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Clase teórica biopsia

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Clase teórica biopsia

  1. 1. Biopsias Cátedra de Anatomía Patológica. Facultad de Medicina. U. N. T.
  2. 2. OBJETIVOS  Definir biopsia  Señalar los aspectos generales, características primordiales e importancia de una biopsia  Describir las principales característicasde los diferentes tipos de biopsias  Manejar el tejido bajo las normas adecuadas para su fijación, rotulación y envío.  Interpretar el informe anatomo patológico y su significado clínico terapéutico.
  3. 3. MÉTODOS DE LA ANATOMÍA PATOLÓGICA  Patología Postmortem. Autopsias  Patología Quirúrgica. Biopsias  Citopatología  Experimental  Otros
  4. 4. BIOPSIA “Método de la anatomía patológica que estudia los tejidos obtenidos de pacientes vivos con fines diagnosticos, pronósticos y de seguimiento”
  5. 5. TIPOS DE BIOPSIA Incisional Dirigidas Excisional No dirigidas De órgano Total Parcial Intraoperatoria Punción Biopsia
  6. 6. TIPOS DE BIOPSIA Dirigida Endoscopica Colposcópica Dermatoscópica Estereotaxica No Dirigida A ciegas
  7. 7. BIOPSIA INCISIONAL Cuando toma parte de la lesión. Ej: punch de en lesion extensa de piel biopsia endoscópica en tumor >2cm
  8. 8. BIOPSIA ESCISIONAL Cuando en la muestra se extrae la lesión en su totalidad. Ej: losange de piel polipectomía
  9. 9. BIOPSIA ESCISIONAL
  10. 10. BIOPSIA DE ÓRGANO Consiste en el estudio de materiales obtenidos durante un acto quirúrgico, generalmente el material está representado por todo o parte de un órgano. El procesamiento se realiza en base a un protocolo pre establecido que indica pautas que van desde la apertura de la pieza hasta obtención de muestras representativas.
  11. 11. ÓRGANO TOTAL
  12. 12. ÓRGANO TOTAL
  13. 13. ÓRGANO PARCIAL
  14. 14. BIOPSIAS DIRIGIDAS Biopsias endoscópicas: es un tipo de biopsia dirigida que permite la obtención del material de órganos huecos ( tubo digestivo, árbol respiratorio, vias urinarias) o cavidades (pleural, pericardica, abdominal)
  15. 15. BIOPSIAS DIRIGIDAS Biopsias colposcopicas : se utilizan en lesiones precursoras de cuello uterino.
  16. 16. BIOPSIAS DIRIGIDAS Biopsias estereotáxicas: con la ayuda de métodos imagenológicos se localiza tridimensionalmente la lesión y se obtiene tejido. Ej mama y SNC
  17. 17. BIOPSIA DIRIGIDA ENDOSCÓPICA
  18. 18. BIOPSIA INTRAOPERATORIA Es el estudio del material obtenido durante el acto operatorio para determinar la naturaleza de la lesión y emitir un diagnóstico que permita al cirujano adoptar una conducta quirúrgica adecuada.
  19. 19. BIOPSIA INTRAOPERATORIA Requiere de instrumental (criostato) y ambiente adecuados. Se utiliza el tejido en fresco. Fijador es el frío.
  20. 20. BIOPSIA INTRAOPERATORIA
  21. 21. BIOPSIA INTRAOPERATORIA
  22. 22. BIOPSIA INTRAOPERATORIA
  23. 23. BIOPSIA INTRAOPERATORIA: CONTROL DE MÁRGENES
  24. 24. BIOPSIA DIFERIDA CONTROL DE MÁRGENES
  25. 25. BIOPSIA POR PUNCIÓN  Consiste en la obtención de un cilindro de tejido del órgano afectado, utilizando agujas especiales de grueso calibre 0.2cm de diametro.  Se aplica para el diagnóstico de patologías que afectan a órganos parenquimatosos en forma difusa (cirrosis hepatica, glomerulopatias) o localizada solida (tumor)  El material obtenido se incluye totalmente y se procesa en forma seriada.
  26. 26. BIOPSIA POR PUNCIÓN Puede realizarse :  A ciegas: sobre el sitio donde se sospecha que se encuentra la lesión.  Dirigida: mediante aparatos que permiten visualizar el sitio de punción (ecografía, TAC) Ej: punción biopsia de mama con mammotome.
