Evaluación ornitológica: Guía para inventariar aves en el Perú

Vice Ministerio de Desarrollo Estratégico de Recursos Naturales

Dirección General de Evaluación, Valoración y Financiamiento
del Patrimonio Natural

TALLER NACIONAL DE REVISIÓN

SECTORES – GOBIERNOS REGIONALES – SOCIEDAD CIVIL

GUÍA DE EVALUACIÓN DE LA FAUNA SILVESTRE

30 de Noviembre, 03 y 13 de Diciembre del 2010





OBJETIVO Y ALCANCES

Blgo. Abel Aucasime


RAZONES PARA PLANTEAR UNA GUÍA NACIONAL ?

Diferentes procesos y
metodologías de
evaluación para un
mismo objetivo

No se definen los RESULTADOS: NO PERMITE:
niveles de detalle de la
evaluación - Diferentes - Sistematización de
- Incomparables resultados
No se definen tipos y - Insuficientes - Base nacional de
cantidad de datos
- Imprecisos
parámetros a evaluar - Adecuada gestión de
- Poco confiables los RRNN
No se definen tamaño
y número de unidades
muestrales

MARCO LEGAL

LEY N° 28611. Ley
General del Ambiente

INVENTARIO D.S. Nº 019-2009-MINAM. Reglamento
D.S. Nº 087-2004-PCM. de la Ley Nº 27446.
Y
Reglamento de Zonificación Ley del Sistema Nacional de
Ecológica Económica EVALUACIÓN Evaluación de Impacto Ambiental
DE LA FLORA (SINEIA).

LEY N° 26821. Ley Orgánica para
el aprovechamiento sostenible
de los recursos naturales

ACTIVIDADES REALIZADAS
FLORA FAUNA
Reuniones con •Sectores

. .
Expertos •Sociedad civil

•Andino (RPNYC)
Estudios Pilotos •Selva Alta (PNYCH)

. .
de Evaluación •Marino costero (PNCA
y M-Río Tumbes)

Consultas

. .
Especializadas

. .
Talleres Mecro
Regionales •5 talleres

Consulta Pública
– Página WEb
.
•Con Sectores
•Con Gobiernos
Validación Revisión
Taller Nacional
Regionales
•Con Sociedad Civil

OBJETIVO

Establecer procedimientos nacionales estandarizados
OBJETIVO que permitan caracterizar la diversidad faunística de
GENERAL
cada lugar

Estandarizar los procesos y metodologías utilizados
en evaluaciones de la diversidad de fauna silvestre en
términos de riqueza y composición, en los grupos de
mamíferos, aves, reptiles y anfibios.
OBJETIVOS
ESPECÍFICOS Estandarizar y sistematizar la información registrada
en las evaluaciones para que sean comparables y
útiles en la gestión de los recursos naturales.

Establecer una base de datos nacional de información
sobre fauna silvestre

ALCANCES DE LA GUÍA

a) Estudios de Zonificación Ecológica y Económica (ZEE)

b) Estudios ambientales del Sistema Nacional de Evaluación de
Impacto Ambiental (SEIA).
o

c) Inventario forestal y de la flora silvestre en las Áreas Naturales
Protegidas por el Estado (ANPE)

d) Inventario a nivel nacional, regional y local.





EVALUACIÓN ORNITOLÓGICA (Aves)

THOMAS VALQUI

PROBLEMAS Y PARTICULARIDADES

• Perú país megadiverso en aves

• No hay información

PERÚ, PAÍS MEGADIVERSO EN AVES

PERÚ, PAÍS DESCONOCIDO
Perú país desconocido
1900

1850
1800
1800

1742
1750

1700 1678 1684

1650
1601
1600

1550
1970 1975 1980 1985 1990 1995 2000 2005

OBJETIVO 1

INVENTARIO

• Dónde (y cuando) hay
• Qué especies hay
• Cuántas especies hay
• Que estructura tiene la población

OBJETIVO 2

COMPARABILIDAD

• Tener medida del esfuerzo

• Poder replicar metodología en el tiempo y espacio

NIVELES DE LA EVALUACIÓN

• Nivel de reconocimiento

• Nivel semi-intensivo

• Nivel intensivo

DONDE? QUÉ ÁREA? QUÉ ESTRATOS? G
E
N
E
R
A
L

UNIDADES ESPACIALES

QUÉ DATOS TOMAMOS? EN QUÉ ÁREA CAMINAMOS?

