Este documento proporciona información sobre la baciloscopia y el medio de Ogawa Kudoh para el diagnóstico de la tuberculosis. Explica qué es la tuberculosis, cómo se transmite, los síntomas y el tratamiento. Luego describe el procedimiento para la recolección de muestras de esputo, la preparación del laboratorio, el procedimiento de baciloscopia utilizando la tinción de Ziehl-Neelsen, y el uso del medio de Ogawa Kudoh. El objetivo es capacitar a promotores y líderes comunitarios para diagnosticar casos

1. bacteriología de
tuberculosis
baciloscopia y medio
de Ogawa Kudoh
autoras:
María Consuelo Garzón Torres
Claudia Llerena Polo
Dora Leticia Orjuela Gamboa
Graciela Mejía Restrepo
Micobacterias - RNL - Instituto Nacional de Salud
1

2. contenido
Introducción
I. Tuberculosis
¿Qué es la tuberculosis?
¿Quién puede tener tuberculosis?
¿Cómo se sabe que la persona tiene tuberculosis?
¿Qué se debe hacer cuándo se tiene tuberculosis?
¿Cómo se cura la tuberculosis?
II. Muestra para la baciloscopia
1. Frasco para recoger la muestra del esputo
2. Recolección de las muestras
3. Recibo de las muestras
4. Orden para el registro diario de Baciloscopia (Bk) y
medio de Ogawa Kudoh (Ok)
3
4
4
5
7
8
9
11
12
15
15
III. Baciloscopia
1. Lugar de trabajo
2. Elementos y reactivos
3. Lavado de portaobjetos o láminas
4. Preparación para realizar la baciloscopia
5. Procedimiento para el extendido
6. Coloración de Ziehl Neelsen (ZN)
7. Observación del extendido al microscopio
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18
20
21
27
32
40
IV. Medio de Ogawa Kudoh
1. Elementos y reactivos
2. Método del escobillón de Kudoh
3. Control al tratamiento de Tuberculosis
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50
53
56
Bibliografía
57
2

3. Introducción
Este manual esta dirigido a los promotores,
auxiliares y líderes comunitarios de pueblos
indígenas, como material de enseñanza y
consulta de la baciloscopia y uso del medio
Ogawa Kudoh para el diagnóstico de
tuberculosis del sintomático respiratorio.
Se elaboró por el Grupo de Micobacterias
- RNL Instituto Nacional de Salud, en
un lenguaje sencillo y con dibujos que
facilitan la comprensión. Se ha revisado
teniendo en cuenta la experiencia durante
las capacitaciones a promotores y líderes
comunitarios de diferentes pueblos indígenas
del país.
Tuberculosis
3

4. I. Tuberculosis
Qué es la tuberculosis?
Es una enfermedad contagiosa,
es decir que pasa fácilmente de una
persona a otra. Es causada por un
microbio llamado bacilo tuberculoso
o Mycobacterium tuberculosis y se
transmite a través de las goticas de
saliva, que las personas enfermas
eliminan al hablar, toser, reír,
estornudar y escupir.
Es importante encontrar las
personas enfermas de tuberculosis,
por medio de la baciloscopia y el
uso del medio Ogawa Kudoh en el
esputo, catarro, gargajo o flema, que
sale con la tos y es producido en los
pulmones y darles tratamiento para
curarlos.
Tuberculosis
4

5. Quién puede
tener tuberculosis
El sintomático respiratorio,
es la persona con tos y
expectoración por más de 15 días
o dos semanas.
Los enfermos de tuberculosis
botan estos microbios al aire, las
personas que están a su alrededor
respiran esos microbios y entran
a los pulmones por la nariz, lo
que produce la enfermedad
y la persona puede llegar a
morir cuando no toman todo el
tratamiento.
Tuberculosis
5

6. Esta enfermedad ataca principalmente los pulmones y
también a otras partes del cuerpo
Tuberculosis
6

7. ¿Cómo se sabe que la persona
tiene tuberculosis?
Por medio de la baciloscopia, que consiste en examinar la muestra de esputo,
catarro, gargajo o flema a través del microscopio, observando los microbios
teñidos de color rojo.
Tuberculosis
7

