Carcinoma de células escamosas

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Exposicion para la catedra de cirugía, UCC-Bucaramanga, Facultad MVZ.

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Carcinoma de células escamosas

  1. 1. Jonathan José Barbosa Jaimes Elkin Andrés Rodríguez Jaimes Diana Marcela Aranda Bautista Nelcy Y. Luna G. Carlos Rojas José Luis Rico Diego Salazar Andrés Sierra Estudiantes MVZ, UCC-Bucaramanga
  2. 2. Concepto Es una neoplasia maligna cutánea, que aparece con frecuencia en los felinos, y si bien se presenta en otros animales, es en el gato donde se comporta como una entidad mórbida específica, con una conducta biológica disímil a otras especies1. 1 M.V. JORGE FIORENTINI.
  3. 3. Característica Es una de las pocas neoplasias donde se conoce el factor predisponente (característica genética de algunos felinos) y el agente carcinogénico (radiación solar ultravioleta)1. 1 M.V. JORGE FIORENTINI.
  4. 4. Factores predisponentes Exposición Prolongada A Luz Ultravioleta Falta De Pigmentación Falta De Pelo ó Pelo Corto
  5. 5. Clasificación C.C.E cutáneo C.C.E oral de acuerdo a capacidad infiltrativa C.C.E c in situ C.C.E c invasivo de acuerdo a ubicación C.C.E.c. nasal C.C.E.c. de párpados C.C.E.c. de labio superior C.C.E.c. de orejas C.E.C.c. fronto-auricular
  6. 6. C.C.E.c. invasivo nasal y de labio superior Nótese la profundidad de las úlceras y la presencia de costras. Fuente: M.V. JORGE FIORENTINI.
  7. 7. C.C.E.c. invasivo de párpados Nasal estadío III y de párpado: es la formas más agresivas de esta neoplasia. Fuente: M.V. JORGE FIORENTINI.
  8. 8. C.C.E.c. invasivo de orejas Pabellón auricular de un felino de pelaje marrón con la región afectada despigmentada Fuente: M.V. JORGE FIORENTINI.
  9. 9. C.E.C.c. invasivo de región fronto-auricular Fuente: M.V. JORGE FIORENTINI.
  10. 10. Aspectos clínicos Úlceras y costras, hemorragias y aumenta grosor de la piel Fuente: Dr. Roberto Serviddio Fuente: Dr. Roberto Serviddio
  11. 11. Diagnóstico Biopsia con un examen histopatológico Las muestras para el diagnóstico histopatológico deben obtenerse de manera laminar y no en cuña, pues de esta última manera se facilita la infiltración de células neoplásicas a planos profundos1. 1 Mangieri, J.: Carcinoma escamocelular (C.E.C.) cutáneo en cabeza de felinos. Revista científica de A.N.C.L.I.V.E.P.A.-RS. Nº7, pag. 6, Brasil 1996.
  12. 12. Tratamiento Radioterapia Hipertermia Administración intratumoral de Crioterapia carboplatino Quimioterapia Fotoquimioterapia Resección del plano nasal ¿Cuál es la ideal? Hay opiniones, argumentos y desventajas divididas de diferentes autores, veamos dos ejemplos.
  13. 13. Ejemplo 1: Criocirugía Para algunos autores la criocirugía es eficaz solo para lesiones tempranas, diminutas, superficiales y no invasivas1,2,3. Otros afirman que tiene un 50% de éxito y alta tasa de recurrencia , aproximadamente un 80 %4,5. 1) Rogers, K.: Feline cutaneous squamous cell carcinoma. Feline Practice. Vol. 22, Nº5. September/october 1994. 2) Rosenkrantz, W.: Dermatitis solar. Cap. 30. En Griffin, G., Knochka K., Macdonald, J. Enfermedades Dermatologicas del perro y gato. Ciencia y arte de la terapeútica. Intermédica. 1994. 3) Ruslander D., Kaser-Hotz B., Sardinas J.C. :Carcinoma de Células Escamosas Cutáneo. Compendium Continuing Education for the Practicing Veterinarian. Vol. 19, Nº10, 1997. 4) Atwater, S. et al: Squamus cell carcinoma of the pinna and nasal planum. Fifty four cats (1980-1991). Proc Annu Conf. Vet. Cancer Soc. 11:35, 1991. 5) Mangieri, J.: Carcinoma escamocelular (C.E.C.) cutáneo en cabeza de felinos. Revista científica de A.N.C.L.I.V.E.P.A.- RS. Nº7, pag. 6, Brasil 1996.
