Tuberculosis.exp.mayo 2012

1,985 views

Published on

0 Comments
0 Likes
Statistics
Notes
  • Be the first to comment

  • Be the first to like this

No Downloads
Views
Total views
1,985
On SlideShare
0
From Embeds
0
Number of Embeds
3
Actions
Shares
0
Downloads
60
Comments
0
Likes
0
Embeds 0
No embeds

No notes for slide

Tuberculosis.exp.mayo 2012

  1. 1. UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR UNIVERSIDAD NACIONAL DE LOJA Centro Internacional de Zoonosis TUBERCULOSIS BOVINAExpositores: Dr. Franklin Román Cárdenas Dra. Jhuliana Luna Herrera Quito- Ecuador Abril 2012
  2. 2. INTRODUCCIÓN• La Tuberculosis bovina (TBB) es una importante zoonosis, causada por Mycobacterium bovis .• Importancia económica debido a la disminución de peso 36%, disminución en la producción láctea 13% y pérdidas en tasas de reproducción 12%; y, de salud pública ( El 2% de las infección tuberculosa pulmonar y el 9,4 % extrapulmonar, en el hombre son causadas por M. bovis ).Fuente: Acha & Szyfres, 2001; Kantor & Ritacco, 2006.; Suazo et al.,2003 www.prensalibre.com
  3. 3. HISTORIA Tuberculosis en América LatinaPalomino, 2007 www.biografiasyvi das.com Migración de europeos Agricultura primitiva y domesticación del ganado es.wikipedia.org/ Período paleolítico wiki/Historia_de_l a_tuberculosis
  4. 4. HISTORIA Año Acontecimiento1882 Descubrimiento de M. tuberculosis por Koch.1883 Zopf propuso el nombre “Bacterium tuberculosis”. www.biografiasyvi1896 Lehman & Neumann asignaron las especies al género das.com Mycobacterium.Finales del Reconocimiento de M. bovis por T. Smith.Siglo XIX1909 Se confirma bacteriológicamente el primer caso de tuberculosis pulmonar bovina.1970 El nombre fue oficialmente asignado por Karlson & Lessel. es.wikipedia.org/ wiki/Historia_de_lFuente: Rothschild B, 2001 a_tuberculosis
  5. 5. E T I O LO G Í A GÉNERO MYCOBACTERIUM MTC MOTTM. tuberculosis Otras micobacterias diferentes al ComplejoM. africanum MycobacteriumM. bovis Tuberculosis.M. canettiM. bovis BCGM. pinnipeddiiM. capraeM. necrotiFuente: Leâo et al., 2004.
  6. 6. E T I O LO G Í Awww.microbewiki.kenyon.edu/index.php/Myc es.wikipedia.org/wiki/Mycobacteriumobacterium_bovis _tuberculosis
  7. 7. E T I O LO G Í A . Estructurahttp://es.scribd.com/doc/20179954/12-MYCOBACTERIUM
  8. 8. Hospederos de M. Bovis www.prensalibre.com
  9. 9. Vías de Eliminación http://gdrake.blogspot.com www.prensalibre.com
  10. 10. Transmisión http://gdrake.blogspot.comwww.engormix.com www.agrovetmarket.com Serrano J, 2009 www.prensalibre.com
  11. 11. SIGNOS CLÍNICOS Y LESIONESProaño Pérez, 2010 Cornell University College of Veterinary Medicine, 2010, tomado por UNAM, Tuberculosis Bovina.
  12. 12. PATOGENIA COMPLEJO Bacilo --- Organismo PRIMARIO Chancro de inoculación (LesiónFoco latente primaria) Cura en el hombre Bacilos en macrófagos libres Ganglios linfáticos (Adenitis) Generalización precoz inmediata Vía linfática Generalización precoz moderada o lenta o hemática Generalización precoz aguda Tb perlada, Tb miliar nodular PERIODO aguda SECUNDARIO Tb miliar tardía, Tb Diseminación por vía canicular pulmonar, acinosis galopante, nefritis TUBERCULOSIS CRÓNICA DE ÓRGANO exudativa (Lesiones características) MUERTE
  13. 13. EPIDEMIOLOGÍA MUNDIALPaíses libres de tuberculosis: Australia, Islandia, Dinamarca, Suecia,Noruega,…Países con programas erradicación: Japón, Nueva Zelanda, EEUU,México, algunos países de América Central y América de Sur.En muchos países desarrollados se ha reducido o eliminado la TBdel ganado vacuno. (Bolsas de infección en la fauna del Canadá, elReino Unido, los Estados Unidos y Nueva Zelanda).La prevalencia más elevada se registra en buena parte delterritorio de África y ciertas partes de Asia y las Américas.Fuente: CFSPH, OIE, 2010
