Anexo 3 gema orquiideas-premio unilever

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  • 1. IDENTIFICACIÓN INSTITUCIÓN EDUCATIVA SOL DE ORIENTE Sector: urbano de carácter oficial Medellín GRUPO DE ESTUDIO PARA EL MEJORAMIENTO AMBIENTAL - GEMA Dirigida a estudiantes de la institución, la comunidad, la ciudad, el país y el mundo Año de inicio 2005
  • 2. ORIGEN DE LA EXPERIENCIA La institución educativa atiende una población conformada a partir del desplazamiento y localizada en una zona de alto riesgo Los comportamientos que asume esta población son generadores de problemas que afectan las condiciones naturales y sociales. Exige respuestas urgentes de distintos ordenes.
  • 3. Se pretende crear un espacio educativoambiental que desde la investigación yseguimiento de los procesos se realicentrabajos de concientización, capacitación yaplicación que permitan construir futuro ygarantizar calidad de vida.
  • 4. ENFOQUE TEORICO Los estudiantes, docentes y comunidad tienen un sin numero de conocimientos previos, creencias, valores, costumbres, cosmovisiones, normas, alegrías y tristezas. En el espacio educativo se obvia esta rica y diversa experiencia acumulada, así como el proceso de vivencia en la escuela.
  • 5.  Se fundamenta en la relación participante (observador y observando). Se tiene en cuenta la naturaleza cualitativa y cuantitativa de una investigación. La clave es el desarrollo de competencias que permitan descubrir el entorno, entrar en contacto con la realidad y ser creativos en la búsqueda de soluciones.
  • 6. E D U C A C IÓ N A M B IE N T A L O R IE G E N A C C IO N E S IM P A C T O C R IS IS R E G IO N A L N A C IO N A L M U N D IA L ? G E N E R A L IZ A D A S S IS T E M A N A T U R A L S IS T E M A S O C IA LB IO T IC O A B IO T IC O IN D IV ID U O S O C IE D A D C U LTU R A
  • 7. METODOLOGIA Este modelo supone cuatro pasos generales1. Delimitación del problema2. Determinación de las condiciones3. Análisis de alternativas de solución4. Planeación y desarrollo de propuestas
  • 8. PRINCIPALES ACTIVIDADES Realización de actividades lúdico- educativas Capacitación Implementación de material didáctico Capacitación para la elaboración de proyectos. Accesoria y apoyo a proyectos
  • 9. LOGROS Parte activa en la construcción de la I.E. Sol de Oriente , y en la solución de sus problemas. Premio Nacional Unilever Andina con el proyecto “PROPAGACIÓN DE ORQUIDEAS EN VIA DE EXTINCIÓN PARA SU CONSERVACIÓN Y COMERCIALIZACIÓN Reconocimiento programa ONDAS proyecto plantas medicinales, barrio Villatina. Ganadores del 4to concurso Capital Semilla con la propuesta de capacitaciones ambientales.
  • 10. “PROPAGACIÓN DE ORQUIDEAS EN VIA DE EXTINCIÓN PARA SU CONSERVACIÓN Y COMERCIALIZACIÓN”
  • 11. INTRODUCCIÓNEste proyecto ha sido conformado con elpropósito de generar investigación en lacomunidad estudiantil, para recuperarespecies que están en vía de extinciónademás de generar conciencia en el temaambiental. Partiendo de una ideainnovadora como lo es el cultivo in Vitro.
  • 12. INTRODUCCIÓNColombia mega diversidad orquídeas 205 géneros 3500 especies 10%Ampliamente distribuidas en todo el territorio
  • 13. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMASISTEMA AMBIENTAL IMPACTO RECUPERACIÓN EXTINCION DE ESPECIES
  • 14. OBJETIVO GENERALPropagar orquídeas en vía de extinción para su conservación y comercialización en el cerro “Pan de Azucar” y parque “Arví”.
