Reproduccion en equinos

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Reproduccion en equinos

  1. 1. Reproducción en Equinos Michael Ojeda La Serena, Julio 2011
  2. 2. Generalidades • Poliestrica estacional de dias largos • Gestacion 11 meses. • Monogástricos • Riñones de distinta forma • El macho posee glándulas anexas como Vesícula seminal, próstata y bulbo uretrales. • Ciego de gran tamaño • Testículos se presentan de forma horizontal • Hembra no presenta ligamento intercornual
  3. 3. Hembra • Ovarios El ovario tiene un extremo tubario (extremistas tubaria) que se relaciona con el inicio de las trompas uterinas (tuba uterina). • Trompas uterinas • Oviducto ( infundíbulo, zona ampular, itsmo ) • Útero ( cuernos, cuerpo, cuello o cervix,) • Vagina • Vestíbulo vaginal • Vulva
  4. 4. Macho • Órganos primarios : • testículos (testosterona) • Epidídimo , conducto deferente • Glándulas anexas (vesicula seminal , prostata) • Órgano de copula (pene)
  5. 5. Fisiología del ciclo estral de la yegua • La actividad sexual empieza con la pubertad ocurre aproximadamente a los 18 meses (1 1/2 años). • La madurez sexual ocurre hacia los 3 años de edad cuando las yeguas pueden ser introducidas al servicio. • El ciclo estral es el periodo de tiempo que transcurre entre dos ovulaciones. Tiene una duración de 19-22 días en yeguas y de alrededor de 25 días en ponies. • La etapa de receptividad (estro) es de 3-7 días mientras que la etapa no receptiva (diestro) tiene una duración de 14-15 días. La duración tanto del ciclo estral como del estro es muy variable entre yeguas pero tiende a ser constante dentro de la misma yegua.
  6. 6. Etapas del Ciclo de la Yegua (día 0; inicio del Estro)
  7. 7. Estro Altos niveles de estrógeno (E2) causan incremento LH (↑E2 → ↑LH) Estrógeno de Folículos Graff estimulan aumento en GnRH que estimula aumento en LH Incremento LH causa ovulación GnRH aumenta para lograr un gran aumento en LH (liberación súbita) La ovulación ocurre durante el estro en yeguas. Incremento LH inicia formación CL Luego de la ovulación - LH estimula el desarrollo de células luteales a partir de células granulosas y tecales de la pared del folículo ovulado. Células teca y granulosa se luteinizan por estimulación de LH para diferenciarse a células luteales.
  8. 8. Etapas del Ciclo de la Yegua (día 0; día de la ovulación)
  9. 9. Diestro • Desarrollo del Cuerpo Lúteo (persistencia). • Llega a madurez al día 12 del ciclo estral. • Altos niveles de progesterona (P4) inhiben el desarrollo folicular final, la ovulación y el estro. • Se inhibe la maduración final de folículos y el estro. • Retroalimentación negativa sobre GnRH. • El embrión continua su desarrollo en el útero. • Si hay embrión señala al útero su presencia – no hay regresión CL. • Si NO hay embrión – el útero libera PGF2a para lograr la regresión del CL (se reduce el P4 en la sangre y el (los) folículo (s) Graaf comienza su desarrollo final que ocurre en pro-estro para la ovulación en el estro).
  10. 10. Resumen ciclo yegua CL CL (regresión) Pico LH Oleada FSH LH
  11. 11. Fotoperiodo
  12. 12. Fotoperiodo • Regula ciclo de las yeguas. • Mayor actividad ovulatoria en días largos (primavera-verano). • Manipulación: acelerar la época del ciclo mediante utilización de luz artificial. • Por 8 a 10 semanas, desde las 4:30 pm a las 11:00 pm. • También existe una forma de manipulación de la luz de manera gradual.
