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Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013): 192-198
ARTÍCULOORIGINAL
Antagonismo de aislamientos de Trichoderma spp. frente a Didymella bryoniae
(Fuckel) Rehm
Benedicto MartínezI
, Jesús PérezII
, Danay InfanteI
, Yanisia DuarteI
, Martha MorenoII
I
Centro Nacional de SanidadAgropecuaria (CENSA),Apartado 10, San José de las Lajas, CP 32 700, Mayabeque, Cuba.
Correo electrónico: bmcoca@censa.edu.cu. II
Universidad Isla de la Juventud, Carretera aeropuerto km 3 ½,
Nueva Gerona, Isla de la Juventud, Cuba.
RESUMEN: El presente trabajo tuvo como objetivo determinar los modos de acción de aislamientos de Trichoderma
spp. frente a Didymella bryoniae (Fuckel) Rehm, mediante la técnica de cultivo dual. Se evaluaron la competencia
por el sustrato, el micoparasitismo y la antibiosis de aislamientos de Trichoderma asperellum Samuels (Ta.),
Trichoderma harzianum Rifai (Th.) y Trichoderma sp. (T.).Apartir de las 72 horas, todos los aislamientos presentaron
efecto inhibitorio del crecimiento del patógeno superior al 50%. Los aislamientos Ta. 12, Ta. 79, Ta. 85 y T. 81
crecieron más del 75% del área de la placa, por lo que se ubicaron en la clase 1 de la escala de Bell. La velocidad
de crecimiento de los dos últimos aislamientos aumentó a partir de las 72h, lo que pudiera estar relacionado con
compuestos atrayentes, emanados por el patógeno. Los mejores indicadores de parasitismo los presentaron los
aislamientos Th. A-34 y Ta. 85 con tres tipos de interacción hifal (enrollamiento, vacuolización y penetración).
Los metabolitos volátiles producidos por Th. A-34, Ta. 79 y Ta. 85 y no volátiles emanados de Th. A-34, Ta. 79
y T. 81, inhibieron el crecimiento del patógeno desde las 72h. De acuerdo a los modos de acción exhibidos, los
aislamientos Th. A-34 y Ta. 85 se perfilan como posibles candidatos a ingredientes activos de bioplaguicidas, lo
que requiere de su evaluación en el control de D. bryoniae en condiciones de campo.
Palabras clave: Trichoderma asperellum, Trichoderma harzianum, modos de acción, gomosis, cucurbitáceas.
Antagonism of Trichoderma spp. isolates against Didymella bryoniae (Fuckel) Rehm
ABSTRACT: The aim of this work was to determine the action modes of Trichoderma spp. against Didymella
bryoniae (Fuckel) Rehm. The competition by the substrate, antibiosis and mycoparasitism of Trichoderma asperellum
Samuels (Ta), Trichoderma harzianum Rifai (Th) and Trichoderma sp. (T.) was assessed by the dual culture method.
After 72 hours, all the isolates showed an inhibitory effect over the pathogen growth higher than 50%. The isolates
Ta. 12, Ta. 79, Ta. 85 and T. 81 grew more than 75% of the plate area; thus, they were placed in the class 1 of
Bell’s scale. The growth rate of the two latter isolates increased from the 72 h, which could be related to attractive
compounds emitted by the pathogen. Th A-34 and Ta. 85 presented the best indicators of parasitism with three
types of hyphal interaction (coiling, vacuolization and penetration). The volatile metabolites produced by Th-34,
Ta. 79 and Ta. 85 and those non-volatile emanating from Th A-34, Ta. 79 and T. 81 inhibited the pathogen growth
from the 72h. According to the modes of action exhibited by the different isolates, Th A-34 and Ta. 85 were
chosen as the best isolates for the control of D. bryoniae. They are emerging as potential candidates for biopesticide
active ingredients, although their evaluation in the control of D. bryoniae under field conditions is required.
Key words: Trichoderma asperellum, Trichoderma harzianum, action modes, gummy stem blight, cucurbits.
INTRODUCCIÓN
La gomosis del tallo (Didymella bryoniae (Fuckel))
Rehm (syn. Mycosphaerella melonis (Pass) W.F. Chiu
y J.C. Walker) se considera la principal enfermedad
fúngica en las cucurbitáceas a nivel mundial (1). Las
pérdidas fluctúan entre 15 y 50% en campo, pero se
incrementan cuando las frutas se dañan durante la
transportación y el almacenaje (2).
El control químico es el más recomendado contra
esta enfermedad (3,4), utilizado fundamentalmente en
aplicaciones preventivas, a pesar de su alto costo,
económico y ecológico. De ahí, la necesidad de dispo-
Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013)
193
ner de diferentes tácticas que permitan hacer un ma-
nejo de la enfermedad.
Entre las tácticas de mayores perspectivas está el
control biológico. En este sentido, las especies del
género Trichoderma frente a los hongos fitopatógenos
han sido las de mejores resultados (5, 6, 7), porque la
acción bio-reguladora de Trichoderma está asociada a
varios mecanismos de acción como: competencia por
espacio y/o nutrientes, micoparasitismo y antibiosis,
entre otros (8, 9, 10). Precisamente, para lograr éxito
en el control biológico con estos microorganismos, es
necesario llevar a cabo la selección de los aislamien-
tos del antagonista basados en estos mecanismos (11).
El objetivo del presente trabajo fue determinar los
modos de acción de aislamientos de Trichoderma spp.
frente a D. bryoniae.
MATERIALESYMÉTODOS
Evaluación de la actividad antagónica in vitro de
Trichoderma spp. frente a D. bryoniae
Se evaluaron los modos de acción (competencia
por espacio, micoparasitismo y antibiosis) de los ais-
lamientos de Trichoderma frente a D. bryoniae, utili-
zando el método de cultivo dual descrito por Martínez
y Solano (12).
