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PARASITOLOGIA II
TECNICAS DE DIAGNOSTICO
ANTEMORTEM

By TANIA GODOY Q.
FROTIS DIRECTO DE HECES
• El método tiene entre sus características, la sencillez y rápidez para
llevarlo a cabo, además de lo económico que resulta realizarlo,
pues no requiere mucho material, es muy utilizado para el
diagnóstico de los protozoarios intestinales. Este método tiene una
fuerte limitante: la muestra utilizada es tan pequeña, que es poco
representativa.
MÉTODO DE GRABAN
• Es un método cualitativo y muy útil para el diagnóstico
de Dipylidium caninum. Consiste en la utilización de una
cinta engomada trasparente, que se coloca alrededor
del ano y de la zona perineal.
Técnica de Willis – Molloy
(SOLUCION SALINA SATURADA )
• Este método es muy útil para la identificación de
protozoarios, nemátodos y algunos céstodos, tomar en
cuenta que en esta solución no flotan algunos huevos
como los de Dipylidium y Taenia solium.
TÉCNICA SHEATHER o MTM
(Solución sacarosa)
• Permite identificar huevos de helmintos, larvas y quistes
de protozoarios. Específica para coccidios, es un
procedimiento rápido.
• Desventajas: los parásitos de mayor peso que la solución
empleada no flotará y no es recomendable para el
diagnóstico de Giardia.
Solución con sulfato de zinc
•

En esta técnica solo se obtienen resultados cualitativos.
Es recomendable para la identificación de quistes de
protozoarios los cuales no sufren alteraciones en sus
estructuras.
Técnica de Faust
• Quistes de protozoarios, así como huevos y larvas de
helmintos. Esta técnica tiene una gran ventaja, las
formas parasitarias se encuentran con facilidad, debido
a que se eliminan la gran mayoría de residuos y material
orgánico que es tan común en las heces de los
carnívoros.
• Su limitante es que es poco eficaz para huevos pesados
como los de Taenia spp.
TÉCNICA DE MCMASTER.
•

Es utilizada para determinar el número de huevos por gramo de heces y
también se utiliza para de LARVAS DE NEMATODOS Y OVOQUISTES
DE COCCIDIAS. Requiere de una cámara especialmente diseñada para el
conteo de los huevos, conocida como cámara de McMaster y de un líquido
de flotación, (NaCl, o Sheater azúcar). Para estimar el número de huevos
por gramo de heces, simplemente cada huevo observado dentro ó sobre
las líneas de demarcación se multiplica por 50.
LA TÉCNICA DE ELISA, ELITB Y EL WB
•

Se emplean métodos inmunológicos que permiten detectar
antígenos y anticuerpos anticisticerco en líquido cefalorraquídeo y
suero, como la técnica de ELISA, ELITB (Enzyme-Linked Immuno
Electro Trasfer Blot) y el WB (Western Blot). Las técnicas
radiológicas (TC, RM) podrían ser herramientas útiles para el
diagnóstico complementario, especialmente en la cisticercosis
humana por su elevado costo.
EXAMEN PARASITOLÓGICO DEL CALOSTRO O
DE LA LECHE.
• Este examen se puede identificar Toxocara vitolorum y
Strongyloides papillosus, mientras que en los ovinos y
caprinos solo es factible encontrar larvas de S.
papillosus. Debe realizarse el mismo día del parto y se
pueden prolongar durante 5 a 8 días post parto.
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  • 1. PARASITOLOGIA II TECNICAS DE DIAGNOSTICO ANTEMORTEM By TANIA GODOY Q.
  • 2. FROTIS DIRECTO DE HECES • El método tiene entre sus características, la sencillez y rápidez para llevarlo a cabo, además de lo económico que resulta realizarlo, pues no requiere mucho material, es muy utilizado para el diagnóstico de los protozoarios intestinales. Este método tiene una fuerte limitante: la muestra utilizada es tan pequeña, que es poco representativa.
  • 3. MÉTODO DE GRABAN • Es un método cualitativo y muy útil para el diagnóstico de Dipylidium caninum. Consiste en la utilización de una cinta engomada trasparente, que se coloca alrededor del ano y de la zona perineal.
  • 4. Técnica de Willis – Molloy (SOLUCION SALINA SATURADA ) • Este método es muy útil para la identificación de protozoarios, nemátodos y algunos céstodos, tomar en cuenta que en esta solución no flotan algunos huevos como los de Dipylidium y Taenia solium.
  • 5.
  • 6. TÉCNICA SHEATHER o MTM (Solución sacarosa) • Permite identificar huevos de helmintos, larvas y quistes de protozoarios. Específica para coccidios, es un procedimiento rápido. • Desventajas: los parásitos de mayor peso que la solución empleada no flotará y no es recomendable para el diagnóstico de Giardia.
  • 7.
  • 8. Solución con sulfato de zinc • En esta técnica solo se obtienen resultados cualitativos. Es recomendable para la identificación de quistes de protozoarios los cuales no sufren alteraciones en sus estructuras.
  • 9. Técnica de Faust • Quistes de protozoarios, así como huevos y larvas de helmintos. Esta técnica tiene una gran ventaja, las formas parasitarias se encuentran con facilidad, debido a que se eliminan la gran mayoría de residuos y material orgánico que es tan común en las heces de los carnívoros. • Su limitante es que es poco eficaz para huevos pesados como los de Taenia spp.
  • 10. TÉCNICA DE MCMASTER. • Es utilizada para determinar el número de huevos por gramo de heces y también se utiliza para de LARVAS DE NEMATODOS Y OVOQUISTES DE COCCIDIAS. Requiere de una cámara especialmente diseñada para el conteo de los huevos, conocida como cámara de McMaster y de un líquido de flotación, (NaCl, o Sheater azúcar). Para estimar el número de huevos por gramo de heces, simplemente cada huevo observado dentro ó sobre las líneas de demarcación se multiplica por 50.
  • 11.
  • 12.
  • 13. LA TÉCNICA DE ELISA, ELITB Y EL WB • Se emplean métodos inmunológicos que permiten detectar antígenos y anticuerpos anticisticerco en líquido cefalorraquídeo y suero, como la técnica de ELISA, ELITB (Enzyme-Linked Immuno Electro Trasfer Blot) y el WB (Western Blot). Las técnicas radiológicas (TC, RM) podrían ser herramientas útiles para el diagnóstico complementario, especialmente en la cisticercosis humana por su elevado costo.
  • 14. EXAMEN PARASITOLÓGICO DEL CALOSTRO O DE LA LECHE. • Este examen se puede identificar Toxocara vitolorum y Strongyloides papillosus, mientras que en los ovinos y caprinos solo es factible encontrar larvas de S. papillosus. Debe realizarse el mismo día del parto y se pueden prolongar durante 5 a 8 días post parto.