  • 15. OBJETIVOS ESPECIFICOS Recolección plantas madres en el cerro Pan de Azúcar y parque Arví Adecuar en el Aula Ambiental de la I.E. Sol de Oriente el laboratorio para el cultivo in Vitro de orquídeas. Estandarizar protocolo para reproducción de orquídeas a partir de semillas y explantes Propagar especies nativas en vía de extinción por cultivo in Vitro.
  • 16.  Construir un invernadero para el cultivo de orquídeas y especies nativas en vía de extinción. Formar a los estudiantes en los principios fundamentales que intervienen en la propagación vegetal, así como con los métodos y las técnicas útiles a emplear en este campo. Generar cultura ambiental.
  • 17. METODOLOGÍAEl cultivo in vitro se define como el cultivoen un medio nutritivo, en condicionesestériles, de plantas, semillas, órganos,explantos, tejidos, células y protoplastos deplantas superiores.
  • 18. CULTIVO DE TEJIDOS - Estudios básicos de fisiología, genética yTécnicas mediante las bioquímica. cuales un explante se - Bioconversión y cultiva asépticamente producción de en un medio de compuestos. composición química - Incremento en la definida y se incuba en variabilidad genética. condiciones - Obtención de plantas ambientales libres de patógenos. controladas. - Propagación de plantas. - Conservación e intercambio de germoplasma.
  • 19. FASES DE LA PROPAGACIÓN ESTABLECIMIENTO DEL CULTIVO Selección de la ASEPTICO planta donadoraFase 0 o Preparativa Fase I o Asepsia y viabilidad Establecimiento o de de los cultivos Iniciación
  • 20. CRECIMIENTO DEL INOCULO Fase II o Multiplicación ↓ Organogénesis y embriogénesis ↓ Miles de plantas en corto tiempo
  • 21. MEDIOS COMPONENTES WHITE HELLER MS NITSCH B5 KMMACRONUTRIENTESCa(NO3)2 · 4 H2O 300 - - - - -NaNO3 - 600 - - - -NH4NO 3 - - 1650 720 - 600(NH4)2SO4 - - - - 134 -KNO3 80 - 1900 950 2500 1900CaCL2 · 2 H2O - 75 440 - 150 600CaCL2 - - - 166 - -MgSO4 · 7 H2O 720 250 370 185 250 300KH2PO4 - - 170 68 - 170KCl 65 750 - - - 300Na2SO4 200 - - - - -NaH2PO4 · H2O 19 125 - - 150 -MICRONUTRIENTESMnSO4 · 4 H2O 7.0 0.1 22.3 25.0 - -MnSO4 · H2O - - - - 10.0 10.0ZnSO4 · 7 H2O 3.0 1.0 8.6 10.0 2.0 2.0H3BO3 1.5 1.0 6.2 10.0 3.0 3.0KI 0.75 0.01 0.83 - 0.75 0.75Na2MoO4 · 2 H2O - - 0.25 0.25 0.25 0.25CuSO4 - - - 0.25 0.025 -CuSO4 · 5 H2O - 0.03 0.025 0.025 0.025 0.025CoCl2 · 6 H2O - - 0.025 - 0.025 0.025AlCL3 - 0.03 - - - -NiCL 2 · 6 H2O - 0.03 - - - -FE – EDTANa2EDTA · 2H2O - - 37.3 37.3 - -FeSO4 · 7 H2O - - 27.8 27.8 - -Fe2(SO 4)3 2.5 - - - - -Fe3Cl3 · 6 H2O - 1.0 - - - - COMPUESTOS ORGANICOSGlicina 3.0 - 2.0 2.0 - -Ac. nicotínico 0.5 - 0.5 0.5 1.0 1.0Piridoxina HCl 0.1 - 0.5 0.5 1.0 1.0Tiamina - ClH 0.1 - 0.1 0.5 10.0 1.0Acido Fólico - - - 0.5 - -Mioinositol - 100.0 100.0 100.0 100.0 100.0Biotina - - - 0.5 - 0.01Sacarosa (g/L) - - 30 - 20 -pH 5.5 5.7-5.8 5.5 5.5 5.6
  • 22.  Hacer las soluciones macro y micro Vitaminas, Hormonas y Azúcar
  • 23.  Adición del agente gelificante (Si lo requiere) y calentamiento
  • 24.  Ajuste del volumen final.
