BREVE DESCRIPCION DE LOS MECANISMOS DE ANALISIS DE MUESTRAS BIOLOGICAS

1. “TOMAS DE
MUESTRA”

2. “ORINA”
 Definición: Líquido acuoso transparente y amarillento,
de olor característico que contiene agua y productos de
desecho. Los riñones producen la orina, que se acumula
en la vejiga y deja el cuerpo a través de la uretra.
PATOLOGÍAS RELACIONADAS:
 Proteinuria, Presencia de cilindros, Hematuria y
hemoglobinuria, Trastorno renal: diuresis, isostenuria,
glomerulonefritis, polionefritis crónica, nefrosis,
enfermedad poliquística, nefrosis de neurona distal,
hipercalcemia, hiperparatiroidismo, sarcoidosis,
metástasis óseas difusas con desmineralización,
diabetes insípida (neurogénica, orgánica y por ingestión
compulsiva de agua) síndrome de Falconi, hiperucemia
(gota),etc.

3. COMPOSICIÓN
SUSTANCIA O PRUEBA VALORES MUESTRA
Recuento de Addis Cilindros (hialinos): 0-4 300 12hrs.
Leucocitos: hasta
2.25millones
Glóbulos rojos: hasta
425000
Albúmina 10-100mg 24hrs
Ácidos aminados (como Libres: 50-200mg 24hrs
N) Totales: 150 – 500mg
Amonio 10 – 105meq 24hrs
Bicarbonato Cero 24hrs
Calcio 50-400mg 24hrs
2.5.20meq
Cloruro (como NaCl) 5-20g (85-340meq) 24hrs
Promedio: 10g (170meq)

4. Creatina  Hombre: 0-50mg 24hrs
 Mujer: 0-150mg
 Niños:
∗ Prematuros: 0.3-4.3mg
∗ A término: 6.2 – 15.7mg
∗ De 2-3 años: 8mg
∗ De 6-11 años: 2.2 – 7.4mg
∗ Adolescentes (niñas): 1.3 – 19.8mg
∗ Adolescentes (niños): 0.2 – 4.5mg
Creatinina  Hombre: 20-28mg (promedio 24) 24hrs
 Mujer: 15-21mg (promedio 18)
 Niños:
∗ Prematuros: 8.3 – 19.9mg
∗ A término: 10- 15.5mg
∗ De 2-3 años: 12mg
∗ De 6-11 años: 6.4 – 21.9mg
∗ Adolescentes (niñas): 12.2 – 29.4mg
∗ Adolescentes (niños): 20.7 – 28.2mg
Nitrógeno  Total: 7-20g (promedio:10) 24hrs
 De Urea: 5-15g (promedio 7.5)

5. pH 4.7 – 7.7 (promedio 6) Fresca al
azar
Fosfatos 0.5 – 2.2g (promedio 1) 24hrs
Potasio 25 - 100meq 24hrs
Proteínas 10 – 100mg 24hrs
Sodio 80 – 290meq 24hrs
Sólidos 50 – 75g 24hrs
totales
Densidad  1.008 – 1.030 (promedio Al azar
1.018) 24hrs
 1.012 – 1.025 24hrs
 500 – 800 mOsm por Kg.

6. Acidez 150- 400ml de ácido 0.1N (promedio 24hrs
Titulable 300mL)
Sulfatos Inorgánicos: 0.25 – 1.25g 24hrs
Totales: 0.36 – 1.44g
Urea 10 -34g (promedio 15g) 24hrs
Ácido úrico 0.3 – 0.7g 24hrs
Urobilinógeno 0.2 – 4.0mg (promedio 1mg) 24hrs
Volumen Límites normales: 1200 – 2000ml 24hrs
Límites extremos: 600 – 3600ml
Promedio: 1400ml

7. TOMA DE MUESTRA:
 La orina debe recibirse en recipientes limpios, secos y de ser
posible estériles.
 En el hombre, se limpia el glande y el meato urinario con
algodón humedecido en agua tibia. El paciente recibe 2 frascos
para orina, marcados 1 y 2; en el primer frasco, recoge un
pequeño volumen de orina, en el cual se encontraran las
secreciones y restos de uretra y próstata; podrá desecharse,
salvo si se sospecha enfermedad en estas regiones. Luego, el
resto de la orina ósea la mayor parte, se recoge en el segundo
frasco.
 La mujer debe separar los labios con los dedos de una mano, y
limpiar de adelante hacia atrás el orificio uretral con algodón
húmedo. Recoge luego una pequeña cantidad de orina en el
primer recipiente, y el resto en el segundo.

8.  Para el análisis habitual, se prefieren las primeras
muestras de la mañana, que suelen ser las más
concentradas. En la orina diluida, los cilindros tienden
a disolverse y generalmente son menos numerosos.
Si no se puede examinar la muestra de inmediato, se
pondrá al refrigerador entre 0 y 4°C. En caso de
transcurrir mucho tiempo antes del examen, puede
evitarse la pérdida de cilindros acidificando la orina
con algunas gotas de HCl diluido.
Método:
1.- Se numeran en forma correspondiente las muestras
de orina y las solicitudes correspondientes.
2.- Se numeran en la misma forma una serie de tubos
de centrífuga cónica de 15mL
3.- Se mezcla cuidadosamente cada muestra, y se
ponen unos 12mL de orina en el tubo de centrífuga
correspondiente. Se anota el color y la turbidez.

9. ANÁLISIS QUE SE PRACTICAN:
COLOR POSIBLE CAUSA
Amarillo paja a Normal (urocromo)
ámbar
Anaranjado Orina concentrada
Amarillo oscuro Riboflavina
Anaranjado brillante “piridio” y en general medicamentos
a base de aminopirina
Anaranjado pardo Urobilina
Anaranjado Bilirrubina
verduzco
Nebuloso Glóbulos rojos

10. Rojo vinoso o pardo Pigmentos de hemoglobina o
rojizo uroporfirina
De pardo a negro Melanina y ácido hormogestísico
con el reposo
Casi incoloro Orina diluida
Anaranjado rojizo Ruibarbo o sen
en sln. Alcalina
Verde sucio por el Exceso de indican
reposo
Rojo en sln. Alcalina Fenolftaleína
Verde o azul Azul de metileno
Fluorescencia Flavonas en algunos preparados
amarillo verdosa vitamínicos

11. Pruebas que se realizan:
 pH
 Densidad
 Proteínas: Prueba del calor y ácido acético yPrueba del
ácido sulfosalicílico
 Pruebas para sustancias reductoras en la orina (Ej.
Cualitativa de Benedict)
 Acetona y cuerpos cetónicos: Prueba de Rothera para
acetona y ácido acetoacético (diacético) y Prueba de
Gerhard para el ácido acetoacético (diacético)
 Urobilina y urobilinógeno: Prueba de Schelesinger para el
urobilinógeno y la Urobilina totales
 Bilirrubina (Prueba de Fouchet)
 Examen microscópico del sedimento urinario

12.  Células: Epiteliales (escamosas y poliédricas),
Glóbulos rojos, Leucocitos, Ritulantes, Recuento
de Addis
 Cilindros (precipitados de proteínas en el túbulo
contorneado distal y túbulo colector): Hilianos,
granulosos finos, granulosos gruesos,
leucocitarios, hemáticos, grasosos, céreos y de
insuficiencia renal, Cilindroides, Filamentos
mucosos
 Diagnóstico de infecciones urinarias: Pruebas
desencadenantes, Brumfitt y Percival, Papilis
necrótica, Espermatozoides, Bacterias
 Huevecillos parásitos en la orina

13.  Cristales
 Orinas ácidas: Oxalato de calcio, ácido úrico, Uratos,
cistina, tirosina, leucina.
 Orinas alcalinas: Fosfatos, fosfatos triples, carbonato de
calcio, urato de amonio.
 Otros: Sulfonamidas
 Glucosa: Análisis enzimático, Prueba de la osazona, Prueba de
fermentación, Identificación de pentosas (Prueba para la
pentosuria esencial), Prueba del ácido múcico para galactosa y
lactosa
 Excreción de colorantes (índigo carmín y fenolsulfonftaleína)
 Barbitúricos (Proteína de Bence Jones)
 Bromuros
 Ácido Homogentisico
 Ácido 5-hidroxiindolacetico
 Melanina (Prueba de Blackberg y Wanger y de Thormahlen)
 Mioglobina (Precipitación por sales y electroforesis)
 Ácido fenilpirúvico
 Calcio: Prueba de Sulkowitch

14. HECES
 Definición: Material de desecho que descargan
los intestinos, están compuestas de alimentos
que no se digirieron, bacterias, moco y células de
los intestinos. También se llama materia fecal.
COMPOSICIÓN:
 Se excretan por día unos 100g de materia fecal;
pero puede variar según la ingestión de celulosa
indigerible. Como el 60-80% del volumen de las
materias fecales son agua; los componentes
sólidos de dividen como sigue: bacterias 30%,
restos de secreciones intestinales y alimentos de
50-60%; sustancias solubles en éter de 10-20%.

