La influenza aviar es una enfermedad viral que afecta principalmente a aves y puede transmitirse a humanos. Puede ser de baja o alta patogenicidad dependiendo de su capacidad para causar enfermedad grave. Se transmite entre aves a través de secreciones respiratorias y heces. El diagnóstico requiere aislamiento e identificación del virus mediante pruebas moleculares o cultivo viral. No existe tratamiento, por lo que el control se basa en medidas de bioseguridad, vacunación y sacrificio de aves infectadas.
4. ¿Cuándo y Dónde?
• Italia 1878: Flow Plague o Enfermedad de Lombardia.
• 1955: Werner Schafer lo describe como virus de tipo
Influenzavirus A.
• Escocia 1959: Subtipo IA H5N1 fue por primera vez
reconocido entre aves silvestres y era de baja
patogenicidad.
• 1996: H5N1 mutó, convirtiéndose en un virus de alta
patogenicidad.
5. Especies Susceptibles
• Especies avícolas para el consumo.
• Aves de compañía.
• Aves silvestres.
• Especies de mamíferos: humanos, ratas y
ratones, comadrejas y hurones, cerdos, gatos,
tigres, perros, etc.
6.
7. Distribución Geográfica
• Se ha registrado en TODO el mundo.
• Las diferentes cepas pueden tener una mayor
prevalencia en determinadas zonas.
8. Estado de Sonora
• No se han reportado casos de Influenza Aviar.
• San Luis Río Colorado: Debido a los recientes brotes de
influenza aviar detectados en Estados Unidos, se prohíbe la
importación de cualquier tipo de aves o productos avícolas
originarios o procedentes de California. (07 Feb 2015)
9. Importancia Económica
• El impacto de un brote de influenza aviar
puede llegar a ser bastante significativo.
• Representa una gran amenaza para la
industria avícola por su elevada morbilidad,
mortalidad y por su rápida diseminación.
12. Descripción del Virus
• Virus RNA.
• Partículas víricas con un
diámetro de 80-120
nanometros.
• Forma esférica o en
forma de filamentos.
• La envoltura contiene
proteínas:
Hemaglutinina y
Neuraminidasa
13. Resistencia
Depende de la temperatura, el pH, la salinidad y la presencia de
material orgánico.
• Parecen sobrevivir mejor en temperaturas bajas y en agua
fresca.
• IABP: persistieron en agua destilada durante más de 100 días
a 28 °C y 200 días a 17 °C.
• IAAP: persisten en agua fresca durante 100 días o más a 17 °C
y durante 26 a 30 días a 28 °C.
14. • Los virus de influenza aviar podrían vivir indefinidamente
cuando se congelan.
• Los virus de la IABP (H7N2) persistieron hasta dos semanas en
las heces y en jaulas.
─ Estos virus podrían sobrevivir hasta 32 días a una T° de entre 15 °C y 20 °C
y durante al menos 20 días a una T° de entre 28 °C y 30 °C.
15. Subtipos
• Se clasifican en base a dos
antígenos de superficie:
- Proteína Hemaglutinina (H)
- Proteína Neuraminidasa (N)
Existen 16 antígenos de H (de H1 a
H16) y nueve antígenos N (de N1 a
N9).
Cepas
• Se describen de acuerdo a:
- Tipo
- Huésped
- Lugar del primer aislamiento
- # de cepa
- año de aislamiento
- subtipo de antígeno
Ejemplo:
Un virus H5N1 aislado de los pollos
en Hong Kong en 1997 es:
A/pollo/HongKong/y385/97 (H5N1).
Se dividen en
16. Categorías de IA
La influenza aviar se divide en 2 grupos de
acuerdo a las características genéticas del virus y
a la gravedad de la enfermedad:
- Influenza Aviar de Baja Patogenicidad (IABP).
- Influenza Aviar de Alta Patogenicidad (IAAP).
17. IAAP
• Normalmente causan enfermedades graves en
las aves de corral.
• Produce signos clínicos graves y/o alta
mortalidad entre las aves.
• Solo los subtipos que contienen H5 o H7 han
resultado altamente patogénicos.
18. IABP
• Son generalmente mucho más leves.
• Produce pocos signos clínicos o ninguno en las
aves.
• Existen virus H5 y H7 de IABP, y estas cepas
pueden evolucionar a cepas de alta
patogenicidad.
19. Subtipos
• Los más conocidos son:
- IAAP:
H5N7, H5N1 y H7N7.
- IABP:
H5N2, H7N1 y H9N2.
20.
21. Transmisión
• Transmisión horizontal.
• En el caso de las aves:
El virus se excreta a través de las heces, también de
la saliva y las secreciones nasales.