Se emplearon tres aislamientos de Trichoderma
asperellum Samuels (denominados Ta. 12, Ta. 79 y
Ta. 85, respectivamente) (13) y otro de Trichoderma
sp. (T.81), pertenecientes todos al cepario del Labora-
torio de Micología Vegetal del Centro Nacional de Sa-
nidad Agropecuaria (CENSA) y la cepa A-34 de
Trichoderma harzianum (Th. A-34) procedente del la-
boratorio de Sanidad Vegetal de la Isla de la Juventud.
El aislamiento de D. bryoniae se obtuvo de plantas
enfermas de sandía [Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum
and Nakai].
Los hongos se mantuvieron en medio Papa Dextro-
sa Agar (PDA) (Oxoid) e incubados antes del experi-
mento a una temperatura de 28±2°C por 72 horas
(Trichoderma) y 25±2°C por 10 días (patógeno). El en-
sayo de enfrentamiento dual se realizó en placas Petri
de 90 mm de diámetro contentivas de medio PDA
(Oxoid). Se incluyó un testigo del patógeno sin el con-
trolador biológico. Todos los hongos en los tratamien-
tos se incubaron (25±2o
C), para garantizar que el anta-
gonista muestre su acción en la condición favorable
para el desarrollo del patógeno.
- Competencia por espacio
El ensayo se montó y evaluó según lo descrito por
Reyes et al. (5). Se emplearon seis tratamientos con
cuatro repeticiones (placas), en un diseño completa-
mente aleatorizado. Las evaluaciones se realizaron
hasta las 120 horas. La clasificación como antagonis-
ta de los aislamientos se realizó según la escala de
Bell et al. (14).
- Micoparasitismo
Para evaluar el micoparasitismo (enrollamiento,
penetración, vacuolización y lisis), se tomaron tres
muestras de la zona de interacción de ambos hongos
por cada réplica (placa Petri, cuatro en total) y se colo-
caron en portaobjetos sobre una gota de lactofenol. La
observación se realizó al microscopio óptico binocular
modelo Novel a aumentos de 250 y 400x. Se evaluaron
15 muestras por tratamiento (aislados de Trichoderma).
- Antibiosis
— Metabolitos no volátiles
Para evaluar el efecto de metabolitos no volátiles
de los aislados de Trichoderma se sembró, sobre pa-
pel celofán estéril, que cubría el medio de cultivo (PDA
Oxoid) vertido en placas Petri de 90 mm de ø, un disco
de cinco mm de cada aislamiento del hongo control
biológico. A las 72 horas se retiró el papel celofán con
la colonia del antagonista y en su lugar se sembró
centralmente un disco de cinco mm del patógeno (15).
— Metabolitos volátiles
Los metabolitos volátiles se evaluaron sembrando
centralmente los aislamientos del antagonista y del
patógeno en una misma placa Petri de 90 mm de ø,
en la tapa de la placa el fitopatógeno y en la base de
la misma, el antagonista. Las placas fueron selladas
con vitafilm, se incluyó un testigo del patógeno sin el
antagonista.
Tanto para los metabolitos volátiles como no voláti-
les, las placas se incubaron a temperatura de 25±2°C
y oscuridad. Se midió el diámetro de las colonias del
patógeno con una regla graduada.
Para los ensayos se empleó un diseño completa-
mente aleatorizado con cuatro réplicas. Las evaluacio-
nes se realizaron cada 24 horas hasta las 120 horas.
Los datos se transformaron mediante la expresión
arcos √p+1, y fueron sometidos a un análisis de varianza
de clasificación simple y las medias comparadas se-
gún la Dócima de Rangos Múltiples de Duncan (16).
Para el procesamiento se empleó el paquete estadísti-
co Stat Graph 3.1.
Para la selección de los aislados promisorios in
vitro se tomó como criterio el porcentaje de inhibición
del crecimiento radial del hongo patógeno, la presen-
cia al menos de dos modos de interacción hifal con el
Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013)
194
patógeno y su ubicación en las clases 1 ó 2 de la
escala de Bell et al. (14).
RESULTADOSYDISCUSIÓN
Competencia por espacio
Los aislamientos de Trichoderma evaluados (Ta. 12,
Ta. 79, Ta. 85 y T. 81) se ubicaron en la clase uno de la
escala de Bell et al. (14), con excepción del Th. A-34
(Fig. 1). Todos mostraron un elevado efecto antagóni-
co, con la detención del crecimiento de D. bryoniae al
entrar en contacto con el antagonista.
Todos los aislamientos de Trichoderma presentaron
efecto inhibitorio superior al 50% a partir de las 72 horas
(Tabla 1). Desde las 96h se observó crecimiento de los
aislamientos de Trichoderma sobre la colonia del pató-
geno, aunque esta acción se apreció antes (entre las
72 y 96h) para los aislados T. 81 y Ta. 85. El crecimien-
A
B
C
D
E
F
24h 96h 120h
FIGURA 1. Competencia por el sustrato de Trichoderma y D. bryoniae en diferentes momentos evaluativos por la técnica
de cultivo dual./ Competition for the substrate of Trichoderma and D. bryoniae in dual culture at different evaluation
times. (A.- Ta.12, B.- Ta. 79, C.- Trichoderma sp. T.81, D.- Ta. 85, E.- Th. A-34, F.- D. bryoniae).
Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013)
195
to sobre el patógeno se hizo casi total a las 120 horas,
excepto para la cepa Th.A-34, que detuvo el crecimien-
to del patógeno formando un halo alrededor del mismo
sin llegar a colonizarlo completamente (Fig. 1).Al pare-
cer, el patógeno excreta metabolitos al medio que pue-
den detener el avance de esta cepa del antagonista, y
no le permite sobrecrecer la colonia de este, aspecto
que debe ser objeto de investigaciones futuras.
En la evaluación a las 120h los aislamientos Ta. 85
y T. 81 mostraron los mayores porcentajes de inhibi-
ción del patógeno. Los resultados sugieren que estos
presentan mayor velocidad de crecimiento a partir de
las 72h, por posibles metabolitos desprendidos por el
patógeno, que actúan como atrayentes.