  27. 27. BIOPSIA POR PUNCIÓN
  28. 28. BIOPSIA POR PUNCIÓN DIRIGIDA
  29. 29. BIOPSIA POR PUNCIÓN
  30. 30. BIOPSIA POR PUNCIÓN
  31. 31. PASOS A SEGUIR  Recepción del material: todo el material ingresado deberá ir acompañado de los datos personales del paciente, breve resumen de la Historia clínica, tipo y características, motivo del estudio solicitado y diagnóstico presuntivo.  Fijación: permite preservar la estructura y funcion de los tejidos e impedir la autolisis. Consiste en sumergir el material en una solución de formol al 10 % en recipiente de boca ancha.
  32. 32. PASOS A SEGUIR  Macroscopía: consiste en la inspección del material y su descripción, lo más semejante a la realidad, indicando los siguientes aspectos: ÓRGANOS PARENQUIMATOSOS  Tamaño, color, forma, superficie externa  Peso  Consistencia  Hallazgos  Superficie de corte
  33. 33. PASOS A SEGUIR ÓRGANOS HUECOS  Tamaño, forma, serosa  Peso  Pared (espesor, consistencia, hallazgos)  Mucosa (color, pliegues, aspecto, hallazgos)  Luz
  34. 34. PASOS A SEGUIR  Existen protocolos de descripción macroscópica tipo.  Se complementa con la selección de muestras representativas, lo cual también está pre-establecido en los protocolos
  35. 35. PASOS A SEGUIR  Procesamiento histológico: Los pasos a seguir son: – Deshidratación: pases sucesivos en alcohol 96º, acetato (2) y Xilol (2). Permite extraer el agua de los tejidos. – Baño e inclusión en parafina – Corte – Coloración
  36. 36. PASOS A SEGUIR  Diagnóstico: en algunos casos se utilizan protocolos microscópicos o breves descripciones microscópicas seguidas por uno o más diagnósticos que incluirán datos de valor pronóstico y de orientación terapéutica.
  37. 37. INFORME ANATOMOPATOLÓGICO Debe reunir las siguientes condiciones:  Datos del paciente  Descripción macro y microscópica detallada pero concreta  Protocolo  Diagnóstico jerarquizado  Debe concretarse a los aspectos relacionados con el pronóstico y la terapéutica.
  38. 38. BIBLIOGRAFÍA  Besuschio, S.C.. Patología general. Ed. El Ateneo. Bs As .1992  Cooke, R. A. Stewart, B. Atlas de Anatomía Patológica. Ed. Doyma.1989.  Cotran R.S.; Kumar, V.y Robbins, S.. Patología estructural y funcional. 4º Ed. 1990  “Guía de Métodos”. Sánchez Segura, M.; Nieman Y.;Cátedra de Anatomía Patológica, Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Tucumán, 2001.
  39. 39. Fin de la presentación
  40. 40. BIOPSIA ESTUDIOS COMPLEMENTARIOS Cátedra de Anatomía Patológica Facultad de Medicina U.N.T.
  41. 41. INFORME ANATOMOPATOLÓGICO Debe reunir las siguientes condiciones:  Datos del paciente  Descripción macro y microscópica detallada pero concreta  Protocolo  Diagnóstico jerarquizado  Debe concretarse a los aspectos relacionados con el pronóstico y la terapéutica.
  42. 42. BIOPSIA  Técnica de rutina: Hematoxilina- eosina  Coloraciones especiales: Giemsa (Helicobacter Pylori) Azul Alcian (Esófago de Barret) Ziehl Nielsen (BAAR) Rojo Congo (Amiloide) PAS (Hongos)
  43. 43. OTROS MÉTODOS  Microscopía electronica  Inmunofluoresencia  Polarización  Inmunomarcación  Patología Molecular:  Captura híbrida  PCR
  44. 44. MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA -Alcanza una magnificación de 500.000 aumentos. -Utiliza un haz de electrones. -Se enfoca por campos magnéticos sobre pantalla fluorescente o placas fotográficas. -Se usa por ej. en patología glomerular para detectar cambios mínimos en podocitos,membranas basales,mesangio, etc.
  45. 45. INMUNOFLUORESCENCIA  En tejidos sin fijación.  Usa coloración fluorescente que debe registrarse microfotograficamente por que se degrada.  Forma un trípode diagnóstico para las enfermedades glomerulares con la ME y los cortes de rutina con H-E, PAS y Tricrómico
  46. 46. Depósitos lineales de IgG en Riñón. Sindrome de Goodpasture. X 100
  47. 47. POLARIZACIÓN  Identifica el carácter birrefringente de ciertos tipos de depósito fibrilar colágeno.  Por ejemplo: amiloide
  48. 48. INMUNOMARCACIÓN Consiste en la detección de antígenos existentes en células o tejidos Utiliza anticuerpos monoclonales o policlonales copulados con una enzima (peroxidasa) que se unen con dicho antígeno. Se visualiza con microscopía óptica mediante coloración marrón del núcleo o citoplasma.
