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Hemocultivos
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Hemocultivos

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microbiologia

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  • 1. HEMOCULTIVOS DEFINICIONES TOMA DE MUESTRA DIAGNÓSTICO Y PROCESAMIENTO DE LAS MUESTRAS
  • 2. HEMOCULTIVOS
    • ¿Cuándo debemos tomar hemocultivos?
    • Muestra de elección en: Endocarditis,endarteritis,tromboflebitis séptica,Infecciones relacionadas al catéter
    • Fiebre de origen desconocido.Infecciones que cursan con hemocultivos +:epiglotitis meningitis.
    • Muestra de apoyo en:
    • Meningitis, infecciones osteoarticulares, neumonía, celulitis periorbitaria, infecciones abdominopelvianas,Pielonefritis,Abcesos de órganos profundos.
  • 3. Conceptos:
    • Bacteriemia Sepsis Septicemia
    • Bacteriemia primaria. Bacteriemia oculta. Bacteriemia secundaria
    • De acuerdo a la cantidad de gérmenes : polimicrobiana, monomicrobiana
    • De acuerdo a la permanencia de gérmenes en sangre: continua, intermitente, trasnsitoria, de brecha(temprana y tardía)
    • De acuerdo a la procedencia de los gérmenes : extrahospitalaria, intrahospitalaria, mixta.
  • 4. Factores predisponentes para tener hemocultivos positivos:
    • Maniobras invasivas: cirugías, sondas, catéteres.
    • Alteración de las defensas del huésped : cáncer, diabetes, cirrosis, HIV, quemados, tratamiento inmunosupresor.
    • Neonatos
    • Drogadictos endovenosos.
  • 5. Correlación entre infección sistémica y % de Hemcoultivos Positivos:
    • Meningitis……………………… 50-80%
    • Neumonías en niños…….. 15%
    • Neumonías en adultos….. 30%
    • Osteoartritis…………………… 30-50%
    • Osteomielitis………………….. 50%
    • Peritonitis expontánea……. 60%
    • Abcesos intraabdominales.. 20%
  • 6. Gérmenes frecuentes productores de bacteriemia y sus posibles focos Epiglotitis, meningitis, celulitis periorbitaria, inf. óseas Haemophilus influenzae tipo B IntraH:catéteres, sondas, extraH: drogadictos ev Bacilos gram negativos no fermentadores Meningitis, neumonia, otitis media aguda Neumococo Endocaditis, abcesos profundos Streptococcus del grupo viridans Endocarditis, infecciones Qx Enterococcus Catéteres,válvulas protésicas Staphylococus C negativos Hosp.: endovasculares. extraH: otros focos Staphylococcus aureus
  • 7. Toma de muestras:
    • En lo posible, 3 (tres) muestras.
    • CADA PUNCIÓN ES UNA MUESTRA :
    • Volúmen: 10 ml por punción en adulto
    • 1-2 ml en neonato, hasta 5 ml en niños mayores de 5 años.
    • Antes del tratamiento antibiótico
    • 2 a 3 muestras separadas en períodos de 20 a 30 minutos( depende de la gravedad )
  • 8. hemocultivos: para métodos convencionales
  • 9. Causas frecuentes de contaminación de los hemocultivos:
    • Mala desinfección de la piel en el sitio de toma de muestra .
    • Uso de desinfectantes contaminados
    • Uso de caldos de cultivo contaminados
    • Mala desinfección del frasco durante los procesos invasivos del subcultivo.
    • Mala desinfección de la tapa del frasco previamente a la inóculación de la muestra en el mismo.
    • Manipuleo del laboratorio.
  • 10. Procesamiento de las muestras:
    • Métodos convencionales: Incubar 6 a 24 horas: observación macroscópica: presencia de gas, turbidez: si es negativo: coloración de GRAM. Si persisite negativo al 7mo día: subcultivo a ciegas.
    • Si es +: Coloración de GRAM. subcultivos a medios adecuados, ATBgrama presuntivo. Cultivo en anaerobiosis.
    • Incubación 7 días total: 95% de los gémenes habituales crecerán. Más de 7 días: para hongos, leptospira, Brucella, Micobacterias, gérmenes de grupo HACEK, endocarditis, ATB previa.
  • 11. Otros métodos:
    • Medios bifásicos : medios con una fase líquida y sólida. Caro. Para gérmenes del gurpo HACEK y Brucella.
    • Hemocultivos por lisis y centrifugación : El hemocultivo es tratado con saponina que es lisante celualr y centrifugado, sembrándose el precipitado: libera gémenes intracelulares: recuperación de hongos (H. capsulatum), Brucella, Micobacterias.
  • 12. Métodos automatizados:
    • Disminuye la sobrecarga de trabajo y el tiempo requerido respecto a los métodos convenionales.
    • Técnica radiométricas: BACTEC 460
    • Métodos indirectos: Bact-alert
    • Métodos fluorescentes
    • Métodos de presión.
    • Isolator
  • 13. INTERPRETACIÓN
    • Indican bacteriemias verdaderas:
    • Aislamiento en más de una muestra
    • Aislamiento temprano
    • Aislamiento en alto inóculo
    • Aislamiento concomitante en otro material estéril
    • Clínica compatible
  • 14. Bacterias indudablemente patógenas: (neumococo)
    • Listeria spp.
    • Gonococo Meningococo Neumococo
    • Haemophilus influenzae
    • Cryptococcus spp.Histoplasma capsulatum
    • Brucella spp.
    • Leptospira spp.
    • Streptococcus del grupo B
    • Bacteroides, fusobacterium
  • 15. Bacterias generalmente patógenas:
    • S. aureus
    • St.pyogenes
    • BGN enterobacterias)
    • Cándida álbicans
    • Cocos Gram + anaerobios
    • Cándida parasilopsis
  • 16. Patógenos dudosos:
    • Streptococcus del grupo viridans
    • C.perfringes
    • Cándida tropicalis
    • BGNNF
    • Generalmente contaminantes:
    • S.Coagulasa Negativos
    • Bacillus spp.
    • Corynebacterium spp
    • Propionibacterium spp.

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