  14. 14. Ejemplo 2: Resección del plano nasal Quince de 20 gatos con carcinoma invasor de células escamosas están libres de enfermedad recurrente al año1. Otros autores reportan que tiene altas tasas de recurrencia. 1) Withrow SJ, Straw RC. Resection of the nasal planum in nine cats and five dogs. J Am Anim Hosp Assoc 1990; 26:219-222
  15. 15. Crioterapiaaaaa Usen la que mejor resultados le de a cada uno Resección
  16. 16. Uso del piroxicam como tratamiento adjunto en CCE en tercer párpado de un caballo Figura 1. Evaluación oftálmica en la primera visita en Sept de 2007. A. El ojo izquierdo presenta un tejido de granulación Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009
  17. 17. Uso del piroxicam como tratamiento adjunto en CCE en tercer párpado de un caballo Figura 1. Evaluación oftálmica en la primera visita en Sept de 2007. B. El tejido de granulación afecta a todo el tercer párpado Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009
  18. 18. Uso del piroxicam como tratamiento adjunto en CCE en tercer párpado de un caballo Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009 Figura 2.B, C. El tercer párpado fue extirpado completamente junto con la glándula del tercer párpado y los bordes de la conjuntiva
  19. 19. Uso del piroxicam como tratamiento adjunto en CCE en tercer párpado de un caballo Figura 3. Tejido de granulación sometido a estudio histopatológico y los hallazgos registran un CCE. Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009
  20. 20. Uso del piroxicam como tratamiento adjunto en CCE en tercer párpado de un caballo Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009 Figura 4. A. Ojo izquierdo inmediatamente después de la cirugía, con pequeña inflamación de la conjuntiva. B. El mismo ojo 2 días después de la cirugía sin señales de malestar o dolor.
  21. 21. Uso del piroxicam como tratamiento adjunto en CCE en tercer párpado de un caballo Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009 Figura 5. A. Ojo izquierdo diez meses después de la cirugía, y con tratamiento oral con piroxicam (80 mg total PO SID), empezado en octubre de 2007 B. Ojo derecho sin alteraciones oftalmológicas
  22. 22. Uso del piroxicam como tratamiento adjunto en CCE en tercer párpado de un caballo Conclusión El piroxicam es una AINE más específico a la COX-2, ha demostrado ser eficaz en el control del CCE en perros y del CCE oral en gatos. En el presente trabajo el caso de CCE en el equino ha sido controlado exitosamente con la administración de éste fármaco, por lo que es posible considerar este medicamento como tratamiento viable, por su disponibilidad, bajo costo y fácil administración.
  23. 23. Crioterapia : Elementos * Como criógeno, nitrógeno líquido cuya temperatura es de -196 ºC. Como depósito de nitrógeno líquido, termo para inseminación artificial con una capacidad de 20 litros. Como unidad crioquirúrgica, equipo Crio-Surg Frigitronics con puntas aplicadoras intercambiables para la modalidad “spray” y la modalidad contacto según el tamaño y las características de la lesión. * M.V. JORGE FIORENTINI
  24. 24. Crioterapia * * M.V. JORGE FIORENTINI
  25. 25. Crioterapia : Técnica* 1. Anestesia general 2. En el área crioquirúrgica se realiza tricotomía y antisepsia con solución jabonosa de Iodo povidona. 3. Las áreas circundantes de tejido sano se protegen con pomadas a base de lanolina y vaselina. * M.V. JORGE FIORENTINI
  26. 26. Crioterapia : Técnica* 4. En la modalidad “spray” el nitrógeno líquido contacta directamente con el área a tratar. La punta utilizada se coloca a 0,5 a 1 cm de distancia del tejido a congelar. 5. En la modalidad contacto, la punta congelada de la unidad crioquirúrgica contacta con el área a tratar. * M.V. JORGE FIORENTINI
  27. 27. Crioterapia : Técnica* Aplicación de crioterapia con punta de contacto en pequeñas lesiones de un CCEc inv. de la región fronto- auricular. * M.V. JORGE FIORENTINI
  28. 28. Crioterapia : Técnica* 6. El área congelada se extiende 5 mm más allá de la lesión. 7. Monitoreo del frío se hace con la observación y palpación de la esfera de hielo que se forma en el tejido blanco después de la aplicación del criógeno. * M.V. JORGE FIORENTINI
