Dominancia apical
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  • INTERESANTE TRABAJO. UNA PREGUNTA, COMO HAGO PARA MANTENER LA DOMINANCIA APICAL DE UNA PLANTA DURANTE TODO SU CICLO. ES DECIR QUE NO EMITA BROTES LATERALES. DE LO Q ENTENDI SE PUEDE HACER CON AUXINAS, PERO CUALES Y EN QUE DOSIS
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Dominancia apical Presentation Transcript

  • 1. REGULACION HORMONAL DE LA DOMINANCIA APICAL Paola Becerra I.A. Maestría en Ciencias Agrarias 2011-I
  • 2.  El crecimiento del brote apical regula procesos de desarrollo como: Crecimiento de yemas axilares Orientación de laterales Crecimiento de rizomas y estolones Abscisión foliar Estos efectos son expresiones de control correlativo, a través del cual el meristemo apical ejerce su influencia de coordinación central en el desarrollo de la planta (dominancia apical)
  • 3. MANIFESTACION DE LA DOMINANCIAEN EL DESARROLLO DE LA PLANTA Las yemas axilares para el desarrollo de brotes axilares generalmente se mantienen en un estado de inhibición parcial o total o latencia Los niveles hormonales que aumentan el vigor de la yema apical fortalecen la dominancia apical, mientras que la presencia de yemas menos vigorosas permite el crecimiento lateral bajo la influencia de hormonas que promueven el crecimiento de la yema axilar
  • 4. Estas yemas pueden ser inducidas para el desarrollo deramas laterales cuando la planta se expone a condicionesfavorables o cuando el brote apical se pierde
  • 5.  Otro efecto dominante del ápice del tallo es hacer que las ramas situadas mas abajo crezcan de manera horizontal permitiendo que estas reciban luz Si después de quitar el ápice se aplica una auxina en el punto de corte , el desarrollo de la yema lateral y la orientación vertical de las ramas existentes de ven retardadas de nuevo
  • 6. Control por estructuras reproductivas En plantas maduras, la emergencia de estructuras reproductivas inicia una reorganización en la morfología general La inducción floral en Perilla demuestra un incremento en el numero de brotes axilares También se observa una correlación ente la inducción de floración y la inducción de yemas axilares en Chenopodium rubrum
  • 7.  El desarrollo reproductivo puede restringir severamente en crecimiento de yemas axilares Cuando el crecimiento de frutos esta acercándose al tamaño final, el crecimiento de las yemas axilares se detiene drásticamente En guisantes la defloración causa la continuación de el crecimiento apical
  • 8. Dominancia entre el desarrollo defrutos Generalmente los frutos asumen una posición de dominancia y reprimen el desarrollo de frutos mas jóvenesSi los frutos maduros son removidos, se reduce elaborto de frutos jóvenes lo que sugiere que losfrutos maduros son la fuente y la señal deinhibición del crecimiento.
  • 9. Control de la abscisión por elbrote apical La abscisión de peciolos inducida por el deshoje se incrementa en presencia del brote apical intacto. El corte del ápice causa retardo en la abscisión de peciolos Esta abscisión depende de la dirección del movimiento de la auxina en el peciolo. Cuando explantes de peciolo están preparados e incluyen la zona abscisión en el punto medio, y la AIA se aplica al extremo distal, la formación de la capa de abscisión se previene. Pero si la aplicación de AIA es próximo a la zona de abscisión esta se estimula
  • 10. Coleus, base foliar Prunus, base Capas de la zona de después de la foliar en corte abscisión abscisión longitudinalLa zona de abscisión se diferencia después en dos capas superpuestas: una capa deabscisión o separación hacia la hoja y una capa protectora suberosa hacia el tallo.En la capa de abscisión o separación las laminillas medias y a menudo las paredesprimarias de las células se gelifican, de manera que las células ya no están soldadas entresí y se separan. La hoja queda sostenida solamente por los hacecillos vasculares, dondelos vasos son obstruídos por tílides, y entonces cae, ya sea por su propio peso o por laacción del viento
  • 11. EFECTO DE HORMONAS AUXINAS En el ápice y en el coleoptilo AIA inhibición de yemas axilares de Phaseolus La expresión de la dominancia del ápice requiere del transporte basipetalo de AIA en la parte subapical del tallo. La aplicación del inhibidor del transporte de AIA, ácido triodobenzoico (TIBA)en lanolina por debajo del ápice libera las yemas axilares de la inhibición. Esto sugiere que la ramificación se debe a una falla en el en el ápice para exportar AIA
  • 12. AUXINAS Se han encontrado altos niveles de auxinas en frutos y semillas de varias especies El AIA derivado de frutos esta involucrado en la señal que regula la relación de dominancia entre estos Los frutos maduros logran dominancia reprimiendo la exportación de AIA de otros frutos
  • 13.  La participación de AIA en la dominancia de estructuras reproductivas, condición en la cual el crecimiento de las yemas axilares y el desarrollo de frutos jóvenes subordinados están reprimidos por los frutos viejos dominantes
  • 14.  En experimentos con frijol se ha mostrado que la fuente del estimulo inhibidor es la semilla de los frutos dominantes. Cuando los frutos maduros se les extrae la semillas las yemas axilares reanudan el crecimiento, y el desarrollo de los frutos mas jóvenes es liberado de la inhibición. Cuando se remplazan las semillas de las vainas con AIA o ANA se restablece el efecto de inhibición del crecimiento de los frutos en las yemas axilares y los frutos jóvenes subordinados.