A
V
E
S

UNIDADES MUESTRALES ORNITOLÓGICAS UNIDAD ESPACIAL DE MUESTREO

HÁBITAT

Hábitat boscos

• Bosque primario de tierra firme
• Bosque inundable (varzea)
• Bosque inundado (igapo)
• Bosque ribereño sucesión primaria Hábitat de bosque
• Bosque de galería
• Bosque de bambú (Gaddua) Hábitat arbustivos
•
•
Bosque montano siempre verde superior
Bosque montano siempre verde inferior
Campos y pastizales
• Bosque enano Humedales
• Bosque de Queñual
• Bambú Chusquea (Pacal de altura)
• Bosque secundario
• Bosque seco estacional
• Bosque sobre arena blanca
• Bosque de manglares

UNIDAD ESPACIAL DE MUESTREO UEM
(UNIDAD BÁSICA DENTRO DE UN ESTRATO)

Situación ideal – irrealista 1 Km2 5 Km de trocha, 100 m a cada lado
1 Km

200 m

1 Km

SITUACIÓN QUE SE USARÁ PROBABLEMENTE

Ca. 5 Km de trocha sumadas

100 m 100 m

UNIDADES ESPACIALES DE MUESTREO – UEM

UNIDAD MUESTRAL ORNITOLÓGICA (UMO)

• Hábitats abiertos y relativamente pequeños:
conteo total por puntos

• Hábitats abiertos y extensos: conteo total por
transectos

• Hábitats boscosos y extensos: método de
unidades de listas fijas (MULF)

METODO DE UNIDADES DE LISTAS FIJAS:

Ventajas:

• No se para de anotar especies nuevas para la
evaluación

• Se puede llevar a cabo durante horas

• Se tiene buena referencia de esfuerzo: número de
listas

EL ESFUERZO DE MUESTREO

• Cuántos estratos?
(Unidades Espaciales)

• Cuántas Unidades Espaciales
de Muestreo por estrato?

• Cúantas Unidades
Muestrales Ornitológicas?

EL ESFUERZO DE MUESTREO

• 1. Cuántas UEM se debe evaluar por estrato?
(Un coeficiente de variación máximo)

• 2. Cúanto tiempo se debe evaluar una Unidad
Muestral Ornitológica?
(Curvas de acumulación)

NIVELES DE LA EVALUACIÓN

• Nivel de reconocimiento:
Lista, hábitat.

• Nivel semi-intensivo:
Muestreo intensivo en pocos sitios. Estimación de
diversidad en área evaluada. Una UME por estrato.

• Nivel intensivo:
Muestreo intensivo con buena cobertura general.
Estimación de diversidad en área total. Varios UME por
estrato

RESULTADOS: PARÁMETROS A ESTIMAR

• Curva de acumulación (Parámetros de la ecuación:
forma y asíntota)

• Índice de frecuencia para cada especie

• IVO

CURVA DE ACUMULACIÓN

Curva original

Randomización

Ajuste de Clench

Parámetros a y b
aX
curva: Y = -------- Asíntota = a/b
1+ b X

COMO MEDIR EL ESFUERZO?
A P
c E
u N
m D
u I
l pendiente = 10% ,
E
a 227 sp (60%)
N
d T
o E
%
d
e
pendiente = 5%,
e 264 sp (76%) 30 %
s
p 20 %
e
c
10 %
i
e 5%
s

INDICE DE FRECUENCIA RELATIVA

Número de listas en que ocurre
(Indice ESPECIE A) =
Número de listas totales

IVO

(freci x valori)

Freci = índice de frecuencia de la especie i

Valori = valor dado a la especie i

CORRECCIÓN POR ÁREA

S = C*Az

• Donde:
• S : Número de especies,
• C : Constante para una comunidad específica,
• A : Área y
• z : Parámetro que es igual para comunidades
específicas en la misma bio-región.

LA COLECTA

• Da información suplementaria fundamental:

- Identificación: revisable
- Resolución taxonómica: a nivel de subespecie o
poblaciones
- Aislamiento y peculiaridad (genético), condición, etc.
• Debe ser considerado


EVALUACIÓN ORNITOLÓGICA (Aves)
THOMAS VALQUI

MUCHAS GRACIAS!!!



