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INTRODUCCION

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  • 1. Microbiología
  • 2. Integrantes: <ul><li>Aguilar Santos, Verónica. </li></ul><ul><li>Albán Ortiz, Max. </li></ul><ul><li>Alvítez Luna, Carol. </li></ul><ul><li>Araujo León Nataly. </li></ul>
  • 3. Características Morfológicas de los Microorganismos
  • 4. Células Eucariotas <ul><li>Las células eucarióticas son más grandes y de estructura más compleja que las procarióticas, y una diferencia fundamental es que las células eucarióticas poseen un verdadero núcleo. </li></ul>
  • 5. Células Eucariotas - Estructura
  • 6.  
  • 7. Células Procariotas - Morfología <ul><li>Cocos </li></ul>
  • 8. Células Procariotas - Morfología <ul><li>Bacilos </li></ul>Bacilos Fusiformes Formas Filamentosas
  • 9. Células Procariotas - Morfología <ul><li>Espiral </li></ul>
  • 10. Células Procariotas - Estructura <ul><li>Carecen de membrana nuclear, siendo el núcleo es difuso. </li></ul><ul><li>Material genético libre en el citoplasma. </li></ul><ul><li>Sólo constituyen organismos unicelulares, como las bacterias. </li></ul><ul><li>Citoplasma no presenta prácticamente ningún orgánulo y la membrana plasmática posee unos pliegues hacia el interior. </li></ul><ul><li>Pared celular composición variada, rígida y responsable de la forma de la célula. </li></ul>
  • 11.  
  • 12. Glicocalix <ul><li>Denominación Cápsula. </li></ul><ul><li>Capa mucilaginosa. </li></ul><ul><li>Función: </li></ul><ul><li>Adherencia. </li></ul><ul><li>Resistencia a la desecación. </li></ul><ul><li>Material de reserva. </li></ul><ul><li>Patogenicidad y virulencia. </li></ul>
  • 13. Pared Celular Peptidoglucano Rigidez Forma Celular Barrera Gram+ Protoplastos Gram- Esferoplastos
  • 14. Espacio Periplásmico <ul><li>Incluye: </li></ul><ul><li>RNasa y fosfatasa. </li></ul><ul><li>Penicilinasa. </li></ul><ul><li>Proteínas de transporte de nutrientes </li></ul><ul><li>Proteínas de unión a estímulos químicos. </li></ul><ul><li>Existe: Oligosacárido. </li></ul>
  • 15. Membrana Citoplasmática <ul><li>Espesor: 7,5 nm. </li></ul><ul><li>Composición: fosfolípidos (20% - 30%) y proteínas (50% - 70%). </li></ul><ul><li>No contienen esteroles menos rígidas que las de los eucariotas. </li></ul><ul><li>Función de la membrana citoplasmática: </li></ul><ul><li>Actúa como barrera. </li></ul><ul><li>Contiene enzimas biosintéticos producción de energía y síntesis de la pared celular. </li></ul><ul><li>MC. de muchas bacterias se extiende dentro del citoplasma formando unos túbulos que se llaman mesosomas.:Centrales y Periféricos. </li></ul>
  • 16. Membrana Externa G- <ul><li>Elementos de esta membrana externa son muy distintos a los de una membrana típica: </li></ul><ul><li>La bicapa es altamente asimétrica. </li></ul><ul><li>En la capa externa existe un 60% de proteínas y un 40% de lipopolisacárido (LPS). </li></ul><ul><li>En la capa interna no hay LPS, existiendo fosfolípidos (FL), lipoproteínas (LPP) y otras proteínas. </li></ul><ul><li>Funciones de la Membrana Externa </li></ul><ul><li>Actúa como tamiz molecular. </li></ul><ul><li>Condiciona propiedades de superficie: </li></ul><ul><li>Es la estructura donde se fijan los componentes del complemento. </li></ul>
  • 17. Bacteria Gram Negativa
  • 18. Matriz de las G+ <ul><li>Constituido por: </li></ul><ul><li>ácidos teicoicos. </li></ul><ul><li>ácidos teicurónicos. </li></ul><ul><li>ácidos lipoteicoicos. </li></ul><ul><li>Funciones de los polímeros de la matriz: </li></ul><ul><li>Suministra una carga negativa a la pared celular </li></ul><ul><li>Ac. teicoicos y teicurónicos constituyen el antígeno somático O de las bacterias G+. </li></ul><ul><li>Algunas bacterias sumistran junto con el PG, receptores específicos. </li></ul>
  • 19. Bacteria Gram Positiva