15. TOMA DE MUESTRA
(Examen coprológico):
 La muestra se deberá obtener sin el empleo de aceite o
enemas y deberá estar libre de Bario. El examen se hará
tan pronto como sea posible, de preferencia mientras no se
haya enfriado; a veces está indicada la prescripción de
catárticos salinos, cuando se sospecha que el portador es
sospechoso de gérmenes de tifoidea y en la amibiasis.
 Marcado de las heces para la recolección cronometrada:
Se da una cápsula de 0.2g de carbón pulverizada para
marcar el comienzo de la recolección, seguida por otra
cápsula a un intervalo definido de tiempo para marcar el fin
de la recolección. También se pueden emplear cápsulas de
0.3g de carmín. El tiempo total de del paso gastrointestinal
normalmente es de 1 a 3 días (pueden ser 4).

16. ANÁLISIS QUE SE PRACTICAN Y
PATOLOGÍAS RELACIONADAS
PRUEBA TIPO VALOR
Cantidad  Excreción media 80-170g (promedio 100g)
diaria Adultos Hasta 350g (75g de sólidos)
 Dieta alta en 7-8g (verde negruzco y espeso; sólidos
verduras 25%)
 Inanición
Color  Pardo Dieta promedio bien balanceada
 Pardo claro Dieta láctea
 Pardo negruzco Dieta elevada en carne
 Amarillo Ruibarbo, grasas
 Verde Espinacas, biliverdina no transformada
 Negro Bismuto o sales de hierro o sangre
 Blanco grisáceo Obstrucción biliar
(arcilla) Hemorragia a nivel del colón o recto;
 Rojo remolacha o tomates no digeridos.

17. Olor  Normal No muy desagradable y se debe al Indol y
escatol
 Desagradable Por metano, HS y metilmercaptano
 Olor notable Por Dietas a base de carne
 Casi nulo Por leche y dietas vegetarianas
 Muy Reacción alcalina
desagradable
 Acre o rancio Heces muy ácidas
pH  Normal 7.0 – 7.5
 Ingestión
abundante en ácido
lactosa
Consisten  Normal Blandas y formadas
cia  Niños Más blandas
Efectos  Vía bucal Alteraciones como aumento de volumen,
de los mayor cantidad de material no digerido y
antibió frecuentemente coloración gris verdosa y
ticos ausencia de olor.
Puede presentarse diarrea con heces
mucosas y aumento notable de moco

18. Análisis Químico: Se obtiene una emulsión fecal satisfactoria poniendo en
contacto un aplicador de madera con varias porciones de la muestra de materias
fecales y mezclando el material adherente con 2-5ml de agua en un tubo de
ensayo.
PRUEBA: MuestraSangre PATOLOGÍAS O REACCIONES
Determinación en heces Padecimientos ulcerativos, neoplásticos o
inflamatorios del aparato digestivo
100ml de sangre del aparato digestivo; la
demostración química de cantidades
menores depende de la reacción de
pigmentos hemáticos con bencidina,
guacayo u ortotolidina
Reacciones coloridas con Fe inorgánico,
Producción Melena bismuto y enzimas leucocitarias o
alimentos no digeridos
Pruebas de bencidina o La hemoglobina reacciona con el
guacayo peróxido-ortotolidina dando coloración
azul
Hematest Azul: positiva
Goma de guacayo Verde: negativa

19. Examen microscópico
 Células (gran aumento): Se coloca una
suspensión de materiales fecales sobre una
laminilla bajo cubreobjetos mientras este
húmeda. Presencias:
 Células epiteliales: Irritación gastrointestinal
 En condiciones normales no se observan eritrocitos
 Leucocitos:
 Pocos: normal
 Elevado: Inflamaciones gastrointestinales
 Macrófagos y leucocitos: Disentería amibiana
crónica con invasión bacteriana secundaria.
 Eosinófilos: Amibiasis (fase aguda) y en “alergia
intestinal)

20.  Tinción para exudados de procesos
inflamatorios: Para cuenta de leucocitos
mononucleares y Especialmente neutrófilos
polimorfonucleares (objetivo de mayor
aumento)
 Pus: Disentería microbiana, absceso en
conducto de colón distal o colitis ulcerativa
 Cristales (aumento débil)
 Oxalato de calcio, ácidos grasos y fosfato
tripole (fosfato de Amonio y Mg)
 Hematoidina: agujas amarillas por
hemorragia intestinal
 Agujas de Charcot-Leyden_ Infecciones
parasitarias (especialmente amibiasis)

21.  Alimentos no digeridos (poco aumento)
o Sustancias vegetales
o Sustancias animales
o Almidón
o Grasa
 Tinción de Gram. del frotis delgado de excremento:
Puede revelar predominio de estafilococos
 Agentes patógenos:
 Examen del frotis anal (mediante cinta de celulosa o
hisopo parafinado): Enterobius
 Cultivo.
 Aislamiento de virus en cultivos de tejidos por técnicas
especiales

22. PELO
 Definición: Fibra o filamento delgado, en forma
de hilo de naturaleza córnea, que nace y crece
entre los poros de la piel de todos los mamíferos
y de otros animales
 COMPOSICIÓN: 28% de proteínas, 2% de
lípidos y 70% de agua; la proteína más
abundante es la queratina, una proteína
compuesta por cadenas polipeptídicas muy
ricas en cisteína; los principales elementos son:
carbono, hidrógeno, oxígeno, nitrógeno y azufre,
en menor cantidad pueden encontrarse: calcio,
cobre, cadmio, mercurio, zinc, plomo, hierro,
arsénico, silicio, magnesio, uranio, vanadio,
sodio y potasio.

23. TOMA DE MUESTRA:
 La región más recomendada del cuero cabelludo es la occipital,
y dentro de ella, la vértex posterior como se muestra en la
figura.
 El peso de muestra requerido para la determinación de metales
oscila entre 0,5 y 1,0 g en función del elemento que se va a
determinar y del procedimiento analítico que será utilizado.
Usualmente es suficiente 0,5 g de muestra. Antes de proceder
a la toma de la muestra, es necesario limpiar la tijera con
acetona para eliminar todo vestigio de grasa y polvo que
pudiera quedar en sus superficies de corte. De igual forma, el
personal que tomará la muestra debe lavarse las manos antes
de proceder a la colección o usar guantes adecuados. Evite la
utilización de talco en la preservación de éstos.
 Repartida uniformemente toda la región occipital, tome
muestras de pelo en 20 ó 10 lugares diferentes; se debe
recoger en cada sitio de 5 a 10 hebras de pelo,
respectivamente. De esta forma, al final del muestreo se
contará con no menos de 100 hebras de pelo.