  14. 14. EPIDEMIOLOGÍA MUNDIALMapa situacional de la tuberculosis bovina en 2008 (ene-jun A, jul-dic B) según la OIE.
  15. 15. EPIDEMIOLOGÍA EN LATINOAMÉRICA Y EL CARIBE Se encuentra en la mayoría de países de Latinoamérica y el Caribe (OIE, 2008) Enfermedad Re-emergente, por aparecimiento de nuevos casos (Ábalos & Retamal, 2004). El 24% de la población bovina latinoamericana se encuentra desprotegida (Gil & Samartino, 2001). De aprox. 374 millones de ganado en producción, el 70 % se mantiene en áreas donde la infección por M. bovis entre el ganado supera el 1%. Fuente: Proaño & Benítez, 2011
  16. 16. EPIDEMIOLOGÍA EN ECUADOR No se encuentra documentada, ni cuantificada claramente. No existe un programa que permita estimar la prevalencia nacional, ni las perdidas económicas. Ecuador con prevalencia relativamente alta (2006), pero con falta de reportes.Fuente: Proaño & Benítez, 2011
  17. 17. EPIDEMIOLOGÍA EN ECUADOR Estudios - CIZ CANTONES PREVALENCIA Otavalo, Espejo, El • 3,91 %. Ángel y Cayambe Andino-Ashqui, 2001. Mejía • 7,95 % (fincas grandes) • 3,40 % (fincas medianas) • 0,3 %(fincas pequeñas). (Proaño- Pérez et al., 2006) PREVALENCIA REAL 7.13% en la misma zona en fincas grandes; y, una tasa de incidencia anual de 1.7%. (Proaño-Pérez et al., 2009)Fuente: Proaño & Benítez, 2011
  18. 18. EPIDEMIOLOGÍA EN ECUADORFuente: Proaño & Benítez, 2011
  19. 19. EPIDEMIOLOGÍA EN ECUADORFuente: Proaño & Benítez, 2011
  20. 20. DIAGNÓSTICO
  21. 21. 1.Diagnóstico Directoa. Macroscópicob. Microscópicoc. Cultivo invitrod. Pruebas http://www.mycobacteriaMoleculares cultivo-demycobacterium- tub/ http://www.bioscan.http://www.guiatuberculosis.salud.gob.mx/indre/interior/lab.mycobacteria.
  22. 22. 2. Diagnóstico Indirecto a. Skin Test b. Prueba gamma-Interferón c. Elisa Indirecto d. Signos http://www.sian.inia.gob.ve_a.htm
  23. 23. Diagnóstico Directo a. Macroscopíahttp://www.tuberculosis.bovina.preguntasyrespuestaspdf .
  24. 24. b. Microscopía: Baciloscopía Las dos técnicas más comunes son la tinción de Ziehl Neelsen y la microscopía de fluorescenciahttp://www.metodosdediagnostico/tuberculosis.pdf
  25. 25. Tinción de Ziehl-NeelsenColorante fucsina fenicada calentada, decolorada con ácido- alcohol y contra teñida con azul de metileno. http://www.cenavece.salud.go.mx/indre/interior/lab.mycobacteria.
  26. 26. Técnicas fluorocrómicas Auramina-rodamina Bacterias muestran fluorescencia amarilla anaranjada Puede formar parejas o grupos en forma de cuerdashttp://www.oocites.diagnostico.tuberculosis.salud.htm.
  27. 27. Tiempo MáximoProcedimiento Técnicas Tiempo para de Sensibilidad Especificidad utilizado observar un campos extendido observados ColoracióExamen n de Ziehl- 24 H 15 min 300 22-80 % 99 %Directo Neelsen ColoracióExamen nDirecto Auramina/ 24 H 3 min 30 90-96 % 94-98 % Rodamina http://www.seimc.org/doc.tuberculosis.micobriologia/cap9a.pdf
  28. 28. REPORTEInforme Tinción de Ziehl- Fluorocromo (x 250) Neelsen(X1000)No BAAR 0 0Dudoso- 1-2 /300 campos (3 barridos) 1-2 / 30 campos (1 barrido)repetirPositivo (+) 1-9 /100 campos (1 barrido) 1-9 / 10 camposPositivo (++) 1-9 /10 campos 1-9 / campoPositivo 1-9 / campo 10-90 / campo(+++)Positivo >9 / campo >90 / campo(++++)http://www.uberculosis.bovinapdf-2
  29. 29. c. Cultivo in vitroEl pilar del diagnóstico de la TB se basa en laidentificación del agente causal