  • 20. Área Citoplasmática <ul><li>Ribosomas: </li></ul><ul><li>Formados por dos subunidades de diferente tamaño: 50 S y 30 S que conjuntamente forman el ribosoma bacteriano 70 S </li></ul><ul><li>Inclusiones: </li></ul><ul><li>Glóbulos de sulfuro </li></ul><ul><li>Gránulos de volutina </li></ul><ul><li>Poly-ß-hidroxibutirato (PHB). Con sudam III se tiñen de negro. </li></ul><ul><li>Glucógeno.se tiñe rojo con lugol. </li></ul><ul><li>Magnetosomas </li></ul>
  • 21. Área Nuclear <ul><li>Procariotas no poseen una membrana que englobe al núcleo. </li></ul><ul><li>El material nuclear ocupa la zona central de la célula formado por un único cromosoma circular. </li></ul>
  • 22. Flajelos <ul><li>Flajelos Polares Flajelos Perítricos </li></ul><ul><li>Flajelos Monotricos </li></ul><ul><li>Flajelos Lofótricos </li></ul><ul><li>Flajelos Anfítricos </li></ul>
  • 23. Fimbrias Pilis
  • 24. <ul><li>Tinción de Microorganismos </li></ul>
  • 25. Colorantes <ul><li>Usados como: </li></ul><ul><li>Existen colorantes naturales y sintéticos. </li></ul><ul><li>Clases de Colorantes: </li></ul><ul><li>Indicadores de pH en medios de cultivo. </li></ul><ul><li>Indicadores de oxidorreducción. </li></ul><ul><li>Demostrar funciones fisiológicas. </li></ul><ul><li>Ácidos </li></ul><ul><li>Básicos </li></ul>
  • 26. Tipos de Coloraciones <ul><li>Simples : </li></ul><ul><li>se usa un único colorante, que siempre es de tipo básico. </li></ul><ul><li>Se utilizan solamente para incrementar el contraste; </li></ul><ul><li>Si se utiliza un mordiente, hay que añadirlo justo antes del colorante. </li></ul><ul><li>Diferenciales: </li></ul><ul><li>se utilizan para distinguir entre tipos de microorganismos. consta de dos etapas: </li></ul><ul><li>una tinción primaria </li></ul><ul><li>una tinción de contraste. </li></ul><ul><li>Ejemplo: la tinción de Gram y la tinción de ácido-alcohol resistencia, ambas aplicadas a bacterias. </li></ul>
  • 27. Coloración Gram
  • 28. Bacterias G+ Bacterias G-
  • 29. Coloración Azul de Metileno <ul><li>Es un colorante básico, electropositivo. </li></ul><ul><li>Es una sal cuya base es coloreada y el ácido es incoloro. </li></ul><ul><li>Es un colorante nuclear. </li></ul>
  • 30. Muestra Patológica del Aparato Respiratorio
  • 31. Muestras de V.R.A. <ul><li>Los estreptococos grupo A son los responsables de faringitis bacteriana. </li></ul><ul><li>En la orofaringe pueden existir otras bacterias potencialmente patógenas, como Staphylococcus Aeuras, Streptococcus Pneumoniae, Haemophilus influenzae, Moraxella Catarrbais, enterobacteriaceas y Pseudomonas </li></ul><ul><li>La muestra se recogerá con una torunda de Dacron o alginato. La muestra se debe tomar de las aéreas amigdalares, la faringe posterior y cualquier exudado </li></ul><ul><li>Los estreptoccos grupo A y C diphtheriae son muy resistentes , su transporte al laboratorio no requiere precauciones especiales. </li></ul>
  • 32. <ul><li>Los intentos de tomar muestras para cultivo de la epiglotis, pueden conducir a obstrucción completa de la vía aérea en pacientes infectados. Por esa razón ,se evitaran tales cultivos. </li></ul><ul><li>El diagnostico especifico de una infección sinusal requiere aspiración directa del seno , transporte anaerobio apropiado hasta el laboratorio </li></ul>
  • 33. Muestras de V.R.I. <ul><li>Se pueden usar diversas técnicas para recoger muestras de las vías respiratorias inferiores : expectoración espontánea o inducida con solución salina, la broncoscopia y el lavado broncoalveolar, la aspiración transtraqueal y aspiración directa a través de la pared torácica </li></ul>
  • 34. Esquema de cómo se obtiene un cepillado bronquial protegido con catéter durante un examen broncoscopio. Tomado de Microbiología de Koneman