8. ¿Qué se debe hacer cuándo
se tiene tuberculosis
El enfermo de tuberculosis,
debe cubrirse la boca y la nariz al
toser o estornudar para que no
salgan los microbios al aire y no
se transmita a otras personas.
Tuberculosis
8

9. Cómo se cura la tuberculosis?
Cuando a las personas enfermas se les da
tratamiento rápidamente con varias medicinas, en
la cantidad necesaria durante seis meses, se curan
porque los microbios mueren y se previene que
se transmita a sus familiares y a la comunidad.
Tuberculosis
9

10. Es necesario que las personas
con tuberculosis reciban y tomen
todas las medicinas que se les han
recetado para curarse.
Cuando no se toman las
medicinas, los microbios no se
mueren y pueden hacerse resistentes
a las medicinas; esto quiere decir que
los microbios quedan vivos. En este
caso la persona continúa enferma y
no se cura.
Tuberculosis
10

11. II. Muestra para la baciloscopia
1. Frasco para recoger la muestra de esputo
• Frasco grande de boca ancha, para que
la persona sintomática respiratoria
escupa el esputo, gargajo, flema o
catarro, dentro del frasco.
• Que se pueda cerrar bien, para que
no se salga la muestra.
• Después de hacer la baciloscopia
y usar el medio de Ogawa Kudoh,
quemar los frascos.
JOSE PEREZ
2-Abril-2009
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JOSE PEREZ
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Muestra para la baciloscopia 11

12. 2. Recolección de las muestras
Entregue a la persona sintomática respiratoria, el frasco
para la recolección de la muestra de esputo gargajo, flema o
catarro, marcado con nombres, apellidos completos y fecha.
Muestra para la baciloscopia 12

13. Se deben tomar tres muestra de esputo, gargajo, flema o catarro, durante 3 días seguidos
recolectadas preferiblemente en el momento en que la persona se despierta debido a que los
esputos, gargajos, flemas o catarros se acumulan durante la noche, aumentando la posibilidad de
encontrar el microbio de la tuberculosis.
Muestra para la baciloscopia 13

14. JOSE PEREZ
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Siempre se debe indicar a la persona sintomática
respiratoria cómo recolectar la muestra:
• Dígale que tome aire por la nariz
profundamente, que lo retenga en los pulmones y
con un esfuerzo de tos, escupa dentro del frasco.
• Esto se debe hacer 3 veces sin untar la parte
externa del frasco,
• Coloque la tapa y cierre bien.
• Lave las manos y entregue el
frasco con la muestra al promotor.
Muestra para la baciloscopia
14

15. Cuando la persona sintomática respiratoria no pueda recoger las muestras del esputo los 3
días seguidos, debe recolectarlas así:
• En un día, a diferente hora, recoja las 3 muestras.
3. Recibo de las muestras
• Siempre se debe comprobar que el frasco contenga la muestra.
• Cuando se recibe muestra de saliva, se debe procesar y solicitar al paciente una nueva
muestra indicándole la forma correcta de tomarla.
4. Orden para el registro diario de Baciloscopia (Bk) y medio de Ogawa Kudoh (Ok)
• Dar un numero de acuerdo con el orden de llegada del sintomático respiratorio, escribir
la fecha en que se recibió la muestra, el nombre completo del paciente, si es mujer se escribe
su edad en años y si es hombre se escribe su edad en años, historia clínica,
resguardo y comunidad, institución prestadora de salud o municipio, afiliación,
entidad afiliadora y clase de muestra (esputo).
• Escriba en el frasco el número que sea igual al libro de registro diario de
baciloscopia y medio Ogawa Kudoh. (primera, segunda y tercera, según el caso).
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• Nunca marque sobre la tapa del frasco.
Muestra para la baciloscopia
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16. LIBRO DE REGISTRO DIARIO DE BACILOSCOPIA Y MEDIO OGAWA KUDOH
16

