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  • hola si alguien me puede responder quiero aclarar algunas dudas
    cuando se aplica IM en bovinos y equinos, canes, caprinos y porcinos, la aguja debe estar de abajo hacia arriba o de arriba hacia bajo gracias
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sanidad bovina

  1. 1. SERVICIO NACIONAL DE APRENDIZAJE SENADESARROLLO DE LA GUÍA DE APRENDIZAJEMANIPULAR BIOLÓGICOS Y MEDICAMENTOS CON BASE EN PROTOCOLO SANITARIO Y MANUAL DE PROCEDIMIENTOS CLAUDIA NAVARRO LILLY PINO BRENDA COSSIO RICARDO MAURICIO COSSIO MONTOYA JOHN FREDY DUQUE FLÓREZ DIRIGIDO A INSTRUCTOR JUAN MARIO RESTREPOTECNOLOGÍA EN PRODUCCIÓN GANADERA (321714)CENTRO AGROPECUARIO Y DE RECURSOS NATURALES LA SALADA TRABAJO DE SANIDAD BOVINA
  2. 2. TÉCNICAS Y VÍAS DE ADMINISTRACIÓN DE MEDICAMENTOS EN BOVINOS(13,14, 17)Subcutáneo (abajo de la piel):regiones anatómicas utilizadas, tabla del cuello y codillo. Inyección de un fármacopor debajo de la piel; no llega al músculo, la absorción es menos precisa y muylenta.Por esta vía se pueden administrar por inyección medicamentos oleosos comovitaminas, vacunas, algunos antibióticos muy irritantes, implantes hormonales,soluciones de calcio, etc. Para su aplicación se requiere de una jeringahipodérmica y una aguja de calibre 18 o 20.Procedimiento: Antes de aplicar el medicamento hay que desinfectar la piel, paraello se utiliza una torunda con antiséptico aplicando el desinfectante a contra pelo.Con la mano no dominante pellizcar la piel del bovino formando un pliegue deunos 2 cm. Sostener la jeringa con el pulgar y el índice de la otra mano. Colocar laaguja formando un ángulo de 45 grados con la base del pliegue que se haformado. El bisel de la aguja debe de mirar hacia arriba, insertar la aguja en labase del pliegue e introducirla de 2 a 3 cm. Aspirar para ver si no se ha conectadocon un vaso sanguíneo. Soltar el pliegue e introducir lentamente el medicamento.Una vez inyectado todo el fármaco retirar la aguja y con la misma torunda oprimiren el sitio de aplicación.Intramuscular (dentro del músculo):regiones anatómicas, tabla del cuello (músculo trapecio), grupa (músculosuperficial) o en la nalga (músculo semitendinoso y semimebranoso).Normalmente el músculo va a estar bien vascularizado por eso va a permitir unabuena absorción, es muy rápida (mas que la oral). Por esta vía se puedenadministrar por inyección medicamentos oleosos como vitaminas, vacunas y lamayoría de los antibióticos. Se utiliza una aguja de calibre 18 o 20.Procedimiento: Desinfectar la piel en el sitio elegido de aplicación con unatorunda impregnada de un antiséptico aplicando el desinfectante a contra pelo.Antes de introducir la aguja se golpea con el puño dos o tres veces. La aguja se
  3. 3. debe de introducir en un ángulo de 90°, con un movimiento firme y seguro en unasola intención, se conecta la jeringa a la aguja y antes de introducir elmedicamento retraer el émbolo para cerciorase de no haber conectado con unvaso. El medicamento se debe inyectar lentamente, ya que, aparte de ser menosdoloroso se dará tiempo a que se vaya distribuyendo por el músculo (sobre todocuando se administra una cantidad importante). Colocar la torunda con elantiséptico justo sobre el punto de inyección y hacer presión. También se puededar un pequeño golpe sobre este sitio.Intravenoso (en la vena):regiones anatómicas, yugular, coccígea (anestésicos). Administración de fármacosmediante la corriente sanguínea. Es muy rápida. Permite administrar grandescantidades de líquido y obtener concentraciones plasmáticas altas y precisas. Poresta vía se pueden administrar soluciones electrolíticas, sueros glucosados ysalinos en diferente concentración, algunos antibióticos (sobre todo diluidos ensolución