  • 35. Vías respiratorias : <ul><li>Nariz: </li></ul><ul><li>Muestra: frotis de fosas nasales. </li></ul><ul><li>Volumen: 1 torunda. Recipiente: medio de transporte Stuart. </li></ul><ul><li>  Garganta: </li></ul><ul><li>Muestra: frotis de faringe posterior, de úlceras, o lesiones purulentas. </li></ul><ul><li>Volumen: 1 torunda. </li></ul><ul><li>Recipiente: medio de transporte Stuart. </li></ul><ul><li>Esputo: </li></ul><ul><li>Muestra: esputo (no saliva). </li></ul><ul><li>Volumen: 2 ml. </li></ul><ul><li>Recipiente: envase estéril de boca ancha. </li></ul><ul><li>Aspirado bronquial: </li></ul><ul><li>Muestra: aspirado bronquial, transtraqueal o muestra de broncoscopia. </li></ul><ul><li>Volumen: 1 ml. </li></ul><ul><li>Recipiente: envase estéril. </li></ul>      Hisopo con medio de Stuart       Envase estéril de boca ancha
  • 36. <ul><li>Muestras Patológicas del Aparato Digestivo </li></ul>
  • 37. Heces Un gran número de bacterias pueden causar infecciones gastrointestinales. Su recuperación en cultivo requiere recogida de una muestra de heces adecuadas, transporte al laboratorio e inoculación en medios selectivos apropiados. Las muestras de heces se recogen en un bote limpio y cierre hermético y después se transfieren a un recipiente impermeable con sellado hermético. La muestra se transporta lo antes posible al laboratorio para evitar los cambios ácidos en las heces (debido a metabolismo bacteriano), que son tóxicos para gérmenes como Shigella.
  • 38. Muestras de Heces <ul><li>Coprocultivo habitual: </li></ul><ul><li>Muestra: muestra de heces. </li></ul><ul><li>Volumen: 1 g de heces. </li></ul><ul><li>Recipiente: contenedor especial Para-pak. </li></ul><ul><li>Consideraciones: estudio de Salmonella, Shigella, y Campylobacter . </li></ul>Contenedor especial Para-Pak Para Yersinia, E. coli : Muestra: muestra de heces. Volumen: 1 g de heces. Recipiente: contenedor especial Para-pak. Para Aeromonas y Plesiomonas : Muestra: muestra de heces. Volumen: 1 g de heces. Recipiente: contenedor especial Para-pak.
  • 39. <ul><li>Muestra Patológica del Aparato genitourinario </li></ul>
  • 40. <ul><li>A pesar de la variedad de bacterias asociadas con enfermedad de transmisión sexual, se centran en el aislamiento de Neisseria gonorrborae y Chlamdia trachomatis </li></ul><ul><li>El exudado uretral o endocervical debe ser inoculado de forma inmediata en medios selectivos apropiados para recuperación de N gonorrborrae . Esos medios contienen antibióticos para suprimir el crecimiento de otros microorganismos que pudieran estar presentes en la muestra. </li></ul><ul><li>N gonorrborae se muestra sensible al frío y su crecimiento requiere dióxido de carbono; por tanto, los medios se deben templar antes de la inoculación y después se colocaran en una atmósfera enriquecida con CO2. </li></ul><ul><li>Parte del exudado se extenderá tambien sobre una porta de cristal, se realizara una tinción con GRAM y se realizara al microscopio. </li></ul>Muestras Genitales
  • 41. Además estos microorganismos mueren con rapidez en contacto con el aire y la desecación, por lo que el examen microscópico se debe realizar en el momento de recoger la muestra. El material de las lesiones se examina mediante microscopia de campo oscuro, puesto que el organismo es demasiado fino para detectarlo con microscopio óptico La otra bacteria importante de enfermedades de transmisión sexual es Treponema Pllidum, el agente etiológico de la sífilis. Este microorganismo no se puede cultivar, por lo el diagnostico se establece mediante microscopia o serologia.
  • 42. <ul><li>Muestras Patológicas Urinarias </li></ul>
  • 43. Muestras Urinarias La orina constituye una de las muestras enviadas con mas frecuencias para cultivo. Puesto que la uretra esta colonizada por bacterias potencialmente patógenas, se debe desechar la primera porción de la orina obtenida mediante micción Además, los patógenos pueden crecer en la orina, por lo que se evitara el retraso en el transporte hasta el laboratorio, Una vez recibida la muestra en el laboratorio, se inoculan 1 a 10 ul de orina en cada medio de cultivo. De esta forma se puede cuantificar el número de organismos.