  29. 29. Crioterapia : Técnica* 8. Se utiliza el método de congelación rápida- descongelación lenta . Entre congelación y congelación median 15 a 20 minutos, período que permite la descongelación lenta. 9. La crionecrosis resultante genera un exudado mal oliente, efecto que se mantiene durante varios días y que debe ser advertido a los propietarios antes del tratamiento. * M.V. JORGE FIORENTINI
  30. 30. Crioterapia : Ventajas* Se realizan 2 o 3 ciclos de congelación- descongelación que mejoran el margen de seguridad. La posibilidad de hemorragias es casi nula debido a que los vasos se trombosan y se ocluyen después de la congelación. * M.V. JORGE FIORENTINI
  31. 31. Crioterapia : Ventajas* Permite trabajar en algunos casos avanzados, principalmente de pabellón auricular. No existe la posibilidad de dehiscencia. El criógeno utilizado (nitrógeno líquido) es económico e inocuo tanto para el paciente como para el operador. * M.V. JORGE FIORENTINI
  32. 32. Crioterapia : Ventajas* Posibilidad de realizar “retoques”. Menor tiempo quirúrgico que se traduce en menor tiempo de anestesia, pero relativo cuando se trata de un C.C.E.c. inv. de plano nasal, pues el tiempo que se tarda en hacer 2 ciclos de congelación- descongelación , supera al tiempo empleado en hacer una técnica de resección en dicha región. * M.V. JORGE FIORENTINI
  33. 33. Crioterapia : Ventajas* Se produce analgesia postquirúrgica en el área congelada por destrucción de terminaciones nerviosas. No obstante, en la zona que circunda al tejido congelado se produce una severa reacción inflamatoria que provoca dolor en los primeros días del período postoperatorio. * M.V. JORGE FIORENTINI
  34. 34. Crioterapia : Complicaciones* Se observan principalmente en casos avanzados de C.C.E.c. inv. de plano nasal en estadío III, donde la gran tumefacción que se genera después de la congelación dificulta la respiración del paciente en los días subsiguientes. * M.V. JORGE FIORENTINI
  35. 35. Crioterapia : Complicaciones* Excesiva congelación que a veces se infligía al tejido blanco y que afectaba en forma indirecta a los tejidos sanos circundantes. Secuela de una congelación excesiva al tratar un CCEc inv. en pabellón auricular. * M.V. JORGE FIORENTINI
  36. 36. Crioterapia : Recomendaciones* Que el animal no esté expuesto al sol principalmente entre las 10 y las 17 horas. Muchas recurrencias y fallas terapéuticas se han observado en gatos que no han podido cumplir con este requisito. * M.V. JORGE FIORENTINI
  37. 37. Resección del plano nasal : Técnica 1. Anestesia general + tubo endotraqueal con manguito. 2. Decúbito esternal con cabeza apenas levantada. 3. Estimar minuciosamente la extensión tumoral. 4. Tricotomía de un área reducida, conservando vibrisas y el sitio se prepara para la cirugía aséptica.
  38. 38. Resección del plano nasal : Técnica 5. Colocar paño de campo con orificio circular. 6. El plano nasal se extrae por completo con incisión cutánea de 360º utilizando una hoja de bisturí Nº 15. 7. El cartílago del plano nasal y los turbinados se cortan con una incisión en ángulo de casi 45º con el paladar duro. 8. Hemorragia: presión directa con torunda.
  39. 39. Resección del plano nasal : Técnica
  40. 40. Resección del plano nasal : Técnica 9. Extraído el plano nasal, se retraen los bordes cutáneos exponiendo las conchas nasales. 10. Sutura en bolsa de tabaco con material no absorbible monofilamento 3-0 se aplica a través de la piel alrededor de la incisión. 11. Analgésicos y paciente a hogar dentro de las 24 horas.
  41. 41. Resección del plano nasal : Técnica Sutura en bolsa de tabaco continua se emplea para reducir el orificio nasal hasta casi 1cm de diámetro. Ninguna sutura es colocada en el cartílago. (De Withrow SJ, Straw RC. Resection of the nasal planum in nine cats and five dogs. J Am Anim Hosp Assoc 1990; 26:219-222)
  42. 42. Resección del plano nasal : Técnica 12. No limpiar el sitio quirúrgico y el paciente puede estornudar sangre por varios días. 13. Extraer suturas aproximadamente a los 10 días de la intervención, pudiendo necesitarse sedación o anestesia superficial.
