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INTRODUCCIÓN
El sistema reproductor del macho está compuesto anatómicamente por dos
testículos, una uretra y el órgano c...
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1.- CONCEPTOS Y GENERALIDADES DEL SISTEMA REPRODUCTOR DEL
MACHO
Para entender la funcionalidad del sistema reproductor d...
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Conducto por el que pasa la orina desde la vejiga urinaria hasta el exterior del
cuerpo durante la micción. También perm...
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formada en la corteza adrenal, estando el 97% de ella en el plasma unida a
proteína, así mismo, una escasa cantidad de l...
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1.8.1.- La testosterona es secretada por las células de Leydig que se
encuentran en el intersticio testicular, y resulta...
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2.- MATERIALES Y MÉTODOS
2.1.- Materiales:
2.1.1.- Equipo básico de disección: Pinza Adson-Hudson (diente de ratón),
tij...
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Tabla 01
Animal Rata 01 Rata 02 Rata 03
Peso (grs) 241 255 249
Tabla 01: Pesos iniciales de los animales
Seguidamente co...
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10 mg ---------- 1.000 grs
X ---------------- 241 grs
X= 2.41 mg
20 mg ---------- 1ml
2.41 mg ------- X
X= 0.120 ml
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2.2.3.- Técnicas quirúrgicas:
2.2.3.1.- Castración u Orquiectomía:
Con los guantes quirúrgicos ya colocados, palpando am...
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Tabla 03
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3.- RESULTADOS
3.1.- Castrado:
Transcurridos los catorce (14) días bajo observación y cuidado, los animales se
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Posteriormente de hacer un examen macroscópico de cada una de las
glándulas, estas fueron enviadas a un laboratorio de ...
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presencia de semen en ambas estructuras (ver anexos de cortes histológicos).
Al comparar pesos se puede notar que el pe...
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Anexo 01: Corte histológico de testículo de animal control.
Nótese que en la luz del epidídimo se observa claramente un...
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Anexo 03: Vesícula seminal de animal control
Véase que el epitelio glandular está bien desarrollado debido a que la
pro...
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Anexo 05: Próstata de animal control.
Obsérvese la secreción y la disposición del tejido. Aquí la actividad prostática
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BIBLIOGRAFÍA
ANNIS, J. Atlas de cirugía canina. Editorial Hispanoamericana, México.
CUNNIGHAM, J. Fisiología veterinari...
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UNIVERSIDAD CENTRAL DE VENEZUELA
FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS
CÁTEDRA DE FISIOLOGÍA ANIMAL
Stephanie J. Fuenmayor ...
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TABLA DE CONTENIDO
INTRODUCCIÓN 04
CAPÍTULO I
1.- CONCEPTOS Y GENERALIDADES DEL SISTEMA REPRODUCTOR DEL
MACHO
1.1.- Pen...
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CAPÍTULO III
3.- RESULTADOS
3.1.- Castrado 14
3.2.- Criptórquido 15
3.3.- Control 15
Anexos 17
CONCLUSIÓN 20
BIBLIOGRAF...
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CONCLUSIONES
La testosterona es una prohormona, en realidad la forma activa es la 5-alfa-
dihidrotestosterona. Este and...
