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Examen parasitológico seriado de deposiciones

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  • 1. Examen ParasitológicoSeriado deDeposiciones.Fundamentos Teóricos.
  • 2. Utilidad del Examen Ventajas: No invasivo. Permite el diagnóstico de laboratorio de la mayoría de las enteroparasitosis y algunas histoparasitosis como la fascioliasis. De bajo costo. Relativamente simple. Buena sensibilidad. Desventajas: Toma de muestras seriadas, implica excesivo tiempo consulta-resultado. Altamente dependiente del operador. Extenuante observación microscópica.
  • 3. Tipos de las muestras dedeposicionesConsistencia:3 tipo, formadas, semiformadas ylíquidas. (por ejemplo: trofozoitos estáncon mayor probabilidad en las líquidas,los quistes en las formadas).Dep. disentéricas: líquidas con altocontenido de mucus y sangre (ej: E.histolytica, T. trichiura).Dep. lientérica: líquidas con altocontenido de alimentos sin digerir (Ej:Giardia, Hymenolepis).Esteatorrea: dep. líquidas con altocontenido de grasas (Giardia).
  • 4. Recolección de las muestras dedeposiciones para examenparasitológico Sirven las emitidas a cualquier hora del día. Recolectarla en un recipiente limpio y seco. En lactantes (del pañal, pero recién emitidas). No sirven: las mezcladas con orina que contenga bario u otro material radiográfico purgantes oleosos, antibióticos o antiparasitarios
  • 5. Importante Cada muestra debe llegar al laboratorio correctamente identificada: Nombre y apellidos, edad, fecha de recolección. Acompañada de la orden de petición de examen del médico e identificando con letra clara algún pedido especial para la identificación de algún parásito.
  • 6. Número de muestras dedeposiciones a recolectar yperidiocidad. Recomendado o Estándar: 3, día por medio. Muestras disentéricas o similares de pacientes hospitalizados de urgencia: 1. Tomar más de una muestra aumenta considerablemente las probabilidades de detectar elementos parasitarios.
  • 7. Preservación de lasmuestras de deposiciones Muestras frescas: se estudian muy escasamente, sirven para detectar parásitos vivos (trofozoitos de E. histolytica) o practicar algún método de cultivo (Strongyloides). Muestras preservadas:son la gran mayoría. Es el procedimiento recomendado.
  • 8. Líquidos preservadores Conservan los parásitos, impiden el deterioro de la muestra (inactivan proteínas como las enzimas, coagulándolas). Reactivo base: Formalina. Concentración habitual al 5-10% en agua. Importante: Es tóxico, es venenoso.
  • 9. Tipos de líquidos preservadoresde deposiciones usados enChileFormol-sal (el mas simple y comúncontiene formalina y cloruro de sodio).P.A.F (de mejor calidad para preservartrofozoitos, pero de mayor costo,contiene fenol, alcohol etílico yformalina en solución isotónica).
  • 10. Examen parasitológico dedeposiciones Macroscópico y Microscópico. Macroscópico: sirve para constatar algunas características físicas de las deposiciones, como consistencia o presencia evidente de sangre, mucosidades o restos de alimentos sin digerir. Permite la detección de algunos gusanos (Ascaris, Enterobius) o parte de estos como proglótidas de Taenia Microscópico: protozoos, huevos y larvas de helmintos. Métodos Habitualmente utilizados en Chile: Telemann modificado (Formol-Eter, quistes y huevos) P.A.F.S. (trofozoitos, quistes y huevos)
  • 11. ASCARIASIS Ascaris lumbricoides Nematode Hembra: 25 a 35 cm de longitud Macho: 15 a 30 cm de largo extremo posterior incurvado Color; blanco rosado o nacaradoSus extremos son aguzados,correspondiendo al anterior a una bocatriangular, con tres labios finamentedentados. • Huevos; a) Fecundados son elípticos entre 45 a 75 um de largo y 35 a 50 de ancho. • Corteza mamelonada de color café (pigmentos biliares)