24.  El corte se realizará lo más cerca posible del cuero cabelludo.
Cada grupo de hebras de pelo tomadas en los diferentes sitios
se colocará sobre una hoja de papel blanco, la cual estará
señalizada indicando la parte de la muestra más cercana al
cuero cabelludo. Agrupe la muestra y sobre una lámina de
vidrio realice un corte a los 5 cm con un bisturí (contados a
partir de la señalización).
 Toda la masa de muestra cortada a los 5 cm, fragméntela en
pequeñas fracciones de 1-3 mm o menos y transfiérala al tubo
de vidrio para su posterior lavado, o al contenedor plástico para
su almacenamiento. El resto de la muestra que sobre después
de realizar el corte a los 5 cm debe guardarse para exámenes
posteriores si fuera necesario.
 Las muestras se almacenan en sobres o viales plásticos de
cierre hermético lavados previamente con solución de H2NO3
3,2 mol/L durante 48 horas como mínimo. Una vez codificados,
guarde los viales o sobres con las muestras en una
desecadora u otro recipiente de cierre hermético hasta la
realización del procedimiento analítico

25. Patologías relacionadas y análisis
que se practican:
 Alopecia
 Hirsutismo (vello excesivo)
 Metales pesados
 Drogas en pelo
 Elementos minerales
 Estudio forense
 Determinación de alcohol
 Determinación del sexo
 Hiperandrogenismo

26.  El análisis del pelo provee una valoración precisa de la
concentración de minerales en el cuerpo aquellos que son
tóxicos, esenciales, y los que se necesitan en muy pequeñas
cantidades pero en exceso son tóxicos para el organismo. Esta
técnica no invasiva determina la exposición a sustancias
tóxicas como Al, Arsénico, Be, Cd, Ca, Cr, Co, Cu, F, I, Fe, Pb,
Li, Mg, Mn, Hg, Mo, Ní, N, P, K, Selenio, Plata, Na, S y Zn.
 La correlación entre concentraciones de minerales en órganos
internos del cuerpo y los encontrados en el pelo son más
confiables que aquellos en el suero y pruebas de orina.
 El rastreo normal de minerales detectados por suero y orina,
puede variar un poco, sin embargo, el análisis de pelo es
mucho más exacto. Para el análisis se remueve un mechón
de pelo de la parte del cuello.
 Si el pelo tiene algún tratamiento como decoloración, tinte, etc.
el vello púbico puede ser utilizado.; El análisis de pelo permite
una detección temprana de enfermedades antes de
manifestarse

27. UÑAS
 Definición: Placa dura y delgada compuesta de queratina que
cubre la parte superior de la punta de los dedos del ser
humano y de otros animales vertebrados y sirve como
protección
ORIGEN Y COMPOSICIÓN
 La uña, es una lámina plana y convexa que recubre y da
protección a la pulpa de los dedos. Esta lámina formada por
varias capas de queratina, reposa sobre el lecho epidérmico y
tiene 4 bordes. El repliegue cutáneo denominado ungueal
posee dos caras: una dorsal y otra ventral. Las capas corneas
de ambas caras forman una expansión llamada cutícula y tiene
como función proteger la uña. Las uñas son una
subespecialización de la piel, en concreto de la epidermis, de
hecho comparte con ella su principal componente: la queratina,
la principal diferencia entre la epidermis y la uña es el
porcentaje de agua, la primera contiene un 85% y la uña tan
solo un 12%

28. TOMA DE MUESTRA:
 Lavado previo de manos o pies seguido de un
secado completo
 Recorte del borde extremo de la uña, si es
posible descartar la parte más distal del material
 Desinfección con alcohol 70º de la lámina
externa, borde y pliegues de la uña
 Raspado con cucharilla o con bisturí evitando
efectuar cortes o erosiones
 Recoger suficiente material en recipiente (placa
Petri vacía, dos portaobjetos de vidrio limpios,
un contenedor de orina, sobrecito fabricado con
papel o cartulina)
 Rotular adecuadamente el recipiente

29. Patologías relacionadas:
 Patología ungueal; Síndrome de Uñas amarillas,
rinosinusitis crónica, derrame pleural,
bronquiectasias, linfedema y uñas distróficas de
tonalidad amarilla en las que desaparece la
lúnula: tiroiditis, lupus eritematoso sistémico
(LES) y artritis reumatoidea (AR); casos aislados
de asociación con cáncer de mama, laringe,
pulmón, endometrio, vejiga, sarcoma,
melanoma, linfoma de Hodgkin, micosis
fungoide, tuberculosis y droga

30. ESPUTO
 El esputo es una secreción profunda.con apariencia de moco
puede llegar a infectarse, teñirse de sangre o contener células
anormales que pueden llevar a un diagnóstico que se produce
en los pulmones y en los bronquios y se expulsa cuando se
presenta tos
 Composición: Las secreciones traqueobronquiales son una
mezcla de plasma, agua, electrolitos y mucina (moco). A
medida que dichas secreciones atraviesan las vías inferiores y
superiores se contaminan con exfoliaciones celulares,
secreciones nasales, y de las glándulas salivales y flora
bacteriana normal de la cavidad oral. Esta mezcla de
secreciones y partículas reciben el nombre de esputo.
 Las glándulas mucosas y el epitelio de superficie constituyen
las fuentes principales de las secreciones traqueó-bronquiales.
Las propiedades físicas del esputo revelan que las secreciones
son viscosas y elásticas, que poseen las propiedades de los
líquidos y los sólidos. Su consistencia depende principalmente
de la estructura molecular de las gluco-proteínas y del grado de
hidratación. El ácido siálico es el que contribuye de forma más
importante a la viscosidad del esputo

31. TOMA DE MUESTRA:
 Insistir en que el enfermo produzca esputo procedente del
árbol traqueobronquial. La saliva no es útil. Se puede producir
esputo mediante la inhalación de aerosol caliente en Solución
salina hipertónica con o sin broncodilatador durante 10 a 15
minutos. Coléctese la muestra en una cápsula estéril o en una
copa. Para que el examen tenga valor, se deberá hacer sin
pérdida de tiempo. Adicionalmente hágase recolección del
esputo producido durante 24hrs. En un recipiente de papel
parafinado con objeto de juzgar la cantidad y características
físicas. Si se efectúa broncoscopía, son de desearse muestras
de las secreciones y de los lavados bronquiales. Obténgase
siempre una muestra antes de la iniciación de un tratamiento
quimioterápico; a intervalos hágase nuevos exámenes. Puede
ser necesaria la aspiración directa del pulmón o, para una
muestra, la aspiración transtraqueal. El cepillado bronquial
puede revelar la flora de una lesión específica visible en las
radiografías.

32. ANÁLISIS QUE SE PRACTICAN Y
PATOLOGÍAS RELACIONADAS
A.- Aspecto macroscópico: Cantidad producida en 24hrs,
color, olor, formación de capas, consistencia, etc.
Investíguese:
 Cilindros bronquiales en la neumonía tardía o
bronquitis crónica
 Tapones de Dittrich en la bronquitis crónica,
bronquiectasia, asma bronquial
 Pueden encontrarse “cálculos pulmonares” en la
tuberculosis crónica.
B.- Examen microscópico: Tómense porciones del moco,
pus, material caseoso. Examínese en forma de
preparación húmeda y frotis coloreado. La presencia de
unas cuantas células epiteliales escamosas indica una
mezcla profusa de la saliva y las mucosidades
nasofaríngeas.

33.  Sin teñir: Búsquense hongos, parásitos, espirales de
Curschmann y cristales de Charcot-Leyden, masas de piocitos,
eritrocitos, glóbulos grasos, “gránulos de azufre”, fibras
elásticas, fibras de asbesto, etc.
 Muestra coloreada: Hágase tinción de Gram. para bacterias
predominantes, tinción de Kynyoun o de Ziehl-Neelsen
presencia de bacilos acidorresistentes, tinción de Wright para
eosinófilos en el asma bronquial, histoplasma, etc.
C.- Examen bacteriológico:
 Cultivo rutinario
 Si se sospecha de una micosis, hágase cultivo en condiciones
anaerobias Cultivo para bacilo tuberculoso concentrado.
 Mycoplasma, virus, especies de Legionella, etc.
 cultivos anaerobios para padecimientos como absceso
pulmonar y neumonía
 En niños, deberá hacerse cultivo de materiales tomados
directamente de la faringe, ya que frecuentemente es imposible
obtener el esputo.
 Los enfermos bajo tratamiento de antibióticos, frecuentemente
presentan un gran número de levaduras en el esputo.