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Informe sist reproductor del macho

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Informe sist reproductor del macho

  1. 1. 0 INTRODUCCIÓN El sistema reproductor del macho está compuesto anatómicamente por dos testículos, una uretra y el órgano copulador (pene). Las funciones principales de dicho sistema es la excreción de orina y la espermatogénesis quien garantiza que una especie determinada se perpetúe en el ambiente. La testosterona (hormona masculina) producida principalmente en los testículos por las células intersticiales de Leydig, genera alteraciones en el metabolismo del individuo, produce una serie de variaciones en las características físicas además, acompañado a ello, cambios en el comportamiento Una pequeña porción de la producción se le atribuye a la corteza adrenal. La castración y la criptorquidia son técnicas quirúrgicas donde el macho queda en condición de esterilidad, dichas técnicas se emplearan con animales de laboratorio con el propósito de determinar los cambios que se producen a nivel hormonal, debido a la descompensación de andrógenos testiculares. La actividad androgénica estimula el crecimiento y función de los órganos genitales, confiriendo caracteres sexuales secundarios de especial importancia en la atracción sexual, facilitando el libido en el macho. La finalidad de la investigación es observar los efectos que tiene la ausencia de testosterona dentro del organismo animal, para ello se utilizaron especimenes de la cepa Sprayed Dowley provenientes de un centro de cría, realizando un seguimiento durante dos semanas continuas de estudio
  2. 2. 1 1.- CONCEPTOS Y GENERALIDADES DEL SISTEMA REPRODUCTOR DEL MACHO Para entender la funcionalidad del sistema reproductor del macho es necesario describir ciertos conceptos histofisiológicos que se hacen indispensables para ubicarnos en el animal. Cabe destacar que cada especie posee características especiales, dependiendo de la necesidad metabólica que posea. 1.1.- Pene: Actúa como un órgano excretorio para la orina y como el órgano masculino de la cópula para el depósito de espermatozoos en el aparato reproductor femenino. 1.2.- Testículos: Son las gónadas masculinas productoras de espermatozoides y hormonas sexuales (testosterona) que se encuentran suspendidas en el interior del escroto, una bolsa fuera de la cavidad corporal. Esta disposición anatómica es necesaria en la medida en que la producción normal de espermatozoides requiere una temperatura de alrededor 2 °C inferior a la corporal interna. Los espermatozoides se producen en los túbulos seminíferos espiralados que conforman la mayor parte del tejido testicular. Los túbulos seminíferos se fusionan para desembocar en el epidídimo, un tubo espiralado que forma un casquete por fuera de la cápsula testicular. El epidídimo se continúa con el conducto deferente, que desemboca en la uretra. Cada túbulo seminífero está compuesto por una capa única de células de Sertoli las cuales apoyan, protegen y nutren las células espermatógenas; fagocitan remantes citoplasmáticos de espermátides; secretan la proteína fijadora de andrógenos, hormonas y un medio nutritivo, y establecen la barrera hematotesticular. Tenemos otras células dispersas entre elementos de tejido conectivo de la túnica vascular, las cuales secretan un andrógeno (testosterona) llamadas células de Leydig. 1.3.- Uretra:
  3. 3. 2 Conducto por el que pasa la orina desde la vejiga urinaria hasta el exterior del cuerpo durante la micción. También permite el paso del semen durante la eyaculación. El epitelio que recubre el interior de la uretra es un epitelio transicional cuando se inicia de la vejiga urinaria, después se transforma en un epitelio pseudoestratificado y cerca del meato urinario se transforma en epitelio estratificado escamoso. 1.4.- Glándulas genitales accesorias: 1.4.1.- Vesículas seminales: Son dos cuerpos glandulares compactos de superficie lobulada situados dorsolateralmente al cuello de la vejiga urinaria; cranealmente quedan englobadas en el pliegue urogenital, situándose entre ambas la terminación de los conductos eferentes. El conducto excretor se asienta bajo la próstata y termina junto a los conductos deferentes en una invaginación de la membrana mucosa al lado del colículo seminal. El conducto de las glándulas vesiculares y los conductos deferentes comparten un conducto eyaculador que se abre hacia la uretra. Secretan un líquido viscoso que constituye alrededor del 70% del eyaculado. 