Clase de técnicas histológicas y célula 2011

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Clase de técnicas histológicas y célula 2011

  1. 1. Técnicas histológicas
  2. 2. El cuerpo humano Human body
  3. 3. Qué es la histología?• Estudio del tejido – composición microscópica• Requiere auxiliares ópticos
  4. 4. Qué estudia la histología?• La célula (Citología)• Los tejidos (Histología propiamente dicha)• Estructura de los órganos (Histología especializada)
  5. 5. Importancia de la Histología• Lugar central – educación médica – investigación médica
  6. 6. La aplicación de la Histología• Nexo de unión • Explica las entre: interrelaciones entre: – La genética – Composición molecular de • Célula – La bioquímica • Tejido – La fisiología • Órganos
  7. 7. METODOS DE ESTUDIO-Técnicas histológicas: (mediato e inmediato)– 1- Toma de material.– 2.- Fijación– 3.- Deshidratación– 4- Aclaración– 4.- Preparación para la inclusión– 5.- Inclusión– 6.- Modelado del bloque – catalogación– 7.- Sección con el micrótomo extendido de los cortes – pegado– 8.- Coloraciones: de rutina o especiales– 9- Montaje-Instrumentos: Procesadores de tejido, micrótomo, estufa y otros
  8. 8. Laboratorio histopatológico
  9. 9. Laboratorio histopatológico
  10. 10. Laboratorio histopatológico
  11. 11. Laboratorio histopatológico
  12. 12. Laboratorio histopatológico
  13. 13. Laboratorio histopatológico
  14. 14. Técnicas histológicas• Protocolo de trabajo – Utilizado por un servicio, para la técnica de Hematoxilina - Eosina para preparados de uso didáctico:I. Fijación• En formol al 10% (1 parte de formol y 9 partes de agua destilada) por lo menos durante 6 hs.II. Corte• Se le da el tamaño deseado a la pieza y se la coloca en una bolsa de gasa, con el fin de enjuagarla en agua corriente durante, por lo menos, 15..
  15. 15. Protocolo de trabajoIII. Deshidratación• 1) Alcohol 70º, 1h30. 2) Alcohol 96º, 1h30. 3) Alcohol 100º (l), 1h30. 4) Alcohol 100º (ll), 1h30. 5) Toluol, entre 1h30 y 3hs.IV. Inclusión• 1) Secado de la muestra con gasa. 2) Parafina 56º (l), 1h30. 3) Parafina 56º (ll), 1h30. 4) Formación de la barra. 5) 30 de frezzer. 6) Fractura del tacoV. Corte
  16. 16. Protocolo de trabajoVI. Coloración• 1) Secado de los cortes en estufa a 58ºC, 15. 2) Xilol o toluol (I), 15 en estufa. 3) Xilol o toluol (II), 2. 4) Alcohol 100º, 30". 5) Alcohol 96º, 30". 6) Alcohol 70º, 30". 7) Alcohol 50º, 30". 8) Agua destilada, 30". 9) Hematoxilina, 1´30". 10) Agua corriente, 2´. 11) Alcohol 50º, 15". 12) Eosina, 30". 13) Alcohol 96º, 10". 14) Alcohol 100º, 10". 15) Xilol, 1´ por lo menos. 16) Montaje con Bálsamo de Canadá sintético
  17. 17. Qué coloraciones usamos?• Rutina: – Hematoxilina (lila) – Eosina (rosa)• Especiales: – PAS (carbohidrato) – Orceína (fibras elásticas) – Reticulina (fibras reticulares) – Rojo Congo (amiloide) – Sudan (tejido adiposo) – Tricómico de Masson (fibras colágenas) – Metenamina de Plata (hongos)
  18. 18. PASFontana-Masson PAS Azul Alciano
  19. 19. Ziehl- NeelsenGrocott contrastado Grocottcon amarillo de metanilo
  20. 20. Inmunohistoquímica• Marcadores celulares: – Proteínas: • Anticuerpos • Se asocian a: – La membrana – Citoplasma – Núcleo
  21. 21. Que hacemos después de colorear y montar?• Observamos al microscopio
  22. 22. Cuáles son los tipos de microscopios?
  23. 23. Qué imágenes histológicas podemos ver?
  24. 24. La célula. Formas
  25. 25. Tipos celulares
  26. 26. Qué podemos observar con el microscopio óptico?
  27. 27. La célula. Tamaño celular
  28. 28. La célula. Elementos visualizados• Membrana celular o plasmalema.• Núcleo: cromatina y membrana nuclear.• Citoplasma: cambios de coloración – Organelas: Retículo endoplasmático, aparato de golgi, mitocondrias, ribosomas. – Vesículas.
  29. 29. Con esto concluimos....
  30. 30. Muchas gracias…

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