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ORGANOGÉNESIS
   DIRECTA
¿QUÉ ES
ORGANOGÉNESIS?
Evento morfo
genético que se
caracteriza por
 su desarrollo
   unipolar.
ORGANOGÉNESIS
   DIRECTA
Formación de órganos
 directamente sobre la
        superficie
de explantos cultivados
intactos. El proceso no
  implica la formación
        de callo.
APLICACIÓN DE
ORGANOGENESIS
    DIRECTA
PROTOCOLO PARA
   CULTIVO DE
  "ALLIUM CEPA"
    (CEBOLLA)
"ALLIUM CEPA" (CEBOLLA)
ESPECIE: Allium cepa L.
, cebolla

VÍA DE REGENERACIÓN:
Organogénesis directa
ESTABLECIMIENTO DE LOS
        CULTIVOS:

a) Explante utilizado
§ § Bulbos procedentes de campo.
§ § Se corta el bulbo en 4 porciones y
luego se eliminan las catáfilas más
externas. Se siembra la porción basal (>1
cm) del bulbo conteniendo yemas
axilares.
§ § Variedades empleadas: Valcatorce
INTA, Refinta INTA.
B) DESINFECCIÓN DEL
          EXPLANTE
1. Dos lavado con H20 corriente con 0.04
% Tween.
2. Alcohol 70º durante 1 minuto
3- Desinfección con ClONa (lavandina
comercial: 55,5 g.L-1) 30% 1 hora
adicionado con 0.04% de Tween 20 en
agitación.
4- En condiciones de asepsia, enjuagar
tres veces con agua destilada estéril, 2
minutos cada uno.
c) MEDIO DE CULTIVO PARA EL
  ESTABLECIMIENTO: (EN TUBOS)
 Macronutrientes de Murashige-Skoog
               (1962):

(NO3)2NH4 1.650 mg.L-1,
NO3K 1.900 mg.L-1
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PO4H2K 170 mg.L-1
SO4Fe. 7H20 27,85 mg.L-1
EDTA Na2. 37,3 mg.L-1
ACLIMATACIÓN:
Se lleva a cabo en condiciones de
invernáculo a 20- 25 ºC y 50 % humedad
relativa. Las plantas provenientes del
cultivo in vitro son sumergidas en una
solución de Captan 2 g.L-1 y Benomil 0,5
g.L-1. Con este procedimiento se elimina
el agar de las raíces y a su vez se somete
a las plantas a un tratamiento preventivo
de fungicidas. Posteriormente, se llenan
macetas con vermiculita o perlita estéril.
Separan las plantas en forma
individual y se plantan. Durante
los primeros 5 días las macetas se
ubican debajo de un túnel
plástico transparente con el
objeto de mantener la humedad
relativa cerca del 100%.
Luego se va levantando el
plástico    gradualmente     para
lograr la aclimatación progresiva
a la humedad relativa del
ambiente Luego de 4- 5 semanas
las macetas se transfieren a
condiciones a campo con tela
media sombra por 1-2 semanas y
luego     al   suelo    definitivo.
RENDIMIENTO DE ESTE PROTOCOLO:

En 90 a 120 días de cultivo in vitro se
obtiene una tasa de multiplicación de 9-
12 plantas/explanto y 36 a 48
plantas/bulbo.

OBSERVACIONES:

La aclimatación de la cebolla a
condiciones ex vitro tiene un porcentaje
de éxito del orden del 90-95%.
WEB GRAFÍA
*http://www.ecured.cu/index.php/Organog%C3%A9nesis_(Biote
   cnolog%C3%ADa_Vegetal)
* http://www.fao.org/docrep/004/y2775s/y2775s0c.htm
* http://mrsalazar.blogspot.com/2008/09/protocolo-para-
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* http://www.infojardin.com/foro/showthread.php?t=157549
* http://cv.udl.cat/cursos/76304/t7/t7.htm
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EQUIPO DE
 PRODUCCIÓN:
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ORGANOGÉNESIS DIRECTA