  49. 49. INMUNOMARCACIÓN Epiteliales: citoqueratina 7 y 20. Mesenquimáticos: vimentina, desmina. Linfoides: antígeno común leucocitario- SNC: S100, PGFA- HMB 45: melanoma
  50. 50. CANCER DE MAMA Inmunomarcación Estrogénicos Progesterónicos Catepsina D C-erb B-2 (HER2-neu)
  51. 51. PATOLOGÍA MOLECULAR  Permite conocer el mecanismo por el cual se origina una neoplasia.  Aporta información de valor pronóstico.  Predice en algunos casos la respuesta a la terapia.
  52. 52. VALOR PRONÓSTICO  Cambio cromosómico primario: asociado a los mecanismos moleculares responsables de la neoplasia.  Cambio cromosómico secundario: la enfermedad sigue un curso más agresivo, haciéndose más resistente a la terapia y difícil de obtener una remisión completa.  Presencia o ausencia de células normales: La ausencia indica peor pronóstico.  Presencia de dobles diminutos: confiere mayor resistencia a la terapia.
  53. 53. TÉCNICA DE HIBRIDIZACIÓN IN SITU (HIS)  Permite detectar y localizar secuencias específicas de ADN o ARN.  Requiere de una desnaturalización (rotura de los enlaces) de ADN de la muestra y de la sonda utilizada.  Hibridación de los ADN de la muestra y la sonda por complementariedad de bases.  Interpretación microscópica de acuerdo a la sonda utilizada.
  54. 54. TIPOS DE SONDA  Centroméricas: marcan la región centromérica. Puede valorar la presencia o ausencia de alteraciones numéricas.  De pintado cromosómico: abarcan todo el cromosoma. Para alteraciones numéricas y estructurales en metafase y translocaciones complejas.  De secuencia única: marcan regiones cromosómicas muy concretas. Para alteraciones numéricas y estructurales en metafase e interfase.
  55. 55. NUEVAS TÉCNICAS DE HIS  Multicolor FISH: 24 sondas de marcado cromosómico marcados con fluorescencia sobre metafase.  Mulibanding FISH: alteración estructural dentro de un mismo cromosoma, utiliza células en división.  Hibridación Genómica comparada (HGC): detecta cambios numéricos de secuencias de ADN en tumores de índice proliferativo bajo.
  56. 56. MICROARRAYS  Son soportes sólidos en los que moléculas de ADN de cadena simple se fijan y permiten identificar por hibridación la expresión de una multitud de genes de una muestra biológica.  Aislamiento de ARN de tejido normal y de una muestra de referencia.  Síntesis de ADN y marcaje con dos colorantes fluorescentes (Cy3 y Cy5).  Hibridación sobre el array.  La diferencia de expresión del ARN entre ambos tejidos se puede evaluar a partir de la relación Cy3/Cy5 para cada gen.  El análisis nos permite definir el patrón de expresión génica para cada muestra concreta.
  57. 57. MICROARRAYS Principales aplicaciones:  Clasificación de neoplasias morfológicamente similares pero con comportamiento biológico heterogéneo.  Evaluación del pronóstico.  Respuesta al tratamiento.
  58. 58. PCR  Preparación y dosaje de ácidos nucleicos (ADN-ARN) por reacción en cadena de polimerasa (PCR), técnica de amplificación in vitro de secuencias conocidas del genoma, que permite la detección de deleciones, mutaciones o rearreglos cromosómicos
  59. 59. PCR
  60. 60. NO OLVIDAR  Conocer datos clínicos y exámenes complementarios del paciente.  Seleccionar el tipo de biopsia a realizar según la patología y órgano afectado.  Envío del material en óptimas condiciones y con los datos pertinentes.  Fijación y procesamiento adecuados.  Descripción macroscópica.  Diagnósticos microscópicos.  Aspectos relacionados con el pronóstico y terapéutica.
  61. 61. BIBLIOGRAFÍA  Besuschio, S.C.. Patología general. Ed. El Ateneo. Bs As .1992  Cooke, R. A. Stewart, B. Atlas de Anatomía Patológica. Ed. Doyma.1989.  Cotran R.S.; Kumar, V.y Robbins, S.. Patología estructural y funcional. 4º Ed. 1990  XXII Congreso de la SEAP. Curso largo de Patología Molecular. 2005  XXII Congreso de la SEAP. Aplicaciones diagnósticas del FISH en Patología. 2005  XXII Congreso de la SEAP. Seminario del club de Inmunohistoquímica y Patología Molecular. 2005
  62. 62. Fin de la presentación

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