1.4.2.- Próstata: Se trata de una glándula lobulada que está localizada sobre el cuello de la vejiga y comienzo de la uretra, ventral al recto. Está formada por dos lóbulos laterales y un istmo que los conecta. La próstata elabora una proteína conjugada llamada antiglutinina cefálica que previene la aglutinación de los espermatozoides, secreta fosfatasa ácida, fibrinolisina y ácido cítrico directamente a la luz de la uretra. Algunas especies producen prostaglandinas que favorecen las contracciones uterinas en las hembras. 1.5.- Andrógenos: Los andrógenos son esteroides y derivados del núcleo del Androstano de 19 carbonos, sintetizados a partir del núcleo del colesterol. El andrógeno predominante es la testosterona la cual se biosintetiza en el retículo endoplasmático a partir del colesterol del propio testículo utilizando como productos intermediarios el ácido mavelónico y el escualeno. La secreción de testosterona está controlada por la horma luteinizante (LH), y el mecanismo por el cual ésta estimula a las células de Leydig incluye un incremento en la formación del AMP cíclico. Una pequeña parte de la testosterona también es
  4. 4. 3 formada en la corteza adrenal, estando el 97% de ella en el plasma unida a proteína, así mismo, una escasa cantidad de la testosterona circulante es convertida en estrógenos en alguna parte del cuerpo. Además de sus acciones durante el desarrollo, la testosterona y otros andrógenos ejercen un efecto inhibidor retroactivo sobre la secreción de LH hipofisiaria, producen y mantienen los caracteres sexuales secundarios masculinos y ejercen un efecto anabólico proteínico importante, promotor del crecimiento. Junto con la hormona folículo estimulante (FSH) la testosterona conserva la gametogénesis. 1.6.- Criptorquidia: Puede ser natural o quirúrgica. Fallo en el descenso de uno o ambos testículos hasta el escroto. Aunque el testículo criptórquido es capaz de producir andrógenos, es incapaz de producir espermatozoides normales, por lo que un macho con criptorquidia bilateral es estéril. Estos testículos son más susceptibles de sufrir una torsión del cordón espermático y tienen diez veces más probabilidades de ser neoplásicos. La criptorquidia parece tener una base genética, aunque el mecanismo no se conoce en totalidad y puede variar entre las distintas especies. En la criptorquidia unilateral, la fertilidad disminuye al 50 por 100. Debido a la alta temperatura abdominal, los espermatozoides y otros constituyentes del epitelio germinal degeneran rápidamente, sin embargo; la producción de testosterona es normal o casi normal, y las glándulas genitales accesorias siguen su desarrollo. 1.7.- Castración: Tras la castración, los mamíferos quedan totalmente estériles. Los conductos genitales y glándulas genitales accesorias sufren una involución, sí la castración es prepuberal, ni siquiera llegan a desarrollarse. En la castración no existe espermatogénesis ni tampoco hormogénesis. 1.8.- Factores hormonales que estimulan la espermatogénesis: Existen cinco hormonas que desempeñan funciones absolutamente esenciales en el proceso de la espermatogénesis, como son: testosterona, luteinizante (LH), folículo estimulante (FSH), estrógenos y hormona del crecimiento.
  5. 5. 4 1.8.1.- La testosterona es secretada por las células de Leydig que se encuentran en el intersticio testicular, y resulta esencial para una o más etapas básicas de la división de las células germinales hasta formar los espermatozoides. 1.8.2.- La hormona LH, secretada por la adenohipófisis, estimula a las células de Leydig para que elaboren testosterona. 1.8.3.- La hormona FSH secretada también por la adenohipófisis estimula las células de Sertoli; sin este estímulo no ocurre la conversión de las espermátides en espermatozoides. 1.8.4.- Los estrógenos formados por las células de Sertoli, por estímulo de la FSH, ayudan también al proceso de espermiogénesis. 1.7.5.- La hormona del crecimiento, necesaria para regular las funciones metabólicas básicas de los testículos, fomenta de manera específica la división temprana de las propias espermatogonias; en su ausencia, hay deficiencia grave o incluso carencia absoluta de espermatogénesis.