salina), antihistamínicos, estimulantes cardiacos (adrenalina, atropina),tranquilizantes y anestésicos. Se utiliza una aguja de calibre 16 o 14.Procedimiento: Desinfectar en el lugar de punción con una torunda impregnadade antiséptico aplicando el desinfectante a contra pelo. Inmovilizar la vena apuncionar, colocando la mano no dominante unos 5 cm por debajo del lugar depunción y tirar de la piel en este sentido, así se conseguirá ``aplastar” la venacontra el músculo subyacente el cual actuará como plano duro. Se puncionadirectamente sobre la vena. Insertar la aguja con el bisel hacia arriba formando unángulo de 30° a 40° con la piel. Aplicar el medicamento lentamente, retirar la agujay presionar con una torunda impregnada con un antiséptico o dar un pellizco eneste sitio.Intradérmica (en la dermis):regiones anatómicas, en la tabla del cuello y plieguecaudal. La inyecciónintradérmica se usa con poca frecuencia en el ganado vacuno, a excepción de la
  4. 4. administración de agentes de diagnóstico, tales como la tuberculina. En este tipode inyección es mejor mantener al animal sujeto en una prensa con un ayudanteque lo sostenga con un nariguero.Procedimiento: Antes de inyectar el medicamento hay que desinfectar la piel.Para ello se aplica una torunda impregnada de antiséptico en el centro de la zonaelegida. Con la mano no dominante, sujetar la zona de inyección estirando la piel.Coger la jeringa con el pulgar y el índice de la otra mano. Colocar la jeringa deforma que la aguja quede paralela a la piel y con el bisel hacia arriba. Levantar laaguja unos 15-20 grados e insertarla en la piel. Avanzar despacio y paralelamenteal tejido cutáneo, de modo que a través de este podamos ver el bisel (si no es así,es que hemos traspasado la piel y estamos en la zona subcutánea). No hay queintroducir toda la aguja, sino solo el bisel y algunos milímetros más, aunque parala vía intradérmica generalmente se utilizan agujas de un calibre muy pequeño yde una longitud menor de ½ cm.Intramamaria: (dentro de la glándula mamaria)La aplicación de fármacos por esta vía es generalmente utilizada en casos deinfecciones en la glándula mamaria que producen mastitis.Procedimiento: lavar el pezón con agua corriente, secarlo con una toalladesechable de papel y despuntar. Insertar la cánula con el medicamento en elcanal del pezón, tratando de no introducir la cánula totalmente ya que se puedenlesionar las estructuras internas, aunque las jeringas antimastíticas actualmentevienen acompañadas de una cánula corta. Empujar el émbolo de la jeringa paraque ingrese el medicamento y finalmente aplicar un antiséptico sobre el pezón. Esimportante la utilización de guantes y aplicar medidas de higiene rigurosas.Tópica: (sobre la piel)Es una de las vías más utilizadas debido a las diversas etiologías que afectan lapiel, además de que su fácil aplicación es una gran ventaja tanto para el médico
  5. 5. veterinario, como para el animal ya que disminuye el estrés que le puede causar elmanejo.Procedimiento: lavar la zona con agua y jabón, y aplicar el medicamentountándolo utilizando un guante desechable, o rociándolo, según la presentación enla que venga el fármaco.Oral (por la boca):Para la vía oral, se emplea la sonda esofágica preferentemente, ya que con estase puede administrar cualquier cantidad de líquido. Cantidades más pequeñas demedicamento de medio a un litro se pueden aplicar mediante el uso de una botelladándoselo directamente en la boca. Si el ganado es de temperamento nervioso,especialmente las razas de carne, la administración de medicinas por tomas, noes aconsejable debido al gran peligro de producir neumonía por inhalación. Laadministración con sonda esofágica se realiza con el animal sujetoconvencionalmente y la nariz fijada con un nariguero