EVALUACIÓN MASTOZOOLOGICA (Mamíferos)

Javier Barrio


1. PLANIFICACIÓN DEL INVENTARIO

• Al menos con un mes de
anticipación:
– Reconocer adecuadamente el
área a evaluar
– Determinar accesos
– Desarrollar logística necesaria:
definir zonas a muestrear
– Apertura de transectos/trochas

ETAPA PREPARATORIA

Incluye:

•Revisar mapas temáticos que incluyan accesos y
caminos.
•Entrevistar a los pobladores locales para mejores
detalles en lo referente a accesos, y áreas de acampar.

No se debe utilizar tiempo en actividades de logística
una vez que el equipo de evaluación se encuentre en
campo.

2. PROCESO DE ELABORACIÓN
DE MAPAS TEMÁTICOS

1. Usar el mapa de vegetación
elaborado por el equipo de
flora silvestre, para aproximar
la distribución de las especies
registradas.

2. Opción: tipo de hábitat o
rango de altitud en el cual se
localiza cada registro es
considerado como la
distribución de la especie.

3. MÉTODOS DE EVALUACIÓN GENERALES: REGISTRO DE ESPECIES

• Inventario:
detectar a todas las especies posibles.

• En algunos casos:
estimaciones de frecuencias
relativas y/o densidades.
• Tres grupos de metodologías y
análisis para mamíferos:
– Para especies pequeñas terrestres y
arborícolas (no voladores)
– Para especies pequeñas voladoras,
– Para especies terrestres medianas y
grandes (> 2kg).

COLECTA

• Importante para toma de datos fisiológicos y de
morfología interna, así como por la difícil taxonomía
de roedores y murciélagos.
• Dentro de una evaluación es importante colectar
muestras representativas de la biodiversidad

• Individuos colectados son
muestras tangibles de la
especie, subespecie o
población encontrada en
la zona de evaluación

MAMÍFEROS PEQUEÑOS TERRESTRES

• Las características de pequeño
tamaño, comportamiento furtivo,
coloración apagada y patrones de
actividad generalmente nocturnos
los convierte en un grupo difícil de
ver o muestrear, en particular en el
caso de las especies más raras.
• El método principal de muestreo es
el uso de trampas.

TRAMPEO

• Captar la mayor diversidad posible
en el menor tiempo.
• Esfuerzo mínimo nocturno debe
ser de al menos 100 trampas
activadas cada noche.
• 100 trampas durante 5 noches,
indican 100 x 5 = 500 TN
• Se usan varios tipos de trampas y
de cebos
• Para inventarios, hacer trampeo
dirigido, que incluya diversas
trampas y cebos:
– Las trampas son colocadas a lo largo
de caminos y en la entrada de sus
madrigueras.

MAMÍFEROS PEQUEÑOS VOLADORES

• Por su pequeño tamaño,
comportamiento evasivo y
aéreo, y por sus hábitos
nocturnos, son muy difíciles de
observar fuera de madrigueras.

• Se les captura con redes de
niebla: se colocan en cruces
de caminos, a lo largo de
éstos, perpendicular o
transversal a cursos de agua, y
en zonas de gran actividad
cerca de árboles que están
fructificando o floreando.

REDES

• Colocar un porcentaje de
redes a la altura de las copas.

• Hora ideal: 17:30 a 23:30h.

• Esfuerzo de muestreo es
medido en redes por noche
(RN), considerando redes
estándares de 12 metros. Si
se usan redes de diferentes
tamaños el esfuerzo es
proporcional a redes de 12
metros. 15 redes de 8 metros
= 120 metros de redes (120m
RN = 10 redes-noche o 10 RN.

MAMÍFEROS GRANDES Y MEDIANOS

• Diversos métodos para evaluar
presencia y distribución de
mamíferos grandes.
• En la guía se describen las
metodologías más apropiadas,
y generales, para las
evaluaciones de mamíferos
terrestres grandes. Otras
métodos son detalladamente
explicados en los capítulos 6 y
9 de Wilson et al. (1996).

TÉCNICAS DE DETECCIÓN

• Para confirmar la presencia
de mamíferos mayores se
emplea una combinación de
técnicas que permiten reunir
evidencias para determinar
las especies existentes en el
Restos y
área:
pieles
– Vocalizaciones Observación directa

– reporte de pobladores
locales

Cámaras trampa
Rastros y signos

OBSERVACIONES

• La observación se basa principalmente
en recorridos realizados en todas las
zonas de muestreo en busca de
indicios directos (avistamientos) e
indirectos (huellas, heces, refugios,
huesos, rasguños, pelos, etc.)