  13. 13. Etapa reproductiva Primavera – Verano ↑ Horas luz ↓ Melatonina ↑ GnRH Varios folículos Folículo dominante – Expulsión – Ovocito - Fosa ovulatoria Etapa anovulatoria Otoño – Invierno ↑ Oscuridad - ↑ Melatonina - ↓ GnRH Transición de otoño ↓ Horas luz ↑ Melatonina ↓ GnRH Transición de primavera Septiembre-octubre ↑ FSH - Folículos - Desarrollo ↑ Lento LH
  14. 14. Manejo de luz
  15. 15. Manejo reproductivo
  16. 16. PUBERTAD Primera ovulación La edad reproductiva va desde los 3 a los 15-16 años (25). Mejor edad para cubrir a la yegua es a los 3 años (parto a los 4) No se compromete su desarrollo corporal 1 y 1.5 años de edad
  17. 17. Clasificación de la conducta receptiva de la yegua: a) Muy receptiva (celo fuerte). b) Receptiva (celo moderado). c) Poco receptiva (celo débil). d) Flemática. e) Pasivamente resistente. f) Medianamente resistente. g) Activamente resistente. Manifestaciones externas de celo: Manifestaciones externas del no celo: a) Busca al semental a) Orejas hacia atrás. b) Adopta posición característica. b) Aprieta o revolea la cola. c) Levanta la cola. c) Patea. d) Relampaguea el clítoris. d) Relincha. e) Orina. e) Muerde. f) Se deja montar. f) No se deja montar.
  18. 18. Características de la yegua en Estro y en Diestro ORGANO ESTRO DIESTRO OVARIO Folículo al tacto Sin folículo UTERO Laxo al tacto Tenso al tacto CERVIX Abierto y rojo Laxo al tacto Cerrado y pálido Tenso al tacto VAGINA Húmeda y congestionada Moco fluido filamentoso Pálida y seca Moco como cera VULVA Tumefacta Normal Existen dos métodos por medio de los cuales puede determinarse el estado sexual exacto de la yegua: 1. La observación del comportamiento de la yegua. 2. Examen veterinario de los órganos reproductores con el fin de determinar el momento apropiado durante el ciclo estral
  19. 19. Detección de Celo Receptiva al cemental Separa las Extremidades Posteriores Levanta la Cola Orina de Forma Intermitente Líquido Amarillento de la Vagina y Vulva. olor (feromonas) Excitación Macho Separa labios vulvares Engrosan - Dilatan Músculos vulva (diámetro) Parpadeo de los labios vulvares Dejan ver clítoris (auto- estimulación y visual macho) Relampagueo clítoris
  20. 20. Manejo – estimular signos celo Prueba ó Recela Cemental detrás de una valla cerca del establo Cada mañana las yeguas se conducen hacia la valla presentándolas frente al recela El objeto de la recela es la excitación de la yegua para obligarla a manifestar los síntomas propios de su estado sexual, esto es, el comportamiento de la fase de estro o de diestro. El semental se acerca a la yegua y con sus sentidos de vista y olfato capta que está en celo, en caso contrario, suele dejarla sola
  21. 21. Examen reproductivo de yeguas Se clasifican generalmente en: a) Palpación(rectal) de los ovarios y del útero b) Examen del cérvix y vagina incluyendo técnicas bacteriológicas y citológicas. c) Examen con ultrasonidos (escáner). d) Análisis hormonales. El propósito del examen ginecológico es: a) Confirmar los signos observados de comportamiento sexual (EDG) b) Conocer el desarrollo folicular y el momento de ovulación (optimo) c) Detectar infecciones u otras causas patológicas de infertilidad para que puedan ser tratadas.