Estos resultados coinciden de forma general con los
obtenidos por Nofal et al. (17), quienes informaron la
inhibición del crecimiento de D. bryoniae provocada por
aislamientos de diferentes especies de Trichoderma;
no obstante, no llegaron a una evalución completa del
antagonismo. A pesar de que existe abundante infor-
mación acerca de que las especies de Trichoderma se
comportan como antagonistas de varios hongos
fitopatógenos (8, 14), en la práctica es necesario reali-
zarunaselecciónexhaustivadelagentecontroladorfren-
te a cada patógeno diana, antes de ser empleado en
campo. Establecer in vitro los modos de acción presen-
tes en los aislamientos del biorregulador, constituye la
base de la selección de estos, no solo para las pruebas
siguientes en condiciones semicontroladas y campo,
sino que orientan la forma de producción que debe esta-
blecerse para lograr mayor estabilidad y eficacia en los
resultados en campo.
Micoparasitismo
En la Tabla 2 se muestran los resultados de las
observaciones microscópicas que reflejan las
interacciones de los aislamientos de Trichoderma con
D. bryoniae. Como se observa los mejores aislamien-
tos fueron Th. A-34 y Ta.85 con tres tipos de interacción
hifal. Por su parte, en la Figura 2 se muestra el para-
sitismo de Th. A-34 en hifas del patógeno, fenómeno
similar a lo observado con los otros aislamientos del
antagonista que se evaluaron.
TABLA 2. Tipos de interacción hifal entre los aislados
de Trichoderma y D. bryoniae./ Types of hyphal
interaction between Trichoderma isolates and D.
bryoniae.
Aislamientos de
Trichoderma
Tipos de interacción
hifal
Ta. 12 L-V
Ta. 79 L-V
T. 81 E
Ta. 85 E-V-P
Th. A-34 E-V-P
Leyenda: (E) Enrollamiento, (P) Penetración, (V)
Vacuolización y (L) Lisis.
TABLA 1. Inhibición del crecimiento radial de D. bryoniae en cultivo dual con Trichoderma spp./ Radial growth
inhibition of D. bryoniae by Trichoderma spp. in dual culture.
Medias con letras diferentes en la columna difieren significativamente (p< 0,05)
1
Datos originales 2
Datos transformados
Porcentaje de inhibición del crecimiento radial (%)
72 horas 96 horas 120 horasAislamientos de
Trichoderma X
Orig1
.
X
Transf2
.
X
Orig.
X
Transf.
X
Orig.
X
Transf.
Ta. 85 58,54 2,74 ab 72,64 2,84 ab 83,76 2,91 a
T. 81 60,98 2,76 ab 74,53 2,86 a 81,20 2,90 ab
Th. (A-34) 62,20 2,72 a 68,87 2,82 b 75,21 2,86 c
Ta. 79 54,88 2,71 b 69,81 2,82 b 77,78 2,88 bc
Ta. 12 58,54 2,74 ab 59,43 2,74 b 67,52 2,81 c
ESx 0,06 0,08 0,08
Las enzimas, ß-1,3-glucanasas, ß-1,6-glucanasas,
quitinasas y proteasas producidas por aislamientos de
Trichoderma son capaces de hidrolizar la pared celular
de numerosos hongos (18,19,20), esto podría explicar
la causa, por lo que el aislamiento Ta. 85 exhiba estos
resultados, ya que se demostró previamente que po-
see actividades ß-1,3-glucanasas y quitinasas (21).
El uso de microorganismos productores de
quitinasas y/o glucanasas para el control de hongos
fitopatógenos pertenecientes a la claseAscomycetes,
se considera una acción promisoria, pues su pared
celular está constituida principalmente por microfibrillas
Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013)
196
de quitina y ß-glucanos, sensibles al ataque de estas
enzimas (22,23).
Antibiosis
Todos los aislamientos de Trichoderma evaluados
inhibieron el crecimiento del patógeno desde las 72h,
pero se destacaron en ese momento evaluativo losais-
lamientos Th. A-34, Ta.79 y Ta.85, no obstante, a las
96h, el aislamiento T. 81 no presentó diferencias con
los mencionados (Tabla 3).
Los metabolitos volátiles producidos por estos ais-
lamientos fueron los que produjeron los mayores por-
centajes de inhibición del crecimiento radial, con cam-
bios en la coloración de la colonia del patógeno (Fig.
3). Este efecto pudiera deberse, a que los metabolitos
liberados por los aislamientos presentaron acción
fungistática sobre el patógeno en el interior de la placa
Petri, lo que provocó la inhibición del crecimiento del
mismo. Esto, en principio, corrobora lo observado por
KücüK y Kivan (24), quienes obtuvieron una disminu-
ción significativa del crecimiento micelial de
Gaeumannomyces graminis (Sacc.)Arx & Olivier var.
tritici J. Walker, por efecto de los metabolitos volátiles
de T. harzianum.
Losmetabolitos no volátiles de todos los aislamien-
tos inhibieron el crecimiento del patógeno en ambos
momentos evaluativos. A las 72h, se destacaron los
aislamientos Th. A-34, Ta. 79 y T. 81 (Tabla 4); sin
embargo, a las96h, solo Th.A-34 y T. 81 provocaron la
mayor inhibición del crecimiento del patógeno, aunque
T. 81 no tuvo diferencias significativas con el resto. Al
parecer los metabolitos del Ta.79 no fueron tan efecti-
vos o el patógeno logró adaptarse a ellos, por lo que
este aspecto se debe seguir investigando.
FIGURA 2. Hifa de D. bryoniae parasitada por Th. A-34./
Hyphae of D. bryoniae parasitized by Th. A-34.
TABLA 3. Efecto de los metabolitos volátiles de Trichoderma sobre el crecimiento de D. bryoniae./ Effect of
Trichoderma volatile metabolites on D. bryoniae growth.
Medias con letras diferentes en la columna difieren significativamente (p< 0,05)
Inhibición del crecimiento radial (%)
72 horas 96 horasAislamientos de Trichoderma
X Orig. X Transf. X Orig. X Transf.