• el principal método a usar es registros
a través de transectos.

TRANSECTOS

• De preferencia longitud entre 4 y 5 Km.
• Para evaluaciones de 3 a 4 semanas de duración se
recomienda abrir 10 trochas de 4-5km, en forma
paralela, cada 500m, en cada zona de muestreo, con
anticipación a la evaluación.
• Los recorridos se hacen en diferentes horarios:
– 06:00h - 10:30 h ó 5:00h - 10:00h, 14:00h - 18:00h, 18:00h -
22:00h, siempre a un paso aproximado de 1.0 - 1.5 Km/h.
• Información:
– tipo de registro (visual, huellas, etc.)
– hora de avistamiento
– tipo de hábitat del registro
– distancia del individuo a la línea del transecto.

4. DISEÑO DE MUESTREO

• Distribución proporcional en
diferentes tipos de vegetación: DISTRIBUCIÓN
P(h1) = Ah1 / AT
AT = Ah1 + Ah2 + Ah3… + Ahn
• Donde, P(h1) es la proporción del
hábitat 1 en el área a evaluar; Ah1 es
el área del hábitat 1 y AT es el área
total a ser evaluada.
– para la distribución de trampas, la
proporción de trampas dentro del
hábitat 1 debe ser proporcional al
área del hábitat 1 con respecto al
área total de evaluación

NÚMERO DE UNIDADES MUESTRALES

La cantidad de localidades dentro del área a evaluar
depende de cinco parámetros principales:
• Tiempo y recursos para la evaluación
• Área total a evaluar
• Accesibilidad
• Cantidad de tipos de vegetación
• Personal disponible
Se sugiere un mínimo de 1000 trampas-noche (TN) y
2000 metros de redes-noche (RN) por cada tipo de
vegetación a evaluar, pero esto se determina finalmente
por la curva de acumulación de especies y los recursos
disponibles para la evaluación.

5. DETERMINACIÓN DE LOS PARÁMETROS A ESTIMAR

CURVA DE ACUMULACIÓN DE ESPECIES

• Relación entre el número de especies registradas y el esfuerzo
de captura y/o observación. A mayor esfuerzo, mayor número de
especies registradas.
• El tamaño y composición de un inventario de especies varía con
el tiempo, los rangos de distribución no son estables a lo largo
del tiempo, se amplían o reducen en función de cambios en el
ambiente.
• La estimación final del número de especies depende de la
resolución temporal y espacial empleada; es fundamental que
las estimaciones de riqueza especifiquen el área y periodo
temporal de toma de muestras.
• Las curvas de acumulación permiten extrapolar el número de
especies observado en un inventario para estimar el total de
especies que estarían presentes en la zona y comparar lugares
según una medida similar de esfuerzo, sea en número de
individuos detectados o tiempo de evaluación

CURVA DE ACUMULACIÓN DE ESPECIES

26

24

22

20

18

16

14

12

10
# Géneros
8 # especies

6 Localidad

4

2

0
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15

80

70

60
Número de especies

50

40

30

20

10

0
1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 31 33 35 37 39 41 43 45 47 49
Número de días

RIQUEZA ESPECÍFICA O LISTA DE ESPECIES

• La riqueza específica (S) es la forma más sencilla y
más comparable de medir la biodiversidad, se basa
únicamente en el número de especies presentes en
un lugar o en un área determinada.

• La forma ideal de medir la riqueza específica es
contar con un inventario completo que nos permita
conocer el número total de especies (S), encontradas
en un tiempo y en espacio.

• Las curvas de acumulación de especies ayudan a
determinar el número total de especies esperadas.

ABUNDANCIAS Y FRECUENCIAS

Abundancia Absoluta
• La abundancia absoluta se refiere al total de individuos de una
especie en un área específica. El nivel de intensidad utilizado
en la abundancia absoluta requiere de mayor número y tamaño
de muestras, y solo se consigue en algunos tipos de hábitat y
grupos taxonómicos.

Abundancia Relativa
• La abundancia relativa se define como el número de individuos
de una especie con respecto al número de individuos totales en
la comunidad.

Frecuencia Relativa
• La frecuencia relativa indica el número de veces que se detecta
una especie con respecto al número total de individuos
detectados en la evaluación. Se refiere al porcentaje de
registros y/o capturas de una especie en relación al total de
registros y/o capturas realizadas en la evaluación de un
determinado lugar.

