Coccidias aves

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PARASITOLOGIA coccidias en aves
Dr Zarate Ramos FMVZ UANL

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Coccidias aves

  1. 1. Coccidiosis Aviar
  2. 2. Cría intensiva Mejores resultados económicos dependen: - Densidad de población - Producción intensiva - Rápido crecimiento - Periódo corto de engorda Alto riesgo por enfermedades y perdidas económicas Tratamientos estratégicos necesarios para reducir brotes clínicos y minimizar perdidas económicas debido a coccidiosis subclínica.
  3. 3. Coccidiosis 1) Es causada por un parásito protozoario (Coccidia), la Coccidiosis ocurre en todo el mundo y han sido identificadas especies domésticas y salvajes de mamíferos y aves. 2) En la avicultura, la coccidia, pertenece al género de Eimeria y se desarrolla en la pared intestinal.
  4. 4. Coccidiosis 3) Muchas especies de Eimeria han sido identificadas, ellas se diferencian por su morfología, patogenicidad (severidad) y su localización en el tracto intestinal
  5. 5. El parásito: Coccidia Phylum: Apicomplexa Genero: Eimeria Especies: Varias con huésped específico. - Solo un huesped - No necesita huésped intermediario - Rápido ( aproximadamente 7 días de período de prepatencia), transformandose en su estado infeccioso. - Muy resistente al ambiente. Es el mejor parásito que se adapta en las unidades de producción intensiva
  6. 6. Eimeria spp.: Cíclo de vida SCHIZOGONY nucleus of the intestinal cell asexual reproduction day 1 day 2 - 4 1st schizont 1st merozoite 2nd schizont sporulated 2nd merozoite infectous oocyst day 5 SPOROGONY microgametes with in favourable two flagella released conditions by microgamont in the environment sporulating day 6 oocyst non sporulated day 7 non infectious GAMETOGONY oocyst sexual reproduction macrogamete with wall forming bodies has developed from macrogamont
  7. 7. Tracto Digestivo normal ileon yeyuno ciego Diverticulum Asa de Meckel Duodenal
  8. 8. Patogenicidad • La multiplicación de la coccidia se lleva a cabo principalmente en el intestino delgado y ciego. Esto puede causar lesiones típicas como manchas blancas y engrosamiento de la pared intestinal. • Los diferentes estados de desarrollo de la coccidia destruyen las células intestinales,reduciendo su habilidad para absorber y digerir los nutrientes de la comida.
  9. 9. Patogenicidad La severidad de la enfermedad depende de la especies de Eimeria que esten presentes. Cada una de ellas, causan diferentes problemas pero todas conducen a un impacto económico negativo.
  10. 10. Patogenicidad Eimeria acervulina Se desarrolla en la membrana mucosa de la pared intestinal, en consecuencia las lesiones son en la superficie, causando reducción en la absorción de nutrientes (principalmente pigmento). Esto te conlleva a una reducción de la productividad. En muchos casos E. acervulina causa una coccidiosis SUBCLINICA.
  11. 11. Patogenicidad Eimeria tenella Se desarrolla en las capas profundas de la pared intestinal. La segunda generación de esquizontes puede penetrar profundamente en la pared muscular. Cuando los esquizontes liberan a sus merozoitos, largas porciones de epitelio son destruidas. Provocando enterítis hemorrágica y pérdida de sangre. En muchos casos E. tenella causa coccidiosis CLINICA, con elevada mortalidad.
  12. 12. Anticoccidiales: programas usuales Anticoccidial adicionado al alimento Coccidiostato Tratamiento masivo Diariamente la misma dosis, no de acuerdo con la edad y el peso Frecuentemente no cubriendo el cíclo de vida entero de todas las especies Se necesita un reforzamiento del programa anticoccidial en la granja
  13. 13. COCCIDIOSTATOS PROBLEMAS FRECUENTES  Ausencia o concentración deficiente de producto en el alimento.  Consumo insuficiente de coccidiostato en el alimento (programas de restricción alimenticia).  La aparición de coccidias resistentes.  Deficiencias en la rotación de programas anticoccidiales.
  14. 14. Coccidiosis: causas COCCIDIOSIS PRIMARIA Debido a un alto desafío con cepas muy patógenas de coccidia. COCCIDIOSIS SECUNDARIA La coccidia toma ventaja de otros factores, que afectan a las aves y a su salud en general:  Directamente asociado a las aves ( vacunaciones, stress, otras enfermedades, ejemplo : gumboro y enteritis necrótica)  Factores ambientales ( alimentación, ventilación, densidad de población)
  15. 15. Coccidiosis primaria Progressive decrease of the efficacy of the in-feed anticoccidial OOCYSTE (forme de résistance) NON SPORULÉ NON INFECTANT Multiplication of resistant Eimeria resistant Eimeria clinical or subclinical healthy coccidiosis bird
