2. CUALIDADES DE UN BUEN EYACULADO
Ausencia de organismos contagiosos
Alta calidad
Adecuada durabilidad o resistencia al
almacenamiento
Buena fertilidad
Alto valor genético
Motilidad progresiva 60-70%
Células espermáticas anormales < 20%
Número total de espermatozoides en el eyaculado 29-48 x
109
Durabilidad (resistencia al almacenaje) < 60% de motilidad
progresiva después de 48 horas de almacenado
3. VIRUS ENCONTRADOS EN EL
SEMEN PORCINO
PESTE PORCINA AFRICANA
PSEUDORABIA (AUJESZKY)
PESTE PORCINA CLÁSICA
PARVOVIRUS PORCINO
VIRUS DEL PRRS
CYTOMEGALOVIRUS
ADENOVIRUS
ENTEROVIRUS
AFTOSA
ENCEFALITIS JAPONESA
REOVIRUS
ENFERMEDAD VESICULAR PORCINA
VIRUS DEL PAPILOMA GENITAL
10. INSEMINACION
ARTIFICIAL
VENTAJAS GENETICAS:
- Mayor difusión genética de los sementales de
calidad en un periodo de tiempo corto
- Lotes homogéneos, más uniformidad en los
cerdos para sacrificio y la producción de canales
con mejores características.
- Aumento en el número de concepciones por
macho. La proporción de verracos/cerdas
reproductoras es de 1/75-100 comparado con la
monta natural 1/17-20.
11. VENTAJAS GENETICAS
Un reproductor logra producir más
lechones/año y más kilos de carne cerdo
al año.
Facilita la práctica de cruzamientos
interraciales para la producción de
híbridos comerciales.
Aumenta la cantidad de hembras servidas
por un reproductor y es más rápida la
transmisión de características deseadas
12. VENTAJAS SANITARIAS
Reduce el riesgo de transmitir
enfermedades a través del semen,
siempre y cuando este provenga de
granjas con un buen estado sanitario.
Ayuda a detener los traumatismos y la
propagación de enfermedades de tipo
reproductivo.
Nos permite establecer programas de
bioseguridad en el manejo del semen.
13. VENTAJAS ECONOMICAS
Menor costo por mantenimiento del
reproductor.
Se puede tener más control de la calidad
del semen que se está trabajando.
Menor número de machos y mayor
aprovechamiento de los mismos.
Manejo de machos de diferente peso.
Esto nos permite el manejo de las cerdas
sin importar el peso y la edad.
Ayuda a controlar la sobreutilización del
macho.
14. DESVENTAJAS DE LA
INSEMINACION ARTIFICIAL
- Posibilidades de errores humanos
- Exposición del semen a factores
ambientales, sin la debida protección.
- Requiere de una adecuada detección del
celo, para establecer el momento óptimo
de la inseminación.
- Elevados costos para el montaje de
laboratorio en explotaciones pequeñas
15.
16.
17.
18.
19.
20.
21. ENTRENAMIENTO MACHOS
PERSONAL CAPACITADO
INTALACIONES ADECUADAS
RECONOCIMIENTO DE LAS
INSTALACIONES POR EL MACHO
EDAD Y DESARROLLO ADECUADOS
PRIMEROS INGRESOS DE EXPLORACION
EVITAR LOS RUIDOS FUERTES
NO PEGARLE AL MACHO
MUCHA PACIENCIA
SITIO ATEMPERADO MANIQUI CON OLOR
22. MANEJO REPRODUCTIVO DE
MACHOS
Manejo individual
Pubertad
Edad
Nutrición
Entrenamiento
Luminosidad
Espacios (corrales)
Evaluación del
comportamiento
sexual
26. Reason Number of boars
Breeding strategy
Genetic value
Hereditary defect
Leg problems
36 (12%)
18
1
17
Sperm production
Quality
Quantity
Libido/ejaculation
189 (61%)
145
27
17
Other
Leg problems
Illness
Death
Aggressiveness
Other
84 (27%)
20
13
20
6
25
REASONS FOR REPLACING BOARS AT AN AI STATION
27. PROCESO DE RECOLECCION
PREPARACION DEL MATERIAL DE RECOLECCION
(TERMOS, FILTROS, VASOS)
PREPARACION DEL MACHO (EVACUACION PREPUCIAL,
RETIRO DE RESIDUOS, CONDUCCION A LA SALA)
ASEPSIA DEL OPERARIO DE RECOLECION
SECADO DEL PREPUCIO
MONTA DEL MACHO AL MANIQUI
ERECCION Y RECOLECCION
SEPARACION DE LAS FRACCIONES
OBSERVACION DEL SEMEN (OLOR, COLOR,
IMPUREZAS)
TRANSPORTE AL LABORATORIO
37. EVALUACION MICROSCOPICA
1. MOTILIDAD
Atemperar todo el equipo (cubre y
portaobjetos, platina microscopio)
Colocar gota de evaluación pequeña
Poner en objetivo de 40 ò 100x
Porcentaje de espermatozoides en
movimiento
Registrar en hoja de vida macho
38. CALIFICACIÓN
MOTILIDAD
CARACTERÍSTICAS
0 A 20% Muy pocos espermatozoides presentan movimiento
progresivo, gran cantidad sin movimiento.