Th. A-34 30,63 2,42 a 32,11 2,44a
Ta. 79 23,75 2,30 ab 28,06 2,38a
Ta. 85 21,88 2,26 ab 23,77 2,29ab
T. 81 19,38 2,18 bc 22,57 2,25ab
Ta. 12 14,38 2,06 c 17,05 2,13b
ESx 0,038 0,037
Ta. 12 T. 81 Ta.85 Th. (A-34) Ta. 79 Testigo
FIGURA 3. Inhibición del crecimiento de D. bryoniae por efectode los metabolitos volátiles de los aislamientos Ta. 12, T.
81, Ta. 85, Th. A-34, Ta. 79, a las 96 horas./ Growth inhibition of D. bryoniae by the volatile metabolites from strains Ta. 12,
T. 81, Ta. 85, Th. A-34, Ta. 79, at 96 hours.
Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013)
197
El efecto inhibitorio de Trichoderma sobre otros
hongos antes del contacto hifal se ha explicado con la
excreción de metabolitos al medio con efectos
fungistáticos, algunos de los cuales inhiben los
microorganismos con los que no hacen contacto físi-
co, y estos pudieran ser considerados como sustan-
cias similares a antibióticos (12). Los resultados obte-
nidos se corresponden con los de Simon y
Sivasithamparam (25) y Schirmbock et al. (26), quie-
nes informaron que Trichoderma puede incorporar al
medio de cultivo metabolitos con efecto inhibitorio so-
bre hongos. Estos autores determinaron la presencia
de trichodermin, trichodermol, harzianum A y
harzianolide, en dichos metabolitos, aspecto que se
seguirá investigando como continuación del presente
trabajo.
Los hallazgos obtenidos en este estudio corrobo-
ran los que informaron Reyes et al. (5) y Martínez et al.
(11), quienesdemostraron la disminución del crecimien-
to de hongosfitopatógenospor el efecto de metabolitos
no volátiles segregados por Trichoderma al medio de
cultivo.
Los resultadosobtenidosrevelan que se cuenta con
dos aislamientos de Trichoderma (Th. A-34 de T.
harzianum y Ta. 85 de T. asperellum) con perspectivas
como futuros candidatos para constituir ingredientes
activos de bioplaguicidas; no obstante, se requiere de
estudios en campo donde se determine el momento
óptimo de aplicación, la dosificación, la compatibilidad
con agroquímicos y otros agentes biológicos, que ase-
veren la eficacia de estascepas bajo esas condiciones.
Estos constituyen los primeros resultados para Cuba
relativos a la búsqueda de agentesde control biológico
para el manejo de la gomosis en las cucurbitáceas.
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TABLA 4. Efecto de los metabolitos no volátiles de Trichoderma sobre el crecimiento de D. bryoniae./ Effect of the
non-volatile metabolites from Trichoderma on D. bryoniae growth.
Medias con letras diferentes en la columna difieren significativamente (p< 0,05)
Inhibición del crecimiento radial (%)
72 horas 96 horasAislamientos de Trichoderma
X Orig. X Transf. X Orig. X Transf.
Th. A-34 23,03 2,29a 27,48 2,37a
Ta.79 17,58 2,16ab 19,04 2,17b
T. 81 15,76 2,11ab 20,7 2,23ab
Ta.85 12,73 2,00bc 15,66 2,09b
Ta.12 9,70 1,87c 14,23 2,07b
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Environ Microbiol. 1994;60:4344-4370.
Recibido: 23-10-2012.
Aceptado: 25-4-2013.

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Antagonismo de t harzianum contra d brioniae

  • 1. Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013): 192-198 ARTÍCULOORIGINAL Antagonismo de aislamientos de Trichoderma spp. frente a Didymella bryoniae (Fuckel) Rehm Benedicto MartínezI , Jesús PérezII , Danay InfanteI , Yanisia DuarteI , Martha MorenoII I Centro Nacional de SanidadAgropecuaria (CENSA),Apartado 10, San José de las Lajas, CP 32 700, Mayabeque, Cuba. Correo electrónico: bmcoca@censa.edu.cu. II Universidad Isla de la Juventud, Carretera aeropuerto km 3 ½, Nueva Gerona, Isla de la Juventud, Cuba. RESUMEN: El presente trabajo tuvo como objetivo determinar los modos de acción de aislamientos de Trichoderma spp. frente a Didymella bryoniae (Fuckel) Rehm, mediante la técnica de cultivo dual. Se evaluaron la competencia por el sustrato, el micoparasitismo y la antibiosis de aislamientos de Trichoderma asperellum Samuels (Ta.), Trichoderma harzianum Rifai (Th.) y Trichoderma sp. (T.).Apartir de las 72 horas, todos los aislamientos presentaron efecto inhibitorio del crecimiento del patógeno superior al 50%. Los aislamientos Ta. 12, Ta. 79, Ta. 85 y T. 81 crecieron más del 75% del área de la placa, por lo que se ubicaron en la clase 1 de la escala de Bell. La velocidad de crecimiento de los dos últimos aislamientos aumentó a partir de las 72h, lo que pudiera estar relacionado con compuestos atrayentes, emanados por el patógeno. Los mejores indicadores de parasitismo los presentaron los aislamientos Th. A-34 y Ta. 85 con tres tipos de interacción hifal (enrollamiento, vacuolización y penetración). Los metabolitos volátiles producidos por Th. A-34, Ta. 79 y Ta. 85 y no volátiles emanados de Th. A-34, Ta. 79 y T. 81, inhibieron el crecimiento del patógeno desde las 72h. De acuerdo a los modos de acción exhibidos, los aislamientos Th. A-34 y Ta. 85 se perfilan como posibles candidatos a ingredientes activos de bioplaguicidas, lo que requiere de su evaluación en el control de D. bryoniae en condiciones de campo. Palabras clave: Trichoderma asperellum, Trichoderma harzianum, modos de acción, gomosis, cucurbitáceas. Antagonism of Trichoderma spp. isolates against Didymella bryoniae (Fuckel) Rehm ABSTRACT: The aim of this work was to determine the action modes of Trichoderma spp. against Didymella bryoniae (Fuckel) Rehm. The competition by the substrate, antibiosis and mycoparasitism