Hemocultivos

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Hemocultivos

  1. 1. HEMOCULTIVOS DEFINICIONES TOMA DE MUESTRA DIAGNÓSTICO Y PROCESAMIENTO DE LAS MUESTRAS
  2. 2. HEMOCULTIVOS <ul><li>¿Cuándo debemos tomar hemocultivos? </li></ul><ul><li>Muestra de elección en: Endocarditis,endarteritis,tromboflebitis séptica,Infecciones relacionadas al catéter </li></ul><ul><li>Fiebre de origen desconocido.Infecciones que cursan con hemocultivos +:epiglotitis meningitis. </li></ul><ul><li>Muestra de apoyo en: </li></ul><ul><li>Meningitis, infecciones osteoarticulares, neumonía, celulitis periorbitaria, infecciones abdominopelvianas,Pielonefritis,Abcesos de órganos profundos. </li></ul>
  3. 3. Conceptos: <ul><li>Bacteriemia Sepsis Septicemia </li></ul><ul><li>Bacteriemia primaria. Bacteriemia oculta. Bacteriemia secundaria </li></ul><ul><li>De acuerdo a la cantidad de gérmenes : polimicrobiana, monomicrobiana </li></ul><ul><li>De acuerdo a la permanencia de gérmenes en sangre: continua, intermitente, trasnsitoria, de brecha(temprana y tardía) </li></ul><ul><li>De acuerdo a la procedencia de los gérmenes : extrahospitalaria, intrahospitalaria, mixta. </li></ul>
  4. 4. Factores predisponentes para tener hemocultivos positivos: <ul><li>Maniobras invasivas: cirugías, sondas, catéteres. </li></ul><ul><li>Alteración de las defensas del huésped : cáncer, diabetes, cirrosis, HIV, quemados, tratamiento inmunosupresor. </li></ul><ul><li>Neonatos </li></ul><ul><li>Drogadictos endovenosos. </li></ul>
  5. 5. Correlación entre infección sistémica y % de Hemcoultivos Positivos: <ul><li>Meningitis……………………… 50-80% </li></ul><ul><li>Neumonías en niños…….. 15% </li></ul><ul><li>Neumonías en adultos….. 30% </li></ul><ul><li>Osteoartritis…………………… 30-50% </li></ul><ul><li>Osteomielitis………………….. 50% </li></ul><ul><li>Peritonitis expontánea……. 60% </li></ul><ul><li>Abcesos intraabdominales.. 20% </li></ul>
  6. 6. Gérmenes frecuentes productores de bacteriemia y sus posibles focos Epiglotitis, meningitis, celulitis periorbitaria, inf. óseas Haemophilus influenzae tipo B IntraH:catéteres, sondas, extraH: drogadictos ev Bacilos gram negativos no fermentadores Meningitis, neumonia, otitis media aguda Neumococo Endocaditis, abcesos profundos Streptococcus del grupo viridans Endocarditis, infecciones Qx Enterococcus Catéteres,válvulas protésicas Staphylococus C negativos Hosp.: endovasculares. extraH: otros focos Staphylococcus aureus
  7. 7. Toma de muestras: <ul><li>En lo posible, 3 (tres) muestras. </li></ul><ul><li>CADA PUNCIÓN ES UNA MUESTRA : </li></ul><ul><li>Volúmen: 10 ml por punción en adulto </li></ul><ul><li>1-2 ml en neonato, hasta 5 ml en niños mayores de 5 años. </li></ul><ul><li>Antes del tratamiento antibiótico </li></ul><ul><li>2 a 3 muestras separadas en períodos de 20 a 30 minutos( depende de la gravedad ) </li></ul>
  8. 8. hemocultivos: para métodos convencionales
  9. 9. Causas frecuentes de contaminación de los hemocultivos: <ul><li>Mala desinfección de la piel en el sitio de toma de muestra . </li></ul><ul><li>Uso de desinfectantes contaminados </li></ul><ul><li>Uso de caldos de cultivo contaminados </li></ul><ul><li>Mala desinfección del frasco durante los procesos invasivos del subcultivo. </li></ul><ul><li>Mala desinfección de la tapa del frasco previamente a la inóculación de la muestra en el mismo. </li></ul><ul><li>Manipuleo del laboratorio. </li></ul>
  10. 10. Procesamiento de las muestras: <ul><li>Métodos convencionales: Incubar 6 a 24 horas: observación macroscópica: presencia de gas, turbidez: si es negativo: coloración de GRAM. Si persisite negativo al 7mo día: subcultivo a ciegas. </li></ul><ul><li>Si es +: Coloración de GRAM. subcultivos a medios adecuados, ATBgrama presuntivo. Cultivo en anaerobiosis. </li></ul><ul><li>Incubación 7 días total: 95% de los gémenes habituales crecerán. Más de 7 días: para hongos, leptospira, Brucella, Micobacterias, gérmenes de grupo HACEK, endocarditis, ATB previa. </li></ul>
  11. 11. Otros métodos: <ul><li>Medios bifásicos : medios con una fase líquida y sólida. Caro. Para gérmenes del gurpo HACEK y Brucella. </li></ul><ul><li>Hemocultivos por lisis y centrifugación : El hemocultivo es tratado con saponina que es lisante celualr y centrifugado, sembrándose el precipitado: libera gémenes intracelulares: recuperación de hongos (H. capsulatum), Brucella, Micobacterias. </li></ul>
  12. 12. Métodos automatizados: <ul><li>Disminuye la sobrecarga de trabajo y el tiempo requerido respecto a los métodos convenionales. </li></ul><ul><li>Técnica radiométricas: BACTEC 460 </li></ul><ul><li>Métodos indirectos: Bact-alert </li></ul><ul><li>Métodos fluorescentes </li></ul><ul><li>Métodos de presión. </li></ul><ul><li>Isolator </li></ul>
  13. 13. INTERPRETACIÓN <ul><li>Indican bacteriemias verdaderas: </li></ul><ul><li>Aislamiento en más de una muestra </li></ul><ul><li>Aislamiento temprano </li></ul><ul><li>Aislamiento en alto inóculo </li></ul><ul><li>Aislamiento concomitante en otro material estéril </li></ul><ul><li>Clínica compatible </li></ul>
  14. 14. Bacterias indudablemente patógenas: (neumococo) <ul><li>Listeria spp. </li></ul><ul><li>Gonococo Meningococo Neumococo </li></ul><ul><li>Haemophilus influenzae </li></ul><ul><li>Cryptococcus spp.Histoplasma capsulatum </li></ul><ul><li>Brucella spp. </li></ul><ul><li>Leptospira spp. </li></ul><ul><li>Streptococcus del grupo B </li></ul><ul><li>Bacteroides, fusobacterium </li></ul>
  15. 15. Bacterias generalmente patógenas: <ul><li>S. aureus </li></ul><ul><li>St.pyogenes </li></ul><ul><li>BGN enterobacterias) </li></ul><ul><li>Cándida álbicans </li></ul><ul><li>Cocos Gram + anaerobios </li></ul><ul><li>Cándida parasilopsis </li></ul>
  16. 16. Patógenos dudosos: <ul><li>Streptococcus del grupo viridans </li></ul><ul><li>C.perfringes </li></ul><ul><li>Cándida tropicalis </li></ul><ul><li>BGNNF </li></ul><ul><li>Generalmente contaminantes: </li></ul><ul><li>S.Coagulasa Negativos </li></ul><ul><li>Bacillus spp. </li></ul><ul><li>Corynebacterium spp </li></ul><ul><li>Propionibacterium spp. </li></ul>

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