agresividad.
  78. 78. Indicaciones: - Neumopatia aguda y crónica - Neumopatia aguda en paciente inmunosuprimido - Enfermedad obstructiva cronica de via aerea pequeña - Hipertension pulmonar - Sospecha de vasculitis - Evaluación de rechazo a trasplantes
  79. 79. Complicaciones: - Neumotórax - Dolor - Infecciones o hemorragias son raras Contraindicaciones: - Condiciones clínicas y de laboratorio optimas - Biopsia transbronquial
  80. 80. Consiste en la administración de medicamentos por vía respiratoria directa (aerosoles) para así conseguir una respuesta curativa más eficaz y rápida. Gran ventaja Los fármacos que se administran por esta vía pueden ser: broncodilatadores, corticoides, mucolíticos, algunos antibióticos, etc. Este tipo de tratamiento se emplea fundamentalmente en el asma y en enfermedades pulmonares crónicas. También pueden beneficiarse otros pacientes: enfermos cardiacos, neurológicos, entre otros.
  81. 81.  Uso de oxigeno con fines terapéuticos  Tiene como objetivo prevenir la hipoxemia, así como prevenir y tratar los síntomas y complicaciones.  Es necesario que se complemente con otras estrategias ya que la hipoxia puede depender tanto del suministro de oxígeno, así como de la ventilación, concentración y saturación de Hb y gasto cardiaco. Hipoxia Hipoxemia Tipos de hipoxia Hipóxica Anémica Por estancamiento Disociativa
  82. 82.  Indicaciones: Administrar en pacientes con sospecha de hipoxia La cianosis central (labios lengua y mucosas) es un signo que se presenta cuando la PaO2 es < 50 mmHg y la saturación de hemoglobina es < 85% Se evalua la respuesta del paciente al tratamiento con oximetría de pulso y gasometría,
  83. 83. CLASIFICACIÓN. •Bacteriostaticos. Inhiben el crecimiento bacteriano •Bactericidas. Destruyen las bacterias
  84. 84. Atacan la paredcelular •Bencilpenicilina •Fenoximetilpenicilina •Amoxicilina •Ampicilina •Penicilina procainica (Parenteral) •Penicilina Benzatinica (Parenteral) Cocos Gram Positivos Cosos Gram Negativos (Aerobios)
  85. 85. Atacan la pared celular 1era. Generacion •Cefadroxilo ( oral) •Cefadrina (parenteral) 2da. Generacion •Cefaroxima (oral) •Cefamandol (parenteral) 3era. Generacion •Cefixima (oral) •Cefotaxima (parenteral) •Streptococus •Staphylococus •Neisseria meningiditis •Neisseria gonorreae •Haemophillus influenzae •Enterobacterias •Pseudomona aeuriginosa
  86. 86. Antifolatos •Sulfamidas •Trimetoprima con sulfametoxazol •Inf. del tracto Urinario (Trimetoprima) •Inf. De vias respiratorias (Trimetoprima) Quinolonas •Ciprofloxacino •Acido Nalidixico •Neisseria gonhorroeae •Enterobacterias de la orina Rifampicina •Antituberculoso
  87. 87. •Gentamicina •Amikacina •Kanamicina •Estreptomicina •Netilmicina •Enterococus •Enterobacterias de la orina •Listeria monocytogenes Aminoglucósidos Tetraciclinas •Tetraciclina •Doxiciclina •Minociclina •Gram Positivos, Negativos •Mycoplasma pneumoniae •Chlamydia trachomatis •Rickettsia •Legionella
  88. 88.  Cloranfenicol Macrolidos  Eritromicina (alergia a penicilina)  Claritromicina  Azitromicina •Cocos Gram positivos, negativos •Neisseria meningiditis •Haemophilus influenzae •Ricketssia •Salmonella thiphy, paratiphy Gram positivos, Espiroquetas, Streptococcus, Bordetella pertusis, Legionella Mycobacterium avium, Helicobacter pilory, Mycobacterium leprae Haemophillus influenzae, Chlamydia
  89. 89.  Acido Fusidico Lincosamidas  Clindamicina •Gram positivo, • Gram negativo •Infecciones oseas y •Infecciones articulares, producidas por estafilococos
  90. 90.  Metronidazol- Tinidazol  Nitrofurantoina  Polimixinas •Antiprotozoario •Actividad anaerobia bacteriana •Gram positivo •E. Coli •Infecciones urinarias •Gram negativas •Pseudomona aeruginosa
  91. 91. Rifampicina Isoniazida Etambutoli Pirazinamida Estreptomicina a) Fase Intensiva. De lunes-sabado (60 días) Combinado (grageas sueltas -4) • Rifampicina ---600mg ----150 mg • Isoniazida -----300 mg ----75 mg • Pirazinamida --1.5- 2gr. --400 mg b)Fase de Sosten 2 veces por semana. (2-4 meses) Combinacion (grageas sueltas-4) • Isoniazida-----800 mg ---200 mg • Rifampicina ---600 mg----150 mg
  92. 92. REFERENCIAS 1. Díez Javier de Miguel , Álvarez-Sala Walther Rodolfo (2013) Manual de Neumología clínica (2ª Edición) Ergon 2. Soto Campos José Gregorio (2005) Manualde diagnóstico y terapéutica en neumología (1ª Edición) Ergon 3. Fauci, Anthony S & Longo, Dan L. et al. (2012). HARRISON Principios de medicina interna. (18ª Edición) Mc Graw Hill

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