por un ayudante. Se colocaluego un abreboca o un tubo guía (tubo de metal) en la boca con el propósito deque el bovino no muerda la sonda. El tubo o sonda estomacal se pasa a través deltubo o abrebocas. En la mayoría de los casos, la sonda estomacal pasa alesófago, y cuando entra al rumen a veces se escapa gas por el tubo. Paracomprobar si el tubo ha pasado por el esófago, su posición puede ser comprobadasoplando aire por la sonda, mientras un ayudante escucha con la ayuda delestetoscopio en la fosa paralumbar izquierda, escuchando un ruido de cascada. Alir introduciendo la sonda por el esófago, se puede observar por el exterior en ellado izquierdo del cuello como va pasando indicando que se insertó de maneracorrecta. El riesgo importante que conlleva este método es que la sonda se dirijaerróneamente hacia la tráquea, cuando esto ocurra la sonda debe ser retirada.Esto debe ser realizado antes de administrar cualquier medicamento. Para llegaral rumen se necesita una sonda esofágica que se puede construir con unamanguera de plástico de ¾ de pulgada de diámetro colocando en un extremo untubo de metal con varios orificios a los lados (pichancha).En los terneros una sonda esofágica de menor diámetro se necesita de ¼ a ½pulgada y una extensión de 1 metro. La sonda se introduce aproximadamente 2/3partes y ya colocada adecuadamente se introduce la medicina directamente alrumen utilizando una bomba de 2 vías. En caso de no contar con esta última se
  6. 6. puede administrar por gravedad con la ayuda de un embudo y manteniendo lacabeza del animal a nivel.Cuando se utiliza el método de tomas, las medicinas se ponen una botella decuello angosto, como las de aguas gaseosas, el animal debe sostenerse por losollares; suele utilizarse también un nariguero. La nariz del animal se levanta, elcuello de la botella se introduce por un lado de la boca entre el incisivo y elpremolar y se pone solamente una pequeña cantidad de medicina sobre la lenguacada vez. Así se logrará que el animal trague antes de continuar con laadministración. Se debe tener cuidado de que si se decide administrar toda ladosis de una sola vez, observar que el producto no se vaya a tráquea, ya que sepuede causar una neumonía por aspiración. Las drogas se pueden administrartambién en forma de tabletas y bolos de diferentes tamaños. En esta operación sedebe sujetar al animal por la nariz como se ha descrito previamente, mientras eloperador inserta hasta la base de la lengua el tirabolos, se puede jalar la lenguahacia afuera, lo que facilita este procedimiento, ya que al soltar la lengua el animaldeglute el bolo. Es la vía fisiológica más común, cómoda y barata. El fármaco seva a absorber bien si es ácido en el estómago y si es básico en el intestinodelgado. Normalmente pasan por difusión pasiva.Oftálmica (en el ojo):Esta vía está indicada para la medicación de alteraciones propias del globo ocular.Procedimiento:
  7. 7. Si hay costras o secreciones, limpiarlas suavemente con una gasa impregnada ensuero fisiológico. Con el dedo índice de la mano no dominante, presionarsuavemente hacia abajo, de tal manera que quede expuesto el saco conjuntival (laretracción contra el pómulo previene la presión y el traumatismo del globo ocular eimpide que los dedos toquen el ojo). VÍAS DE ADMINISTRACIÓN DE MEDICAMENTOS
  8. 8. ESPECIFIQUE LOS EFECTOS SOBRE EL ANIMAL DE UNASUBDOSIFICACIÓN Y DE UNA SOBRE DOSIFICACIÓN DE LOS FÁRMACOSA ADMINISTRAR.Una sobre dosis en un bovino puede causar diferentes alteraciones como sonintoxicaciones o alteraciones de ciertos organismos, o simplemente no causaningún efecto pero se incurre en gastos innecesarios.Una sub dosificación causa un tratamiento deficiente de la afección, llegando a elestado de no curar la afección que se esta tratando.