17. III. Baciloscopia
1. Lugar de trabajo
El lugar de trabajo debe tener buena ventilación y
que llegue el sol, para realizar la baciloscopia.
Baciloscopia 17

18. 2. Elementos y reactivos:
RECIPIENTE CON
BLANQUEADOR DE ROPA
REGISTRO DIARIO BACILOSCOPIA
Y MEDIO OGAWA KUDOH
SOPORTE PARA LAMINAS
ESFERO
LAPIZ DE CERA
LAMINAS PORTAOBJETOS
MUESTRAS
PAPEL SUAVE
BAJA LENGUAS EN MADERA
ACEITE DE INMERSION
PAPEL PERIODICO
CINTA DE ENMASCARAR
MECHERO
MICROSCOPIO
RECIPIENTE METALICO PARA QUEMAR
MATERIAL CONTAMINADO
Baciloscopia18

19. También debe tener:
• Alcohol industrial para el mechero.
• Papel suave para limpiar el microscopio y las láminas portaobjeto.
• Colorantes de Ziehl Neelsen:
• Fucsina.
• Alcohol- ácido al 3%.
• Azul de metileno.
Baciloscopia
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20. 3. Lavado de portaobjetos o láminas
• Coloque las láminas nuevas en agua jabonosa mínimo por 2 horas.
• Lave una a una por ambos lados con abundante agua.
2 Horas
• Una vez escurridas sumérjalas en alcohol durante mínimo 1 hora.
1 Hora
Baciloscopia 20

21. • Seque cada una de las láminas con
una tela absorbente limpia.
• Guárdelas en una caja o recipiente,
protegidas del polvo
Siempre se deben usar láminas nuevas
Baciloscopia 21

22. 4. Preparación para realizar la baciloscopia
• Antes de realizar el trabajo lávese las manos y en lo posible colóquese una bata.
Baciloscopia
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23. • Cubra la mesa con papel.
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• Coloque las muestras en el orden en que aparecen en el libro de registro diario de baciloscopia
y medio de Ogawa Kudoh.
• Realice en grupos de 6 muestras.
• Coloque el mechero, entre las muestras y usted.
Baciloscopia 24

25. • Como lo muestra el dibujo, haga una línea en la lámina, con lápiz de cera azul o negro, este
espacio se usa para marcar la lámina indicando primero el número de registro y luego el número
de la muestra (primera, segunda o tercera, según el caso). El resto de la lámina es para extender
la muestra.
Baciloscopia 25

26. • Revise que el frasco de la muestra
que se va a procesar y la lámina,
tengan el mismo número.
• Coloque el mechero en la mitad,
entre la muestra y usted, para
evitar que se contagie.
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• Divida el palo de madera o baja lenguas en dos.
Baciloscopia 26

27. 5. Procedimiento para el extendido
• Con un pedazo del palo de
madera o baja lenguas, coja
la partícula útil, que es el
moco de color verde, café o
amarillo y en algunos casos
tiene sangre.
Baciloscopia 27

28. • Coja la lámina por el lado que tiene el número.
• Con el palo de madera o baja lenguas extienda la partícula útil sobre la lámina de modo uniforme,
con movimiento de lado a lado, hasta lograr un extendido que cubra el resto de la lámina, sin
llegar hasta el borde de ella.
• Después de realizar el extendido de la
muestra, coloque el palo de madera
o baja lenguas en el recipiente que
contiene blanqueador de ropa.
Baciloscopia 28

29. • Cuando el extendido de la muestra sea
muy delgado, deje secar y realice otra
vez el extendido sobre la misma lámina.
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• Tape el frasco que contiene la muestra.
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Baciloscopia 29

30. • Deje secar el extendido a temperatura ambiente cerca del mechero. No acelere el secado pasando
las láminas sobre la llama, ésto daña el extendido y dificulta la observación al microscopio.
Baciloscopia 30