  30. 30. Medios sólidos clásicos.(Lowenstein-Jensen, Stonebrink y Middlebrook). •Desarrollo lento entre 4 y 8 semanas. •Se visualiza la morfología de las colonias. •Se mejora crecimiento en incubación con un 5-10% de CO2.http://www.latat.org.ar/tuberculosis.htm.
  31. 31. Los medios líquidos•Desarrollo más rápido de las micobacterias.•No se aprecia la morfología de las colonias.•Son de lectura automática osemiautomática•Basados en métodos radiométricos,(BACTEC)•Ó métodos colorimétricos (MGIT).•Diagnóstico a 10 y 14 díashttp://www.guiatuberculosis.salud.gob.mx/indre/interior/lab.mycobacteria.
  32. 32. Características de los medios Medios Sensibilidad Especificidad Medios sólidos 90 - 95% 90 -95% Medios Líquidos 80 -95% 20 – 40%http://www.latat.org.ar/tuberculosis.htm.
  33. 33. Reporte del Cultivo Contaminado Tubos inoculados con muestra contaminados Negativo No se observan colonias Positivo (+) De 20 a 100 colonias Positivo (++) Más de 100 colonias sin cubrir toda la superficie del medio. Positivo (+++) Colonias incontables crecimiento confluente.http://www.latat.org.ar/tuberculosis.htm.
  34. 34. MuestrasORIGEN RESPIRATORIO (Esputo, contenido gástrico, lavado bronquial ybroncoalveolar, biopsias endoscópicas o quirúrgicas).NO RESPIRATORIAS (Orina, LCR, sangre, médula ósea).http://www.guiatuberculosis.salud.gob.mx/indre/interior/lab.mycobacteria.
  35. 35. Decontaminación de muestrasKUBICA N-acetil-L-cisteína (NALC) e D- suave. hasta al 3%. 15 min. más difundido EE UU. (NaOH) 2%TACQUET Y TISON Laurilsulfato sódico al 3% y D. suave. medios con huevo . utilizado en Europa. NaOH al 1%PETROFF NaOH D. agresiva. 15 min. PETROFF NaOH D. agresiva. al 4% min 15KARLSON Fosfato trisódico al 13% y medios con huevo. Puede ser lesivo M. avium (CMA). cloruro de benzalconioLW -SUMIYOSHI A. sulfúrico al 4-5% Práctico en laboratorios con gran volumen de orinas.CORPER Y UYEI A. oxálico al 5% Efectivo m.contaminadas con Pseudomonas y en la recuperación de CMA a partir de heces.SMITHWICK Cloruro de cetil-piridinio al D. suave. Para transporte de ms. 24 h de exposición. medios con 1% y ClNa al 2% huevo . http://www.latat.org.ar/tuberculosis.htm.
  36. 36. Decontaminación-Digestión CIZ EliminarEsputo : 1 tubo , 2 ml centrifugar 10 min ., a 3000 rpm sobrenadanteHidróxido de sodio al 4% Agitar 20 seg Incubar 37 oC 20min ag.c/5min Centrifugar por 20 min 1-2 gotas rojo fenol HCL rosado a amarillo Homogenizar http://www.diagnbaciloscop/lab.mycobacterias.html
  37. 37. Condiciones de Incubación•La mayoría de las especies crecen a 35-37ºC.•M. marinum, M. chelonae, M. haemphilum, M. ulcerans,etc. temperatura de incubación óptima entre 25 y 33ºC.http://www.latat.org.ar/tuberculosis.htm.
  38. 38. Técnicas de Identificación de Especiehttp://www.cenavece.salud.go.mx/indre/interior/lab.mycobacteria.
  39. 39. Creci- Creci- Prueba %5 Preferencia Catalasa Especie miento miento de la Reducción Pirazina- Ureasa NaCl de Oxígeno pH:7 en LJ en ST Niacina de Nitrato midasa 68°C M. + + + + +/- +/- - Aerobio -tubercul osisM. bovis (1) + - - +/- +/- - Microaeró- - filo M. + - +/- +/- +/- + - Microaeró- - africanum filo M. canetti + - - + + + - …….. …. M. bovis + + (3) (3) - + ….. Aerobio - BCG(2) M. microti + - + +/- + +/- - Microaeró- - filo+, positivo/ -, negativo/ +/-, variableTomado de: (de Waard & Robledo, 2007; Prat, et al., 2003; SENASA, 2007)(1) En el primocultivo generalmente no desarrolla(2) M. bovis BCG comparte características bioquímicas similares con M. bovis. Un test confirmatorio para BCG es la resistencia acycloserina 20mg/L añadido al medio de Löwenstein-Jensen.(3) Algunas subcepas BCG pueden dar resultados débilmente positivos en las pruebas de Niacina y Nitrato reducción