  9. 9. EXPLIQUE QUE SIGNIFICA EN EL CONTEXTO DE LOS FÁRMACOS QUE SONLAS INDICACIONES Y CONTRAINDICACIONES DE LOS MEDICAMENTOS.La indicación de fármacos es la acción que realiza el médico cuando decide unaconducta terapeútica. La base de datos de indicaciones de fármacos registra lasmonodrogas y las indicaciones mas frecuentes de las mismas. Esto permite anteuna entidad clínica registrada en la historia del paciente, poder saber cuales sonlas monodrogas sugeridas.Podemos consultar cuales son las monodrogas indicadas para una determinadapatología, sus dosis diarias y posologías. La base de datos de indicaciones sepuede actualizar desde los sistemas de historias Clínicas o Farmacia, pudiendoconsultar las mismas y realizar altas, bajas y modificaciones de los datosingresados desde esos sistemas.La tabla de indicaciones, también brindainformación sobre dosis y posología de cada monodrogaUna contraindicación es una situación específica en la cual NO se debe utilizar unfármaco, un procedimiento o una cirugía, ya que puede ser dañino para elpaciente.Existen dos tipos de contraindicaciones: • La contraindicación relativa significa que se debe tener cautela cuando se utilizan dos fármacos o procedimientos juntos. (Es aceptable hacerlo si los beneficios superan a los riesgos.) • La contraindicación absoluta significa que podría ocasionar una situación potencialmente mortal. Un procedimiento o un medicamento que esté incluido dentro de esta categoría se debe evitar.Algunos tratamientos pueden causar reacciones peligrosas o indeseables enpersonas con alergias, presión arterial alta o embarazo. Por ejemplo, laisotretinoína, un fármaco empleado para tratar el acné, está absolutamentecontraindicado en el embarazo, debido al riesgo de anomalías congénitas. Ciertosdescongestionantes están contraindicados en personas con hipertensión arterial y,por lo tanto, se deben evitar.Muchos medicamentos interactúan y no deben utilizarse juntos por parte de lamisma persona. Por ejemplo, una persona que toma warfarina para diluir la sangreno debe tomar ácido acetilsalicílico (aspirin). Éste es un ejemplo de unacontraindicación relativa.
  10. 10. CLASIFIQUE LOS DIFERENTES TIPOS DE FÁRMACOS Y EXPLIQUE SU USO(EJEMPLO: ANALGÉSICO SE UTILIZA PARA EL DOLOR)Agentes antimicrobianos, en forma terapéutica o con fin profiláctico en losanimales productores de alimentos. Los residuos de estos antibióticos sondetectados en los tejidos animales analizados, cuando no se usan conforme abuenas prácticas. Se han establecido LMR para los residuos de antibióticos, quehacen que su uso sea inocuo y eficaz. Los efectos tóxicos pueden ser directo oindirectos, son directos los producidos en condiciones terapéutica y los indirectosson los asociados a los fenómenos de resistencia bacteriana y a alergias.Antihelmínticos, destinados tratar las parasitosis, son moléculas o formas nuevasde administración que han permitido mejorar la productividad de los animalesproveedores de alimentos para el hombre, especialmente de carne y leche. Losbenzimidazoles, avermectinas, piretroides y los métodos de tratamientointrarruminal son ejemplos de la incorporación tecnológica a la producción animal.El uso de estos compuestos hace que tomen contacto con diferentes tejidoscomestibles de los animales, exponiendo así al hombre. Por lo tanto, esimportante que se respeten los tiempos indicados, entre que se suprime laadministración del compuesto a los animales y su faena u ordeña (período deretiro o supresión), para garantizar que los alimentos para consumo humano nocontengan residuos por encima de los LMR.Anabólicos, mejoran notablemente el rendimiento del proceso de biosíntesis deproteínas Las hormonas sexuales tienen un papel importante en el crecimientocelular del músculo y en el aumento de la eficacia en el ciclo metabólico delnitrógeno. Por lo tanto, son aquellas sustancias capaces de incrementar laretención de nitrógeno, aumentando la acumulación de proteína en los animalesSe clasifican desde el punto de vista bioquímico en tres grandes grupos:•hormonas naturales: esteroides como el 17 β-estradiol, la testosterona, laprogesterona.•Estilbenos: dietilestildestrol (DES), hexestrol, dienstrol, que son estrógenossintéticos. Presentan alto riesgo por su alto poder estrogénico y están prohibidosen casi todos los países del mundo.•Xenobióticos “no estilbénicos”, como el zeranol, obtenido por reducción de lazearalenona y la trembolona.Antiprotozoarios: como diclazurilo, imidocarb, nicarbazinaGlucocorticosteroides, como dexametasonaMedio auxiliar de la producción: somatotrofina bovina recombinantes (STbr)Tranquilizante: azaperonaAgonistas de adrenorreceptores: clenbuterol, xilacinaamentación nacional.