  • 15. CITOQUININAS La aplicación directa de las citoquininas a yemas axilares estimula el crecimiento o brotación en muchas especies, anulando el efecto inhibitorio del ápice del brote. La auxina hace del ápice un sumidero de citoquinina sintetizada en la raíz, y este puede ser uno de los factores que intervienen en la dominancia apical
  • 16. CITOQUININAS Cuando se añade Ctq a una yema lateral latente, la yema comienza a crecer Zeatina parece ser la ctq mas activa en promover el crecimiento de las yemas axilares. La actividad de la Z y sus metabolitos en la yema esta relacionada con el potencial crecimiento de la yema. La benciladenina y la zeatina aumentan la elongación de las yemas laterales del guisante durante al menos dos semanas , mientras que la isopentil adenina y la quinetina consiguen crecimientos de menor duracion
  • 17. CITOQUININAS Es posible que los órganos dominantes actúen como un vertedero, activados por auxinas que controlan el suministro de ctq derivadas de las raíces, impidiendo el transporte de estas a estructuras subordinadas, lo cual reprime el crecimiento. hadacidina Ac. aspartico En experimentos con un inhibidor de síntesis de purina (Hadacidina) muestran que la síntesis de ctq endógenas en las yemas es necesaria para q ocurra crecimiento de la yema. Después de la decapitación, las yemas axilares tratadas con hadacidina permanecen inhibidas, y este efecto puede revertirse con aplicación de ctq
  • 18.  Las citoquininas se han propuesto como un segundo mensajero que media la acción de la auxina en el control de la dominancia apical Las citoquininas se sintetizan en las raíces y transportada a través del xilema a brotes axilares para romper la latencia de las yemas, mientras que la auxina modula la concentración de citoquinina, y por lo tanto la represión del crecimiento del Meristemo apical (Wang yLi, 2008) Estudios revelaron que una de las funciones de la auxina derivada del ápice en la dominancia apical es reprimir la biosíntesis de CK en los nódulos y que después de la decapitación CK son localmente sintetizadas en el tallo en lugar de ser transportadas de las raíces (Sakakibara, 2006)
  • 19. GIBERELINAS La aplicación exógena de GAs no libera las yemas axilares de la dominancia apical, pero puede causar elongación rápida de las yemas liberadas por otras hormonas. GA3 aumenta el efecto inhibitorio de AIA sobre la ramificación en arveja, cuando se aplican las dos simultáneamente a la yema apical. Este efecto es el resultado de una liberación mas eficiente del AIA por parte del ápice dominate.
  • 20.  La aplicación exógena de GA3 tiende a retardar la brotación de yemas Esto puede ser contrarrestado con aplicación de retardantes de crecimiento como triazoles los cuales incluso aceleran la brotacion.
  • 21. ABA Se ha observado que la decapitación de plantas de frijol causa, tanto un aumento en el contenido de AIA, como una disminución de ABA en las yemas axilares. Es probable que el ABA actúe como inhibidor en las yemas, ya que una disminución de niveles de ABA antecede la brotacion de las yemas.
