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Malaria
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Diapositivas; ciclos del plasmodium,enfermedad y diagnostico

Diapositivas; ciclos del plasmodium,enfermedad y diagnostico

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  • 1. Keyla S. Navarro Ramos MALARIA
  • 2.
    • AGENTE ETIOLÓGICO
    • ORDEN : Eucoccidiida
    • FAMILIA : Plamodiidae
    • GENERO : P l asmodium
  • 3.
    • ESPECIES INFECTANTES PARA EL HOMBRE
    • P. Vivax
    • Falciparum
    • P. Malariae
    • P. Ovale
    • Diferenciación de especies p or preparaciones coloreadas
    Infectan al hombre con mayor frecuencia
  • 4.
    • EPIDEMIOLOGIA
    • Incidencia de 300 a 500 millones de casos clínicos al año.
    • N° de muertes de 1.1 a 1.7 millones al año.
    • Un millón > 5 años.
    • En colombia:
    • 90.2% área malarica.
    • P. vivax 63.3%.
    • P. falciparum 36.3%.
    • P. Malariae 0.025%.
    • P.ovale 1 caso
  • 5.
    • FORMAS PARASITARIAS EN SANGRE CIRCULANTE
    • Trofozoitos
    • Esquizonte
    • Merozoitos
    • Gametocitos
  • 6.
    • TROFOZOITO
    • Citoplasma: azul
    • Parasitos jóvenes forma de anillo
    • Parasitos adultos amebiode o en banda
    • Núcleo o cromatina: rojo
    • Masa unica compacta
    • Granulación en er i trocitos
    •   P. Vivax – ovale : schuffner
    • P. Falciparum : maurer
    • P. Malariae: ziemann
  • 7.
    • ESQUIZONTES
    • Dos ó mas masa s de cromatina
    • Acumulos de merozoitos
      • Roseta
      • Pigmento malarico
    • Eri trocitos
      • Forma y tamaño
      • Presencia ó ausencia de gránulos.
  • 8.
    • MEROZOITO
    • Forma oval
    • Miden 1.5 micras longitud por 1 micra diametro.
    • Membrana posee dos capas.
  • 9.
    • GAMETOCITOS
    • Libres o en todo el eritrocito
    • Citoplasma Azul pigmento malárico
    • Redondeados
    • Cromatina Masa única
        • Difusa
  • 10.
    • Ciclo esporogonico
    • Reproduccion Sexual
    • Mosquito
    • Huesped definitivo
    • Ciclo esquizogonico
    • Reproduccion Asexual
    • Hombre
    • Huesped intermediario
    CICLO DE VIDA
  • 11. CICLO ESPOROGONICO
    • Hembra Anopheles
  • 12.
    • CICLO ESQUIZOGONICO
    • Pentracion intercapilar de los esporozoitos a traves de la piel.
    • Dos Etapas
    • Etapa Pre – Eritrocitica Etapa Eritrocitica
  • 13.
    • ETAPA PRE – ERITROCITICA
    • Esporozoitos hepatocitos
    • Esquizonte tisular primario
    • Merozoitos tisulares
    • Invaden eritrocitos
    Numero merozoitos p. Malariae 2000 p. Vivax 10.000 p. Ovale 15.000 p. Falciparum 30.000
  • 14.
    • ETAPA ERITROCITICA
    • Merozoitos eritrocitos trofozoitos
    • hemozoina
    • Divide cromatina esquizonte merozoitos
    • Invaden nuevos eritrocitos
    • Nuevo ciclo
  • 15. Ciclo schizogónico Evolución Etapa pre-eritrocítica Etapa eritrocítica
  • 16.
    • TRANSMISIÓN
    • Vectores
    • Transfusión sanguinea
    • Cóngenita
    • Jeringas
  • 17.
    • PATOLOGIAS
    • Alteracion de eritrocitos
    • Alteraciones posteriores al daño eritrocitario.
    • Alteraciones en los órganos
  • 18.
    • MANIFESTACIONES CLINICAS
    • Depende de :
      • Especie parasito
      • Numero de parasito
      • Estado inmuitario huesped.
    • P. Incubacion: 7 –14 días
    • Cuadro clinico :
      • Escalofríos, fiebre, sudoración, leucopenia, anemia.
  • 19. Malaria RECRUDESCENCIA Resistencia a antimalaricos 30 días - P. falciparum RECAIDA Persistencia (Hipnozoitos) 30 días . P. vivax - P malarie REINFECCIÓN Nueva infección
  • 20.