  11. 11. CUALES SON LOS EFECTOS COLATERALES Y REACCIONES ADVERSASQUE SE PUEDEN PRESENTAR EN LOS BOVINOS LUEGO DE LAADMINISTRACIÓN DE BIOLÓGICOS?Las variables de la vacuna incluyen la proporción de individuos vacunados que sebenefician de la vacunación, la respuesta inmunitaria (si es suficiente paraprevenir la infección o reducir la gravedad si se produce) y la probabilidad ygravedad de las reacciones adversas asociadas a la vacunación [1].Los efectos adversos son definidos como cualquier efecto secundario oconsecuencia involuntaria (incluyendo falta de protección) asociado a laadministración de la vacuna. Esto incluye cualquier daño, toxicidad o reacción dehipersensibilidad asociada con la misma [2].Los beneficios de la vacunación deben superar los riesgos y los individuos debenser evaluados en función del riesgo de exposición y la respuesta esperada(probabilidad de infección si se expone y de la gravedad si se infecta).En un estudio retrospectivo de reacciones adversas a las vacunas [7] en el que seexaminaron 311 casos informados al Ministerio de Agricultura, en Japón, duranteun periodo de 6 años (desde abril de 1994 a 2000) y se clasificaron según lossíntomas, 27 casos fueron a la vacuna de rabia.Los síntomas más frecuentes fueron los gastrointestinales (26%), seguidos porrespiratorios y cardiovasculares (22%) y dermatológicos (11%). Había 284 casosde reacciones adversas a vacunas monovalentes que no eran de rabia, y mixtas.Los síntomas más frecuentes en estos casos fueron dermatológicos (53%),gastrointestinales (16%) y respiratorios y cardiovasculares (14%). Un 3,5%murieron por reacciones adversas a vacunas.En otro estudio [8] realizado en Estados Unidos, en el que el Centro de ProductosBiológicos (CVB) recibió 246 reacciones adversas en perros en los que seidentificó la vacuna de rabia como uno de los productos administrados, durante unperiodo de 3 años, 217 fueron considerados como posiblemente relacionados conla vacuna, 7 no parecían estar relacionadas y 22 se dieron por causadesconocida.El 21,4% de los perros era menor de 6 meses, el 33,5% era mayor de 6 mesespero menor de 2 años y el 45,1% era mayor de 2 años. Un 54% de los perros eranhembras. Los efectos adversos posiblemente relacionados con la vacunaincluyeron hipersensibilidad a la vacuna (59%), reacción local (27%), reaccionessistémicas referidas a corto tiempo de letargia, fiebre, dolor general, anorexia,cambios de conducta, con o sin trastornos gastrointestinales que comenzaron en 3días después de la vacunación (9%), trastornos autoinmunes (3%) y otros (2%).Un 72% aproximado de los perros informados recibieron otros productos médicosademás de la vacuna. La vacuna de rabia es la que se pudo relacionar más conefectos adversos recibidos por el CVB. Los hallazgos de este estudio no sugierenuna alta frecuencia de efectos adversos asociados a la vacuna de rabia si
  12. 12. tenemos en cuenta que se pusieron 120 millones de dosis de vacunas de rabia enese periodo de 3 años.Hay que añadir que en dos perros se confirmó rabia y habían sido previamentevacunados.Otras enfermedades han sido asociadas a la vacunación como meningitis inducidapor la vacuna de rabia, sarcoma posvacunal en gatos, anemia hemolíticainmunomediada, trombocitopenia inmunomediada, poliartritis inmunomediada tipoI y vasculitis cutánea.Ya en 1978, Pedersen NC, Emmons RW, Selder R, et al. publicaron infección devirus de la vacuna de rabia en tres perros, con aparición de síntomas a los 4-21días después de la vacunación [9]. En 1982 se publicaron también 4 casos derabia inducida por la vacuna en cuatro gatos [10]. En este caso los signosneurológicos se desarrollaron 13-17 días después de la vacunación IM con virusvivo modificado.En 1984 se publicó el uso de anticuerpos monoclonales para confirmar rabiainducida por vacuna en 10 perros, 2 gatos y un zorro [11].Los signos clínicos desarrollados en el caso de los perros [9] fueron de parálisisflácida ascendente similar a la que se produce en una poliradiculoneuritis.También se vio que se podían dar déficit de nervios craneales y que algunossobrevivieron y se recuperaron con cuidados de soporte. En necropsia loshallazgos fueron de meningoencefalitis no supurativa. En el caso de los gatos,desarrollaron parálisis de un miembro posterior, rigidez y después parálisis del otromiembro posterior.