ÍNDICES DE DIVERSIDAD

• No son útiles, es un número sin significado práctico.
• Más útil es mencionar el total de especies
encontradas, o las frecuencias relativas de cada
especie.
• Adicionalmente, se pueden crear índices a partir de
la presencia, o de la abundancia, de especies
indicadoras de buen estado del hábitat.

ÍNDICES DE DIVERSIDAD: SIMPSON

80 A
B
60
C
40
D
20 E
0 F
Año 1 Año 2 G

• En el año 1, S = 0.28 ó 1/S = 3.5
• En el año 2, S = 0.42 ó 1/S = 2.4
• Estructuras poblacionales parecidas dan diferentes índices
de Simpson solo por fluctuaciones en la especie más
común. Es un índice de concentración.

ÍNDICE DE SIMPSON

40 A
B
30
C
20
D
10 E
0 F
Año 1 Año 2 G

• Dos estructuras poblacionales muy diferentes (7sp y
90indiv. vs. 4sp y 65indiv.)

• En el año 1, S = 0.28 ó 1/S = 3.5
• En el año 2, S = 0.28 ó 1/S = 3.6

ÍNDICE DE SHANNON

60 A
B
40 C
D
20
E
0 F
Zona 1 Zona 2 G

• En la Zona 1, 7 especies y 77 individuos
• En la Zona 2, 4 especies y 240 individuos

• En la Zona 1: H’ = 1.3863
• En la Zona 2: H’ = 1.3893

ÍNDICES DE SIMILITUD

• Los índices de similitud son herramientas analíticas
en análisis de comparación de ecología de
comunidades. Hay una gran cantidad de índices
pero ninguno es específicamente preferido.
• En la guía se incluyen los índices de similitud más
usados, fiables y prácticos, dos cualitativos basados
en presencia-ausencia, y dos cuantitativos basados
en frecuencias, abundancias, o número de
individuos.
• Considerando que son fórmulas matemáticas que
están en programas estadísticos, o que son fáciles
de crear, en cualquier evaluación pueden incluirse
varios de estos índices.

ÍNDICE DE VALOR MASTOZOOLÓGICO (IVM)

• Para determinar el valor de una localidad o zona, las especies
reciben un puntaje según su distribución más restringida, mayor
especialización y grado de amenaza.
• Este puntaje es sumado, y el total es el Índice de Valor
Mastozoológico. Esta metodología determina un índice para un
lugar basándose en los valores de la agregación de especies
que son globalmente raras.
• ¿Por qué?
– Las especies comunes y generalistas por definición se adaptan bien a
los cambios ambientales.
– Las especies raras y especialistas explotan recursos limitados y tienen
adaptaciones que hace superiores, en ese recurso, a sus competidoras
comunes.
• Estas especies son más convenientes como indicadores por su
mayor sensibilidad a los cambios de su hábitat.

ÍNDICE DE VALOR MASTOZOOLÓGICO (IVM)
• Endemismo
– Endémico a ecorregión y al Perú 4 puntos
– Endémico del Perú 3 puntos
– Endémico a ecorregión 2 puntos
– Restringido a América del Sur 1 punto
– Cosmopolitas 0 puntos

• Especialización
– Especializado en una formación vegetal 4 puntos
– Especializado en uno o dos tipos de hábitat 2 punto
– No está particularmente especializado 0 puntos

• Grado de amenaza según Lista Roja de la UICN o del Perú (si
difieren, la que otorgue la categoría mayor):
– Peligro Crítico (CR) 4 puntos
– En peligro (EN) 3 puntos
– Vulnerable (VU) 2 puntos
– Casi Amenazado (NT) 1 punto
– Ninguno 0 puntos

PRESENCIA DE ESPECIES “VALIOSAS”

• El uso del IVM como
indicador permite
detectar cambios de
estructura en la
comunidad de mamíferos
de un lugar.
• La presencia de
solamente especies
comunes indica un
hábitat modificado o muy
influenciado por la gente.

6. DETERMINACIÓN DE LOS MAMÍFEROS DE IMPORTANCIA
PARA LA REGIÓN

• Una forma de determinar qué grupos o especies de
mamíferos son importantes para la región, es considerar
los que obtengan mayor puntaje individual en el IVM.

• Adicionalmente se debe tomar en cuenta a las especies
que son claves para el mantenimiento de los procesos
naturales del bosque.