34. D.- Estudio citológico de las células del esputo: Se seleccionaran
de 1 muestra de esputo fresco los fragmentos tisulares o el
material teñido de sangre, con el cual se hacen frotis en 5
laminillas, sobre las que se extenderá el material con la ayuda
de otro portaobjetos para obtener una película delgada y
uniforme, se colocarán en un medio constituido por una mezcla
de partes iguales de alcohol al 95% y éter durante 30min. Del
recipiente con alcohol-éter se transfieren las laminillas a otro
con alcohol al 95% durante 1 minuto, y luego se tiñen con
colorante tricrómico, otros colorantes especiales o ambos.
E.- Aislamiento de agentes con métodos especiales: Se pueden
encontrar el agente de la psitacosis e influenza, parotiditis
infecciosa, poliomielitis, sarampión y herpes simple,
citomegalovirus, adenovirus, sincitial respiratorio, de la
parainfluenza, de los grupos coxsakievirus, echovirus y otros.
F.- Neumonía por Pneumocystis Carinii: Si se sospecha de este
microorganismo en un enfermo inmunosuprimido será
importante practicar la biopsia abierta de pulmón para
laminillas de impresión. La demostración del organismo por la
técnica de la tinción de plata es necesaria con el fín de instituir
el tratamiento con isetionato de pentamidina o trimetroprim-
sulfametoxazol

35. SALIVA
 Definición: La saliva es el fluido orgánico propio de la
boca. Está compuesto mayoritariamente por agua (en
un 99%) y es básica su función lubrificante, pues
permite desde el mantenimiento íntegro de las
mucosas (éstas se deteriorarían si estuvieran secas)
hasta una correcta articulación de las palabras.
 Origen: La saliva se produce en las glándulas
salivales. La producción diaria en el ser humano es de
0.5-1.5 litros, pero depende de factores como la
ingesta de agua o la estimulación según la dieta. A lo
largo del día también hay variación en la cantidad de
secreción de saliva: Ésta es mínima por la noche.
Algunos medicamentos pueden disminuir el flujo
salival.

36. COMPONENTES VALORES
Secreción En 24hrs. 1000 – 1500ml
pH 6.3 – 6.85 (5.75-7.0 si la muestra se toma
sin pérdida de CO2)
El de la boca es generalmente de 7.5 –
8.0
Densidad 1.002 – 1.008 g/mL
Sólidos totales 0.5g/100mL
Sodio 17.4 (8.7 -24) mEq/L
Potasio 14.1 (13 – 16) mEq/L

37. TOMA DE MUESTRA
 Se obtienen células epiteliales bucales frotando
la parte interna de los carrillos con hisopos de
estériles en seco. Se realizan dos tomas: Con
un hisopo se frota la cara interna del carrillo
derecho y con el otro, la cara interna del carrillo
izquierdo. Los hisopos, correctamente
identificados, deben dejarse secar a
temperatura ambiente en un lugar protegido. Es
fundamental no introducirlos en las fundas hasta
que no estén totalmente secos, ya que en la
saliva hay bacterias que proliferan rápidamente
con la humedad, produciendo la degradación
del ADN

38. Patologías relacionadas
 Cirrosis hepática
 Excreción de tóxicos
 Estudios hormonales
 Esclerosis Múltiple
 Osteoporosis
 Estudios microbiológicos
 técnica de detección precoz de cáncer
 el Síndrome de Sjögren (SS)
 enfermedades reumáticas
 sarcoidiosis
 fibrosis quísticas
 Hipertensión
 Hiperlipemia
 Malnutrición
 Enfermedades neurológicas

39. EXUDADOS
 Origen y composición: Los exudados, por lo general,
resultan de procesos inflamatorios, infección o
neoplasias. Su densidad por lo general esta arriba de
1.018. Los exudados pueden ser claros, turbios y
serosos, purulentos o sanguinolentos. Es posible que
sean inodoros o que tengan un olor relacionado con la
infección o con la necrosis tisular. La cuenta de células
puede variar de 500 a más de 50000/µL. Los tipos de
células se relacionan con la enfermedad subyacente, es
decir, leucocitos polimorfonucleares en infecciones
piógenas; linfocitos, monocitos, células neoplásticas o
los 3 simultáneamente, en otros padecimientos. Los
eosinófilos pueden ser muchos pero definen diagnóstico
alguno. El contenido proteico esta arriba de 3g/100mL y
es frecuente que los factores de coagulación estén en
cantidad suficiente para producir coágulos

40. TOMA DE MUESTRA
 Exudado cutáneo: Con un hisopo de algodón se toma una
porción del exudado, evitando que sea muy superficial.
Inmediatamente se siembra en medios de cultivo adecuados o
se inocula en el medio de transporte de Stuart.
Envío: Las muestras se protegen del calor excesivo con un
refrigerante.
 Exudado Faríngeo: Se pide al paciente que se siente y
coloque su cabeza hacia atrás. Se ilumina bien la cavidad
orofaríngea y con un abatelenguas se empuja la lengua hacia
abajo para facilitar el acceso a la parte posterior de la faringe.
Con un hisopo de algodón se hace un raspado de las áreas
hiperémicas, purulentas o necróticas, así como de las
membranas o manchas de Koplic, si es que las presenta.
Envío:
 Agentes virales: El hisopo con la muestra se introduce en un
tubo de tapón de rosca con 1 a 2 mL de solución salina
isotónica estéril. Se rompe la varilla de madera a la altura
del tapón y se tapa herméticamente.

41.  Agentes bacterianos: El hisopo con la muestra se introduce
en un tubo de tapón de rosca con medio de Amies o de
Stuart. Se rompe la varilla de madera a la altura del tapón y
se tapa herméticamente.
 Los cultivos de garganta se obtienen principalmente para
detectar estreptococos beta-hemolíticos del grupo A.
Clínicamente puede sospecharse una faringitis estreptocócica
si se observa una mucosa difusamente enrojecida en un
paciente que experimenta dolor y dificultad para deglutir.
Normalmente, en la orofaringe se hallan combinaciones y
concentraciones variables de estreptococos alfa-hemolíticos,
especies de Neisserias (no N. gonorrhoeae), estafilococos
coagulasa negativos, ciertas enterobacterias etc
 Exudado Nasofaríngeo: Se pide al paciente que se siente y
coloque su cabeza hacia atrás. Se introduce un hisopo de
alginato de calcio, dacrón o nylon (nunca de algodón en caso
de sospechar Bordetella) por las fosas nasales hasta la
nasofaringe, sin tocar los cornetes y tratando de producir un
acceso de tos. El hisopo se mantiene in situ de 10-15
segundos durante el acceso de tos, después de lo cual se
retira rápidamente.

42.  Exudado Uretral: Se recomienda al paciente que no orine por
lo menos una hora antes de tomar la muestra. En casos de
gonorrea, cuando se produce un exudado abundante, se
presiona ligeramente la uretra con el fin de que lo expulse y
éste se recoge con un hisopo de alginato estéril el cual se
deposita en el medio de transporte de Stuart. Cuando se
sospecha de una infección por clamidia, se emplea un hisopo
de alginato de calcio adecuado para toma de muestras en
varones, el cual se introduce unos 2 a 4 cm en la uretra y se
frotan las paredes haciendo girar el hisopo durante 5 a 10
segundos; con esta muestra se deben hacer de inmediato
frotes en portaobjetos limpios que se fijan con acetona.
 Envío: El tubo y las preparaciones se envía lo antes posible de
modo que no lleguen al laboratorio después de 24 horas. En
exudados uretrales: Los resultados anormales pueden indicar
infección dentro del aparato genital, lo cual puede abarcar
infecciones como gonorrea, clamidia, uretritis , gonocemia
diseminada, etc

43.  Exudado vaginal y Endocervical: Se utiliza un espejo vaginal
para revisar el cérvix. En caso de gonorrea no se hace ningún
tipo de limpieza y se recoge una muestra de exudado con
ayuda de un hisopo; la muestra se debe sembrar de inmediato
en la placa de agar de Thayer Martin y sólo que ésto no sea
posible, se puede transportar en medio de Stuart. Cuando se
sospecha de infección por clamidias, se limpia el exocérvix con
un hisopo de algodón para eliminar el moco y el exudado, se
introduce el hisopo (de alginato de calcio o de dacrón, nunca
de algodón) o el cepillo unos 2 a 4 cm dentro del canal
endocervical y se rota cuidadosamente presionando contra la
pared, evitando el contacto con las superficies vaginales. Con
esta muestra se deben hacer de inmediato frotes en
portaobjetos limpios que se fijan de inmediato con acetona.
Envío: El tubo con el medio de transporte se envía lo antes
posible de modo que no llegue al laboratorio después de 24
horas. No es necesario refrigerar la muestra. Las
preparaciones se envuelven individualmente y se envían
protegidas de la luz y el calor excesivo. Los resultados
anormales indican la presencia de una infección en el aparato
genital femenino. Como: C. trachomatis , Clamidia , E. coli ,
Gonorrea , Estreptococos del grupo A , Herpes simple,
Enfermedad inflamatoria pélvica (EIP) , uretritis crónica, VPH,