  13. 13. QUE ES EL TIEMPO DE RETIRO DE LOS FÁRMACOS Y BIOLÓGICOSDebe respetarse el tiempo de retiro de los medicamentos veterinarios y el periodode carencia de los plaguicidas de uso veterinario, los cuales, en ambos casos, seencuentran consignados en la etiqueta de los productos.Si no se respetan estos periodos de tiempo se puede ver afectada la salud delconsumidor, dada la presencia de residuos del medicamento y/o plaguicidas en laleche.El tiempo de retiro y el tiempo de carencia deben estar consignados en el registrode uso de medicamentos veterinarios y otros insumos.Todos los animales que se encuentren en tratamiento médico y cuyo productogenere tiempo de retiro, deben estar claramente identificados por medio de unmétodo de identificación individual, como collares o bandas de colores.
  14. 14. QUE ES UNA MUESTRA PARA LABORATORIO, COMO SE TOMAN LOSDIFERENTES TIPOS DE MUESTRAS, COMO SE ENVÍAN.El diagnóstico de enfermedades en los animales, es esencial para realizarmedidas terapéuticas y preventivas que mejoren la salud del hato, y de este modose optimice y aumente la producción animal. Por ello es necesario la obtención yremisión de los diferentes tipos de muestras, a los centros y laboratorios dediagnóstico.Para la correcta determinación de las enfermedades, es importante que lasmuestras sean representativas del o los padecimientos y lesiones que presentenlos animales.Al obtener y manejar de forma correcta alguna muestra, se estará favoreciendo lacalidad del diagnóstico y por ende la identificación certera, de la enfermedadproblema.El valor de las pruebas de laboratorio es importante ya que ayudan a identificar yorientar al clínico para emitir un diagnóstico.Material para estudios micóticos. Se hace un raspado de la piel sobre laperiferia de la sección afectada y se extraen pelos con raíz. Se remiten en unsobre de papel sin conservador.Material para estudios virológicos. La muestra se conserva en refrigeración ocongelación. No usar hielo seco, pues el gas carbónico inactiva muchos virus,principalmente al rábico. Se puede usar glicerina amortiguada al 50% (pH 7.2).Material para estudios parasitológicos. Se pueden tomar directamente de lavaca con un guante de palpación. Identificar cada muestra con el número onombre del bovino. Las heces se mantendrán en refrigeración, sin conservador obien con formol al 5%.Material para estudios toxicológicos. Dependiendo de la muestra sospechosa:órganos, líquidos o contenido estomacal, se someten a refrigeración; y si se tratade sangre, se colecta con heparina. Es muy importante no añadir: antisépticos,conservadores, fijadores. Si se efectúan diversas tomas de muestras, colocarobligatoriamente cada muestra en un envase diferente y cuidar que quedeperfectamente sellado para que no se derrame el contenido sobre todo cuandoson líquidos.Material para estudios histopatológicos. Muestras en forma de cuadro mayoresde 0.5 cm. por lado en frascos con 10 veces su volumen de fijador. Formol al 10%(formalina).Líquido cefalorraquídeo. Se colecta con anticoagulante (EDTA).
  15. 15. Orina. Se colecta por micción directa o por sondeo en frascos de color ámbarestériles sin conservador. El envío se recomienda realizarlo 30 minutosposcolección, pues la muestra se acidifica con rapidez.Leche. Los materiales necesarios para la recolección son: tubo estéril o tubo alvacío tapa roja NUEVO, para garantizar la esterilidad, algodón, alcohol paralimpiar y desinfectar y papel para secar el pezón. Procedimiento para larecolección: Lave y seque muy bien el pezón haciendo especial énfasis en lapunta. Con la ayuda de algodón y alcohol desinfecte la punta del pezón. Eliminelos dos o tres primeros chorros y luego coloque entre 5 y 8 ml de leche en el tuboestéril, colocando el pezón y el tubo de manera inclinada, evitando que partículasextrañas entren a él. Marque, señalando el nombre de la vaca y el pezónmuestreado: AD, PD, AI, PI. No mezcle leche de diferentes cuartos y muchomenos de diferentes vacas para este análisis. Las muestras de leche parabacteriología deben tomarse antes de instaurar tratamientos con antibióticos o porlo menos 8 días después de haber suministrado el último tratamiento. Transporte yconservación de la muestra: envíe refrigerado.Obtención de líquido ruminal. Se sujeta al animal con la ayuda del nariguero,para luego colocársele el abrebocas, sujetando las correas a los cuernos o en lanuca del animal. Se lubrica con agua la sonda a utilizar y se introduce a través delabrebocas hacia el rumen. Una vez introducida deberá quedar aproximadamenteun metro fuera y libre, dependiendo del tamaño del animal. El extremo libre de lasonda se conecta a la bomba