  40. 40. Pruebas de sensibilidad y resistencia a medicamentosMedio líquido. lectura semiautomática 1-2 semanasMétodo Fluorométrico MGIT 960Medio sólido. Lectura visual 3-4 semanasMétodo de las proporciones en LJMétodo de las proporciones en Middlebrook 7H11http://www.cenavece.salud.go.mx/indre/interior/lab.mycobacteria.
  41. 41. d. Pruebas moleculares Sensibilidad 95% Especificidad 100%PCRGen Probe (AMTD)Amplicor MTBIDENTIFICACIÓNPCR enzima de restricciónSecuenciación genéticaRESISTENCIASecuenciación de DNAHibridaciónPCR punto final y tiempo realMicroarrays http://www.diagnostico-de-tbc-por-el-laboratorio-3
  42. 42. 2.Diagnóstico indirecto a. Skin TestEl aspecto de piel en respuestapositiva al PPDEs el resultado de laacumulación de célulasinmunológicas, principalmentede linfocitos, en la pielhttp://www.publicaciones/prueba-tuberculinica.pdf. http://www.pruebas_laboratorio/ mantux.
  43. 43. http://www.publicaciones/prueba-tuberculinica.pdf.Prueba tuberculina.Aplica. 0,1ml intradérmica Ano caudal. Cervical Simple. Cervical comparativa.Lectura: 72horas.http://www.guiatuberculosis.salud.gob.mx/indre/interior/lab.mycobacteria.
  44. 44. Interpretación Ano caudal Cervical simplePositivo 5 mm o más 3 mm o másSospechoso 3 – 5 mm 2 – 3 mmNegativo – 3 mm - 2 mmPruebas Sensibilidad EspecificidadAno caudal 75 - 82 % 96 – 99 %Cervical simple 70 – 74 % 97 – 99 %Cervical 68 – 96% 88 – 99%comparativahttp://www.publicaciones/prueba-tuberculinica.pdf.
  45. 45. Skin test en personas Sensibilidad 65 % y especificidad de 42 %Vía intradérmica en la cara anterior del brazo 0,1 ml con 2unidades de PPDLas reacciones deben leerse 48-72 positivo más de 5mm http://www.oocites.diagnostico.tuberculosis.salud.htm.
  46. 46. b. Prueba gamma-InterferónSensibilidad 81 % - 100% y especificidad de 94% - 100%Se realiza con sangre completa.Se emplean los mismos antígenos (PPD) ydetecta el mismo grupo de animales infectados.Ventaja respecto a intradermo reacción. El animalse maneja sólo una vez.Inconvenientes: Costo, necesidad de procesar lasangre inmediatamente después de suextracción.http://www.latat.org.ar/tuberculosis.htm.
  47. 47. c. Prueba Elisa Indirecto Sensibilidad 70-80 % Especificidad 98 %Es muy fiable en la detección de vacas"anérgicas" a las pruebas de la tuberculina ygamma-Interferón.http://www.sameens.dia.uned.es/tuberculosis/parte2
  48. 48. d. Signos y Síntomas Pulmonar Extra Pulmonar Tuberculosis Diseminadahttp://www.guiatuberculosis.salud.gob.mx/indre/interior/lab.mycobacteria.
  49. 49. Tratamientohttp://www.companiamedica.com/salud_marcha_contra_la_tuberculosis
  50. 50. Fármacos antituberculosos para personas en EcuadorRifampicina, isoniacida, pirazinamida, etambutol yestreptomicina. http://www.tratamiento+de+tuberculosis+en+ecuador_campania
  51. 51. ControlEn el hombre.•La prevención de la infección por M. bovisradica en la pasteurización de la leche.•La vacunación con BCG.
  52. 52. ControlEl único enfoque racional para reducir y eliminar las pérdidas que la infección ocasiona en el ganado y para prevenir los casos humanos por M. bovisEs estableciendo un PROGRAMA DE CONTROL Y ERRADICACIÓN DE LA TUBERCULOSIS BOVINA.http://www.medicocointeractivo.com/ap1/emiold/tuberculosis.
  53. 53. El hombre nunca deja de soñar…deja de soñar;cuando deja de existir… (Malcom Forbes) GRACIAS

×