31. • Una vez secos los extendidos,
páselos rápidamente sobre
la llama del mechero tres
veces, con el extendido
hacia arriba con el fin de fijar
la muestra.
• Lávese las manos con agua y jabón.
Baciloscopia 31

32. 6. Coloración de Ziehl Neelsen (ZN)
La técnica de coloración que se usa en nuestro país es la de ZIEHL - NEELSEN.
Fundamento
Esta coloración busca teñir los microbios con el colorante de color rojo, ayudado con el calor que
proporciona el mechero, luego se decolora con el líquido incoloro y finalmente se agrega el colorante
azul, que tiñe todo lo diferente al bacilo tuberculoso. Al mirar en el microscopio los microbios se
observan de color rojo en un fondo azul.
Baciloscopia 32

33. La coloración se realiza en tres tiempos: coloración fucsina (rojo), decoloración alcohol-ácido
(incoloro) y coloración con azul de metileno (azul).
Antes de iniciar la coloración de ZN los colorantes se deben filtrar para eliminar grumos o
basurita que dificultan la lectura al microscopio.
Control de calidad de la coloración
Se usa cuando se realiza la coloración de ZN.
• Control positivo: láminas con bacilos ácido-alcohol resistentes (Vacuna BCG).
• Control negativo: lámina con bacilos ácido-alcohol sensibles.
• Los controles deben ser entregados por la IPS o el Laboratorio
de Salud Pública del departamento.
A. Coloración fucsina (rojo)
• Coloque las láminas sobre el soporte con
el extendido hacia arriba, separadas en orden
numérico.
Baciloscopia 33

34. FUC
SINA
FUC
SINA
• Cubra la totalidad de la lámina con fucsina de Ziehl Neelsen (rojo).
Baciloscopia 34

35. 10 Minutos
• Caliente las láminas por debajo
pasando la llama del mechero y
cuando se produzcan vapores,
empiece a contar 10 minutos. Retire
el mechero y o cuando los vapores
desaparezcan, caliente nuevamente,
haga esto cuantas veces sea necesario
hasta completar los 10 minutos.
• Evite que el colorante se hierva
o se seque, si ésto pasa agregue más
colorante y continúe produciendo los
vapores.
Baciloscopia 35

36. • Deje enfriar y lave cuidadosamente con agua limpia.
B. Decoloración alcohol
ácido (incoloro)
• Cubra el extendido, con
alcohol - ácido (líquido incoloro)
durante 1 minuto
ALCO
HOL
-ACID
O
ALCO
HOLACID
O
1 Minuto
Baciloscopia
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37. • Lave cuidadosamente con agua limpia.
• Si el extendido conserva el color rojo o rosado
vuelva a agregar alcohol-ácido por 1 minuto como lo hizo
anteriormente y lave nuevamente.
1 Minuto
C. Coloración con azul de metileno (azul)
• Cubra el extendido decolorado con azul de
metileno durante 2 minutos.
AZU
MET L DE
ILEN
O
AZU
MET L DE
ILEN
O
2 Minutos
Baciloscopia37

38. • Lave cuidadosamente con agua limpia.
• Limpie con papel suave la parte de
atrás de la lámina, es decir donde no está
el extendido, para retirar los residuos de
colorante que dificultan la lectura.
Baciloscopia 38

39. • Deje secar a temperatura ambiente protegidos de la luz directa del sol.
• Una vez secos los extendidos coloreados, revise la numeración.
aceite de
inmersion
Baciloscopia39

40. 7. Observación del extendido al microscopio
Con la técnica de coloración de ZN, el bacilo tuberculoso, se observa a través del microscópio
teñido de rojo en un fondo azul.
Baciloscopia 40

41. OCULAR
TUBO OCULAR
Microscopio
El microscopio es un instrumento
con lentes que aumentan el tamaño
de los microbios, que no se observan
a simple vista. Posee una lámpara
como fuente de luz, o un espejo que
se puede utilizar con la luz del sol.
El microscopio se usa para
observar y contar los microbios,
debe ser tratado con mucho
cuidado. Revíselo y límpielo antes y
después de usarlo, para que siempre
funcione bien.
BRAZO
TORNILLO
MACROMETRICO
TORNILLO
MICROMETRICO
OBJETIVO
INMERSION
PLATINA
DIAFRAGMA
CARRO
CONDENSADOR
BASE
Baciloscopia 41