    • MALARIA P. FALCIPARUM
    • Fiebre terciana maligna o perniciosa
    • Mas severa
    • P. Incubacion 11-14 dias
      • Infeccion Aguda No Complicada
      • Malaria Severa y Complicada
  • 21.
    • Malaria cerebral: mas frecuente
    • Insuficiencia renal
    • F. Bilosa hemoglobunurica
    • Hemorragia
    • Anema severa
    • Ictericia y daño hepático
    • Cambios de temperatura
    • Hipoglucemia
    • Sintomas gastrointestinales
  • 22.
    • MALARIA P. VIVAX y P. OVALE
    • Fiebre terciana benigna
    • P. Incubación: 5-15 días
    • Tiende a ser cronica
      • Escalofrios
      • Fiebre alta
      • Sudoracion
      • Esplenomegalia
  • 23.
    • PALUDISMO POR P.malariae
    • Fiebre cuartana
    • Sintomatologia mas benigna, mas cronica.
    • Recrudescencias despues de muchos años.
    • P. De incubacion mas prolongado.
    • Malaria cronica.
  • 24.
    • DIAGNOSTICO
    • Se basa en la observación e identificación de parásitos plasmodium en muestras de sangre.
    • Puede confundirse con otras enfermedades febriles: fiebre amarilla, tifoide, paratifoidea, acceso hepatico, hepatitis, fiebre recurrente, pielonefritis, brucelosis, tuberculosis, dengue, leishmaniasis visceral y procesos septicos.
    • Confirmacion: hallazgo de los parásitos .
  • 25.
    • METODOS UTILIZADOS
    • Gota gruesa
    • Extendido de sangre periférica
    • Pruebas de DX rapido
    • PCR
    • RX inmunologicas
    • Examenes complementarios
  • 26.
    • INDICACIONES DE LA TOMA DE MUESTRA
    • A todo paciente febril sospechoso por demanda de atención.
    • A todo paciente remitido para confirmación del DX.
    • A todo paciente con recaida.
  • 27.
    • TOMA DE MUESTRA
    • Toma de datos completos del paciente
    • Tomar muestra.
    • Marcar 3 laminas, dos para gota gruesa y una para el extendido para sangre periférica.
  • 28.
    • GOTA GRUESA
    • Con el borde de un cubreobjetos se extiende la gota de sangre con movimientos en N, para formar un cuadrado de 1 x 1 cm.
    • Luego se coloca otra gota de sangre a una distancia de 0.5-1 cm de la otra.
    • Se repite el procedimiento en otra lamina.
    • Dejar secar a temp ambiente .
  • 29.
    • Importante :
    • Se realiza gota gruesa seriada a todo paciente con fuerte evidencia epidemiologica de padecer malaria y con gota gruesa negativa inicial.
    • A todo paciente que se ha automedicado.
    • En casos complicados o con parasitemias altas (<50000 parasitos/uL), se realiza control de parasitemia cada 8 a 12 horas.
  • 30.
    • COLORACIÓN
    precoloración coloración
    • Preservar células sanguíneas.
    • inicio de deshemoglobinización
    • Diferenciar estructuras parasitarias
    • completación de la deshemoglobinización
  • 31.
    • Valoracion de la coloración de gota gruesa
    • Macroscópica
    • Se observa como un cuadrado continuo de color azul claro.
    • Microscópica
    • deshemoglobinización completa
    • Plaquetas: rosadas
    • Leucocitos: intensamente coloreados
    • Granulaciones de schuffner y maurer
    • Citoplasma y cromatina del parasito: intensamente coloreados.
  • 32.  
  • 33.
    • RECUENTO PARASITARIO
    • Recuento parasitario en gota gruesa:
    • # de parásitos x 8000 leucocitos / ul
    • =
    • 100 leucocitos
    • Parasitemias altas:
    • 500 parásitos x 8000 leucocitos / ul
    • =
    • # de leucocitos contados
    # de parasitos/ul de sangre # de parasitos/ul de sangre
  • 34.
    • EXTENDIDO DE SANGRE PERIFERICA
    • Con el borde de un cubreobjetos se extiende la gota de sangre con movimientos en N, para formar un cuadrado de 1 x 1 cm.
    • Dejar secar a temp ambiente.
    • Coloración.
  • 35.
    • Valoracion de la coloración de un extendido de sangre periférica
    • Macroscópica
    • pelicula fina y uniforme.
    • No debe llegar a los bordes.
    • Disminucion progresiva y tenue
    • Microscópica
    • Eritrocitos: neutra o violeta.
    • Leucocitos: núcleo azul oscuro o violeta.
    • Citoplasma: azul claro (linfocitos), gris (monocitos), rosado tenue (neutrofilos).
