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  1. 1. <ul><li>Tema 3.- Diagnóstico de laboratorio de las Enteroparasitosis </li></ul><ul><ul><ul><li>Características generales de las Enteroparasitosis </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Principales protozoosis y helmintiasis intestinales </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Ciclos biológicos tipo: a) Entamoeba histolytica </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li> b) Taenia saginata </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li> c) Enterobius vermicularis </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li> d) Anquilostómidos </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Principios y utilidad de las técnicas de estudio </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>parasitológico de heces. El examen coproparasitario </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Elementos no parasitarios de las heces </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>El método de Graham </li></ul></ul></ul>
  2. 2. <ul><ul><li>Tracto digest humano  Numerosos parásitos: </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Protozoos COMENSALES </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Helmintos PATOGENOS </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Infestación </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Vía digestiva (mayoría de casos) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Vía cutánea </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Formas infestantes </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>QUISTES / OOQUISTES  Protozoos </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>HUEVOS  Helmintos </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>LARVAS  Tenias, Triquina </li></ul></ul></ul></ul></ul>ENTEROPARASITOSIS. Características generales
  3. 3. <ul><ul><li>Mecanismos transmisión </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Infestación por FECALISMO </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Infestación por CARNIVORISMO </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Infestación s/ ciclo ANO-MANO-BOCA </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Infestación CUTANEA </li></ul></ul></ul></ul></ul>ENTEROPARASITOSIS. Características generales Mecanismos transmisión  Relación con ciclo biológico
  4. 4. <ul><li>Característico de parásitos de ciclo biológico MONOXENO </li></ul>INFESTACION POR FECALISMO <ul><li>HELMINTOS </li></ul><ul><ul><li>Asacaris lumbricoides </li></ul></ul><ul><ul><li>Trichuris trichiura </li></ul></ul><ul><ul><li>Hymenolepis nana </li></ul></ul><ul><li>PROTOZOOS </li></ul><ul><li>a) PARASITOS </li></ul><ul><ul><li>Entamoeba histolytica </li></ul></ul><ul><ul><li>Giardia lamblia </li></ul></ul><ul><ul><li>Isospora belli </li></ul></ul><ul><ul><li>Cryptosporidium spp. </li></ul></ul><ul><ul><li>Balantidium coli </li></ul></ul><ul><li>b) COMENSALES </li></ul><ul><ul><li>Entamoeba coli </li></ul></ul><ul><ul><li>Endolimax nana </li></ul></ul><ul><ul><li>Iodamoeba butschlii </li></ul></ul><ul><ul><li>Chilomastix mesnili </li></ul></ul><ul><ul><li>Blsatocystis hominis </li></ul></ul><ul><ul><li>Entamoeba polecki </li></ul></ul><ul><ul><li>Enterocytozoon spp. </li></ul></ul>
  5. 5. INFESTACION POR FECALISMO Hosp Infestado Medio Externo Hosp Susceptible Formas infestantes (=) Contam suelo Ingestión Quistes Ooquistes Huevos Larvas
  6. 6. www./dpd.cdc.gov/dpdx
  7. 7. <ul><ul><li>En parásitos con ciclos biológicos complejos, con uno o </li></ul></ul><ul><ul><li>varios Hosp. Intermediarios ( Ciclos HETEROXENOS) </li></ul></ul><ul><ul><li>Entre los hospedadores existe una relación PREDADOR - </li></ul></ul><ul><ul><li>PRESA </li></ul></ul><ul><ul><li>El PREDADOR soporta al parásito en su intest, donde se </li></ul></ul><ul><ul><li>realiza la f sexuada (Se comporta como Hosp DEFINITIVO) </li></ul></ul><ul><ul><li>La Presa se infesta por fecalismo, a partir de las formas </li></ul></ul><ul><ul><li>que elimina el H D con las heces (hosp intermediario) </li></ul></ul><ul><ul><li>En el caso del hombre la infestación se adquiere por </li></ul></ul><ul><ul><li>ingestión de carnes y pescados crudos, o insuficientemente </li></ul></ul><ul><ul><li>cocinados </li></ul></ul>INFESTACION POR CARNIVORISMO
  8. 8. <ul><ul><li>Algunas especies de helmintos intestinales </li></ul></ul><ul><ul><li>(s/t nematodos) </li></ul></ul><ul><ul><li>Eliminación de: </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>larvas </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>huevos muy desarrollados </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Se transforman en LARVAS INFESTANTES </li></ul></ul><ul><ul><li>(larvas filariformes) </li></ul></ul>INFESTACION por la piel Contacto con H. Definitivo Penetración piel Migr viscerales Local definitiva en intestino <ul><li>Ancylostoma duodenale </li></ul><ul><li>Necator americanus </li></ul><ul><li>Strongyloides stercoralis </li></ul>