  6. 6. 5 2.- MATERIALES Y MÉTODOS 2.1.- Materiales: 2.1.1.- Equipo básico de disección: Pinza Adson-Hudson (diente de ratón), tijera quirúrgica, pinzas hemostáticas, porta agujas Mayo-Hegar, mango de bisturí N° 4 con hojilla de bisturí. 2.1.2.- Hilo de sutura. 2.1.3.- Jeringa para insulina (1ml). 2.1.4.- Materiales para afeitar (afeitadora, solución jabonosa). 2.1.5.- Guantes. 2.1.6.- Gasas. 2.1.7.- Camilla de cirugía. 2.1.8.- Tabla de inmovilización. 2.1.9.- Balanza. 2.1.10.- Cajas apropiadas para el mantenimiento y observación de las ratas. 2.1.11.- Cama, alimento y agua para los animales. 2.1.12.- Antibiótico de amplio espectro (Benzetacil). 2.1.13.- Medicamento anestésico: Diazepam, Ketamina y Xilacina. 2.2.- Métodos: 2.2.1.- Pesaje de las ratas macho, cálculo de la dosis de anestésico y administración de la dosis: Se utilizaron tres ratas de sexo macho, cepa Sprayed Dowley. Con la ayuda de una balanza se procedió a pesar a los animales para posteriormente inocular la dosis correcta de acuerdo a la condición corporal de cada animal. Siendo los pesos iniciales, los señalados a continuación:
  7. 7. 6 Tabla 01 Animal Rata 01 Rata 02 Rata 03 Peso (grs) 241 255 249 Tabla 01: Pesos iniciales de los animales Seguidamente con los pesos obtenidos se realizó el cálculo de dosis de anestésico correspondiente: Diazepam: 2.5 mg/ kg 10 mg/ 2ml Ejemplo para rata 01 2.5 mg ---------- 1.000 grs X ---------- 241 grs X= 0.602 mg 0.602 mg ----------- X 10 mg ------------- 2 ml X= 0.120 ml Ketamina: 80 mg/ kg 50 mg/ ml 80 mg ----------- 1.000 grs X ----------------- 241 grs X= 19.28 mg 50 mg ----------- 1ml 19.28 mg ------- X X= 0.385 ml Xilacina: 10 mg/ kg 20 mg/ ml
  8. 8. 7 10 mg ---------- 1.000 grs X ---------------- 241 grs X= 2.41 mg 20 mg ---------- 1ml 2.41 mg ------- X X= 0.120 ml Tabla 02: Rata 01 Rata 02 Rata 03 Diazepam (ml) 0.12 0.12 0.12 Ketamina (ml) 0.38 0.40 0.39 Xilacina (ml) 0.12 0.12 0.12 Tabla 02: Cálculo de dosis de anestésicos. Al tener los cálculos se procedió a sujetar a cada uno de los animales de la forma adecuada, inmovilizándolos con la ayuda de un guante grueso. En primer lugar se le aplicó el tranquilizante (Diazepam) vía intramuscular, esperando que actúe en un lapso de cinco minutos. Cumplido el tiempo y siguiendo las mismas normas para manejo de animales de laboratorio se inocularon anestésicos (Ketamina y Xilacina) ambos juntos en una misma jeringa por vía intraperitoneal, esperando que surtieran efecto en los animales para continuar con el siguiente paso. 2.2.2.- Preparación pre-quirúrgica: Anestesiados los animales se procedió a colocarlos en tablas de inmovilización, en posición decúbito dorsal para realizar el afeitado correspondiente en la zona escrotal, posteriormente se realizó las técnicas de asepsia oportunas, aplicando solución antiséptica en el lugar de afeitado, con el propósito de eliminar los microorganismos comensales de la piel.