  16. 16. MENCIONE LOS REQUISITOS QUE SE MANEJAN PARA LA CONSERVACIÓNDE MUESTRAS PARA EL ENVÍO AL LABORATORIO.Es importante que las muestras para las pruebas de laboratorio, reúnan lassiguientes condiciones: 1. Material lo más fresco posible. 2. Material para estudio microbiológico, enviarse en forma estéril. 3. Rotular cada muestra, en forma independiente, para que sea fácil de identificar. 4. Se debe de especificar detalladamente el análisis que se requiere. 5. Debe anexarse a las muestras de cada caso la siguiente información: • Nombre, dirección y teléfono del clínico. • Nombre, teléfono y dirección del dueño. • Fecha y hora de la toma de la muestra. • Especie animal, sexo y raza. • Número de animales en el hato. • Número de animales afectados. • Tiempo de evolución de la enfermedad. • Signos que ha presentado. • Datos sobre morbilidad y mortalidad en el hato. • Vacunaciones y tratamientos. • Hallazgos en necropsias de animales que padecieron el mismo brote. • Casos similares en la zona. • Diagnóstico presuntivo. • Fecha y hora de muerte. • Material enviado al laboratorio, fijador conservador usado. • Especificaciones claras relativas al tipo de análisis que se requiere.Material para toma de muestras.• Material para estudios hematológicos: Tubos vacutainer, con y sinanticoagulante.Los anticoagulantes más usados son: 1. Sal dipotásica o disódca del ácido etilen diamino tetraácetico (EDTA). En dosis de 0.5 a 2 mg/ml de sangre, para hemogramas. (Tubo vacutainer de tapón morado). 2. Heparina. En solución al 1%, dosis 0.1 ml por cada 10 ml de sangre. Se recomienda para obtener plasma. (Tubo vacutainer de tapón verde). 3. Citrato de sodio. Al 3.8%, dosis 1 ml por cada 9 ml de sangre para pruebas de coagulación. (Tubo vacutainer de tapón azul). 4. Citrato ácido dextrosa para transfusiones, dosis 1 ml por cada 4ml de sangre.Muestras de sangre sin anticoagulante. Se utilizan para pruebas bioquímicas.(Tubos vacutainer de tapón rojo).
  17. 17. Material para estudios bacteriológicos. Las muestras que se toman de un órganoen el momento de la necropsia, deben ser porciones cuadradas no mayores de 4cm de grosor y se envían en frascos estériles, individuales y refrigerados a 4oC.Las muestras se obtienen en un máximo de dos horas posteriores a la muerte; siesto no es posible, (no dejar pasar más de 12 horas), las muestras se toman demédula ósea, debido a que es el último lugar en sufrir contaminación bacteriana.Si son líquidos o exudados se aspiran con jeringa estéril o con hisopos y seenvían en frascos estériles con caldo nutritivo.
  18. 18. DESCRIBA EN FORMA ORDENADA Y DETALLADA EL PROCESO PARATOMAR MUESTRA DE SANGRE, ENVIARLA AL LABORATORIO Y PEDIRPRUEBA DE ANEMIA INFECCIOSA.Se utilizan tubos de hemólisis de vidrio con tapón de goma. Para obtener sueropara la mayoría de exámenes de laboratorio se requieren mínimo 5 ml de sangresin anticoagulante. Se deja el tubo a temperatura ambiente en un ángulo de 30ºpor unos treinta minutos. Puede solicitarnos los tubos al laboratorio y se losenviamos sin cargo. La alteración más frecuente en esta muestra es la hemólisisque se produce por la ruptura de los glóbulos rojos. Las causas más frecuentespara esto son el uso de tubos o agujas húmedas, presencia de residuos dedetergente, exposición directa a los rayos solares, almacenamiento atemperaturas no adecuadas. Cuando se ha utilizado jeringa y aguja, el exceso depresión en el émbolo a la toma o al transvasar al tubo pueden producir hemólisispor esto retire la aguja y permita que la sangre fluya por las paredes del tubosuavemente.

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