• Un buen indicador del estado del bosque es la presencia y
abundancia de las especies más susceptibles a las
perturbaciones, por lo que esas también deben
considerarse como de importancia.

7. PROCESAMIENTO DE DATOS

• Los datos de registro deben ser ubicados en tablas para
un fácil procesamiento. La información básica para la hoja
de datos principal debe incluir los siguientes campos para
cada registro de especie:
– Número de registro
– Localidad de registro
– Coordenadas
– Altitud
– Fecha
– Orden
– Familia
– Genero
– Especie
– Medidas (mm)
– Peso (gr)
– Sexo, estado reproductivo
– Tipo de registro (observación, colecta, rastros, entrevista, etc.)
– Tejido (si se colectó tejido de la especie y procedencia del mismo:
músculo, pelo, etc.)
– Fotos (números de las fotos)
– Notas (datos adicionales)

EVALUACIONES ESPECÍFICAS POSTERIORES

• Lo primero es identificar
que es lo que buscamos
obtener, es decir cuales
son nuestros objetivos.
• Según eso se establece
qué datos necesitamos.
• Con los datos que
necesitamos se definen
las metodologías a
emplear para los
objetivos planteados.

DENSIDADES: CONTEO EN TRANSECTO LINEAL

• No se conoce el área de muestreo exactamente.
• Muchos de los objetos pueden no ser detectados
por diferentes razones.
• Se miden las distancias del transecto al animal.
• Cumpliendo las premisas se obtiene un buen
estimado de la densidad: D = n/2L*

L

 = ancho efectivo de detección

PREMISAS

1. g (0) = 1, La función de detección sobre la línea del transecto, o
probabilidad de detección sobre la misma, es igual a 1 (100%).
Es importante para el cálculo que se detecten todos los animales
a cero metros (sobre la línea) o dentro del primer intervalo de
distancias (e.g. en los primeros 5 metros)
2. No hay movimiento evasivo del animal sin detectar. La ubicación
exacta del animal es necesaria. Es la premisa más difícil de
cumplir ya que implica que en la mayoría de las veces el
observador detecte al animal antes que éste detecte al
observador.
3. Las distancias son medidas exactamente, o son asignadas al
intervalo de distancias respectivo. Evitar a toda costa “saltar” de
una medida “redondeada” (5, 10, 15) a otra. Lo mismo para los
ángulos cuando éstos son tomados.

RECOMENDACIONES BÁSICAS

• Entrenamiento previo con • Medir las distancias, no
las especies y su biología, calcularlas al ojo!
y con el área a evaluar. • Detectar al animal u
• Realizar un estudio piloto objeto antes que éste
para determinar se mueva.
intensidad de muestreo y • Contar el tamaño del
entrenar la vista. grupo en forma precisa.


NO

• No muestrear a lo
largo de un curso de
agua porque aumenta
la densidad para un
área determinada.
• Los gradientes de
densidad deben
cruzarse, muestreo en
forma paralela a la
dirección de éste.


• Selección de horario adecuado.
• Selección de tamaño de muestra adecuada
• Selección adecuada de longitud de transectos
• Cubrir todos los tipos de hábitat en proporción similar
a la encontrada en el área.

FACTORES QUE AFECTAN LA DETECCIÓN

• Pistas obvias.- cantos, gruñidos, colores brillantes,
etc., ayudan a la detección del animal evaluado.
• Efectividad del observador.- el que tenga más
experiencia con el animal generalmente lo
encontrará más frecuentemente.
• Medio ambiente y clima.- selvas tupidas obstruyen
la detección en comparación con un bosque seco
abierto. Un día de lluvia torrencial impedirá una
adecuada visibilidad.

AVISTAMIENTO EN EL TRANSECTO LINEAL

Objeto

X
Y


Observador X sen  = Y

EJEMPLO DE BUENA DISTRIBUCIÓN DE AVISTAMIENTOS

100%

90%

80%

70%

60%

50%

40%

30%

20%

10%

0%
10m 20m 30m 40m 50m 60m 70m 80m 90m

TAMAÑO DE MUESTRA

• Por regla general, el tamaño de muestra depende de
la forma de la función de detección y del coeficiente
de variabilidad (CV) máximo esperado, y se puede
estimar como: b/ (CV)2
• b es un valor subjetivo, usualmente entre 2 y 3.
Ejemplo con un término estricto de estimación y un
CV de 15% : 3/(0.15)2 = 133.3
• Se deben registrar alrededor de 133 individuos para
obtener un CV de 15%. El programa recomienda 40-
60 observaciones, pero un buen cuadro de
distribución de datos permite hacer el análisis incluso
con 20-25 observaciones.