  9. 9. 8 2.2.3.- Técnicas quirúrgicas: 2.2.3.1.- Castración u Orquiectomía: Con los guantes quirúrgicos ya colocados, palpando ambos testículos en el área inguinal se realizó una incisión en la línea media del escroto de aproximadamente 3 cm de longitud, quedando expuesta la túnica albugínea del testículo e incidiendo sobre ella, hasta visualizar el cordón espermático. Seguidamente se colocó una ligadura sobre el mismo, con la ayuda de un bisturí se cortó el testículo, al mismo tiempo se revisó la ausencia de puntos sangrantes. Posteriormente se procedió de la misma forma con el otro testículo. Luego de retirados ambos testículos se cerró la incisión con puntos interrumpidos simples. Finalmente se le aplicó una solución antiséptica. 2.2.3.2.- Criptórquido abdominal: Se colocó al animal en experimentación en posición decúbito dorsal sobre la tabla de trabajo. Al palpar ambas gónadas en la bolsa escrotal se llevaron hasta cavidad abdominal, con la ayuda de una aguja e hilo se cerró el canal inguinal con el propósito de evitar el descenso testicular y poder evaluar el efecto de las hormonas masculinas. De igual forma se le aplicó una solución antiséptica en el área incidida. 2.3.- Tratamiento post-operatorio: Luego de haber realizado las cirugías correspondientes, las tres ratas macho (castrada, criptórquida y control) fueron colocadas en observación en un período de catorce (14) días, en una caja con comida y agua. Durante este lapso se le colocó diariamente una dosis de 0,1 ml de antibiótico (Benzetacil) por vía intramuscular, haciendo el cambio de la cama cada dos (2) días. Del mismo modo, se pesaron a los animales diariamente con el propósito de obtener conclusiones más precisas acerca de la actividad metabólica de cada uno.
  10. 10. 9 Tabla 03 DÍA 1 21/7/09 2 22/7 3 23/7 4 24/7 5 25/7 6 26/7 7 27/7 RATA N°01 (CASTRADA) 241 gr 230 gr 231,5 gr 237,3 gr 240,5 gr 243 gr 246,3 gr RATA N°02 (CRIPTORQ UIDA) 255 gr 248 gr 249 gr 259 gr 263 gr 263,5 gr 264 gr RATA N°03 (CONTROL) 249 gr 249 gr 250 gr 258,5 gr 260 gr 263 gr 263 gr Tabla 03: Control de pesos (Primera semana) Tabla 04: DÍA 1 28/7 2 29/7 3 30/7 4 31/7 5 01/8 6 02/8 7 03/8 RATA N°01 (CASTRADA) 242,8 gr 253 gr 257 gr 277 gr 279 gr 279 gr 279 gr RATA N°02 (CRIPTORQUIDA) 254,8 gr 261 gr 265 gr 280 gr 284 gr 289 gr 292 gr RATA N°03 (CONTROL) 267 gr 276 gr 281 gr 298 gr 298 gr 304 gr 304 gr Tabla 04: Control de pesos (Segunda semana)
  11. 11. 10 3.- RESULTADOS 3.1.- Castrado: Transcurridos los catorce (14) días bajo observación y cuidado, los animales se sometieron a una sobredosis de anestésicos para sacrificarlos e inspeccionar la cavidad abdominal. Los medicamentos utilizados para este proceso fueron: Ketamina y Xilacina. En el caso del macho castrado se observó la apariencia de las glándulas anexas al sistema reproductor: vesículas seminales y próstata, las cuales se pesaron y examinaron, percibiendo que ambas glándulas se habían atrofiado debido al desequilibrio hormonal atravesado. Al estudiar los pesos expuestos en las tablas 03 y 04 se puede percibir claramente que el animal castrado experimentó una ganancia de peso corporal, ello debido a que los testículos son los principales productores de testosterona y al retirarlos el metabolismo se ve afectado, traduciéndose esto en ganancia de peso puesto que parte de la energía consumida no tendría que ir a la formación de dicho andrógeno. Los esteroides con actividad androgénica tienen un efecto anabólico proteico y miotrófico al incrementar la síntesis de proteína y disminuir la velocidad de descomposición de los aminoácidos, lo que lleva a un incremento de la masa muscular, una redistribución de la grasa y un retraso del cierre hipofisiario. A partir de esto se infiere que ante la ausencia de andrógenos, los animales no reubican esa grasa y por ende ella se almacena, también recordando que el precursor de la testosterona es el colesterol y este se almacenaría en el organismo, representando una ganancia lípidica adicional. Tabla 05 Vesícula seminal Próstata Rata 01 Peso 0.122 grs Medida 1 cm Peso 0.080 grs Medida 0.5 cm Tabla 05: Peso y medida de glándulas anexas al sistema reproductor (castrada).