of Trichoderma asperellum Samuels (Ta), Trichoderma harzianum Rifai (Th) and Trichoderma sp. (T.) was assessed by the dual culture method. After 72 hours, all the isolates showed an inhibitory effect over the pathogen growth higher than 50%. The isolates Ta. 12, Ta. 79, Ta. 85 and T. 81 grew more than 75% of the plate area; thus, they were placed in the class 1 of Bell’s scale. The growth rate of the two latter isolates increased from the 72 h, which could be related to attractive compounds emitted by the pathogen. Th A-34 and Ta. 85 presented the best indicators of parasitism with three types of hyphal interaction (coiling, vacuolization and penetration). The volatile metabolites produced by Th-34, Ta. 79 and Ta. 85 and those non-volatile emanating from Th A-34, Ta. 79 and T. 81 inhibited the pathogen growth from the 72h. According to the modes of action exhibited by the different isolates, Th A-34 and Ta. 85 were chosen as the best isolates for the control of D. bryoniae. They are emerging as potential candidates for biopesticide active ingredients, although their evaluation in the control of D. bryoniae under field conditions is required. Key words: Trichoderma asperellum, Trichoderma harzianum, action modes, gummy stem blight, cucurbits. INTRODUCCIÓN La gomosis del tallo (Didymella bryoniae (Fuckel)) Rehm (syn. Mycosphaerella melonis (Pass) W.F. Chiu y J.C. Walker) se considera la principal enfermedad fúngica en las cucurbitáceas a nivel mundial (1). Las pérdidas fluctúan entre 15 y 50% en campo, pero se incrementan cuando las frutas se dañan durante la transportación y el almacenaje (2). El control químico es el más recomendado contra esta enfermedad (3,4), utilizado fundamentalmente en aplicaciones preventivas, a pesar de su alto costo, económico y ecológico. De ahí, la necesidad de dispo-
  • 2. Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013) 193 ner de diferentes tácticas que permitan hacer un ma- nejo de la enfermedad. Entre las tácticas de mayores perspectivas está el control biológico. En este sentido, las especies del género Trichoderma frente a los hongos fitopatógenos han sido las de mejores resultados (5, 6, 7), porque la acción bio-reguladora de Trichoderma está asociada a varios mecanismos de acción como: competencia por espacio y/o nutrientes, micoparasitismo y antibiosis, entre otros (8, 9, 10). Precisamente, para lograr éxito en el control biológico con estos microorganismos, es necesario llevar a cabo la selección de los aislamien- tos del antagonista basados en estos mecanismos (11). El objetivo del presente trabajo fue determinar los modos de acción de aislamientos de Trichoderma spp. frente a D. bryoniae. MATERIALESYMÉTODOS Evaluación de la actividad antagónica in vitro de Trichoderma spp. frente a D. bryoniae Se evaluaron los modos de acción (competencia por espacio, micoparasitismo y antibiosis) de los ais- lamientos de Trichoderma frente a D. bryoniae, utili- zando el método de cultivo dual descrito por Martínez y Solano (12). Se emplearon tres aislamientos de Trichoderma asperellum Samuels (denominados Ta. 12, Ta. 79 y Ta. 85, respectivamente) (13) y otro de Trichoderma sp. (T.81), pertenecientes todos al cepario del Labora- torio de Micología Vegetal del Centro Nacional de Sa- nidad Agropecuaria (CENSA) y la cepa A-34 de Trichoderma harzianum (Th. A-34) procedente del la- boratorio de Sanidad Vegetal de la Isla de la Juventud. El aislamiento de D. bryoniae se obtuvo de plantas enfermas de sandía [Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum and Nakai]. Los hongos se mantuvieron en medio Papa Dextro- sa Agar (PDA) (Oxoid) e incubados antes del experi- mento a una temperatura de 28±2°C por 72 horas (Trichoderma) y 25±2°C por 10 días (patógeno). El en- sayo de enfrentamiento dual se realizó en placas Petri de 90 mm de diámetro contentivas de medio PDA (Oxoid). Se incluyó un testigo del patógeno sin el con- trolador biológico. Todos los hongos en los tratamien- tos se incubaron (25±2o C), para garantizar que el anta- gonista muestre su acción en la condición favorable para el desarrollo del patógeno. - Competencia por espacio El ensayo se montó y evaluó según lo descrito por Reyes et al. (5). Se emplearon seis tratamientos con cuatro repeticiones (placas), en un diseño completa- mente aleatorizado. Las evaluaciones se realizaron hasta las 120 horas. La clasificación como antagonis- ta de los aislamientos se realizó según la escala de Bell et al. (14). - Micoparasitismo Para evaluar el micoparasitismo (enrollamiento, penetración, vacuolización y lisis), se tomaron tres muestras de la zona de interacción de ambos hongos por cada réplica (placa Petri, cuatro en total) y se colo- caron en portaobjetos sobre una gota de lactofenol. La observación se realizó al microscopio óptico binocular modelo Novel a aumentos de 250 y 400x. Se evaluaron 15 muestras por tratamiento (aislados de Trichoderma). - Antibiosis — Metabolitos no volátiles Para evaluar el efecto de metabolitos no volátiles de los aislados de Trichoderma se sembró, sobre pa- pel celofán estéril, que cubría el medio de cultivo (PDA Oxoid) vertido en placas Petri de 90 mm de ø, un disco de cinco mm de cada aislamiento del hongo control biológico. A las 72 horas se retiró el papel celofán con la colonia del antagonista y en su lugar se sembró centralmente un disco de cinco mm del patógeno (15). — Metabolitos volátiles