42. Los oculares, objetivos y el condensador
(ver dibujo) deben limpiarse cuidadosamente
con un papel suave antes y después de usarlo,
especialmente el objetivo de inmersión, que
por ningún motivo debe quedar sucio, porque
el aceite se seca y lo daña.
Guarde el microscopio donde no haya
humedad, ni polvo para evitar que se dañe.
El microscopio no se debe desarmar. Nunca
quite ninguna de las partes porque se puede
dañar definitivamente. Este trabajo debe ser
realizado por personal especializado.
Baciloscopia 42

43. Lectura de las láminas en el microscopio
• Deje caer una gota de aceite de inmersión
sobre el extendido, evite que la punta del gotero
toque la lámina.
• Coloque la lámina en la platina
del microscopio, observe a través del
ocular con el objetivo 10X enfocando
con el tornillo macrométrico hasta
observar un fondo azul, luego cambie
al objetivo de inmersión 100X y
enfoque con el tornillo micrométrico,
los microbios se van a ver teñidos de
color rojo sobre un fondo azul.
Baciloscopia 43

44. • Primero se leen las láminas de los controles. Para leer una lámina mueva el carro (página 41)
para desplazar la lámina sobre la platina y al mismo tiempo usando el tornillo micrométrico realice
la búsqueda de bacilos ácido-alcohol resistentes de color rojo.
• Haga la búsqueda sobre toda la lámina de los microbios de color rojo.
• Para informar el resultado de la
lectura se debe tener en cuenta la cantidad
de microbios ácido alcohol resistentes
que se encontraron con el objetivo de
inmersión.
• Cuando termine de observar al
microscopio, limpie cuidadosamente
con papel suave el aceite de inmersión
de cada una de las láminas, sin dañar los
extendidos.
• Guardelas protegidas de la luz y el
polvo para enviarlas al Laboratorio de Salud
Pública, con el fin de realizar el Control
de Calidad que evalúa el extendido, la
coloración y la lectura.
Baciloscopia 44

45. Informe de resultados para escala semicuantitativa
(-)
(+)
No se observan bacilos o microbios ácido-alcohol resistentes,
en 100 campos microscópicos observados ó en diez minutos de
observación.
Menos de un bacilo o microbio ácido-alcohol resistente por
campo, en 100 campos microscópicos observados.
(++) Uno a diez bacilos o microbios ácido-alcohol resistentes por
campo, en 50 campos microscópicos observados.
(+++) Se observan más de 10 bacilos o microbios ácido-alcohol resistentes por campo, en 20 campos microscópicos observados.
Baciloscopia 45

46. Ejemplo 1: Baciloscopia en la cual no se
observan bacilos o microbios ácido-alcohol
resistentes en 100 campos microscópicos. El
resultado de esta baciloscopia es (-)
Ejemplo 2: Baciloscopia en la cual se observa menos
de un bacilo o microbio (muy pocos) ácido-alcohol
resistente por campo, en 100 campos microscópicos.
El resultado de esta baciloscopia es (+)
Baciloscopia 46

47. Ejemplo 3: Baciloscopia en la cual se
observan (algunos) de uno a diez bacilos
o microbios ácido-alcohol resistentes por
campo, en 50 campos microscópicos. El
resultado de esta baciloscopia es (++)
Ejemplo 4: Baciloscopia en la cual se observan más
de diez bacilos o microbios (muchos) ácido-alcohol
resistentes por campo, en 20 campos microscópicos.
El resultado de esta baciloscopia es (+++)
Baciloscopia 47