  12. 12. 11 Posteriormente de hacer un examen macroscópico de cada una de las glándulas, estas fueron enviadas a un laboratorio de histología, con el fin de hacer un corte histológico y observar características microscópicas. (Ver anexos). 3.2.- Criptórquido: De igual modo que se hizo con el animal castrado, al criptórquido también se le inoculó una sobredosis de anestesia para realizar una laparotomía media, localizando los testículos que se encontraban en cavidad abdominal, observando así el aspecto macroscópico (pesos, medidas) de las glándulas accesorias (vesícula seminal y próstata), arrojando los siguientes datos: Tabla 06 Vesícula seminal Próstata Rata 02 Peso 0.43 grs Medida 2 cm Peso 0.24 grs Medida 2 cm Tabla 06: Peso y medida de glándulas anexas al sistema reproductor (criptórquida) Los testículos se encuentran naturalmente fuera de cavidad abdominal debido a que ellos requieren para el proceso de espermatogénesis una temperatura inferior a la corporal, y al encontrarse en cavidad los espermatozoides no eran viables, sin embargo; la producción hormonal continuaba en menor cantidad. Se observó los pesos de la última semana y comparándolos con el animal castrado se percibió que la condición corporal de la criptórquida era mucho mejor. Los andrógenos le dotaban de una mayor ganancia muscular. 3.3.- Control: Al extraer las gónadas y las glándulas sexuales del animal control, se observó macroscópicamente que tanto vesículas seminales como próstata poseían mayor tamaño con respecto a los animales anteriores, e incluso se observó la
  13. 13. 12 presencia de semen en ambas estructuras (ver anexos de cortes histológicos). Al comparar pesos se puede notar que el peso de este último animal es mayor con respecto a los demás. Obteniendo los siguientes resultados: Tabla 07 Vesícula seminal Próstata Rata 03 Peso 0.63 grs Medida 2.5 cm Peso 0.36 grs Medida 2.1 cm Tabla 07: Peso y medida de glándulas anexas al sistema reproductor (control)
  14. 14. 13 Anexo 01: Corte histológico de testículo de animal control. Nótese que en la luz del epidídimo se observa claramente una gran cantidad de espermatozoides. (Comparar con anexo 02) Anexo 02: Corte histológico de testículo de animal criptórquido. Obsérvese que en el animal con criptorquidia el epidídimo no posee en la luz espermatozoides. Estando también más dispersas entre sí cada una de las estructuras.
  15. 15. 14 Anexo 03: Vesícula seminal de animal control Véase que el epitelio glandular está bien desarrollado debido a que la producción hormonal de este individuo fue normal. Anexo 04: Vesícula seminal de animal castrado. Nótese que las glándulas se han dispersado, observando escasa secreciones dentro de las mismas.
  16. 16. 15 Anexo 05: Próstata de animal control. Obsérvese la secreción y la disposición del tejido. Aquí la actividad prostática es totalmente normal.