44. ANÁLISIS QUE SE PRACTICAN
 Exudado pleural: En el caso de los derrames
paraneumónicos, los no complicados (pH > 7.30,
glucosa > 60 mg/dl, LDH < 500 Ul), se resuelven con el
tratamiento antibiótico dirigido a la neumonía, sin dejar
secuela alguna. Si se trata de un derrame complicado
(pH <7.10, glucosa < 40 mg/dl, LDH > 1000 Ul) se debe
colocar un tubo de tórax para su drenaje. Para los que
tienen características intermedias, se deben practicar
toracentesis repetidas y vigilar su evolución. En el caso
de empiemas, es imperativo la colocación de un tubo de
tórax e iniciar un manejo antibiótico fundamentado en el
resultado del cultivo. Si el empiema se encuentra
loculado se puede intentar la colocación de otro tubo de
tórax, aplicación de estreptokinasa o realizar un
procedimiento de drenaje quirúrgico. Si no se puede
controlar el proceso se hará una decorticación

45. TRANSUDADOS
 Origen y Composición: Son acumulaciones de
líquidos no inflamatorios en las cavidades
serosas. Por lo general, son causados por
insuficiencia cardiaca congestiva, obstrucción de
flujo venoso o proteínas plasmáticas bajas. Por
lo general la densidad es menor de 1.015.
Suelen ser amarillo claro y transparentes o
ligeramente turbios y contienen pocas células,
no hay bacterias y su contenido proteico es
menor de 2.5g (principalmente albúmina) por
100ml. Por lo común no forman coágulo

46. ANÁLISIS QUE SE PRACTICAN:
 Trasudado Pleural: Se debe manejar la enfermedad de
base causante del incremento en la presión hidrostática
o disminución de la presión oncótica. En la insuficiencia
cardiaca congestiva disminuye la presión venosa y
mejora el gasto cardíaco con diuréticos, vasodilatadores
e inotrópicos; con el manejo adecuado, los derrames se
resuelven en días o semanas. En la cirrosis se debe
restringir la ingesta de sodio y promover la diuresis; en
general el derrame persiste hasta cuando la ascitis ha
cedido clínicamente. En casos de insuficiencia cardiaca
congestiva o de ascitis refractaria al tratamiento se
puede considerar la pleurodesis química. En casos de
urinotórax (derrame por uropatía obstructiva), la
resolución de la obstrucción lleva a resolución temprana
del derrame. En el síndrome nefrótico el tratamiento se
debe enfocar a la nefropatía perdedora de proteínas

47. Patologías relacionadas
 Disnea
 Tos no productiva: es debida a la inflamación pleural o
compresión pulmonar.
 Expectoración: sugiere afección parenquimatosa, como
neumonía.
 Dolor: es debido a inflamación de la pleura parietal inervada
por ramas intercostales. Disminución de la sonoridad la
percusión: ayuda a localizar el borde superior del derrame.
 El hemitórax afectado esta agrandado a menos que la derrame
esté relacionada con colapso pulmonar y obstrucción de vías
aéreas. En este caso los espacios intercostales están retraídos.
 Si la traquea se encuentra en posición central aun cuando
existan grandes volúmenes de líquido pleural, sugiere
obstrucción del árbol bronquial, pulmón atrapado o mediastino
fijo por proceso inflamatorio o maligno.
 Si la cantidad de líquido es menor de 150 ml esta confinado en
una comisura interlobular, es difícil identificarlo.

48. HUMOR VÍTREO
 Origen y Composición: es un gel transparente que
rellena el globo ocular, ocupando cuatro quintas partes
del mismo, y que limita por delante con el cristalino y
más hacia atrás con el cuerpo ciliar, la retina y el nervio
óptico, estructuras con las que mantiene uniones
variables. Sus funciones son servir de soporte al
cristalino y la retina, ayudando a mantener la forma del
globo ocular. Además, tiene una función óptica, actúa
como aislante térmico y de forma indirecta puede
intervenir en la regulación de la tensión intraocular
 El humor vítreo (gel vítreo) es una estructura gelatinosa
que se mantiene unida por una fina red fibrilar (tejido
intraocular) compuesta fundamentalmente por largas
moléculas de proteoglucanos. El colágeno representa
tan sólo el 0,01% del volumen; el 99% es agua. En su
interior no hay un flujo activo de líquido y las sustancias
se desplazan lentamente por difusión pasiva.

49. Toma de muestra
 Humor vítreo: Se realiza resecando completamente el globo
ocular o bien a través de una punción del mismo con aguja y
jeringa; muchas veces se remite humor acuoso y no humor
vítreo ya que la densidad de éste último hace dificultosa la
extracción; por lo tanto debe ponerse atención cuando se
envía esta matriz.
 Vitrectomía posterior: Se realiza una pequeña apertura
conjuntival cercana a limbo, aplicamos diatermia sobre la
esclera, se penetra en cavidad vítrea con una lanceta de 20G y
por ahí introducimos el vástago del vitreotomo anterior al que
habremos quitado su funda de irrigación. La aspiración se hará
manualmente con una jeringa que conectaremos a la línea de
aspiración del vitreotomo.Probablemente habrá una conexión
cercana al vitreotomo que podremos separar para conectar la
jeringa, y sino, tendremos que utilizar nuestro ingenio para
cortar el tubo y empatar el conector con terminal hembra en su
extremo para poder aspirar con la jeringa. Con el extremo del
vástago introducido en vítreo medio-anterior, accionaremos el
corte con el pedal y con la jeringa extraeremos 0,2-0,4 ml de
humor vítreo

50. patologías relacionadas:
 Toxicología Forense: Con el envejecimiento normal, o por
alguna patología, el humor vítreo se licúa, formándose masas o
filamentos de gel compactado, siendo de utilidad para los fines
toxicológicos por medio de punción.
 Conjuntivitis bacterianas, La muestra se tomará en el
laboratorio. Si es posible dentro de las 24-48 horas del
comienzo de los síntomas Debido a que un tratamiento
antibiótico produce una disminución notable del recuento de
gérmenes recuperados en los cultivos, el estudio bacteriológico
debe realizarse previo a la instauración del tratamiento tópico o
sistémico. Si se ha instaurado el tratamiento tópico (con
antibióticos no corticoides) suspender al menos 48 a 72 horas
previas a realizarse el estudio. Se hisopa el fondo de saco
conjuntival. Se siembra en medios adecuados. Si hay secreción
hacer dos extendidos en portaobjetos.

51. LÍQUIDO SINOVIAL
 Origen:. El líquido sinovial es normalmente una sustancia
viscosa (espesa) de color claro o amarillo pálido que se
encuentra en pequeñas cantidades en las articulaciones, en las
bursas y en las vainas de los tendones. Inicialmente, en el
laboratorio se analiza el color y la claridad del líquido y luego se
examina en el microscopio para detectar células (leucocitos y
glóbulos rojos), cristales (en caso de gota) y bacterias.
Adicionalmente, se puede realizar un análisis químico y, si
existe preocupación acerca de una posible infección, se cultiva
una muestra para saber si se prolifera cualquier tipo de
bacteria.10
 Composición: Es un dializado del plasma mezclado con ácido
hialurónico; Se produce por ultrafiltración de la rica red vascular
en el tejido sinovial, mientras que el ácido hialurónico, una
mucoproteína, se segrega en el dializado por las células
sinoviales; Llena la cavidad articular y actúa como lubricante,
manteniendo al mínimo la fricción entre los huesos durante el
movimiento o mientras se soportan pesos. Suministra un medio
nutricional para el cartílago

52. TOMA DE MUESTRA:
 Con técnica aséptica, infíltrese la piel, el tejido subcutáneo y el
tejido sinovial con procaína o lidocaína al 1%. Insértese una
aguja de punción lumbar del no. 18 o 19 con estilete, en el
espacio articular. Agréguese una gota de heparina (1000
unidades por ml) o una gota de sal disódica de EDTA al 10%
por ml de líquido articular que se emplearán para el estudio
citológico y análisis clínico. Si se van a examinar cristales,
úsese citrato de sodio al 3.8% en proporción 1 parte por 9
partes de líquido sinovial. No se agrega anticoagulante al
líquido restante.
 Si el volumen es pequeño, basta con 1ml para la determinación
del aspecto, citología, tipo de precipitado de mucina y cultivos.
Son necesarios de 6 – 10ml si se requieren estudios de
tendencia de coagulación, contenido de glucosa y proteínas,
viscosidad relativa y cultivo. Si se tiene un dispositivo
polarizante para el microscopio, se pude demostrar la
presencia de cristales de urato o cristales de pirofosfato,
birrefringencia positiva, cuando se inserta un filtro
compensador rojo de primer orden en el paso del rayo de luz
polarizada.