- Vía fecal-oral
- Vía fecal-cloacal
22. • En las granjas:
- Contacto directo con secreciones de aves
infectadas.
- Alimentos, agua, equipo y ropa contaminados.
- Las aves acuáticas y marinas pueden introducir el
virus en las granjas avícolas.
- Huevos rotos contaminados pueden infectar a los
pollitos en la planta de incubación.
23. • Entre países:
- Se produce por el tráfico internacional de aves
vivas y por las aves migratorias.
24. Periodo de Incubación
• En aves de corral es de 1 a 7 días.
• La excreción del virus puede comenzar 1 o 2
días después de la infección.
- La excreción puede durar de 1 a 2 semanas.
25. Órganos en los que se Replica
• Inicialmente en: células epiteliales del tracto respiratorio superior
y del intestino.
• Cuando pasa a IAAP se empieza a replicar en diferentes tejidos y
órganos como son los endotelios vasculares y las meninges
produciendo hemorragias múltiples y alteraciones nerviosas.
• El proceso infeccioso es sistémico con replicación vírica en casi
todas las vísceras produciendo una elevada mortalidad.
• La muerte se produce por un acumulo de fallos en varios órganos.
26.
27. Mortalidad y Morbilidad
• Las tasas de morbilidad y mortalidad pueden ser
cercanas al 100% entre los 2 y 12 días después de
los primeros signos de enfermedad.
• Las aves que sobreviven generalmente tienen
pobre condición y retornan a la postura tras un
período de varias semanas.
31. Signos Clínicos
• IABP:
Produce infecciones asintomáticas o puede causar:
- Enfermedades respiratorias leves
- Plumaje erizado
- Disminución en la producción de huevos
- Descarga nasal y ocular
- Diarrea
- Edema en cabeza, cresta y cloaca
- Peritonitis
34. Signos Clínicos
• IAAP:
Afecta al tracto respiratorio, también invade varios órganos y tejidos y
puede producir hemorragia interna masiva.
- Muerte súbita
- Diarrea
- Regurgitación
- Estornudos
- Adelgazamiento
- Llagas abiertas
35. - Pus en boca, fosas nasales, oídos o cloaca.
- Hinchazón generalizada o decoloración de los tejidos de la
cabeza.
- Plumas anormales
- Comportamiento anormal (caídas, inclinación de la cabeza,
giro de la cabeza y cuello, marcha en círculos, parálisis, etc.)
- Problemas de locomoción (no se pueden mantener de pie, o
no mueven las alas de manera normal)
- Mortalidad masiva
44. Lesiones Macroscópicas
Forma Hiperaguda
- No presenta lesiones
macroscópicas
significativas.
- Aves jóvenes.
- Severa congestión de la
musculatura y
deshidratación.
Forma Aguda
- Edema subcutáneo del área
de cabeza y cuello
- Conjuntivas congestionadas
con petequias
- Traqueítis hemorrágica
- Etc.
49. Signos y Lesiones Patognomónicos
• No hay signos ni lesiones que se consideren
patognomónicos.
• El diagnóstico de la enfermedad depende del
aislamiento del virus.
52. Pruebas de Laboratorio
• Técnicas moleculares:
r-PCR (reacción en cadena de la polimerasa inversa)
- Métodos rutinarios de diagnóstico precoz.
- Permiten detectar con bastante fiabilidad la
presencia del virus en cantidades mínimas a
partir de exudados traqueales o de heces.
53. • Aislamiento e identificación del virus:
- Necesario para un diagnóstico definitivo.
- Cultivo en embrión de pollo (huevos de gallina
embrionados de 9- 11 días de edad) a partir
de muestras de tráquea y cloaca (o heces) de
aves vivas, o de distintos órganos y heces de
aves muertas.
54. • Detección de anticuerpos: a partir de muestras sanguíneas.
No tienen valor diagnóstico, ya que únicamente indican
que el animal ha tenido contacto con el virus y su
organismo ha reaccionado frente al agente.
Pruebas Serológicas:
- Inmunodifusión en gel de Agar
- Ensayos de hemaglutinación
- Ensayos de inhibición de la hemaglutinación
- ELISA
55. Muestras
• Aves Vivas:
- Exudados orofaríngeos, traqueales o cloacales.
• Aves Muertas:
- Exudados orofaríngeos, traqueales y cloacales.
- Muestras de órganos (tráquea, pulmones, sacos
aéreos, intestino, bazo, riñón, cerebro, hígado y
corazón).
56. • Las muestras deberían colocarse en tampón
salino fosfato isotónico (PBS), pH 7.0-7.4, con
antibióticos.
- Ejemplos de antibióticos:
Penicilina, Estreptomicina, Gentamicina y Micostatina
57. Toma de Muestras
• Etiquetar cada muestra (# identificación animal, especie, lugar, fecha y
tipo de órgano o de muestra).