  • 25.  Medición del pH
  • 26.  Servida y tapado del medio, empaque en los frascos con medio para ser esterilizados.
  • 27. ORGANOGENESIS Proceso de iniciación y desarrollo de una estructura que Callos Citoquininas muestra la forma y/o Explantes Auxinas función del órgano natural: Yemas (Caulogénesis) Raices (Rizogénesis)
  • 28. ENRAIZAMIENTO Fase III o Enraizamiento ↓preparar al material vegetal para su reacondicionamiento en campo ↓ sistema radical
  • 29. ACLIMATACIÓNFase IV o Aclimatación o Endurecimiento ↓ Condiciones para el transplante definitivo a campos comerciales o de producción.
  • 30. ETAPA IMONTAJE DE LABORATORIO CONSECUCIÓN DE RECURSOS- PROYECTO UNILEVER ADECUACIÓN DE ESPACIO
  • 31. ETAPA IIPROPAGACIÓN ORQUIDEAS  RECOLECCIÓN PLANTAS MADRES EN EL CERRO PAN DE AZUCAR Y PARQUE ARVÍ.  ESTANDARIZACIÓN PROTOCOLOS PARA SEMILLA  ESTANDARIZACIÓN PROTOCOLO PARA ESPLANTES
  • 32. ETAPA IIPROPAGACIÓN ORQUIDEAS  RECOLECCIÓN PLANTAS MADRES EN EL CERRO PAN DE AZUCAR Y PARQUE ARVÍ.  ESTANDARIZACIÓN PROTOCOLOS PARA SEMILLA  ESTANDARIZACIÓN PROTOCOLO PARA Ex PLANTES
  • 33. ETAPA IIIPROCESO EX-VITRO PRODUCCIÓN SUSTRATO PARA SIEMBRA EX-VITRO. ACLIMATACIÓN EN BANDEJAS PRODUCCIÓN EN INVERNADERO
  • 34.  Aclimatación:- Extraer la plántula del tubo y lavar las raíces para eliminar los restos del medio de cultivo, seccionar según el número de esquejes posibles de obtener.- Aparte agujerear la tapa de las cajas rectangulares de plástico (18 cm largo x 12 cm ancho x 7 cm profundidad) y colocar sustrato orgánico comercial. Con una varilla marcar sobre el sustrato los lugares donde se colocarán los esquejes (aproximadamente 20 esquejes/caja), plantarlos y regar con agua destilada.- Llevar las cajas a cámara de cultivo a 20ºC, fotoperíodo 16 hs de luz y 8 hs oscuridad, intensidad lumínica de 3000 lux.- Una vez enraizados los esquejes, llevar las cajas al invernáculo y se colocarlas bajo mesada por una o dos semanas hasta su plantación final en macetas.
  • 35. RESULTADOS
  • 36. Etapa I Equipos y reactivos Cámara de asepsia pHmetro Lámpara Ultravioleta Estantería para crecimiento Lámparas de neón Reactivos para protocolo casero y protocolo M.S.
  • 37. Plantas madre Se recolectaron 42 individuos de los géneros masdevallia y cattleya Se recolectaron 2 capsulas verdes de cattleya
  • 38. Áreas del laboratorio ALMACEN PREPARACION LAVADO ESTERILIZACION TRANSFERENCIA Incubación in vitro ObservaciónTerapia y Control Crecimiento in vivo Crecimiento in vivo
  • 39. ETAPA II
  • 40. Protocolo para semilla Medio de cultivo Extracto de banano: una papilla de banano, se adiciona agua destilada y abono que posea nitrógeno, fosforo y potasio) vitamina, acido micotinico, piroxidina, glicina y mioinositol. con extracto de banano ya listo y para dar consistencia se utiliza agar y como medio energético sacarosa. para un litro de medio, 3 gr de agar y 30 gr/L de extracto de banano.