53. Patologías relacionadas:
 La presencia de sangre en la articulación puede
ser un signo de lesión dentro de ésta o un
problema de sangrado en todo el cuerpo. Una
cantidad excesiva de líquido sinovial normal
también puede ser un signo de osteoartritis.
 Agente físico o mecánico (traumatismos, gota)
 Agentes químicos (hemofilia)
 Artritis supurales o sépticas
 Artritis por reacciones inmunológicas o
autoinmunes
 Artritis reumatoide y fiebre reumática

54. ASPECTO VIS LEUCO COÁGUL PROTEÍNAS TAMBIÉ
C. CITOS O DE (Prom. g/100ml) N
µL MUCINA3 Total PRESE
Globulina NTES
Normal Color paja, Elev 200-600 Bueno 1.36 0.05
claro, ada 25%
opalino PMN
Traumát Amarillo o Elev ± 20004 Bueno 4.27
ico hemorrágic ada 30%PM
o N
Osteoar Amarillo, Elev ±1000 Bueno 3.08 0.75 Fibrillas
tritis claro ada 20% de
PMN cartílag
o
Fiebre Amarillo, Baja ±10000 Bueno 3.74 1.07
Reumáti ligerament 50%PM
ca e N
opalino

55. L.E. Color paja Elev ±5000 Bueno Formaci
generali ligerament ada 10%PM ón de
zado e N células
opalino LE
Gota Amarillo o Baja ±12000 Frágil 4.18 1.54 Cristale
lechoso 60% s de
opalescent PMN Uratos
e
Artritis Amarillo o Baja ±15000 Frágil 4.74 1.79 Factor
Reumat verdoso ±65%P Reumat
oide opalescent MN oide
e
Tubercu Amarillo Baja ±25000 Frágil 5.3 2.0 Bacilos
losis opalescent 56- tubercul
e 60%PM osos
N
Séptico Grisáceo o Baja ±80000 Frágil 5.64 2.45 Bacteria
hemorrágic 90% s
o PMN Glucosa
↓

56. LÍQUDO AMNIÓTICO
 Definición: Es un líquido claro y ligeramente amarillento
que rodea el bebé dentro del útero (feto) durante el
embarazo y que está contenido en el saco amniótico10
 Origen: El líquido amniótico que rodea el cuerpo del feto
cumple un papel fundamental en su desarrollo normal.
Este líquido transparente resguarda y protege al bebé.
Hacia el segundo trimestre de gestación, el bebé es
capaz de inhalar el líquido y de tragarlo, lo que
promueve el desarrollo y el crecimiento normales de sus
pulmones y su sistema gastrointestinal. El líquido
amniótico también permite al bebé moverse, lo que
contribuye al desarrollo normal de sus músculos y sus
huesos.

57. COMPOSICIÓN
El Líquido amniótico posee un peso específico de 1006 y una
comp. ac. de 96.4% - 98% y 1% a 2% de solutos,
distribuyéndose por igual entre sustancias org. e inorgánicas.
constituido por albúminas, sales, glucosa, lípidos, urea, ácido
úrico, creatinina, vitaminas, bilirrubina, y hormonas. En el
sedimento se encuentran células epidérmicas fetales y del
amnios, lanugo y materias sebáceas. Se han hallado también
hormona gonadotrófica, progesterona, estrógenos,
andrógenos, corticoides, lactógeno placentaria, oxitocina,
prostaglandinas, etc.
Cloro-----------------------------------------103 mEq
Reserva alcalina---------------------------- 18 mEq
Fósforo--------------------------------------- 2 mEq
Azufre----------------------------------- 2 mEq
Na-------------------------------------------- 127mEq
K--------------------------------------------- 4 mEq
Ca-------------------------------------------- 4 mEq
Mg------------------------------------------- 2 mEq
Total……………………………………262 mEq 269 mOsm

58. TOMA DE MUESTRA
 El hecho de ser una punción abdominal supone atravesar la
pared, peritoneo, miometrio, decidua, antes de llegar al amnios,
por lo tanto, se deben tener en cuenta sus riesgos y extremar
el cumplimiento de una buena técnica aséptica.
 Preparación física, aseo y asepsia de los genitales
 Control de LCF previo al examen y después de terminado el
procedimiento
 Dejar en reposo y controlar la pérdida de flujo genital para
pesquisar una posible rotura de membranas
 La muestra inicial, obtenida por punción abdominal
alrededor de la trigésima segunda semana de embarazo
debe protegerse contra la luz en todo momento
 La muestra se coloca de inmediato en tubos esterilizados
opacos cerrados herméticamente
 Se rotulan con la identificación completa de la madre
incluyendo el número de ficha clínica
 Se envía de inmediato al laboratorio para su estudio o de lo
contrario se deja refrigerada por 24 horas

59. Patologías relacionadas y análisis
que se practican:
 Amnioscopía: Es la observación directa del contenido
intrauterino a nivel del polo inferior a través del orifico
cervical, capaz de mostrar alteraciones de su color y la
presencia o no de grumos. Para este examen se requiere
algún grado de dilatación cervical.
 Amniocentesis: Consiste en la exploración y examen sobre
el mismo líquido amniótico a través de su extracción por
punción transabdominouterina, que permitirá hacer el
estudio químico, espectrofotométrico y citológico.
 Oligohidramnios y polihidramnios: cantidad de líquido
amniótico insuficiente o excesiva.
 Estudio de la madurez fetal
 Índice Lecitina/Esfingomielina (L/E)

60. LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO
 Origen: El líquido cefalorraquídeo es producido
por el plexo coroides en el interior del sistema
ventricular. A través de los forámens de
Magendie y de Luschka fluye hasta el cuarto
ventrículo o rodea la parte superior del cerebro
bajando posteriormente hasta la médula espinal.
Finalmente es absorbido en los cuerpos de
Pacchioni y en las vellosidades aracnoideas a
ambos lados del seno sagital superior

61. TOMA DE MUESTRA
 Punción Lumbar: Se realiza entre la cuarta y quinta o
entre la tercera y cuarta vértebras lumbares. Pálpese el
sitio blando en la línea media entre las apófisis de las
vértebras elegidas. Al desinfectar la piel, el operador
debe aplicar primero el antiséptico en el punto a través
del cual la aguja se insertará, limpiando el área
circundante en un círculo concéntrico creciente desde el
punto para evitar arrastrar bacterias hacia el sitio de la
punción. La aguja es guiada por el operador en la piel
mediante los dedos índices enguantados y debe
empujarse con los 2 pulgares 1 vez que se ha hecho la
inserción inicial a través de la piel. Empujar lenta y
suavemente con la aguja dirigida ligeramente (ángulo de
10 – 15°) hacia la cabeza del paciente. Si se tropieza
con el hueso, debe sacarse la aguja ligeramente y
rectificarse la dirección, por lo general najando la punta
levemente. Cuando la aguja penetra la dura hay una
sensación de “elasticidad” o de algo que cede.