    • Granulaciones: azul o rosado (neutrofilos), naranja (eosinofilos).
    • Plaquetas: rosadas a violeta.
    • Parasitos: citoplasma azul, cromatina roja intensa o violeta, granulaciones rosado o rojo.
  • 36. Forma: Trofozoitos Forma: Schizonte Forma: Gametocito Plasmodium falciparum
  • 37. Forma: Trofozoitos Forma: Schizonte Forma: Gametocito Plasmodium vivax
  • 38. Forma: Trofozoitos Forma: Gametocito Forma: Schizonte Plasmodium ovale
  • 39. Forma: Trofozoitos Forma: Schizonte Forma: Gametocito Plasmodium malariae
  • 40.
    • Recuento parásitario en extendido de sangre periferica.
    • sangre
    • # de parasitos x # de eritrocitos/uL de
    • =
    • 10000 eritrocitos
    • # de parásitos x hematocrito x 100000
    • =
    • 10000 eritrocitos
    # de parasitos/ul de sangre # de parasitos/ul de sangre
  • 41.
    • Cálculo de la parasitemia en porcentaje
    • 10000 glóbulos rojos 20 trofozoitos
    • 100 glóbulos rojos X
    • Recuento semicuantitativo
    • Informar especie de plasmodium que ocasiona la infección.
    • Informar el numero aprox. de formas parasitarias encontrados en la gota gruesa.
    • Rango de parásitos encontrados Equivalencia en cruces
    • 1 – 10 en 100 campos microscópicos .....................................+
    • 11 – 100 en 100 campos microscópicos..................................++
    • 1 – 10 por campo microscópico...............................................+++
    • > 10 por campo microscópico................................................++++
  • 42.
    • PRUEBAS DE DX RAPIDO
    • Inmunocromatografia
  • 43.
    • RX INMUNOLÓGICAS
    • IFD
    • ELISA
    • FAST-ELISA
    • HEMAGLUTINACIÓN
    • INDIRECTA.
    • EXAMENES COMPLEMENTARIOS
    • HB
    • ANEMIA
    • HTO
  • 44. COMPARACIÓN DE LOS MÉTODOS DE DIAGNÓSTICO   MÉTO-DOS     TIPOS DE TÉCNICA   VENTAJAS   INCONVENIEN-TES     Extensión Fina     Tinción de Giemsa   Fácil realización Bajo coste Diferencia especies Cuantitativa     No detecta parasitemias bajas         Gota Gruesa       Tinción de Giemsa Fácil realización Bajo costo Solo indica (+) Detecta parasitemias bajas     No puede detectar la especie     Kit   Reacción antigeno-anticuerpo   Fácil realización Rápida     Alto costo No detecta la especie
  • 45.
    • INFORME DE RESULTADO
    • Especie presente.
    • Recuento parasitario. asexuadas
    • P. falciparum recuento
    • sexuadas
    • En infecciones mixtas:
    • Recuento de cada especie de manera independiente.
    • Reportar especie predominante en 1° lugar y subordinada en 2° lugar
    • Gota gruesa: termino hemopárasito o gota gruesa.
    • Extendido: solo termino hemopárasito.
  • 46.
    • PREVENCION Y CONTROL
    • Tratamiento y aislamiento del enfermo.
    • Uso de mosquitero.
    • Construcción, modificación y protección de las viviendas.
    • Ordenamiento del medio ambiente.
    • Control quimico.
    • Control biológico.
    • Cambio en el comportamiento humano .
  • 47. TRATAMIENTO
    • 1. ESQUIZONTICIDAS ERITROCITICOS:
    • 4-aminoquinoleinas
    • Hidroximetilquinoleinas
    • Diaminopirimidinas
    • Sulfonamidas
    • 2. ESQUIZONTICIDAS TISULARES:
    • 8-aminoquinoleinas
  • 48. ¡¡¡ GRACIAS!!!
  • 49.
    • Nombre del paciente.
    • Numero consecutivo.
    • Fecha.
    • Periodo epidemiológico.
    • Identificación.
    • En casos complicados o con parasitemias altas (<50000 parásitos/uL). Coger la hora de la toma de la muestra.
  • 50.
    • Se limpia el dedo índice o el del medio del paciente.
    • Tomar la muestra de un área limpia .
    • En niños se puede tomar del talón ó del lóbulo de la oreja
    • Secar la zona
    • Se punciona con
    • una lanceta estéril
    • desechable, en el borde
    • lateral del dedo entre
    • la yema y la uña.
  • 51.
    • Se limpia la 1° gota de sangre, se presiona el dedo y se coloca la siguiente gota a 1 cm de la identificación en la lámina.