  43. 43. Resección combinada del plano nasal y premaxilar A. El paciente se ubica en decúbito esternal y se colocan los paños de campo después de la preparación para la cirugía aséptica. La boca se abre y el paño inferior se coloca dentro de la misma. B. Se hace una incisión de espesor completo del labio superior sobre cada lado del plano nasal. C. Las dos incisiones se unen sobre la línea media dorsal de la nariz en caudal del plano nasal. (De Kirpensteijn J, Withrow SJ, Straw RC. Combined resection of the nasal planum and premaxilla in three dogs. Vet Surg 1994; 23:341-346.)
  44. 44. Resección combinada del plano nasal y premaxilar
  45. 45. Resección combinada del plano nasal y premaxilar A. La submucosa y mucosa del labio se suturan a través de los orificios perforados en el paladar duro y al labio contralateral. B. Esto redunda en el cierre de la cavidad nasal en forma de una “T” (De Kirpensteijn J, Withrow SJ, Straw RC. Combined resection of the nasal planum and premaxilla in three dogs. Vet Surg 1994; 23:341-346.)
  46. 46. Resección combinada del plano nasal y premaxilar C. El orificio nasal es reducido en diámetro colocando una sutura en bolsa de tabaco continua simple. D. Imagen desde el frente del paciente después de la intervención. El nuevo orificio nasal es de aproximadamente el diámetro del plano nasal resecado. (De Kirpensteijn J, Withrow SJ, Straw RC. Combined resection of the nasal planum and premaxilla in three dogs. Vet Surg 1994; 23:341-346.)
  47. 47. figura 4 Auriculectomía Fuente: Dr. Roberto Serviddio
  48. 48. Reporte de casos
  49. 49. Reporte de casos : en caprinos Fuente: Gutierrez C., et al. 2000.
  50. 50. Carcinoma de células escamosas no olho de bovino com invasao cerebral através dos nervos cranianos Fuente: Ricardo Rocha de Barros., et al. 2006.
  51. 51. Referencias bibliográficas BOJRAB, Joseph M. TECNICAS ACTUALES EN CIRUGIA DE PEQUEÑOS ANIMALES. 4ed. INTERMEDICA, Santafé de Bogotá. 1276 p SERVIDDIO, Roberto. CARCINOMA DE CELULAS ESCAMOSAS EN EL GATO. 2008. Disponible en http://drserviddio.blogspot.com/2008/05/carcinoma-de- celulas-escamosas-en-el.html [Consulta: 3/04/10:09:54] TEMA 32.-TUMORES EPITELIALES-.[formato pdf] Disponible en http://www3.unileon.es/personal/wwdmavpp/pdf/tumores%20epi teliales.pdf [Consulta: 3/04/10:10:12]
  52. 52. Referencias bibliográficas FIORENTINI, Jorge. CARCINOMA DE CÉLULAS ESCAMOSAS CUTÁNEO INVASIVO DE CABEZA Y CUELLO EN FELINOS. SU TRATAMIENTO CON CRIOTERAPIA. Disponible en http://www.aamefe.org/escamosas.htm [Consulta: 3/04/10: 10:25] IWABE, Simone., et al. Uso del piroxicam como tratamiento adjunto en carcinoma de células escamosas en el tercer párpado de un caballo. Vet. Méx., 40(4) 2009.[formato pdf] Disponible en http://revistaveterinaria.fmvz.unam.mx/fmvz/revvetmex/a200 9/rvmv40n4/rvm40405.pdf [Consulta: 3/04/10:10:42]
  53. 53. Referencias bibliográficas GUTIERREZ, C., at al. Carcinoma de células escamosas en mamas apigmentadas de caprino en Canarias. Med Vet 2000; vol.17 (1): 26-28. Disponible en http://www.pulso.com/medvet/Protegido/numero1/PDF/Carcinom a.pdf [Consulta 3/04/10:10:56] ROCHA DE BARROS, Ricardo., et al. CARCINOMA DE CÉLULAS ESCAMOSAS NO OLHO DE BOVINO COM INVASAO CEREBRAL ATRAVÉS DOS NERVIOS CRANIANOS. v.36, n 5, 2006.

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