  • 44. Secreciones Urogenitales <ul><li>Muestra: secreciones vaginales o uretrales, torundas de cérvix, líquido prostático,... </li></ul><ul><li>Volumen: 1 torunda ó 0,5 ml. </li></ul><ul><li>Recipiente: medio de transporte Stuart (en muestras líquidas usa el tubo estéril de tapón verde). </li></ul><ul><li>Consideraciones: para estudio de Chlamydias utilizar medio de transporte específico. </li></ul>Hisopo con medio de Stuart Tubo estéril de tapón verde Transporte para Chlamydias
  • 45. Esputo expectorado Muestra de broncoscopia Aspirado Transtraqueal 1-2 ml Vía estéril con tampón de rosca , tubo o vial anaerobio solo para muestras recogidas evitando la flora del tracto alto Respiratorio-vías aéreas bajas Muestras se recogen con aguja y jeringuilla 1-5 ml Tubo o via estéril anaeróbios Respiratorio-senos La aplicación de una torunda , puede precipitar el cierre completo de la vía aérea , 20ml (adulto ) 5-10ml (niño ) Recoger sangre para el cultivo Respiratorio-epiglotis Frotar el área de inflamación ; recoger el exudado , evitar contacto con saliva , que puede estreptocco grupo A - Torunda sumergida en medio de transporte Respiratorio-faringe Consideraciones Volumen de muestra Sistema de transporte Muestra
  • 46. Requiere transporte rápido al laboratorio para evitar acción bactericida a los patógenos 1-10 Bole estéril con tampón de rosca heces La muestra se debe tomar en área de exudación 1-10 Torunda sumergida en medio de transporte Genitales Evitar bacterias uretrales 1-10 Tubo estéril Orina aspiración suprapubica La primera micción se evita porque esta contaminada por bacterias uretrales 1-10 ml Bole estéril para orina Orina sondaje Evitar contaminación de las muestras por bacterias de uretra o vagina 1-10 ml Bole estéril para orina Orina – porción media de micción Consideraciones Volumen de muestra Sistema de transporte Muestra
  • 47. <ul><li>Muestras Patológicas de Piel </li></ul>
  • 48. La muestra debe ser representativa y suficiente;debe ser tomada con precaución y con materiales estériles para no ser contaminada. Se debe tener en cuenta datos del enfermo para que apartir de ello pueda dar lugar a una hipótesis de la patología, que será corroborado con la muestra microscópica
  • 49. <ul><li>Tipos de Muestra : Raspados, Trosos de piel, Biopsias. </li></ul><ul><li>Examen de las Muestras : Examen microscópico en fresco, tinsiones permaentes. </li></ul><ul><li>Cultivo : Utilizar la porsion no tratada de la muestra </li></ul><ul><li>Métodos de recogida : Asépticos, frotis; sin concervantes. </li></ul><ul><li>Agentes Patógenos Probables : Trichophyton, especie de Candida y otras levaduras cutaneas </li></ul>
  • 50. <ul><li>Muestras Patológicas del Liquido Cefalorraquídeo </li></ul>
  • 51. <ul><li>Se toma la muestra del LCR a través de una punción lumbar. </li></ul><ul><li>La recogida de la muestra se hace con absoluta asepsia y se coloca en frascos estériles que sierren con tapon, teniendo en cuenta que sea la cantidad adecuada. </li></ul><ul><li>Se realiza el frotis y luego se tiñe con la tinsión Gram. </li></ul>
  • 52. <ul><li>Tipo de muestra : Liquida, que se debe procesar tan rápido comos sea posible. </li></ul><ul><li>Examen de las muestras : pueden se Macroscópicas , Microscopicas, Químicas. </li></ul><ul><li>Agentes patógenos probables: Virus del herpes simple, virus de laparotiditis. </li></ul>
  • 53. <ul><li>Muestras Patológicas de Medula Ósea </li></ul>
  • 54. <ul><li>Tipo de muestra : Se le saca un poco de medula ósea con algún instrumento adecuado ;el lugar mas común de sacar esta muestra es en el hueso de el esternón. </li></ul><ul><li>Agentes patógenos probables : Salmonella Typhy, Leshmania. </li></ul>

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