  • 41. Protocolo para semilla siembra Se remueve la flor con bisturí. Se limpia con solución jabonosa Se enjuaga con agua destilada. Se introduce en solución de hipoclorito al1% durante 10 minútos. Se sumergen en alcohol industrial y se flamea. Se hace corte de la capsula, y se extraen las semillas llevándolas al medio. Se añade agua destilada sobre cada frasco para su distribución.
  • 42. RESULTADOSSe realizaron 5 siembras de 20 frascos cada una, con un intervalo de 30 días.
  • 43.  contaminación en  germinación las siembras
  • 44. TAMAÑO DEL EXPLANTE Grande → Posibilidad de formar callos Heterogeneidad y contaminación con microorganismos Muy pequeño → No hay formación de callos
  • 45. Protocolo Murashige Skoog
  • 46. SOLUCIÓN MADRE CONCENTRACIÓN GRAMOS (500 mL)A. Na2EDTA (EDTA Sal de sodio) 37,3 mg/L 0.01865 FeSO47H2O (Sulfato Ferroso) 27,8 mg/L 0.0139B NH4NO3 (Nitrato de amonio) 1,65 g/L 0.825 KNO3 (Nitrato Potásico) 1,9 g/L 0.95C H3BO3 (Ácido bórico) 0,62 g/L 0.31 KH2PO4 (Fosfato de potasio) 170 mg/L 0.085 KI (Iodo de Potasio) 83 g/L 0.0415 Na2MO4.2H2O (Molibdato de sodio) 25 mg/L 0.0125 CoCL2.5H2O (Dicloruro de cobalto) 2,5 mg/L 0.00125D 370 mg/L
  • 47. Contaminación Se realizaron 6 siembras para un total de 135 frascos sembrados con ex plantes En las cuatros primeras siembras dieron como resultado un 83.7% de frascos contaminados. La quinta y sexta siembra dieron como resultado un 65% de muestras contaminadas .
  • 48. Producción de callo
  • 49. ANALISIS YRECOMENDACIONES
  • 50. FACTORES QUE AFECTAN En la planta donadora tener en cuenta su estado fisiológico de desarrollo y fitosanitario además de su genotipo y especie en los que en ocasiones pueden ofrecer diferentes respuestas. En el explante la edad fisiológica, la ubicación en la planta madre y el tamaño, un explante muy grande puede contaminarse fácilmente y muy pequeño puede no responder al cultivo. Los factores físicos y químicos como luz temperatura y pH pueden ser cruciales, algunos explantes responden mejor a condiciones de baja temperatura que otros, o de acidez. En cuanto al medio de cultivo es pertinente realizar una revisión bibliográfica para tratar de aproximarnos al medio de cultivo más adecuado para la planta, además la consistencia del medio también puede afectar la respuesta.
  • 51. MEDIO DE CULTIVO Murashige o sus modificaciones. ↓Benéficas para el desarrollo de callos embriogénicos.Sacarosa → 12% Eleva el potencial.Carbón Activado → Evita la oxidación
  • 52. LIMITACIONES DEL CULTIVO DE TEJIDOS La planta madre como material de partida debe ser cuidadosamente seleccionado Conocimiento de las técnicas para elegir la más adecuada a las necesidades.
  • 53. ETAPA IVGENERAR CULTURA AMBIENTAL  DAR A CONOCER EL PROYECTO  CAPACITACIÓN EN BIOTECNOLOGIA VEGETAL-FORMACIÓN SEMILLERO  EDUCACIÓN AMBIENTAL A LA COMUNIDAD  GENERAR EMPRESA
  • 54. HACIA DONDE NOS DIRIGIMOS