Los metabolitos volátiles se evaluaron sembrando centralmente los aislamientos del antagonista y del patógeno en una misma placa Petri de 90 mm de ø, en la tapa de la placa el fitopatógeno y en la base de la misma, el antagonista. Las placas fueron selladas con vitafilm, se incluyó un testigo del patógeno sin el antagonista. Tanto para los metabolitos volátiles como no voláti- les, las placas se incubaron a temperatura de 25±2°C y oscuridad. Se midió el diámetro de las colonias del patógeno con una regla graduada. Para los ensayos se empleó un diseño completa- mente aleatorizado con cuatro réplicas. Las evaluacio- nes se realizaron cada 24 horas hasta las 120 horas. Los datos se transformaron mediante la expresión arcos √p+1, y fueron sometidos a un análisis de varianza de clasificación simple y las medias comparadas se- gún la Dócima de Rangos Múltiples de Duncan (16). Para el procesamiento se empleó el paquete estadísti- co Stat Graph 3.1. Para la selección de los aislados promisorios in vitro se tomó como criterio el porcentaje de inhibición del crecimiento radial del hongo patógeno, la presen- cia al menos de dos modos de interacción hifal con el
  • 3. Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013) 194 patógeno y su ubicación en las clases 1 ó 2 de la escala de Bell et al. (14). RESULTADOSYDISCUSIÓN Competencia por espacio Los aislamientos de Trichoderma evaluados (Ta. 12, Ta. 79, Ta. 85 y T. 81) se ubicaron en la clase uno de la escala de Bell et al. (14), con excepción del Th. A-34 (Fig. 1). Todos mostraron un elevado efecto antagóni- co, con la detención del crecimiento de D. bryoniae al entrar en contacto con el antagonista. Todos los aislamientos de Trichoderma presentaron efecto inhibitorio superior al 50% a partir de las 72 horas (Tabla 1). Desde las 96h se observó crecimiento de los aislamientos de Trichoderma sobre la colonia del pató- geno, aunque esta acción se apreció antes (entre las 72 y 96h) para los aislados T. 81 y Ta. 85. El crecimien- A B C D E F 24h 96h 120h FIGURA 1. Competencia por el sustrato de Trichoderma y D. bryoniae en diferentes momentos evaluativos por la técnica de cultivo dual./ Competition for the substrate of Trichoderma and D. bryoniae in dual culture at different evaluation times. (A.- Ta.12, B.- Ta. 79, C.- Trichoderma sp. T.81, D.- Ta. 85, E.- Th. A-34, F.- D. bryoniae).
  • 4. Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013) 195 to sobre el patógeno se hizo casi total a las 120 horas, excepto para la cepa Th.A-34, que detuvo el crecimien- to del patógeno formando un halo alrededor del mismo sin llegar a colonizarlo completamente (Fig. 1).Al pare- cer, el patógeno excreta metabolitos al medio que pue- den detener el avance de esta cepa del antagonista, y no le permite sobrecrecer la colonia de este, aspecto que debe ser objeto de investigaciones futuras. En la evaluación a las 120h los aislamientos Ta. 85 y T. 81 mostraron los mayores porcentajes de inhibi- ción del patógeno. Los resultados sugieren que estos presentan mayor velocidad de crecimiento a partir de las 72h, por posibles metabolitos desprendidos por el patógeno, que actúan como atrayentes. Estos resultados coinciden de forma general con los obtenidos por Nofal et al. (17), quienes informaron la inhibición del crecimiento de D. bryoniae provocada por aislamientos de diferentes especies de Trichoderma; no obstante, no llegaron a una evalución completa del antagonismo. A pesar de que existe abundante infor- mación acerca de que las especies de Trichoderma se comportan como antagonistas de varios hongos fitopatógenos (8, 14), en la práctica es necesario reali- zarunaselecciónexhaustivadelagentecontroladorfren- te a cada patógeno diana, antes de ser empleado en campo. Establecer in vitro los modos de acción presen- tes en los aislamientos del biorregulador, constituye la base de la selección de estos, no solo para las pruebas siguientes en condiciones semicontroladas y campo, sino que orientan la forma de producción que debe esta- blecerse para lograr mayor estabilidad y eficacia en los resultados en campo. Micoparasitismo En la Tabla 2 se muestran los resultados de las observaciones microscópicas que reflejan las interacciones de los aislamientos de Trichoderma con D. bryoniae. Como se observa los mejores aislamien- tos fueron Th. A-34 y Ta.85 con tres tipos de interacción hifal. Por su parte, en la Figura 2 se muestra el para- sitismo de Th. A-34 en hifas del patógeno, fenómeno similar a lo observado con los otros aislamientos del antagonista que se evaluaron. TABLA 2. Tipos de interacción hifal entre los aislados de Trichoderma y D. bryoniae./ Types of hyphal interaction between Trichoderma isolates and D. bryoniae. Aislamientos de Trichoderma Tipos de interacción hifal Ta. 12 L-V Ta. 79 L-V T. 81 E Ta. 85 E-V-P Th. A-34 E-V-P Leyenda: (E) Enrollamiento, (P) Penetración, (V) Vacuolización y (L) Lisis. TABLA 1. Inhibición del crecimiento radial de D. bryoniae en cultivo dual con Trichoderma spp./ Radial growth inhibition of D. bryoniae by Trichoderma spp. in dual culture. Medias con letras diferentes en la columna difieren significativamente (p< 0,05) 1 Datos originales 2 Datos transformados Porcentaje de inhibición del crecimiento radial (%) 72 horas 96 horas 120 horasAislamientos de Trichoderma X Orig1 . X Transf2 . X Orig. X Transf. X Orig. X Transf. Ta. 85 58,54 2,74 ab 72,64 2,84 ab 83,76 