  • 1. ORGANOGÉNESIS DIRECTA
  • 3.
  • 4.
  • 5. Evento morfo genético que se caracteriza por su desarrollo unipolar.
  • 6.
  • 7.
  • 8.
  • 9. ORGANOGÉNESIS DIRECTA
  • 10.
  • 11.
  • 12. Formación de órganos directamente sobre la superficie de explantos cultivados intactos. El proceso no implica la formación de callo.
  • 14. PROTOCOLO PARA CULTIVO DE "ALLIUM CEPA" (CEBOLLA)
  • 16. ESPECIE: Allium cepa L. , cebolla VÍA DE REGENERACIÓN: Organogénesis directa
  • 17. ESTABLECIMIENTO DE LOS CULTIVOS: a) Explante utilizado § § Bulbos procedentes de campo. § § Se corta el bulbo en 4 porciones y luego se eliminan las catáfilas más externas. Se siembra la porción basal (>1 cm) del bulbo conteniendo yemas axilares. § § Variedades empleadas: Valcatorce INTA, Refinta INTA.
  • 18. B) DESINFECCIÓN DEL EXPLANTE 1. Dos lavado con H20 corriente con 0.04 % Tween. 2. Alcohol 70º durante 1 minuto 3- Desinfección con ClONa (lavandina comercial: 55,5 g.L-1) 30% 1 hora adicionado con 0.04% de Tween 20 en agitación. 4- En condiciones de asepsia, enjuagar tres veces con agua destilada estéril, 2 minutos cada uno.
  • 19. c) MEDIO DE CULTIVO PARA EL ESTABLECIMIENTO: (EN TUBOS) Macronutrientes de Murashige-Skoog (1962): (NO3)2NH4 1.650 mg.L-1, NO3K 1.900 mg.L-1 SO4Mg. 7H20 370 mg.L-1 PO4H2K 170 mg.L-1 SO4Fe. 7H20 27,85 mg.L-1 EDTA Na2. 37,3 mg.L-1
  • 20.
  • 21. ACLIMATACIÓN: Se lleva a cabo en condiciones de invernáculo a 20- 25 ºC y 50 % humedad relativa. Las plantas provenientes del cultivo in vitro son sumergidas en una solución de Captan 2 g.L-1 y Benomil 0,5 g.L-1. Con este procedimiento se elimina el agar de las raíces y a su vez se somete a las plantas a un tratamiento preventivo de fungicidas. Posteriormente, se llenan macetas con vermiculita o perlita estéril.
  • 22. Separan las plantas en forma individual y se plantan. Durante los primeros 5 días las macetas se ubican debajo de un túnel plástico transparente con el objeto de mantener la humedad relativa cerca del 100%.
  • 23.
  • 24. Luego se va levantando el plástico gradualmente para lograr la aclimatación progresiva a la humedad relativa del ambiente Luego de 4- 5 semanas las macetas se transfieren a condiciones a campo con tela media sombra por 1-2 semanas y luego al suelo definitivo.
  • 25.
  • 26. RENDIMIENTO DE ESTE PROTOCOLO: En 90 a 120 días de cultivo in vitro se obtiene una tasa de multiplicación de 9- 12 plantas/explanto y 36 a 48 plantas/bulbo. OBSERVACIONES: La aclimatación de la cebolla a condiciones ex vitro tiene un porcentaje de éxito del orden del 90-95%.
  • 27. WEB GRAFÍA *http://www.ecured.cu/index.php/Organog%C3%A9nesis_(Biote cnolog%C3%ADa_Vegetal) * http://www.fao.org/docrep/004/y2775s/y2775s0c.htm * http://mrsalazar.blogspot.com/2008/09/protocolo-para- cultivo-de-allium-cepa.html * http://www.infojardin.com/foro/showthread.php?t=157549 * http://cv.udl.cat/cursos/76304/t7/t7.htm * http://www.scielo.org.mx/scielo.php?pid=S0186- 29792008000300006&script=sci_arttextt
  • 28. EQUIPO DE PRODUCCIÓN: Estefanía Espinosa Soto Natalia Andrea López Díaz Andrés Camilo Ramírez Pérez Juan Camilo Mejía Castro Sebastián Montoya Restrepo 10°2