  9. 9. <ul><li>Diagnóstico de laboratorio de las Enteroparasitosis </li></ul><ul><ul><li>Consideraciones generales: </li></ul></ul><ul><ul><ul><li>Numerosas técnicas de examen coproparasitario </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Finalidad diferente </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Aplicación </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>General </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li> Selectiva o específica </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Utilidad en función de su capacidad para: </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Concentrar elementos parasitarios </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Cuantificar la carga parasitaria </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Evidenciar difs estadíos evolutivos </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Preparar extensiones permanentes </li></ul></ul></ul></ul>
  10. 10. <ul><li>Diagnóstico de laboratorio de las Enteroparasitosis (2) </li></ul><ul><ul><li>IMPORTANTE: </li></ul></ul><ul><ul><ul><li>1) Selección técnica(s) s/ casos </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Grupo o especies de parásitos </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Fase evolutiva </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>2) Examen de varias muestras (3) por paciente </li></ul></ul></ul>
  11. 11. ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES <ul><li>Evidenciación de parásitos que: </li></ul><ul><ul><ul><ul><li>Viven en el tracto digestivo </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Realizan su tránsito al m ext a través del mismo </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>I) No todas las técnicas son adecuadas para todos los parásitos: </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Importante conocer ciertos datos: </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Procedencia geográfica del enfermo </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Resumen HC </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Resultados otras pruebas/análisis </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Información relativa a trattos recientes </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>II) Un ex aislado con result negativo no tiene ningún valor </li></ul></ul><ul><ul><li>eliminatorio </li></ul></ul><ul><ul><li>III) La muestra debe ser examinada rápidamente </li></ul></ul>
  12. 12. ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES <ul><li>Para descartar una parasitosis intestinal: </li></ul><ul><ul><ul><li>Realizar al menos 3 exámenes coproparasitarios seriados </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>(a dias alternos) </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Tras una adecuada preparación del paciente </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Remitiendo las muestras lo mas rápidamente posible al lab </li></ul></ul></ul>
  13. 13. ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES <ul><li>El examen PARASITOLOGICO DE HECES forma parte del </li></ul><ul><li>ESTUDIO COPROLOGICO, mas general, que informa sobre: </li></ul><ul><ul><ul><li>Aspecto macroscópico de las heces </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Consistencia / agua / Veloc tránsito..... </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Color (calidad/cantidad flujo biliar) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Presencia de sangre, mucus ...... </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Aspecto microscópico restos alimenticios </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Presencia mucus, hematíes, leucos, céls epiteliales ...... </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Presencia de parásitos (trofoz, quistes, huevos, larvas....) </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Elementos micóticos, su relación o proporción con bacterias </li></ul></ul></ul>
  14. 14. ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES <ul><li>El examen COPROPARASITARIO no resulta de utilidad cuando: </li></ul><ul><ul><ul><li>La eliminación de los parásitos no se realiza por el intestino </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>La puesta de huevos no se lleva a cabo en el intestino </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Los parásitos son inmaduros o estériles, y no dan lugar a </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>formas de diseminación </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Parasitismo por un único individuo (esp dioicas) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Parasitismo reciente (fase adulta no desarrollada) </li></ul></ul></ul></ul></ul>
  15. 15. ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES. Preparación paciente <ul><li>Régimen alimenticio estricto desde 72 h antes a la recogida de la </li></ul><ul><li>muestra ( UTOPIA ??) </li></ul><ul><li>Condiciones mínimas: </li></ul><ul><ul><ul><li>Evitar medicamentos opacos no absorbibles </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Carbón vegetal </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Contrastes radiológicos (papilla baritada) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Sustancias grasas (s/t supositorios) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Evitar alimentos con muchos residuos </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Legumbres </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Frutas de cutícula resistente </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Vegetales con céls duras </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Frutos con semillas duras y pequeñas (p ej higos) </li></ul></ul></ul></ul></ul>