  22. 22. Palpación Rectal Etapa del ciclo Cuello Útero Ovarios ESTRO Relajado-Edematoso Edematoso-Flácido Folículos ˃ 25mm DIESTRO Firme –Estrecho Tono aumentado- Tubular Múltiples Folículos pequeños o uno ˃ 25 mm ANESTRO Moderadamente firme o fino y abierto Flácido Sin estructuras palpables TRANSICION Sin cerrarse Firmemente hasta la primera ovulación Flácido Múltiples folículos pueden ser ˃ 30 mm A veces es difícil diferenciar entre folículos y quistes (cavidad hueca conteniendo líquido) que pueden encontrarse en la membrana que soporta el ovario. Además, no puede distinguirse entre un folículo destinado a sufrir degeneración y uno hemorrágico (distendido por un líquido sanguinolento) En ambos casos puede diagnosticarse por palpación como folículo verdadero (esto es, destinado a ovular). Interpretación
  23. 23. • Mira a la hembra en celo de manera insistente. • Relincha constantemente • Levanta las orejas • Trata de mostrar mayor volumen corporal doblando su cuello. • Abre los ojos de manera excesiva • Dilata los ollares • Marcha elegantemente delante de la hembra • Se acerca de frente a la yegua • Olfatea los ollares, las orejas, el cuello, las axilas y el bajo vientre de la yegua • Lame los miembros posteriores de la yegua • Lame y olfatea la zona genital de la yegua, luego estira el cuello y levanta el labio superior mostrando sus dientes (reflejo de Flehmen). • Golpea a la yegua con el pecho para cambiarla de posición • Mordisquea con suavidad la crin y se frota contra ella. • La erección del caballo aumenta cuanto más guiña la vulva la yegua. • El semental se excita aún más cuando la hembra aparta la cola y deja el paso libre, ya que esto significa que la sumisión es total, eliminando completamente el temor al rechazo. Conductas Reproductivas del Macho
  24. 24. La conducta de flehmen: el caballo levanta el labio superior, al igual que la cabeza; esto le permite captar las feromonas, por medio de un órgano ubicado en la parte superior de la mucosa oral (órgano vomero- nasal) y que conduce señales químicas iniciadas por las feromonas hasta el cerebro con el fin de estimular la conducta sexual. Celo del Potro: Estro post-parto que suele ocurrir de 5 a 15 días después de este, y que puede llegar a durar 45 días como máx., el cual puede haber sido precedido por una ovulación silenciosa. Este celo es solamente percibido por el macho. El apareamiento en el estro post-parto puede causar un numero mayor de abortos, distocias, mortinatos y retención placentaria. Esto puede deberse a la introducción de bacterias en el útero antes que este haya involucionado por completo, y mientras aun carece de contractilidad.
  25. 25. Alteraciones reproductivas en yeguas Quistes ovárico • Quiste folicular : - Varios en ambos ovarios. - Por falta de LH y exceso de FSH • Quiste luteal: - Insuficiencia de LH. - Único en un ovario. • Cuerpo lúteo retenido - CL no involucionado
  26. 26. Hiperplasia endometrial quística • Por cuerpo lúteo persistente  [P4] • Embriones sin implantación • Por estímulo prolongado de la progesterona o estrógenos
  27. 27. • Brucelosis equina (mal de cruz) • presentación subclínica. • Procesos fistulosos, bursitis (de la nuca, cuello y cruz), tendinitis y artritis crónica deformante. • Brucella abortus y eritritol. • Pocos casos de aborto en yegua. • Metritis contagiosa equina • Taylorella equigenitalis. • Esterilidad temporal Endometritis, cervicitis, y vaginitis • nada de abortos • No hay registros en chile
  28. 28. Alteraciones reproductivas en potros • Incapacidad de erección  ruptura de la túnica albugínea. • Disminución de libido  exantema coital equino  herpesvirus tipo 3. • Lesiones  dolor  falla en la penetración. • Masturbación  estrés.
  29. 29. Alteraciones espermáticas. Teratospermia alteración de las del 85% en la morfología de los espermatozoides • Oligozoospermia baja concentración de espermatozoides. • Azoospermia  falta de producción de espermatozoides • Hemospermia  sangre en el semen
  30. 30. INSEMINACIÓN ARTIFICIAL DE LA YEGUA La calidad del semen: tasas de preñez ♂ 1. monta directa 2. semen refrigerado 3. semen congelado (refrigerado o congelado: es importante conocer los tipos de empaques utilizados para transportar semen)
  31. 31. Procedimiento de Inseminación Artificial Inseminación con Semen fresco: • inmovilizarse (protección inseminador) • lavar área alrededor de la vulva (evitar infecciones) • Se utiliza una manga de palpación, lubricada, se inserta en la vagina y el dedo índice se inserta en el cuello uterino. El catéter de inseminación se guía fácilmente hacia el útero, donde se depositan de 20 a 50 ml de semen crudo o diluido. • Semen fresco; 500 millones de espermatozoides móviles con la inseminación. Inseminación con Semen Refrigerado: (4-60C) por 24-48h. (0% y 70% variación efectividad según manejo, experiencia)
  32. 32. • Se pueden utilizar agonistas de la GnRH/LH, deben imitar el prolongado pico de LH (natural). • Solo moléculas de larga vida son efectivas en inducir la ovulación. • Gonadotropina Coriónica Humana (hCG): IV, IM, SC • La Deslorelina: implante (generalmente no se retira) “la ovulación ocurre en ambos casos en 36-48 hrs, en un 80-90% de los casos. siempre y cuando el pico endógeno de LH no haya ocurrido antes de la inyección o el implante”. • Examen 48 horas post inseminación (determinar la ovulación) • Otras: • Inseminación con Semen Congelado. • IA Intracornual Profunda (IAIP): (<cantidad). • Transferencia de Embriones. • Monitoreo Ecográfico: Las donantes se evalúan cada 24 horas o cada 6 horas mediante examen ecográfico.