  16. 16. Coccidiosis secundaria •concurrent disease sick •general hygiene problems •stress bird •managment failure… DECREASE DECLINE some resistant of the consumption of of the natural Eimeria robustness of the - water birds - feed - in-feed anticoccidial healthy bird clinical or One flock subclinical coccidiosis Normal level of resistant Eimeria
  17. 17. Diagnóstico  Historia clínica  Exámen clínica  Exámen post mortem  Exámenes de laboratorio
  18. 18. Historia Clínica Factores que influyen:  Manejo de la parvada: - Densidad de población - Temperatura - Humedad (ventilación) - Calidad de la cama - Calidad de la ración  Programa de coccidiostatos.  Parámetros de producción (mortalidad, etc.)  Enfermedes previas recurrentes/mortalidad.
  19. 19. Examén Clínico Cambios crecientes de postura y comportamiento:  Comportamiento normal  Plumas erizadas  Comienzo de temblores y postración  La postración y los temblores comienzan a ser severos,  Los animales estan letargicos.  Los animales estan aglomerados y muy deprimidos, las plumas estan muy erizadas.  En algunas ocasiones estan postrados y cierran sus ojos
  20. 20. Signos Clínicos Severa Plumas erizadas postración Posición corporal tipica
  21. 21. Pollo Afectados de saludable coccidiosis
  22. 22. Exámen postmortem • LESIONES • Son muy típicas ( con manchas). • Se observan en los intestinos abiertos y en algunas ocasiones tambien las podemos observar por fuera, (grado 4) •Para otras especies de Eimeria las lesiones no son tan típicas y el personal de laboratorio necesitará de mucha experiencia para identificarlas.
  23. 23. Exámen postmortem • Para la Eimerias de pollo, las especies fueron identificadas y caracterizádas por su típica localización por Johnson y Reid en 1970. • Otra posibilidad, es medir el tamaño de oocisto para identificar la especie a la cual pertenece
  24. 24. Eimeria acervulina Duodeno Algunos nódulos de esquisontes
  25. 25. Segmento intestinal • Los segmentos son una herramienta adecuada para encontrar la presencia de oocistos (diagnóstico cualitativo) pero no para cuantificar su número, esta cantidad dependera de la localización de donde fué tomado el fragmento.
  26. 26. Segmento intestinal • Si coincedentemente fueron tomadas con manchas blancas, muchos oocistos y esquizontes pudieran ser observados normalmente. • Pero normalmente solo pocas manchas blancas pueden estar presentes en el intestino.
  27. 27. Segmento intestinal • Los segmentos deben ser tomados al menos de las 3 partes ( duodeno, yeyuno y ciego) y mejor 5 localizaciones que cubran la mayor parte de las especies. • Los segmentos necesitan ser tomados profundamente en la mucosa para que incluya las especies que se desarrollan en éstas capas.
  28. 28. Segmento Intestinal Eimeria Eimeria Eimeria Eimeria Eimeria acervulina maxima necatrix brunetti tenella Eimeria Eimeria mitis praecox
  29. 29. Eimeria acervulina Característica lesión Íleon en pared Lesion +4
  30. 30. Eimeria tenella Contenido cecal con sangre Sangre Lesion +2
  31. 31. Eimeria tenella Visible deformación y pared transparente Contenido con Pared intestinal numerosas petequias y inflamada y engrosada sangre Lesion +4
  32. 32. Eimeria acervulina Eimeria tenella Numerosos zigotos y Abundantes oocistos merontes (“grapes”)
  33. 33. Exámen Coproparasitoscópico Existen dos métodos de evaluación: • CUALITATIVO: • Búsqueda de ooquistes • Flotación, búsqueda microscopica • Raspado de mucosa, busqueda microscopica. • CUANTITATIVO: • Conteo de ooquistes • Prueba de Mc Master
  34. 34. Prevención Higiene Manejo de instalaciones  Limpieza  Ventilación  Desinfección  Densidad de población  Control de roedores y  Alimentación aves silvestres.  Cuidado diario, manejo de  Alimentación registros. Medicamentos  En alimentación anticoccidiana, dosis diaria recomendada.
  35. 35. Tratamiento Administración estratégica  La dosificación exacta previene brotes y coccidiosis subclinicas. Administración Metafilactica  Cuando alguno de los animalaes del grupo muestran signos, o declinan sus parámetros de producción y por la historia Tratamiento del brote agudo: de la granja se asume que  Con un farmaco administrado hay coccidiosis subclínica. en el agua, con la dosis óptima, minimizas mortalidad y perdida de producción.
  36. 36. PROGRAMAS DE USO DE BAYCOX S.O. 2.5% PARA EL CONTROL DE COCCIDIOSIS AVIAR 1. Terapéutico 2. Post-vacunal 3. Metafiláctico
  37. 37. TERAPÉUTICO En brotes clínicos de coccidiosis (Eimeria tenella, E. necatrix, E. máxima, E. acervulina, E. brunetti, E. mivatti, etc.) Administrar Baycox: 1 litro por 1000 litros de agua 7 mg/kg de peso en toma contínua por 48 horas.

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