  • 12. • Ex. Parasitológico Seriado de Deposiciones (Huevos)• Salvo casos masivos, cuadro clínico es poco contribuyente. DIAGNOSTICO. Trichuris trichiura
  • 13. Infecciones porEnterobius vermicularisExamen de laboratorio de elección:Método, examen o Test de Graham
  • 14. DIAGNOSTICO Nº 1 DIAGNOSTICO Nº 2– Prurito anal, expulsión – PESQUISA DE HUEVOS EN nocturna de pequeños gusanos REGION PERIANAL móviles (blancos, como “hilachas”: gran valor – METODO DE GRAHAM orientador – 1 muestra diaria x 5 días– Se confirma por: – Identificación gusanos expulsados: – Examen coproparasitológico es de bajo rendimiento en esta infección. (5 a 10%) – Debe indicarse colocarlos en un frasco con AGUA, para facilitar su examen en el laboratorio
  • 15. Larvas macroscópicas:Anisakidos
  • 16. Larva strongyloide de StrongyloidesPelo de cereal en las heces x25 stercoralis x25Larva rhabditoide de nematodeproveniente de una betarraga roja x25 Pelo de cereal en las heces x25
  • 17. E.L.I.S.A. (Enzyme-Linked-Immuno-System-Assay) Ensayo inmunoenzimático permite detectar anticuerpos séricos en la strongyloidiasis. Otra enteroparasitosis que se diagnóstica por la determinación de anticuerpos es la amebiasis (amebiosis) extraintestinal (hepática).
  • 18. Cestodiasis: mas frecuente en Chile himenolepiasis Huevo
  • 19. TENIASIS (TENIOSIS)Definición:Es la infección humana por ejemplaresadultos de Taenia saginata o Taeniasolium.
  • 20. Teniasis.-Los huevos deTaenia sp.Miden 40 a 45 micrones,presentan una cortezagruesa, radiada de colorcafé y contienen unembrión con 6 ganchos,denominado embriónhexacanto y soninfectantes de inmediatopara el huéspedintermediario.
  • 21. Prglótidas grávidas deTaenia saginata Taenia solium
  • 22. Escolex deTaenia saginata Taenia solium
  • 23. OTRO CESTODO:Diagnóstico por proglótidas y/ohuevos: Diphyllobothrium sp.
  • 24. Enteroparasitosiscausadas por protozoos
  • 25. Blastocystis hominis Morfología: Forma vacuolada: Polimorfa, gránulos periféricos, un núcleo y una vacuola yodófila. Hábitat: Intestino grueso Vía infección: Digestiva Diagnóstico: Búsqueda de formas vacuoladas en E.P.S.D.
  • 26. Entamoeba histolytica/dispar EPSDMétodos moleculares permiten diferenciar ambas especies.E. histolytica E. dispar
  • 27. PROTOZOOS PARASITOS Giardia intestinalis Trofozoito Quistes EPSD
  • 28. Cryptosporidium sp. Cryptosporidium sp.Ooquistes sin tinción. Ooquistes teñidos con el método de Ziehl-Neelsen EPSD + Ziehl-Neelsen Cryptosporidium y otros coccidios intestinales son organismos ácido-resistente.
  • 29. Cristal de Charcot-LeydenSe producen por la precipitación de proteinas de eosinófilos. Se informan en los EPSD. Se relacionan con la presencia de parasitosis intestinal como isosporosis, tricocefalosis masiva, etc. u otra etiología no parasitaria que cause eosinofilia local (alergia).
  • 30. MicrosporidiosParásito frecuente en individuosinmunocomprometidos Tinción Cromotropo 2R o Calcofluor.
  • 31. ComensalesProtozoos amebinos y flagelados
  • 32. Entamoeba coliClasificación taxonómica :Protozoo, rizópodo. Comensal.Estadios :Trofozoito y quiste.Distribución geográfica :Cosmopolita, se encuentra más en la población adulta. No hay diferenciación de infección por sexo.Distribución en Chile :Aprox. Entre 25 y 30%.Huéspedes :Hombre.Ciclo vital : Monoxénico . Sigue el mismo ciclo vital que E. histolytica.Localización en el hombre :Intestino grueso.Modo de transmisión :Fecal - Oral.Estadio infectante :Quiste maduro.
  • 33. E.P.S.D.Endolimax nana. ComensalFrecuencia población general : 15-20%

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