62. Una vez que el operador piense que ha penetrado en el
espacio subaracnoideo, se retira el estilete; si el LCR no
sale, un medio giro a la aguja hará en ocasiones que el
LCR fluya. Cuando aparece el LCR hágase la
determinación de la presión antes de que salga y
recójase la muestra en los recipientes estériles
necesarios.
 Punción Cisternal: Es un procedimiento peligroso
(debido a la proximidad de la aguja al bulbo raquídeo)
que deberá hacerse únicamente por personal
experimentado y solo de ser absolutamente necesario.
Sirve para la comparación de los incrementos
tensionales debidos a la compresión yugular (bloqueo) o
para obtener LCR cuando la punción lumbar sea
imposible

63. PRESIÓN En decúbito: Recién 30-80mm de agua
nacidos 50-100mm de agua
Niños 70-200mm de agua (promedio:
Adultos 125)
Sentado: Todas las Normal si llega al nivel
edades correspondiente del
agujero occipital (promedio
adultos: 350 – 400mm de agua)
VOLUMEN Total 120 – 140ml
LCR EN Ventrículos laterales 10-15ml c/u
ADULTOS Resto del sistema 5ml
ventricular 25ml
Espacios subaracnoideos 75ml
craneales
Espacios aracnoideos
espinales
ASPECTO Transparentes e incoloro

64. Pruebas que se realizan
 Color
 Opacidad
 Cuenta celular
 Determinación de globulina (Pandy y Ross-Jones)
 Proteínas totales (Dennis y Ayer)
 Inmunoglobulinas
 Glucosa
 Amonio y glutamina
 Examen bacteriológico
 Para meningitis tuberculosa (Levinson, triptófano)
 Aislamiento de virus

65. Patologías relacionadas
 infección o una acumulación de glóbulos blancos o proteína.
 sangrado u obstrucción de la médula espinal. Si es marrón,
naranja o amarillo, puede ser un signo de aumento de la
proteína en el LCR o un sangrado previo (hace más de 3 días).
 aumento de la presión intracraneal (presión en el cráneo);
tumor de médula espinal, shock, desmayo o coma diabético.
 El aumento de la proteína por diabetes, polineuritis, tumores,
lesión y cualquier afección inflamatoria o infecciosa
 aumento de los niveles de gammaglobulina puede deberse a
enfermedades como esclerosis múltiple, neurosífilis o síndrome
de Guillain-Barré.
 El aumento de los glóbulos blancos puede ser un signo de
meningitis, infección aguda, inicio de una enfermedad crónica,
tumor, absceso, accidente cerebrovascular, enfermedad
desmielinizante (como la esclerosis múltiple).
 La presencia de glóbulos rojos en la muestra de LCR puede
ser un signo de sangrado en dicho líquido o el resultado de una
punción lumbar traumática

66. SEMEN
 Definición: El semen es el líquido espeso,
blanco, que contiene espermatozoides y
se libera durante la eyaculación.
 Origen: Líquido de la próstata y otras
glándulas sexuales que ayuda a
transportar el esperma fuera del cuerpo
del hombre durante el orgasmo. El líquido
seminal contiene azúcar como fuente de
energía para el esperma

67. TOMA DE MUESTRA
 Espermocultivo: La muestra debe tomarse con 48 horas de
abstinencia sexual y con una retención urinaria de por lo menos
1 hora. Higienizarse la zona genital con agua y jabón nuevo,
enjuagar con abundante agua y secar con una toalla sin uso
previo. De la primera orina de la mañana el paciente debe
recolectar el primer chorro en el frasco estéril, No más de 10ml,
descartar el resto en el inodoro. Juntar por masturbación el
semen en otro frasco estéril. Remitir ambos frascos al
laboratorio inmediatamente. Si el paciente está tomando
antibiótico, deber suspender su administración 48 a 72 hs
previas al estudio. Las horas son las mismas para quien ha
terminado su tratamiento.
 Espermograma: La muestra debe ser obtenida por
masturbación con una abstinencia sexual de 3 a 5 días. No
menos de 2 ni más de 7 días. Previa obtención, el paciente
deber higienizarse con agua y jabón nuevo, y secarse con una
toalla sin uso previo. También deber orinar completamente,
previo análisis. Juntar el semen en un frasco estéril y remitirlo
al laboratorio dentro de la hora de obtención, manteniéndola a
temperatura ambiente

68. ANÁLISIS QUE SE PRACTICAN:
(Valores Normales)
 Volumen: Promedio: 4ml (3-7ml)
 Licuefacción: 30min después de la eyaculación
 Cuenta normal de espermatozoides: 20-
100millones/ml
 Movilidad y morfología: Más de 50% deben
mostrar movilidad y morfología normal

69. Patologías relacionadas
 El análisis de semen es uno de los primeros exámenes
que se hacen para evaluar la fertilidad de un hombre y
puede ayudar a determinar si un problema en la
producción o calidad de los espermatozoides está
causando dicha infertilidad. Aproximadamente la mitad
de las parejas que son incapaces de concebir hijos
tienen un problema de infertilidad masculina.
 El examen también se puede utilizar después de una
vasectomía para constatar que no haya
espermatozoides en el semen y con esto se puede
confirmar el éxito del procedimiento.
 El examen también se puede llevar a cabo para la
siguiente afección: Síndrome de Klinefelter

70. SUDOR
 Origen: Líquido transparente que producen las glándulas
sudoríparas que hay en la piel de los animales
homeotermos y que se expulsa a través de ella.
 Composición: Está constituido por el 98% o 99% de
agua, y el 1% o 2% restante está formado por diversas
sustancias que provienen del metabolismo orgánico:
cloruro sódico (la sal común) que confiere al sudor un
ligero gusto salado, urea, ácido úrico, creatinina, ácidos
grasos, ácido láctico (producto de la fatiga muscular y
por lo tanto más abundante en el sudor producido en la
fatiga intensa), sulfatos, lactatos, etc.

71. Toma de muestra y análisis que se
practican:
 Medición de cloruros en sudor (Método de Jackson): Se
recoge el sudor después de estimular su producción por
inyección intradérmica de Urecolina y se miden cloruros
con clorurómetro Cotlove.
 Medición de electrolitos del sudor aplicando pilocarpina
por iontoforesis: Se produce sudoración en una pequeña
porción de la piel, empleando el fármaco colinérgico
pilocarpina, que se introduce a la piel merced a una
pequeña corriente directa (2-4miliamperios, bajo 0-20V).
 Medición de cloruros en sudor por método de
conductividad eléctrica
 Medición de la huella digital para cloruros en sudor
 Electrolitos del sudor.

72. LÁGRIMAS
 Origen: (Película lagrimal) Cada una de las gotas
vertidas por las glándulas lagrimales, que aparecen por
una emoción intensa, por irritación del ojo, por risa, etc.
 Composición: Está compuesta de tres diferentes capas
microscópicas. El estrato intermedio, acuoso (lo que
normalmente consideramos lágrimas de llanto), se
encuentra entre un estrato mucoso y un estrato exterior
de sustancias grasas y aceitosas colectivamente
conocidas con el nombre de meibum. La lágrima natural
tiene una compleja composición, siendo el agua el
principal componente (98'3%), seguido de sales (1%),
proteínas y glucoproteína (0'7%), y fracciones menores
de hidrocarbonados, lípidos y otros.

73. Toma de muestra y análisis que se
practican:
 Electroforesis de lágrimas: Sirve para evaluar
los porcentuales de una proteína con respecto a
otra, los cuales varían según las patologías.
Algunas patologías alteran el perfil proteico
lagrimal, cuanto mas severa es la inflamación
mayor es el porcentaje del primer pico de
proteínas de migración rápida y albúmina y
menor el pico de lisozima. En ojo seco
disminuye el primer pico de proteínas de
migración rápida y albúmina a expensas de un
aumento del pico de lisozima

74. LAVADO BRANQUIOALVEOLAR
 Origen: El lavado bronquioloalveolar (LBA) consiste en la
instilación y posterior aspiración de solución salina en las vías
aéreas dístales, lográndose la obtención de componentes
celulares y no celulares supuestamente representativos de los
fenómenos inflamatorios e inmunológicos que están teniendo
lugar en todo el parénquima pulmonar
 Técnica:
1.- Después de la inspección del árbol tráqueobronquial y antes
de realizar la biopsia o el cepillado, se procede a acuñar el
fibrobroncoscopio (FBC) en un bronquio subsegmentario,
preferiblemente del lóbulo medio o de la língula si la lesión es
difusa, pero puede escogerse el lóbulo que parezca estar más
comprometido radiológicamente; en lo posible debe evitarse el
lóbulo superior ya que su disposición anatómica dificulta mucho
la recuperación del líquido.