20 A 40% Una pequeña proporción de espermatozoides tiene
movimiento progresivo, el movimiento es oscilatorio.
40 A 60% Una buena proporción tiene movimiento pero de tipo
circular o fijo.
60 A 80% La mayoría de los espermatozoides tienen
movimiento progresivo y vigoroso, pero un poco lento
a través del campo.
80 A 100% La mayoría de los espermatozoides muestran
movimiento progresivo y vigoroso.
39. 2. TIPO DE MOVIMIENTO
TIPO 0 Espermatozoides sin movimiento.
TIPO 1 Espermatozoides sin movimiento progresivo
girando sobre sí mismos.
TIPO 2 Espermatozoides con movimientos anormales y
algunos progresivos.
TIPO 3 Espermatozoides con movimientos progresivos
lentos y en zigzag.
TIPO 4 Espermatozoides con movimientos progresivo
rápidos.
TIPO 5 Espermatozoides con movimientos progresivo muy
rápidos.
40.
41. Motilitya
(%)
In vitro sperm
penetration rateb
(%)
Farrowing
ratec (%)
Number
born alive
94.7 89.5v (58) 86.9v (460) 10.6v
82.3 81.7v,w (55) 87.1v (330) 10.5v
76.1 84.3v,w (50) 84.5v (300) 10.5v
66.2 74.7w (44) 86.1v (264) 10.1v
52.4 55.5x (40) 72.4w (201) 9.2w
44.2 34.7y (28) 72.3w (168) 9.2w
32.6 21.3z (17) 51.7x (85) 7.8x
SEMD 4.8 5.8 0.3
Relationships among motility, sperm penetration rates,
farrowing rates and number of pigs born alive for boar semen
a Motility is expressed as the average number of motility spermatozoa within the following classes:>90; 80-89; 70-
79; 60-69; 50-59; 40-49; and 30-39.
b In vitro sperm penetration rate is defined as the percentage of eggs that that were fertilized. Numbers in
parentheses represent the number of ejaculates within a motility category.
c Numbers in parentheses represent the number of sows inseminated with semen within a motility category.
d Standard error of the mean.
v, w, x, y, z Means within the same column with different superscripts are significantly different (P < 0.05).
42. 3.PRESENCIA DE CUERPOS EXTRAÑOS
(AGLUTINACIONES)
POCA Menos de 2
aglutinaciones por
campo.
+
MEDIA Entre 3 y 5
aglutinaciones por
campo.
++
ABUNDANTE Más de 5
aglutinaciones por
campo.
+++
45. 4. CONTEO DE ESPERMATOZOIDES
Se ubica la cámara de conteo (burker)
Se pone el cubreobjetos
Se adiciona una gota pequeña que
ingresa por capilaridad (previamente
diluido en suero formolado)
Se cuentan los espermatozoides en el
interior de 40 cuadros
Se hace el calculo de dosis así:
52. A X V
Nº DE DOSIS = ------------
300
DONDE :
A = # De espermatozoides en 40 cuadros
V = volumen de fracción rica.
con una concentración de 3000 Millones de
espermatozoides por Dosis de 100 CC.