  16. 16. ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES. Muestras <ul><li>Considerar adecuadamente las condiciones de : </li></ul><ul><ul><ul><li>Toma de muestra </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Asepsia? </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Momento? / lugar? </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Recipiente ? </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Envío de muestra </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>En hospital </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Por correo </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Conservación de las muestras </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Provisional por frio (att trofozoítos amebas) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Definitiva (soluciones fijadoras) </li></ul></ul></ul></ul></ul>
  17. 17. TECNICAS DEL EXAMEN COPROPARASITARIO <ul><ul><li>1) Examen directo de una pequeña porción de heces frescas </li></ul></ul><ul><ul><li>2) Examen después de aplicar un método de concentración </li></ul></ul><ul><ul><li>3) Examen de extensiones o preparaciones permanentes </li></ul></ul><ul><ul><li>Examen directo </li></ul></ul><ul><ul><li>Observación microscópica minuciosa de toda la preparación </li></ul></ul><ul><ul><ul><li>Objetivo seco débil (10 x) </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Objetivo seco fuerte (25-40 x) </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Habitualmente no se emplea obj de inmersión </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Importante: No diluir demasiado las muestras </li></ul></ul></ul>
  18. 18. TECNICAS DEL EXAMEN COPROPARASITARIO <ul><ul><li>Examen directo </li></ul></ul>Tinción Vacuolas Núcleos SF Lugol Movilidad (Trofozoítos)
  19. 19. TECNICAS DEL EXAMEN COPROPARASITARIO <ul><ul><li>2) Examen post-concentración </li></ul></ul><ul><ul><li>Reunión en un pequeño vol los elementos parasitarios </li></ul></ul><ul><ul><li>inicialmente dispersos en una gran masa de heces </li></ul></ul><ul><ul><li>Numerosos métodos </li></ul></ul><ul><ul><li>Ninguno evidencia todos los tipos de parásitos, (cada uno tiene </li></ul></ul><ul><ul><li>sus indicaciones precisas) </li></ul></ul><ul><li>Métodos físicos </li></ul><ul><ul><li>Por sedimentación </li></ul></ul><ul><ul><li>Por flotación </li></ul></ul><ul><li>Métodos difásicos </li></ul><ul><ul><li>Empleo de 2 fases no miscibles </li></ul></ul><ul><ul><li>Agua // Eter o Acetato etilo </li></ul></ul>
  20. 20. METODOS DE CONCENTRACION <ul><li>Métodos físicos </li></ul><ul><ul><li>Dilución minuciosa heces en líquido o solución de densidad: </li></ul></ul><ul><ul><ul><li>Inferior a la de los parásitos (Técnicas de sedimentación) </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Superior (Técnicas de flotación) </li></ul></ul></ul><ul><ul><li>Ventajas: </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Realización muy simple </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Precisan poco material </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Inconvenientes: </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Procesos largos </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Exigen mucha manipulación </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>No aplicables a series grandes de muestras </li></ul></ul></ul></ul><ul><li>En ciertos casos se puede acelerar x centrifugación suave </li></ul>
  21. 21. TECNICAS DE CONCENTRACION. Mét de sedimentación simple <ul><ul><li>Triturar las heces (10-20 g) en agua </li></ul></ul><ul><ul><li>de grifo </li></ul></ul><ul><ul><li>Poner la dil en una probeta de 250-500 cc </li></ul></ul><ul><ul><li>y rellenar (agua grifo) </li></ul></ul><ul><ul><li>Dejar reposar aprox 1 h </li></ul></ul><ul><ul><li>Deshechar sobrenadante </li></ul></ul><ul><ul><li>Resuspender en agua de grifo </li></ul></ul><ul><ul><li>Dejar sedimentar 45 min </li></ul></ul><ul><ul><li>Deshechar sobrenadante </li></ul></ul><ul><ul><li>Repetir esta op varias veces, hasta que </li></ul></ul><ul><ul><li>el sobrenadante quede transparente </li></ul></ul><ul><ul><li>Recoger y examinar el mat sedimentado. </li></ul></ul><ul><ul><li>Hacer tres tomas: </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Superficie </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Media altura </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Fondo </li></ul></ul></ul></ul>