  17. 17. 16 BIBLIOGRAFÍA ANNIS, J. Atlas de cirugía canina. Editorial Hispanoamericana, México. CUNNIGHAM, J. Fisiología veterinaria. Editorial ELSEVIER, 2003, España. GANONG, W. Fisiología médica. Editorial El manual moderno, 1990, México. GARCÍA, A. Fisiología veterinaria. Editorial Mc Graw Hill Interamericana, 1996, España. GARTNER, L. Texto atlas de histología. Editorial Mc Graw Hill, 2002, Colombia. GUYTON, A. Tratado de fisiología médica. Editorial Mc Graw Hill Interamericana, 1997, México. HILL, R. Fisiología animal. Editorial panamericana, 2006, España.
  18. 18. 17 UNIVERSIDAD CENTRAL DE VENEZUELA FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS CÁTEDRA DE FISIOLOGÍA ANIMAL Stephanie J. Fuenmayor A. 18.206.957 Maracay, Octubre de 2009-
  19. 19. 18 TABLA DE CONTENIDO INTRODUCCIÓN 04 CAPÍTULO I 1.- CONCEPTOS Y GENERALIDADES DEL SISTEMA REPRODUCTOR DEL MACHO 1.1.- Pene 05 1.2.- Testículos 05 1.3.- Uretra 05 1.4.- Glándulas genitales accesorias 06 1.4.1.- Vesículas seminales 06 1.4.2.- Próstata 06 1.5.- Andrógenos 06 1.6.- Criptorquidia 07 1.7.- Castración 07 1.8.- Factores hormonales que estimulan la espermatogénesis 07 CAPÍTULO II 2.- MATERIALES Y MÉTODOS 2.1.- Materiales 09 2.2.- Métodos: 2.2.1.- Pesaje de las ratas macho, cálculo de la dosis de anestésico y administración de la dosis 09 2.2.2.- Preparación pre-quirúrgica 11 2.2.3.- Técnicas quirúrgicas: 2.2.3.1.- Castración u orquiectomía 12 2.2.3.2.- Criptórquido abdominal 12 2.3.- Tratamiento post-operatorio 12
  20. 20. 19 CAPÍTULO III 3.- RESULTADOS 3.1.- Castrado 14 3.2.- Criptórquido 15 3.3.- Control 15 Anexos 17 CONCLUSIÓN 20 BIBLIOGRAFÍA 21
  21. 21. 20 CONCLUSIONES La testosterona es una prohormona, en realidad la forma activa es la 5-alfa- dihidrotestosterona. Este andrógeno producido en los testículos posee una notable actividad dentro del metabolismo de un individuo. Al alterar la condición natural de un individuo por métodos quirúrgicos ya sea castración o criptorquidia se generan grandes cambios que posteriormente se traducen en una serie de trastornos fisiológicos. Al realizar cualquiera de las dos técnicas de cirugía se elimina parcial o totalmente la producción del andrógeno. Transcurrido el lapso de dos semanas continuas de investigación los animales experimentaron cambios en sus condiciones corporales, viéndose afectadas las glándulas anexas (vesícula seminal y próstata) en las cuales mermó la producción de enzimas y compuestos necesarios para el enriquecimiento de los espermatozoides. Así podemos decir, que la Hormona Gonadotropina (GnRH) se produce en el hipotálamo, estimulando a la hipófisis para la producción de LH (Hormona Luteinizante) quien actuará sobre las células intersticiales de Leydig, localizadas en el tejido conectivo de los túbulos seminíferos, y FSH (Hormona Folículo Estimulante) quien ejerce acción sobre las células de sertoli para la producción de una enzima llamada inhibina. La testosterona generada en el testículo actúa sobre las glándulas (vesiculares y próstata) para la producción de enzimas enriquecedoras para los espermatozoides. La brusca descompensación hormonal generó cambios en el metabolismo de los lípidos y aminoácidos, lo que se vio evidenciado en la acelerada ganancia diaria de peso, y la atrofia de las glándulas vesiculares y próstata. Así se puede discernir que la testosterona en su forma activa posee múltiples funciones importantes dentro de un organismo vivo.

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