60. normal dañado perdiendo perdido
Integridad del acrosoma. El acrosoma es fundamental en la
fecundación, ya que contiene las enzimas necesarias par la
penetración en el óvulo. El análisis queda supeditado a
laboratorios especializados que dispongan de microscopio de
contraste de fases y personal cualificado que realice e
interprete este tipo de análisis. Los diferentes estados del
acrosoma son: normal, dañado, perdiendo y perdido.
61. ¿Son válidos estos espermatozoides…?
Espermatozoides porcinos teñidos
mediante combinación de SYBR/PI
(Garner)
Spz con membrana funcional (vivos)
aparecen verdes, teñidos con SYBR-14
Spz con la membrana dañada (muertos)
se muestran rojos.
Spz con marcajes intermedios se
consideran moribundos.
62. Acrosomas teñidos con PSA-FITC con
permeabilización de membrana
¿Son válidos estos espermatozoides…?
63. Espermatozoides viables con el acrosoma y la vaina
mitocondrial intactas. Los núcleos de espermatozoides
viables emiten una intensa fluorescencia azul (A)
Los acrosomas intactos y las vainas mitocondriales
intactas emiten fluorescencia verde débil y moderada
respectivamente (B). 40x.
Bisbenzimida/PI/SBTI Alexa Fluor/ Mitotracker Green
¿Son válidos estos espermatozoides…?
64.
65. Espermatozoide viable con el acrosoma intacto
(A) y la vaina mitocondrial intacta (MS). 40x.
MS
A
MS
A
Bisbenzimida/PI/SBTI Alexa Fluor/ Mitotracker Green
Espermatozoide viable con el acrosoma reaccionado
(A) y la vaina mitocondrial intacta (MS). 40x.
¿Son válidos estos espermatozoides…?
68. ALMACENAMIENTO
Después de haber sido evaluado
Envasar el semen ya diluido y evaluado en
las botellas, cuidando de no dejar aire en
su interior
Rotular las botellas a almacenar (fecha,
macho, hora)
Dejar bajo una toalla las botellas acostadas
durante 2 horas.
Almacenar en la nevera entre 15 y 16 º c
No sacar antes de 24 horas en lo posible
Voltear cada 12 horas.
70. CALENTAMIENTO DE DOSIS
Sacar las dosis y cubrir con una
toalla, dejar reposar 15 minutos
Introducir al baño Maria (37º c)
durante otros 15 minutos
Transportar en nevera a una
temperatura de 37º c
Transportar pocas dosis a la vez
evitando cambios bruscos de
temperatura
Proteger siempre de la luz
84. Recientemente se redujo la
dosis a 10 millones de
espermatozoides en cada
cuerno, aplicados
quirúrgicamente en la unión
útero tubárica (Krueger y
Rath, 2000)
85. TÉCNICA POST-CERVICAL
50 ML CON 1.5X109
ESPERMATOZOIDES 30 ML CON
1X109 ESPERMATOZOIDES
CÁNULA POST-CERVICAL SOFT
QUICK® (IMPORVET ,ESPAÑA)
DIÁMETRO EXTERNO DE 3.5 MM Y
LONGITUD DE 72 CM, CON DOS
ORIFICIOS EN SU CABEZA QUE
PERMITEN LA SALIDA DEL SEMEN
POR LA CÁNULA.