  • 22. ABA Se ha encontrado ABA en yemas latentes laterales en plantas intactas. Cuando el ápice del brote se retira, los niveles de ABA disminuyen de los brotes laterales. Los altos niveles de AIA en el ápice puede ayudar a mantener los niveles altos de ABA en las yemas laterales. Quitar el ápice elimina una fuente importante de AIA, que puede permitir que los niveles de inhibidor baje
  • 23. ETILENO Altas concentraciones de AIA aumentan la síntesis de etileno, lo cual puede causar inhibición del crecimiento de algunas estructuras. La aplicación de AIA a segmentos etiolados de tallo de arveja, aumenta la tasa de síntesis de etileno en tejido nodal e inhibe el crecimiento de la yema lateral. Algunos estudios en Vicia faba encuentran que con la aplicación de AIA al sitio de corte y la aplicación de AVG (inhibidor de síntesis de etileno) este evita la inhibición del crecimiento de las yemas laterales, (es decir se da brotacion), sin embargo en otro estudio similar en frijol, se observo que se inhibió la brotacion en lugar de estimularla
  • 24. Desarrollo de plantas clónalesLa orientación de los órganos en las plantas permite clasificarlos en Ortotrópicos (ortogravitropicos) cuando crecen en forma vertical, Plagiotrópicos (plagiogravitropicos)cuando lo hacen en un determinado ángulo respecto al eje de la gravedad (por ej. ramas y raíces laterales.) Diagravitropicos cuando su crecimiento es completamente horizontal, Los estolones y rizomas son tallos que se consideran dentro de esta ultima categoría. La raíz y el tallo tienen ortogravitropismo (uno positivo y el otro negativo). Las raíces laterales crecen en un ángulo y son plagiogravitrópicas. Los rizomas de las zarzas por ejemplo crecen perpendiculares (rastreando el suelo) y serán diagravitrópicos. Lo que ocurre en el tallo horizontal es que las auxinas “por gravedad” caen hacia el lado de abajo, habrá más auxinas en el lado de abajo del tallo, éste crecerá más y por lo tanto el tallo se curvará.
  • 25. Desarrollo de plantas clónales Los tallos diagravitropicos como rizomas y estolones crecen sobre o debajo de la superficie del suelo y producen en posición vertical brotes ortogravitropicos de sus yemas axilares o terminales La forma del crecimiento depende de la longitud y la distribución de las yemas en los rizomas o estolones, así como la tasa de activación de las yemas axilares. Los meristemos apicales y axilares de los tallos diagravitropicos poseen un grado inusual de plasticidad del desarrollo que les permite tener estrategias de desarrollo
  • 26. Hormonas y desarrollo de plantasclonales Estudios indican que el papel de las auxinas y citoquininas en la dominancia apical se pueden aplicar al desarrollo de rizomas y estolones. Las yemas laterales de Solanum andigena se desarrollan en estolones horizontales, carentes de hojas en presencia del ápice, pero cuando este es decapitado, los estolones se transforman en tallos ortotrópicos con hojas, pero solo en presencia de raíces o citoquininas exógenas.
  • 27.  En esparrago y algunos pastos los contenidos de ABA en yemas de rizoma, previo a su brotacion, son altos y disminuyen cuando la yema inicia su crecimiento. El contenido endógeno de ABA en las yemas del rizoma regula en este caso la dominancia apical. La orientación horizontal de los tallos, generalmente libera las yemas laterales de la inhibición del ápice, a causa de la restricción del crecimiento apical debido al etileno liberado por el estrés provocado por la gravedad. Sin embargo no se sabe si los tallos orto y diagravitropicos difieren en la sensibilidad y síntesis de etileno. La capacidad de adaptación de las plantas que se reproducen mediante rizomas y estolones depende también de su habilidad para coordinar el crecimiento de las yemas axilares y otras respuestas similares con efectos ambientales.