75. Cuando la enfermedad sea localizada, deben lavarse múltiples
sitios incluyendo el área enferma. Algunos autores encuentran
diferencias en la concentración y en el recuento diferencial de
células, entre el lóbulo medio y la língula, para enfermedades
tales como sarcoidosis, fibrosis pulmonar idiopática o fibrosis
pulmonar asociada con enfermedades del colágeno, por lo que
recomiendan lavados bilaterales, mientras que para otros dicha
diferencia no es importante.
2. Una vez acuñado el FBC, se procede a instilar solución salina
estéril a 37°C en cantidades de 20-50cc, (se recomiendan 5
instilaciones de 20cc cada una), aspirando seguidamente (con
una presión negativa de 50-80mm Hg) hasta recoger por lo
menos la mitad del material instilado. El volumen instilado varía
entre 100-300 cc, pareciendo lo ideal 100-150 cc, teniendo en
cuenta que volúmenes menores alteran el recuento celular total
y volúmenes mayores aumentan la morbilidad. Algunos autores
recomiendan desechar los primeros 20cc instilados o
destinarlos como "lavado bronquial" arguyendo que esa
primera muestra recupera células y proteínas del bronquio
distal y no del alvéolo, pudiendo interferir con el recuento
celular. Otros prefieren incluir los primeros 20cc en el total de la
muestra, a menos que exista secreción bronquial purulenta.

76. 3. Procesar el líquido entre 30-90 minutos después de
recolectado, de lo contrario, se centrífuga y se substituye el
sobrenadante por medio de cultivo, guardándolo a4°C hasta su
procesamiento. Para algunos autores las células del lavado se
mantienen viables si el LBA se guarda por 4 horas, a 25°C,
agregar ningún medio de cultivo o antibiótico.
4. En caso de procesamiento inmediato, se retiran los restos de
moco visible y se centrifuga a 800- 173 1000rpm,
posteriormente se lavan las células en PBS y se resuspenden
en medio de cultivo. Acto seguido, se realiza el recuento celular
total en una cámara de Neubauer.
5. De la anterior solución se obtienen alícuotas de 150
microlitros que son centrifugadas a 400-600 rpm durante 5-1 0
minutos. Una preparación no fijada se tiñe con Giemsa y se
utiliza para el recuento diferencial. El resto de alícuotas no
fijadas y lavadas se pueden utilizar para estudios
inmunocitoquímicos..
El sobrenadante de la primera centrifugación permite el estudio
de diversos componentes bioquímicos como determinación de
albúmina y proteínas totales, inmunoglobulinas, haptoglobulina,
surfactante y trasferrina.

77. Patologías relacionadas
 El lavado encuentra hasta el momento su
mayor utilidad en el diagnóstico de las
infecciones oportunistas y de algunas
neuropatías intersticiales, evitando en
ocasiones la realización de
procedimientos invasivos. Se constituye
también en una herramienta de
investigación de primera mano en algunas
entidades como el asma

78. CEPILLADO BRONQUIAL
 Es la recogida de material citológico de una
lesión endobronquial, que se obtiene mediante
la exfoliación con un cepillo introducido por el
canal del BF Se puede realizar tanto en lesiones
visibles como a ciegas. Existe una modalidad
que es el cepillado con catéter protegido en el
que el cepillo viene incluido en una doble funda
con un tapón distal reabsorbible y se utiliza para
estudio microbiológico con recuento de colonias
bacterianas

79. Técnica:
 Utilice un broncoscopio de doble lumen.
 Inserte la brocha citológica dentro del canal abierto del
broncoscopio y avance.
 Empuje la brocha fuera de su protector y realice el
cepillado.
 Jale la brocha hacia dentro de su protector y remueva la
unidad de brocha completa.
 Coloque la brocha dentro del tubo de transporte
conteniendo solución salina o Ringer’s lactato.
 Recuerde que la brocha se seca al aire rápidamente, lo
cual es negativo para el cultivo
 Envíe al laboratorio inmediatamente.
 Si desea estudio por micobacterias, puede colocar la
brocha dentro de un tubo conteniendo 10 ml de caldo de
Middlebrook 7H9.

80. REFERENCIAS
 http://www.cancer.gov/Templates/db_alpha.aspx?CdrID=46642&lang=spanish (06/09/08:
09:23PM)
 [1] Lynch, M.J.; Raphael, S.S.; Mellor, L.D., Spare, P.D. e Inwood, M.J.H.: Métodos de laboratorio
Vol. I En Nueva Editorial Interamericana 2da Edición. México DF. 1997. pp. 97, 98-101, 104-
115, 129-136, 300, 152-154
 [1] Krupp, M.A.; Tierney Jr, L.M.; Jawetz, E.; Roe, R.L. y Camargo C.A. En: Manual de
diagnóstico Clínico y de laboratorio. El Manual Moderno 8va. Edición. México D.F. 1986. pp.,
285-290, 273-276, 110-111, 170, 265-272,264
 [1] http://es.thefreedictionary.com/pelo (06/09/08: 11:10PM)
 [1] http://www.bosleymc.com/web/cabello.htm (06/09/08: 11:25PM)
 [1] http://bvs.sld.cu/revistas/ibi/vol14_1_95/ibi11195.htm (06/09/08: 11:18PM)
 [1] http://www.nutricionespecializada.com/cabello.html (07/09/08 02:00PM)
 [1] http://www.podium.es/podium/cons1.htm (06/09/08: 11:50PM)
 [1]http://www.enfervalencia.org/anedidic/procedimientos/documentos/protocolo-toma-de-
muestras-de-escamas pelos-y-u-as-para-e-.pdf (06/09/08: 11:53PM)
 [1] http://www.nlm.nih.gov/medlineplus/spanish/ency/article/003723.htm (07/09/08
02:10PM)
 [1] http://www.conocimientosweb.net/dcmt/ficha11346.html (07/09/08 02:16PM)
 [1] http://www.mapfre.com/salud/es/cinformativo/saliva-glandulas-salivares.shtml (07/09/08
03:28PM)
 [1] Rocabado O., Núñez de A., Corach D. (2004). Hacia la normatización de criterios de
obtención de evidencias en víctimas sobrevivientes de agresión sexual, tendiente a la identificación
molecular por análisis de ADN. Revista Médica 10:75-81.

81.  [1] http://www.clinicadam.com/1analisis-clinicos/exudado-uretral-vaginal.html (07/09/08
04:31PM)
 [1] http://www.salud.gob.mx/indre/mues.htm (07/09/08 04:22PM)
 [1] http://www.aibarra.org/Guias/3-19.htm (07/09/08 04:48PM)
 [1] http://tratado.uninet.edu/c020602.html(07/09/08 05:04PM)
 [1] http://www.medicosecuador.com/cirugialaserdeojosecuador/humor_vitreo.htm (07/09/08
05:21PM)
 [1] http://www.oftalmo.com/sco/revista-12/12sco15.htm (07/09/08 05:30PM)
 [1] http://www.biodiagnostics.com.mx/oftalmologica.php?imp=ok (07/09/08 05:42PM)
 [1] www.aebm.org/jornadas/liquidos/LIQUIDO%20SINOVIAL.pdf (07/09/08 06:02PM)
 [1] Underwood, M.A., et al. State of the Art: Amniotic Fluid: Not Just Fetal Urine Anymore.
Journal o Perinatology, volumen 25, 2005, págs. 341-348
 [1] Cunningham, F.G., et al. Disorders of Amniotic Fluid Volume, in: Williams Obstetrics, 22.a
edición, New York, McGraw-Hill Medical Publishing Division, 2005, págs. 525-534.
 [1] http://www.med.uchile.cl/apuntes/archivos/2005/obstetricia/liquido_amniotico.pdf
(07/09/08 07:31pm)
 [1] http://www.iqb.es/neurologia/atlas/hidrocefalo/cisternas/cisternas.htm (07/09/08 07:43pm)
 [1] http://www.todoexpertos.com/categorias/ciencias-e
ingenieria/quimica/respuestas/506206/composicion-del-semen (07/09/08 09:01)
 [1] http://www.marcominilab.com.ar/vademecum.asp#res27 (07/08/09 04:39PM)
 [1] http://www.pinrelina.com/sudoracion.htm (07/09/08 09:09PM)
 [1] http://encolombia.com/medicina/neumologia/rev-neumvol12n3-lavado.htm (07/09/08
09:50PM)
 [1] Castella J, Puzo MC. Técnica de la broncoscopia. En: Castella J, Puzo MC, editores.
Broncología. Barcelona: Salvat; 1982. p 25- 49.