Javier Barrio

GRACIAS!!!




EVALUACIÓN HERPETOLÓGICA (Anfibios y Reptiles)

Pablo Venegas


QUE BUSCAMOS CON UN INVENTARIO?

• Una evaluación línea • Existen diversas técnicas
base o inventario es el para medir la diversidad
estudio de un área, lugar de la herpetofauna, las
o hábitat para determinar cuales dependen para su
el número de especies aplicación de los
(riqueza), por lo que el objetivos de los estudios,
resultado final es una los recursos económicos
lista de especies; en y del personal que se
tanto que el monitoreo tenga para su
consiste en el estudio de implementación, y el nivel
la abundancia de de precisión que se
individuos, en una o más desee lograr en estos
poblaciones de una estudios.
especie, a lo largo del
tiempo.

CUAL ES EL APORTE DE LOS INVENTARIOS?

PLANIFICACIÓN DEL INVENTARIO

Al menos debe tener un mes
de anticipación para
permitir el reconocimiento
del área a evaluar.
Ejem:
• Determinar accesos
• Conseguir guías y acémilas
• Abrir trochas y hacer los
transectos
• Definir que zona se va a
muestrear
• Avisar a la población local
de la llegada del equipo
evaluador

PARA NO utilizar el tiempo en
actividades de logística una
vez que el equipo de
evaluación se encuentra en el
campo!!!

ELABORACIÓN DE MAPAS TEMÁTICOS

MÉTODOS DE EVALUACIÓN: REGISTRO DE ESPECIES

• En un inventario lo mas
importante es registrar
todas las especies
posibles que habiten en
el área de estudio.
• También se tratara de
registrar la “abundancia
relativa” de las especies
en las zonas evaluadas.

COLECTAR ES IMPORTANTE?

• La colecta es importante por la difícil
taxonomía de muchos grupos de
anfibios y reptiles.
• Al evaluar un lugar es importante
tener muestras representativas de la
biodiversidad
• Los individuos colectados pueden
ser estudiados posteriormente a la
evaluación por otros investigadores
• LOS INDIVIDUOS COLECTADOS
SON MUESTRAS TANGIBLES DE
LA ESPECIE, SUBESPECIE,
VARIACIÓN O POBLACIÓN
ENCONTRADA EN LA ZONA DE
EVALUACIÓN

PROTOCOLO DE COLECTA

• Al capturar vivo un
espécimen: medir
dimensiones
estandarizadas
• Tomar fotografías del
espécimen capturado
• Tomar muestras de tejido

METODOLOGÍAS DE MUESTREO

Se deben usar metodologías Por observación:
estandarizadas Heyer et al. • Parcelas o cuadrantes para
(1994) y también se pueden el muestreo de anfibios y
utilizar la versión de estas reptiles de hojarasca
dada por Rueda et al. (2006).
• Transectos de banda
estrecha

• Relevamiento por
encuentros visuales (REV)

Mediante trampas:
• Trampas pitfall

DISEÑO DE MUESTREO

La cantidad de localidades dentro del área a evaluar
depende de cinco parámetros principales:
• Logística: tiempo y recursos para la evaluación
• Área total a evaluar
• Accesibilidad
• Cantidad de tipos de vegetación
• Personal disponible
El esfuerzo de muestreo varia según que tan diverso se
sabe que es el hábitat a evaluar (pajonal, bosque de
neblina, matorral desértico, bosque seco, bosque
inundable), sin embargo, la única forma de determinar
esto es con la curva de acumulación de especies y
recursos disponibles $.

DISTRIBUCIÓN DE LOS TRANSECTOS, REV Y PARCELAS

• Se deben hacer a lo largo de
diferentes tipos de
vegetación.
• Aunque se usen varios
métodos para registrar
diferentes grupos de
especies los análisis en
conjunto no van más allá de
la CASP.
• La distribución de los
transectos o parcelas debe
de ser de forma dirigida

DETERMINACIÓN DE UNIDADES ESPACIALES

Por hábitat:
• Bosque montano
• Bosque de neblina
• Pajonal o puna
Por microhábitats:
• Quebradas
• Hojarasca
• Vegetación epifita