2,91 a T. 81 60,98 2,76 ab 74,53 2,86 a 81,20 2,90 ab Th. (A-34) 62,20 2,72 a 68,87 2,82 b 75,21 2,86 c Ta. 79 54,88 2,71 b 69,81 2,82 b 77,78 2,88 bc Ta. 12 58,54 2,74 ab 59,43 2,74 b 67,52 2,81 c ESx 0,06 0,08 0,08 Las enzimas, ß-1,3-glucanasas, ß-1,6-glucanasas, quitinasas y proteasas producidas por aislamientos de Trichoderma son capaces de hidrolizar la pared celular de numerosos hongos (18,19,20), esto podría explicar la causa, por lo que el aislamiento Ta. 85 exhiba estos resultados, ya que se demostró previamente que po- see actividades ß-1,3-glucanasas y quitinasas (21). El uso de microorganismos productores de quitinasas y/o glucanasas para el control de hongos fitopatógenos pertenecientes a la claseAscomycetes, se considera una acción promisoria, pues su pared celular está constituida principalmente por microfibrillas
  • 5. Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013) 196 de quitina y ß-glucanos, sensibles al ataque de estas enzimas (22,23). Antibiosis Todos los aislamientos de Trichoderma evaluados inhibieron el crecimiento del patógeno desde las 72h, pero se destacaron en ese momento evaluativo losais- lamientos Th. A-34, Ta.79 y Ta.85, no obstante, a las 96h, el aislamiento T. 81 no presentó diferencias con los mencionados (Tabla 3). Los metabolitos volátiles producidos por estos ais- lamientos fueron los que produjeron los mayores por- centajes de inhibición del crecimiento radial, con cam- bios en la coloración de la colonia del patógeno (Fig. 3). Este efecto pudiera deberse, a que los metabolitos liberados por los aislamientos presentaron acción fungistática sobre el patógeno en el interior de la placa Petri, lo que provocó la inhibición del crecimiento del mismo. Esto, en principio, corrobora lo observado por KücüK y Kivan (24), quienes obtuvieron una disminu- ción significativa del crecimiento micelial de Gaeumannomyces graminis (Sacc.)Arx & Olivier var. tritici J. Walker, por efecto de los metabolitos volátiles de T. harzianum. Losmetabolitos no volátiles de todos los aislamien- tos inhibieron el crecimiento del patógeno en ambos momentos evaluativos. A las 72h, se destacaron los aislamientos Th. A-34, Ta. 79 y T. 81 (Tabla 4); sin embargo, a las96h, solo Th.A-34 y T. 81 provocaron la mayor inhibición del crecimiento del patógeno, aunque T. 81 no tuvo diferencias significativas con el resto. Al parecer los metabolitos del Ta.79 no fueron tan efecti- vos o el patógeno logró adaptarse a ellos, por lo que este aspecto se debe seguir investigando. FIGURA 2. Hifa de D. bryoniae parasitada por Th. A-34./ Hyphae of D. bryoniae parasitized by Th. A-34. TABLA 3. Efecto de los metabolitos volátiles de Trichoderma sobre el crecimiento de D. bryoniae./ Effect of Trichoderma volatile metabolites on D. bryoniae growth. Medias con letras diferentes en la columna difieren significativamente (p< 0,05) Inhibición del crecimiento radial (%) 72 horas 96 horasAislamientos de Trichoderma X Orig. X Transf. X Orig. X Transf. Th. A-34 30,63 2,42 a 32,11 2,44a Ta. 79 23,75 2,30 ab 28,06 2,38a Ta. 85 21,88 2,26 ab 23,77 2,29ab T. 81 19,38 2,18 bc 22,57 2,25ab Ta. 12 14,38 2,06 c 17,05 2,13b ESx 0,038 0,037 Ta. 12 T. 81 Ta.85 Th. (A-34) Ta. 79 Testigo FIGURA 3. Inhibición del crecimiento de D. bryoniae por efectode los metabolitos volátiles de los aislamientos Ta. 12, T. 81, Ta. 85, Th. A-34, Ta. 79, a las 96 horas./ Growth inhibition of D. bryoniae by the volatile metabolites from strains Ta. 12, T. 81, Ta. 85, Th. A-34, Ta. 79, at 96 hours.
  • 6. Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013) 197 El efecto inhibitorio de Trichoderma sobre otros hongos antes del contacto hifal se ha explicado con la excreción de metabolitos al medio con efectos fungistáticos, algunos de los cuales inhiben los microorganismos con los que no hacen contacto físi- co, y estos pudieran ser considerados como sustan- cias similares a antibióticos (12). Los resultados obte- nidos se corresponden con los de Simon y Sivasithamparam (25) y Schirmbock et al. (26), quie- nes informaron que Trichoderma puede incorporar al medio de cultivo metabolitos con efecto inhibitorio so- bre hongos. Estos autores determinaron la presencia de trichodermin, trichodermol, harzianum A y harzianolide, en dichos metabolitos, aspecto que se seguirá investigando como continuación del presente trabajo. Los hallazgos obtenidos en este estudio corrobo- ran los que informaron Reyes et al. (5) y Martínez et al. (11), quienesdemostraron la disminución del crecimien- to de hongosfitopatógenospor el efecto de metabolitos no volátiles segregados por Trichoderma al medio de cultivo. Los resultadosobtenidosrevelan que se cuenta con dos aislamientos de Trichoderma (Th. A-34 de T. harzianum y Ta. 85 de T. asperellum) con perspectivas como futuros candidatos para constituir ingredientes activos de bioplaguicidas; no obstante, se requiere de estudios en campo donde se determine el momento óptimo de aplicación, la dosificación, la compatibilidad con agroquímicos y otros agentes biológicos, que ase- veren la eficacia de estascepas bajo esas condiciones. Estos constituyen los primeros resultados para Cuba relativos a la búsqueda de agentesde control biológico para el manejo de la gomosis en las cucurbitáceas. REFERENCIAS 1. Santos GR, Café-Filho AC, Leao FF, Cesar M, Fernadez LE. Progresso do crestamento gomoso e perdas na cultura da melancia. Horticultura Brasileira. 