• Aves Vivas:
- Dos hisopados traqueales y dos cloacales, colocados en tubos de
transporte viral separados.
- Sangre en un tubo con tapón rojo o verde, refrigerada y centrifugada;
suero o plasma en un criovial, congelado posteriormente.
• Aves Muertas:
- Hisopados y la sangre (como en la toma de muestras de aves vivas).
- Trozos de al menos 2 cm x 2 cm colocados en viales estériles y congelados.
58.
59.
60. Tratamiento
• No se trata.
• Sacrificio y destrucción de aves afectadas.
- Eliminación de cadáveres: Incineración,
enterramiento.
61.
62. Vacunas
• No son utilizadas de forma rutinaria.
• Utilizadas como medida de control preventiva o
auxiliar durante un brote.
• La vacunación proporciona protección contra los
síntomas clínicos y la mortalidad, reduce la
diseminación del virus y aumenta la resistencia al la
infección.
63. • Las vacunas pueden permitir a las aves excretar el virus
mientras permanecen asintomáticas .
• Las vacunas aviares son generalmente autógenas o de los
virus con el mismo subtipo o tipo de hemaglutinina.
• En la actualidad, las vacunas con licencia en los EE.UU.
incluyen las vacunas H5 con virus enteros inactivados y
las vacunas recombinantes contra la viruela aviar.
64. Medidas de Prevención
• Medidas de Bioseguridad.
• Evitar contacto con animales silvestres y aves migratorias.
• Evitar visitas innecesarias a otras explotaciones de aves.
• Uso de ropa especial (lavar y desinfectar botas)
• Evitar fauna nociva.
• Remover materia orgánica.
• Limpieza y desinfección de equipos y vehículos.
65. Medidas de Control
• Vigilancia Epizootiológica permanente.
• Monitoreos periódicos.
• Aisalmiento viral.
• Cuarentena.
• Control de la movilización.
• Tratamiento del foco.
• Despoblación de parvadas infectadas.
• Limpieza y desinfección.
68. Zoonosis
• Es una zoonosis.
• Pruebas de diagnóstico en humanos:
- RT-PCR pruebas de reacción de cadena de la polimerasa de transcripción inversa.
• Tratamiento:
4 drogas antivirales son activas para combatir los
virus de la influenza en humanos.
-Amantadina, Rimantadina, Zanamivir y Oseltamivir.
69. • Prevención y Control:
- Control de epidemias en las aves de corral disminuye el
riesgo de exposición en los humanos.
- Las personas que trabajan con aves infectadas deben
seguir las pautas de una correcta higiene.
- Profilaxis con fármacos antivirales para las personas
que sacrifican animales infectados por los virus H5N1.
- Vacunación contra influenza.
- Etc.
74. Relación de la Enfermedad y su
Importancia en la Avicultura Mexicana
México se ubica dentro de los primeros lugares
como productor de huevo y carne de pollo, por
lo que resulta necesario proteger el abasto
nacional y la inversión en la industria avícola.
76. Referencias
• Influenza Aviar algunas consideraciones sobre el virus y la enfermedad, Juan Carlos Abad y Manuel
Pizarro.
• Influenza Aviar, OIE
• Vigilancia de la Influenza Aviar Altamente Patógena en las Aves Silvestres, FAO Producción y
Sanidad Animal
• Gripe Aviar, Juan José Badiola Diez
• Influenza Aviar de Alta Patogenicidad, Iowa State University
• Lecciones Aprendidas de la Influenza Aviar, Uhart M., Karesh W., Smith K.
• Código Sanitario de los Animales Terrestres, OIE.
• Manual de Procedimientos Influenza Aviar, SENASA
• Enfermedades Exóticas de los Animales, Asociación de Salud Animal de los Estados Unidos
• http://www.oem.com.mx/tribunadesanluis/notas/n3697153.htm
• http://www.oie.int/fileadmin/Home/esp/Animal_Health_in_the_World/docs/pdf/2.1.14_Gripe_avi
ar_2007.pdf
• http://www.wpsa-
aeca.es/aeca_imgs_docs/patogenia_infeccion_influenza_aviar_perdiz_roja_bertran_46_symp_aeca
_texto.pdf
• http://www.fao.org/3/a-a0632s/
• ftp://ftp.fao.org/docrep/fao/010/a0632s/a0632s02.pdf
• http://sian.inia.gob.ve/repositorio/revistas_tec/ceniaphoy/articulos/n10/arti/brett_m/arti/brett_m
.htm# Lesiones microscópicas
• http://www.bi-vetmedica.com.mx/influenza_aviar.html
• http://www.fao.org/avianflu/es/qanda_es.html#1