1. Técnicas histológicas

2. El cuerpo humano
Human body

7. Qué es la histología?
• Estudio del tejido
– composición microscópica
• Requiere auxiliares ópticos

8. Qué estudia la histología?
• La célula (Citología)
• Los tejidos (Histología
propiamente dicha)
• Estructura de los órganos
(Histología especializada)

10. Importancia de la Histología
• Lugar central
– educación médica
– investigación médica

11. La aplicación de la Histología
• Nexo de unión • Explica las
entre: interrelaciones entre:
– La genética – Composición molecular de
• Célula
– La bioquímica • Tejido
– La fisiología • Órganos

12. METODOS DE ESTUDIO
-Técnicas histológicas: (mediato e inmediato)
– 1- Toma de material.
– 2.- Fijación
– 3.- Deshidratación
– 4- Aclaración
– 4.- Preparación para la inclusión
– 5.- Inclusión
– 6.- Modelado del bloque – catalogación
– 7.- Sección con el micrótomo extendido de los cortes – pegado
– 8.- Coloraciones: de rutina o especiales
– 9- Montaje
-Instrumentos:
Procesadores de tejido, micrótomo, estufa y otros

13. Laboratorio histopatológico

14. Laboratorio histopatológico

15. Laboratorio histopatológico

16. Laboratorio histopatológico

18. Laboratorio histopatológico

19. Laboratorio histopatológico

20. Técnicas histológicas
• Protocolo de trabajo
– Utilizado por un servicio, para la técnica de Hematoxilina - Eosina
para preparados de uso didáctico:
I. Fijación
• En formol al 10% (1 parte de formol y 9 partes de agua
destilada) por lo menos durante 6 hs.
II. Corte
• Se le da el tamaño deseado a la pieza y se la coloca en una
bolsa de gasa, con el fin de enjuagarla en agua corriente
durante, por lo menos, 15'..

22. Protocolo de trabajo
III. Deshidratación
• 1) Alcohol 70º, 1h30'.
2) Alcohol 96º, 1h30'.
3) Alcohol 100º (l), 1h30'.
4) Alcohol 100º (ll), 1h30'.
5) Toluol, entre 1h30' y 3hs.
IV. Inclusión
• 1) Secado de la muestra con gasa.
2) Parafina 56º (l), 1h30'.
3) Parafina 56º (ll), 1h30'.
4) Formación de la barra.
5) 30' de frezzer.
6) Fractura del taco
V. Corte

23. Protocolo de trabajo
VI. Coloración
• 1) Secado de los cortes en estufa a 58ºC, 15'.
2) Xilol o toluol (I), 15' en estufa.
3) Xilol o toluol (II), 2'.
4) Alcohol 100º, 30".
5) Alcohol 96º, 30".
6) Alcohol 70º, 30".
7) Alcohol 50º, 30".
8) Agua destilada, 30".
9) Hematoxilina, 1´30".
10) Agua corriente, 2´.
11) Alcohol 50º, 15".
12) Eosina, 30".
13) Alcohol 96º, 10".
14) Alcohol 100º, 10".
15) Xilol, 1´ por lo menos.
16) Montaje con Bálsamo de Canadá sintético

26. Qué coloraciones usamos?
• Rutina:
– Hematoxilina (lila)
– Eosina (rosa)
• Especiales:
– PAS (carbohidrato)
– Orceína (fibras elásticas)
– Reticulina (fibras reticulares)
– Rojo Congo (amiloide)
– Sudan (tejido adiposo)
– Tricómico de Masson (fibras colágenas)
– Metenamina de Plata (hongos)

29. PAS
Fontana-Masson PAS Azul Alciano

30. Ziehl- Neelsen
Grocott contrastado Grocott
con amarillo de metanilo

32. Inmunohistoquímica
• Marcadores celulares:
– Proteínas:
• Anticuerpos
• Se asocian a:
– La membrana
– Citoplasma
– Núcleo

34. Que hacemos después de colorear y
montar?
• Observamos al microscopio

35. Cuáles son los tipos de microscopios?

37. Qué imágenes histológicas podemos
ver?

42. La célula. Formas

43. Tipos celulares

46. Qué podemos observar con el
microscopio óptico?

47. La célula. Tamaño celular

48. La célula. Elementos visualizados
• Membrana celular o plasmalema.
• Núcleo: cromatina y membrana nuclear.
• Citoplasma: cambios de coloración
– Organelas: Retículo endoplasmático, aparato de golgi,
mitocondrias, ribosomas.
– Vesículas.

53. Con esto concluimos....

54. Muchas gracias…