2005;23:230-234. 2. Docampos DM, Gracia O, Nome SF. Enfermedades de Cucurbita moschata (Lam.) Poiret (anco, andaí, calabaza). EnAtlas Fitopatológico argentino. 3 (2). Eds: Nome, S.F.; Docampo, D.M.; Conci, L.R. 2010. Córdoba, Argentina. URL. [Consultada 25 noviembre 2010]. Disponible en http:// w w w . f i t o p a t o a t l a s . o r g . a r / default.asp?hospedante=702. 3. Santos GR, Cafe´-FilhoAC, Saboya LMF. Controle químico do crestamento gomoso do caule em melancia.Fitopatologia Brasileira. 2005;30:155-163. 4. Keinath AP, DuBose VB. Evaluation of triazoles and other fungicides for control of gummy stem blight on watermelon, 2008. Plant Disease Management Reports. 2009;3:34. 5. Reyes Y, Martínez B, Infante D. Evaluación de la actividad antagónica de trece aislamientos de Trichoderma spp. sobre Rhizoctonia sp. Protección Vegetal. 2008;23(2):112-117. 6. Villegas M. Trichoderma. Características generales y su potencial biológico en la agricultura sostenible. 2008. [Consultado 5 de mayo de 2010]. Disponible en http://www.oriusbiotecnologia.com/portal/ content/view/12/7/. TABLA 4. Efecto de los metabolitos no volátiles de Trichoderma sobre el crecimiento de D. bryoniae./ Effect of the non-volatile metabolites from Trichoderma on D. bryoniae growth. Medias con letras diferentes en la columna difieren significativamente (p< 0,05) Inhibición del crecimiento radial (%) 72 horas 96 horasAislamientos de Trichoderma X Orig. X Transf. X Orig. X Transf. Th. A-34 23,03 2,29a 27,48 2,37a Ta.79 17,58 2,16ab 19,04 2,17b T. 81 15,76 2,11ab 20,7 2,23ab Ta.85 12,73 2,00bc 15,66 2,09b Ta.12 9,70 1,87c 14,23 2,07b ESx 0,040 0,034
  • 7. Rev. Protección Veg. Vol. 28 No. 3 (2013) 198 7. Páez O. Uso agrícola de Trichoderma. [Consultada 10 de enero de 2010]. Disponible en http:// www.soil-fertility.com/trichoderma/espagnol/ index.shtml 2008. 8. Harman GE. Overview of mechanisms and uses of Trichoderma spp. Phytopathology. 2006;96(2):190-194. 9. Hoyos-Carvajal L, Chaparro P, Abramsky M, Chet I, Orduz S. Evaluación de aislamientos de Trichoderma spp. contra Rhizoctonia solani y Sclerotium rolfsii bajo condiciones in vitro y de invernadero. Revista Agronomía Colombiana. 2008,26(3):451-458. 10.Infante D, Martínez BC, González N, Reyes Y. Mecanismos de acción de Trichoderma frente a hongos fitopatógenos. Rev Protección Vegetal. 2009;24(1):14-21. 11.Martínez B, ReyesY, Infante D, González E, Baños H, Cruz A. Selección de aislamientos de Trichoderma spp. candidatos a biofungicidas para el control de Rhizoctonia sp. en arroz. Rev Protección Veg. 2008;23 (2):118-125. 12.Martínez B, Solano T. Antagonismo de Trichoderma spp. frente a Alternaria solani (Ellisy Martin) Jones y Grout. Rev. Protección Vegetal.1995;10(3):221-225. 13.Martínez B, Infante D, Reyes Y. About the identification of some Trichoderma isolates reported in Revista de Protección Vegetal. Rev Protección Veg. 2010;25(2):135. 14.Bell DK, Wells HD, Markam CR. In vitro antagonism of Trichoderma spp. against six fungal pathogens. Phytopathology. 1982;72:379-382. 15.Infante D, Martínez B, Peteira B, Reyes Y, Herrera A. Molecular identification of thirteen isolates of Trichoderma spp. and evaluation of their pathogenicity towards Rhizoctonia solani Kühn. BiotecnologíaAplicada. 2013;30:23-28. 16.Lerch G. La experimentación Agrícola en las Ciencias Biológicas y Agrícolas. Editorial Científico- Técnico. La Habana, Cuba. 1977: 452p. 17.Nofal MA, El-Naggar MAA, Ismail BR. Biological control of gummy stem blight (Mycosphaerella melonis L. Passerini) on cantaloupe plants under protected cultivations. ISHS Acta Horticulturae. 1999;(434). 18.Woo L, Scala F, Ruocco M, Lorito M.The molecular biology of the interactions between Trichoderma spp., phytopathogenic fungi, and plants. Phytopathology. 2006;96:181-185. 19.Lorito M, Woo L, Laccarino M, Scala F. Microrganismi antagonisti. En: Laccarino, M. (Ed.) Microrganismi Benefici per le Piante. Idelson- Gnocchi s.r.l. Napoli, Italia. 2006:146-175. 20.Woo L, Lorito M. Exploiting the interactions between fungal antagonists, pathogens and the plant for control. En: Vurro M., Gressel J. (Eds.) Novel Biotechnologies for Control Agent Enhancement and Management. Springer Press, Amsterdam. Netherlands. 2007:107-130. 21.González I, Infante D, Martínez B, Arias Y, González N, Miranda I, Peteira B. Induction of chitinases and glucanases in Trichoderma spp. strainsintendedforbiologicalcontrol.Biotecnología Aplicada. 2012;29:12-16. 22.Limon MC, Chacón MR, Mejías R, Delgado-Jarana J, Rincón AM, Codón AC, Benítez T. Increased antifungal and chitinase specific activities of Trichoderma harzianum CECT 2413 by addition ofacellulosebindingdomain.MicrobiolBiotechnol. 2004;64:675-685. 23.Sahai AS, Manocha MS. Chitinases of fungi and plants:theirinvolvementinmorphogenesisandhost- parasiteinteraction.Microbiol.1993;11(4):317-338. 24.KücüK C, Kivan M. In Vitro antifungal activity of strains of Trichoderma harzianum. Turk J Biol. 2004;28:111-115. 25.Simon C, Sivasithamparam M. Interactions among, Trichoderma koningii and soil bacteria. Can J Microbiol. 1988;34:871-876. 26.Schirmbock M, Lorito M, Wang YL. Parallel formation and synergism of hydrolytic enzymes and peptaibol antibiotics, molecular mechanisms involved in the antagonistic action of Trichoderma harzianum against phytopathogenic fungi. Appl Environ Microbiol. 1994;60:4344-4370. Recibido: 23-10-2012. Aceptado: 25-4-2013.