  22. 22. TECNICAS DE CONCENTRACION. Mét de flotación <ul><ul><li>Características a considerar: </li></ul></ul><ul><ul><li>Densidad sol empleada > Dens parásitos </li></ul></ul><ul><ul><li> Concentración en superficie </li></ul></ul><ul><ul><li>Importante: </li></ul></ul><ul><ul><ul><li>Manipular rápidamente </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Impreg huevos operculados  Sediment </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Alteración morfol huevos (Identificación) </li></ul></ul></ul>Sedimento Sulfato de cinz Película superficial
  23. 23. METODOS DE CONCENTRACION <ul><li>Métodos físicos . Ejemplos </li></ul><ul><ul><li>Técnicas de sedimentación </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Método de sedimentación simple </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Método de Faust e Ingalls </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Sedimentación en columna alta </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Técnicas de flotación </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Método de Fulleborn </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Método de Willis (flotación en salmuera) </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Método de Faust (flotación en sulfato de zinc) </li></ul></ul></ul></ul>
  24. 24. METODOS DE CONCENTRACION <ul><li>Métodos difásicos </li></ul><ul><ul><li>Derivados todos del mét de Telemann (1.908) </li></ul></ul><ul><ul><li>Empleo de dos fases no-miscibles </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Fase acuosa (sol. formaldehido) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Fase éter o disolv de lípidos (Acetato de etilo) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Los elementos fecales y los parásitos se localizan en la fase </li></ul></ul><ul><ul><li>acuosa o en la interfase agua-éter, en función de una </li></ul></ul><ul><ul><li>característica, el balance hidrófilo-lipófilo </li></ul></ul>
  25. 25. METODOS DE CONCENTRACION <ul><li>Métodos difásicos </li></ul><ul><ul><li>Realización : </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Dilución de las heces en agua </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>(o el la fase acuosa) </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Adición y emulsión con el éter </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>( o acet de etilo) </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Centrifugación suave </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Algunos ejemplos: </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Método de Telemann </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Método de Rivas </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Método de Ritchie </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Método de Blagg, Schloegel, </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Mansoer y Khalaf </li></ul></ul></ul></ul>Eter Restos Líp disueltos Formalina Sedimento Parásitos
  26. 26. Restos fecales y grasa Acetato de etilo Formalina Sedimento (Parásitos) 12
  27. 27. Incremento de la detección de Entamoeba histolytica en relación al número de muestras fecales examinadas y a las técnicas empleadas Examen directo Examen directo y conc por flotación Número de exámenes % d etectado Examen directo, conc por flotación y tinción de hematoxilina-férrica
  28. 28. OTROS EXAMENES DIRECTOS PARA DIAGNOSTICO DE ENTEROPARASITOSIS <ul><li>Técnicas del Examen Coproparasitario. Resumen </li></ul><ul><ul><li>1.- Observación macroscópica </li></ul></ul><ul><ul><li>2.- Observación microscópica </li></ul></ul><ul><ul><ul><li>2.1.- Observación microscópica de preparaciones “en fresco” </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>(entre porta y cubre) </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Muestras de heces directamente en SF o Lugol </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Muestras de técnicas de concentración </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>2.2.- Observación microscópica de preparaciones teñidas, </li></ul></ul></ul><ul><ul><li>permanentes o no, que permiten la conservación y la </li></ul></ul><ul><ul><li>observación cuidadosa y detallada de los parásitos </li></ul></ul>
  29. 29. OTROS EXAMENES DIRECTOS PARA DIAGNOSTICO DE ENTEROPARASITOSIS <ul><li>TINCIONES ACIDO-ALCOHOL RESISTENTES </li></ul><ul><ul><li>Utilidad: Demostración de ooquistes de Cryptosporidium spp. </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Evidenciación de Cyclospora spp. </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Aplicables a frotis de heces (tb ciertos concentrados) </li></ul></ul><ul><ul><li>Técnicas: Las mas empleadas son la de KINYOUN y una </li></ul></ul><ul><ul><li>modificación de la ZIEHL-NEELSEN </li></ul></ul><ul><li>TINCION DE HEMATOXILINA-FERRICA </li></ul><ul><ul><li>Utilidad: Observación detallada de quistes, pero s/t de </li></ul></ul><ul><ul><li>trofozoítos de protozoos. </li></ul></ul><ul><ul><li>Si se realiza montaje, buena colección permanente </li></ul></ul><ul><ul><li>Exige una realización cuidadosa, </li></ul></ul>