  • 28. Estrategias de desarrollo Foraging (forrajear) rebuscar: en condiciones adversas la ramificación en rizomas y estolones es reprimida porque el crecimiento linear se incrementa Consolidación: colonización de nuevas áreas y consolidación del espacio ocupado. Estrategia conservativa: Plantas adaptadas a condiciones con escases de recursos presentan una tasa de crecimiento lento, reduce ramificación, producción de rizomas y estolones cortos y delgados
  • 29. DESARROLLO DE GAMETOFORO EN Cloronema Auxina CON Ctq Auxina Caulonema SIN Ctq (Schumaker and Dietrich, 1998) Annu. Rev. Plant Physiol.MUSGOS Plant Mol. Biol. 1998. 49:501–23 Haploid spores (A) germinate to form a filament consisting of chloronema cells (B,C). Subsequently, light and auxin induce changes in the tip cell to give rise to caulonema cells (D). A single-celled initial (D, arrowhead) forms on the second subapical cell of the caulonema filament. In the absence of cytokinin, the initial cell will continue to grow by tip growth to form a new lateral filament (E). In the presence of cytokinin, the initial cell takes on the morphology associated with the assembly of a bud to form the leafy shoot (F,G) that eventually bears the gametangia (not shown). Following fertilization, a diploid capsule (G) forms on the leafy shoot.
  • 30.  El paso de cloronema a caulonema es controlado por auxinas que se forman en los puntos de crecimiento. El caulonema tiene la capacidad de producir brotes que a su vez dan origen a tallos foliosos cuando el protonema alcanza el tamaño necesario para producir suficiente ctq Si no existen ciertos niveles de ctq endógena los brotes regresan a su condición de protonema
  • 31. CONTROL GENETICO Y CELULARDE LA DOMINANCIA APICAL En las yemas axilares de Pisum la mitosis es detenida. Pero esta se activa unas horas después de que el ápice es decapitado En arveja, el tratamiento con ABA disminuye la mitosis del meristemo y regiones subapicales de las yemas, retrasa el paso de G0-G1 Si el ápice es separado, la actividad mitótica y el crecimiento se reanuda en las yemas laterales después de algún retraso
  • 32. Expresión genética en yemasaxilares El mantenimiento de la inhibición de las yemas parece ser un proceso activo que puede involucrar genes específicos de activación de dormancia o de represión de crecimiento Las Aux y Ctq controlan el desarrollo de yemas por la activación de estos genes
  • 33.  EnPisum se muestra la expresión de una proteína ribosomal pGB8 que es muy baja en yemas dormantes de plantas intactas, pero incrementa pocas horas despues de la decapitación Díasdespues de la decapitación la activación de genes disminuye debido al efecto inhibitorio del rápido crecimiento de las yemas grandes Elcrecimiento de yemas axilares expresa fuertemente genes en respuesta a auxina pIAA4/5 y pIAA6 sugiriendo que la concentración de AIA incrementa el crecimiento de las yemas axilares
  • 34. Plantas transgénicas La transferencia del gen isopentil transferasa itp de A. tumefaciens a tabaco causa un fuerte incremento en el nivel endógeno de ctq, y estimula el crecimiento de las yemas axilares La sobreproducción de auxinas en plantas con el gen iaaM muestra una supresión casi total de las yemas axilares
  • 35.  Los genes rol del T-DNA de A.rhizogenes puede influenciar el desarrollo de la planta por el incremento de el nivel endógenos de Aux y Ctq, y mayor sensibilidad de las células a esas hormonas La expresión del gen rolB libera la auxina activa de los β-glucósidos inactivos, y los genes rolC β- glucosidasa libera ctqs activas de glucósidos conjugados
  • 36.  En tabaco con genes luxA y luxB como genes reporteros de luciferasa bacterial (enzimas de luminiscencia) se ha estudiado el nivel de AIA en varios tejidos durante el desarrollo En estas plantas los genes están bajo el control de sintasa mannopina de respuesta a auxina (mas) de A. tumefaciens La mayor expresión de los genes luxAB y rolABC corresponden a la disminución del nivel de la dominancia apical El incremento en la expresión de genes lux dentro de las yemas de plantas decapitadas precede al inicio de la brotación y esto puede indicar cambios hormonales importantes involucrados en la liberación de la dominancia apical.
  • 37. Papel del calcio en la acciónhormonal y polaridad Los iones Ca2+ transportados al órgano dominante puede ayudar a la liberación reciproca de auxinas y contribuir a la posición constante de la dominancia de ese órgano. El transporte de Ca2+ a los órganos subordinados puede disminuir por la poca disponibilidad de este o por la incapacidad de liberar auxina, y esto ocasiona un debilitamiento e induce deficiencia de calcio en el órgano inhibido. El Ca2+ también previene la brotacion por efecto de Ctq
  • 38. GRACIAS