  33. 33. Examen con Ultrasonografía Cuerpo luteo de 7 días post ovulación Determinación grado de estrogenización
  34. 34. •FORMULA: Acetato de lecirelin................. 25mcg Excipiente, c.b.p. 1 ml. análogo de la hormona GnRH. Sus características le permiten ser mucho más eficaz que la hormona natural para estimular la liberación de LH y para óptima secreción de FSH. evita el retraso de la ovulación estimulando mejor sincronía en el proceso de fertilización y con ello mejora el índice de fertilidad. Generalmente es suficiente una dosis para propiciar la regresión de los quistes foliculares y con ello obtener la regularización del ciclo estral. Medicamentos Dalmalerin:
  35. 35. Dosis • Yeguas: Inducción de la ovulación 4 ml repetir en caso necesario después de 24-48 hrs Persistencia del calor prolongado 4 ml repetir en caso necesario después de 2 semanas Ausencia de ciclo estral 2 ml dos veces (a intervalo de 24 hrs.) Incrementar el índice de concepción 2 ml repetir en caso necesario después de 10- 12 días
  36. 36. Lutalyse:Lutalyse: • COMPOSICION ( prostaglandina) Dinoprost, trometamina:………..5 mg. Excipientes c.s.p.:……………....9,45 mg. • ACCION Luteolítico y uterotónico. • Control de la presentación del celo en yeguas cíclicas, • para el tratamiento de yeguas infértiles, vírgenes • lactancia que no exhiban estro en la estación reproductiva, a pesar de poseer un cuerpo lúteo funcional • como abortivo dentro de los 35 días de gestación.
  37. 37. Dosificación • Vacas y yeguas: 25 mg (5 ml) para las indicaciones anteriores, a excepción de inducción de aborto e inducción de parto, donde la dosis efectiva es de 25 y 35 mg (5-7 ml).
  38. 38. Bioestrogen: • Fórmula: Benzoato de estradiol...............1 mg • Indicaciones: • Sincronización del celo • Tratamiento de afecciones toco-ginecológicas como abortos, • para expulsar material purulento en casos de metritis y piométras. • retención placentaria, cuerpos lúteos persistentes, • tratamiento de pseudopreñez en caninos. Dosis: Equinos: 2 a 10 ml
  39. 39. Bibliografía 1. Garrido A., Fisiología, Inseminación y Uso de la Biotecnología en Reproducción Equina, Córdoba, Argentina, 2009, 62pp. 2. E.S.E. Hafez y B. Hafez, Reproducción e Inseminación Animal, Cap 4; Ciclos reproductivos, Pág., 56-68. 3. Ramírez M. y José A., “Determinación del fotoperiodo sobre la actividad ovárica en yeguas durante el año, En diferentes haras, en los departamentos de Guatemala, Sacatepequez y Escuintla”,Universidad de San Carlos de Guatemala, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Escuela de Medicina Veterinaria, Guatemala,2006. Pág. 36-45. 4. El Manual de Merck de Veterinaria, Quinta Edición, edit. Océano. Barcelona, España 2000. Pág.163-165. 5. Cecilia Fuenzalida, Médico Veterinario, Entrevista “útero, ovario y oviducto”, 10-17.06.2011, Anatomía Patológica, Medicina Veterinaria.
  40. 40. • Gracias por su atención, y exito este semestre.

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