  30. 30. <ul><li>COLORACIÓN DE KINYOUN ( Cryptosporidium // Cyclospora ) </li></ul><ul><ul><li>Fijación frotis: Metanol 30 seg </li></ul></ul><ul><ul><li>Tinción : 5 min (frio) con sol de Fuscina básica </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Fusc básica 4 g </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Fenol 8 g </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Etanol (95%) 90 ml </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>A dest 100 ml </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Lavado </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>a) Etanol 50%: 3-5 min </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>b) Agua corriente </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Decoloración: Acido sulfúrico 1%: 2 min </li></ul></ul><ul><ul><li>Contracoloración: Azul metileno Loeffler : 1-2 min </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Azul de metileno 0,3 g </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Alcohol 95% 30 ml </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>KOH 0,01% 100 ml </li></ul></ul></ul></ul>
  31. 31. ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES. <ul><li>Elementos no parasitarios de las heces </li></ul><ul><ul><ul><li>Restos alimenticios semi-digeridos </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Células epiteliales (mucosa intestinal) </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Células sanguíneas </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Leucocitos (úlceras intestinales) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Macrófagos  amebas patógenas </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Hematíes </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Bacterias </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Hongos </li></ul></ul></ul>
  32. 32. Elementos no parasitarios de las heces (2) <ul><li>RESTOS ALIMENTICIOS </li></ul><ul><ul><ul><li>Tejido conjuntivo </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Fibras musculares estríadas (carne) Att tamaño / ángulos </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Grasas neutras  Glóbulos refringentes tamaño variable </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Acidos grasos  Agujas finas </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Almidón </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Crudo: Granos en capas concéntricas </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Céls reserva amilácea (s/ procedencia) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Celulosa </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Digerible: Masas celulósicas (céls reserva) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>No digerible: Traqueídas, pelos vegetales, polen etc </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><li>CRISTALES </li></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Origen alimentario (oxalato de calcio) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Endógeno (Ox calcio, fosfato amónico-magnésico, </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Charcott-Leyden) </li></ul></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><ul><li>Medicamentos </li></ul></ul></ul></ul></ul>
  33. 33. OTROS EXAMENES DIRECTOS PARA DIAGNOSTICO DE ENTEROPARASITOSIS <ul><li>1.- Examen directo de líquido duodenal </li></ul><ul><ul><li>Se obtiene por sondaje duodenal o con càpsula entérica o test </li></ul></ul><ul><ul><li>del cordón&quot;“Enterotest” </li></ul></ul><ul><ul><li>Observación </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Fresco (directo o tras centrifugación) </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Extensiones (frotis) coloreados (tinc AAR) </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><li>Utilidad / Rendimiento </li></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Trofozoítos de Giardia lamblia </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Ooquistes de Isospora y Cryptosporidium </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Huevos de Fasciola hepatica </li></ul></ul></ul></ul><ul><ul><ul><ul><li>Larvas de Strongyliodes stercoralis </li></ul></ul></ul></ul>
  34. 34. <ul><li>2.- Técnica de Graham (Mét de la cinta adhesiva o espátula adhesiva) </li></ul><ul><ul><li>Método mas empleado para el diagnóstico de la oxiuriasis </li></ul></ul><ul><ul><li>o enterobiasis ( Enterobius vermicularis ) </li></ul></ul><ul><ul><li>Observación microscópica del material recogido de la zona </li></ul></ul><ul><ul><li>perianal, por aplicación de una sup adhesiva (celofán o similar) </li></ul></ul><ul><ul><li>La cinta se dispone sobre un soporte rígido (depresor lengua), </li></ul></ul><ul><ul><li>con la sup adhesiva hacia el exterior </li></ul></ul><ul><ul><li>Se aplica varias veces sobre la piel, en los márgenes anales </li></ul></ul><ul><ul><li>Se envia al laboratorio y se observa a microscopio (10X) </li></ul></ul><ul><li>IMPORTANTE </li></ul><ul><ul><ul><li>Realizar al menos 3-5 tomas antes de informar un resultado </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>negativo </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>Realizar la toma de muestra a 1ª hora por la mañana, antes </li></ul></ul></ul><ul><ul><ul><li>de salir de la cama </li></ul></ul></ul>

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