UNIDAD ESPACIAL DE MUESTREO UEM

• Situación ideal-irrealista
• Situación real

DETERMINACIÓN DE LOS PARÁMETROS A ESTIMAR

Las curvas de acumulación de
especies nos permiten:
• Dar fiabilidad a los inventarios 60

biológicos y facilitar su
comparación. 50

• Una mejor fiabilidad del trabajo 40
Acumulado de Spp. Clench Asíntota
de muestreo, tras estimar el

Nº de especies
esfuerzo requerido para 30

conseguir inventarios fiables. 20

• Extrapolar el numero de
especies observado en un 10

inventario para estimar el total 0
de especies que estaría
1
5
9
13
17
21
25
29
33
37
41
45
49
53
57
61
65
69
73
77
81
85
89
93
97
Esfuerzos de muestreo (Nº días)
presentes en la zona
• Comparar lugares según una
medida similar de esfuerzo.

RIQUEZA ESPECÍFICA O LISTA DE ESPECIES

• La riqueza de especifica se expresa a través de listas de especies
registradas en los diferentes hábitats de un determinado lugar.

• La riqueza específica es la forma mas sencilla y mejor comparable
de medir la biodiversidad, basándose únicamente en el numero de
especies presentes en un lugar o en un área determinada.

• Para determinar la presencia de la mayor cantidad de especies
posibles, es necesario un gran esfuerzo de evaluación, al contrario
de lo que usualmente se cree.

• Además del esfuerzo de evaluación influyen sobre la eficiencia del
muestreo presencia-ausencia otros factores como: rareza del
animal, la experiencia del evaluador, el clima, y el comportamiento
estacional de la especie.

FRECUENCIA RELATIVA

• Abundancia absoluta.- usada para 50
registrar el total de individuos de una
especie en un área especifica. Lo cual 45
necesitas de un esfuerzo mayor 40
($$$)=imposible de estimar durante un

% de individuos observados
inventario. 35

30
• Abundancia relativa.- es el numero de
individuos de una especie con respecto 25
al numero de individuos totales en un
comunidad. Podremos hallar esto 20
durante un inventario?
15

• Frecuencia relativa.- el numero de veces 10
que fulano o mengano detecta una
especie con respecto al numero total de 5
individuos que logro detectar en la
0
evaluación.

TASAS DE ENCUENTROS

• Si se asume que una
especie es tan fácil de
localizar en un sitio como
en otro, entonces la tasa
de encuentros por • # de individuos/# de
especie puede ser horas de muestreo
empleada como un
indicador de la frecuencia
relativa.

ÍNDICES DE SIMILITUD

• Los índices de similitud • Coeficiente de Similitud de
basados en técnicas Jaccard
multivariadas son
herramientas analíticas • Coeficiente de Similitud de
comunes en los análisis de Sørensen
comparación de ecología
de comunidades.
• Algunos pueden ser • Índice de Morisita – Horn
cualitativos basados en
presencia-ausencia y otros • Índice Cuantitativo de
cuantitativos basados en Czekanowski (Sørensen)
frecuencias, abundancias, o
# de individuos.

ÍNDICES DE DIVERSIDAD

• No son útiles y no poseen un significado practico

• Mas útil resulta mencionar las especies encontradas y
una selección de objetos de conservación

• Es hora de usar un índice que le de valor a un área en
base a la rareza de la especie, especialización, estatus
de conservación.

ÍNDICE DE VALOR HERPETOLÓGICO

 Endemismo
 Endémico a ecorregión y al Perú=4
 Endémico del Peru=3
 Endémico a ecorregión=2
 Restringido América del sur=1
 Ampliamente distribuido en América=0

 Especialización
 Especializado a una formación vegetal=4
 Especializado a uno o dos tipos de
hábitats=2
 No especializado=0

 Grado de amenaza según IUCN o DS
 CR=4
 EN=3
 VU=2
 NT=1
 LC=0

EVALUACIONES ESPECÍFICAS POSTERIORES

• Una vez terminada una línea base o inventario de la
fauna presente en una determinada área se procede a
definir objetivos secundarios con respecto a lo
encontrado. Esta segunda parte incluye evaluaciones
específicas para algunas especies o para analizar
determinados valores o indicadores encontrados. Las
metodologías para evaluaciones específicas y los
monitoreos que deben hacerse para analizar los
cambios en el tiempo, son diversas y responden a los
fines y objetivos que sean planteados en cada caso.



Pablo Venegas

GRACIAS!!!

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