88. Mediante cateterización
transcervical con cateter
flexible es posible inseminar
con una dosis de 5 ml y una
concentración de 50
millones de esp. (Martinez
et al, 2001)
104. METAS DE AREA DE SERVICIOS
Entrega de machos y hembras con
capacidad de reproducción
Hembras de buen estado sanitario
Machos con buena producción de
semen (monta ) y excelente estado
sanitario y corporal
Reproductores de buen potencial
genético para transmisión a su
descendencia
105. Principales causas de mortalidad embrionaria:
Altas temperaturas ambientales
Mezcla de las cerdas después de la monta
Lesiones en el aparato locomotor/ otras lesiones
Marranas en jaula después de la monta
Problemas nutricionales
Dia 0 4 - 6 6 - 8 8 - 14 14 - 18
Mortalidad Embrionaria
108. CERDA CICLANDO
EL MECANISMO SE ESTABLECE A LOS
12-14 DÍAS DEL CICLO
SE INICIA LA LISIS PROPIAMENTE A
LOS 14-16 DÍAS DEL CICLO
LUTEOLISIS
Ludwig et al. (1998)
CERDA RECIEN PREÑADA
SE BLOQUEA 10-12 DÍAS DE INICIADA
LA GESTACIÓN
109. El desarrollo de un ambiente uterino que
soporte el crecimiento del conceptus es
crítico para el establecimiento de la
preñez, y requiere primordialmente que
la dominancia de la progesterona sobre
el útero no sea interrumpida por los
mecanismos luteolíticos que
normalmente ocurren durante el ciclo
estral, o sea, que el cuerpo lúteo
permanezca funcional; este fenómeno se
conoce con el nombre de reconocimiento
materno de la preñez (Cross y Roberts,
1989)
RECONOCIMIENTO
MATERNO DE LA PREÑEZ
110. Bajo Retorno al Celo
Baja Mort.
Embrionaria
Alta Fertilidad
Buena Condición
Corporal
Buen Peso de los
Lechones al
Nacimiento
METAS EN LA GESTACIÓN
111. MORTALIDAD PRENATAL
35 – 40% en el cerdo
20 a 30% durante los
primeros 30 d de gestación
10 a 20% entre 40 y 100 d
de gestación
Muchas pérdidas
embrionarias (75%) ocurren
durante la peri-
implantación, entre d 12 y
18 de gestación
(Webel and Dziuk, 1974; Pope, 1994; Anderson, 1993;
Ford, 1997;)
112. Mucha Energia
Menos Progesterona
Menos Proteinas Uterinas
Mayor mortalidad embrionaria
Cantidad de Mortalidad Progesterona
ración, kg/dia embrionaria,% en el Plasma,ng/ml
1,50 17,2 16,7
2,25 21,4 13,8
3,00 28,1 11,8
(Dyck et al, 1980)
Primeros 7 dias de Gestación
115. El blastocisto de 5 a 6 mm (d 11 de
gestación) empieza a producir 17-estradiol
(E2) trofoblástico (Wilson and Ford, 1997).
La producción E2 tiene un pico entre d 12 y d 15 de
gestación (Geisert et al., 1994b; Pusateri et al., 1990)
Como respuesta al E2 se producen cambios en el
útero (endocrinos, inmunológicos y vasculares),
determinantes para la viabilidad del conceptus
(Engelhardt et al., 1997; Frank et al., 1977; Keys and King,
1995; Pope et al., 1982)
116.
117.
118. La implantación comienza el día 12,
si el embrión muere antes la cerda
repetirá el celo cíclicamente (18-
23 días). El periodo embrionario
termina cuando se inicia la
osificación (día 35).
119.
120. Pasa de un cigote a animal maduro, a través
de procesos de hiperplasia e hipertrofia
celular, acompañados de diferenciación
celular, bajo la influencia de factores genéticos
y ambientales, regulados por procesos
enzimáticos y hormonales.
Cerdo 21 días de Gestación
121.
122.
123.
124. CAPACIDAD UTERINA
Maximo número
de fetos que la
cerda puede
soportar en su
útero en una
etapa específica
de la gestación
(Christenson et
al., 1987)
125. Pérdidas debidas a insuficiente capacidad
uterina ocurren principalmente entre los
30 días de gestación y el parto, con un
pico entre 50 y 70 días
(Fenton et al., 1970; Webel and Dziuk,
1974; Knight et al., 1977)
126. PLACENTA FUNCIONAL
Finalización de la unión del
trofoblasto al endometrio (d 19)
Final de la formación del
saco corioalantoideo (d 26)
La mortalidad embrionaria y las
características del embrión
porcino durante este período
podrían estar relacionados con
cambios morfológicos y
bioquímicos en el endometrio, de
manera similar a como han sido
asociados durante la peri-
implantación