48. Escriba el resultado de la lectura de la baciloscopia correspondiente a cada persona en el
libro de registro diario de baciloscopia y medio de Ogawa Kudoh y en la hoja de informe de
resultados.
HOJA DE INFORME
FECHA:
1 DE MARZO DE 2009
NOMBRE: JOSE PEREZ
NUMERO: 1
EDAD: 25 ANOS
RESULTADO DE LA BACILOSCOPIA:
ACIDO-ALCOHOL RESISTENTES
(+) BACILOS
NOMBRE DEL PROMOTOR: JUAN RUIZ
Baciloscopia 48

49. IV. Medio de Ogawa Kudoh (OK)
Para el diagnóstico de tuberculosis en un sintomático respiratorio, además de la baciloscopia se
usa el medio Ogawa Kudoh que permite encontrar los microbios de tuberculosis en una muestra
de esputo, gargajo, flema o catarro.
El medio de Ogawa Kudoh permite encontrar más pacientes de los que se pueden hallar por
Baciloscopia.
El medio de Ogawa Kudoh se guarda en un sitio
limpio donde no le llegue el sol ni los insectos.
Baciloscopia 49

50. Uso medio de Ogawa Kudoh
• Cubra la mesa de trabajo con papel.
• Coloque las muestras en el orden en que aparecen en el registro diario de baciloscopia y medio
de Ogawa Kudoh.
1. Elementos y reactivos
MEDIO DE OK
HIDROXIDO DE SODIO
NaOH 4% ESTERIL
ESCOBILLONES ESTERILES
CINTA DE ENMASCARAR
Baciloscopia 50

51. Marque la parte posterior de los tubos
de medio de OK con la cinta, escribiendo
el nombre del paciente, clase de muestra
con el número del registro que se le asignó
al paciente en el registro de baciloscopia y
medio OK y la fecha de siembra. Recuerde
que para cada muestra se utilizan dos
tubos de medio OK.
Medio Ogawa Kudoh / Nombre paciente /
Número / de orden / Fecha de siembra /
Clase de muestra
A2
LUIS MES 8 DE 2009
2
FEBRERO
TO
ESPU
El medio de OK se conserva bien
tapado, cuando se destapa sin necesidad,
entran microorganismos del ambiente y
crecen impidiendo su uso para los casos
de tuberculosis. Solo se debe destapar
cuando se va a usar el medio de OK.
Medio de Ogawa Kudoh 51

52. LUIS MESA
28-FEB.-2009
2-3
LUIS MESA GISTRO ORDEN 2
E
ESPUTO R 8 DE 2009
O2
FEBRER
LUIS MESA GISTRO ORDEN 2
E
ESPUTO R 8 DE 2009
O2
FEBRER
• Tome el frasco de la muestra que se va a procesar y
compruebe que los 2 tubos de medio de OK, estén
marcados correctamente.
• Coloque el mechero en la mitad, entre el frasco de la
muestra y usted.
Medio de Ogawa Kudoh 52

53. 2. Método del escobillón de Kudoh
Este método se realiza con hidróxido de sodio (NaOH) 4% para descontaminar la muestra,
es decir, eliminar otros microbios que crecen más rápido y no dejan crecer los microbios que
producen la tuberculosis e impiden su desarrollo.
• Moje la totalidad del algodón de un escobillón estéril con la partícula útil de la muestra. (que es
el moco de color verde, café o amarillo y en algunos casos tiene sangre).
LUIS MESA . ORDEN 2
o
ESPUTO N 8 DE 2009
EBRERO 2
F
LUIS MESA . ORDEN 2
o
ESPUTO N 8 DE 2009
2
FEBRERO
Medio de Ogawa Kudoh 53

54. • Meta el escobillón, en un tubo que contenga 3 ml de NaOH al 4%,
deje en reposo durante 2 minutos.
LUIS MESA . ORDEN 2
ESPUTO No DE 2009
28
FEBRERO
LUIS MESA . ORDEN 2
ESPUTO No DE 2009
28
FEBRERO
LUIS MESA
28-FEB.-2006
1-1
2 Minutos
Medio de Ogawa Kudoh 54

55. • Meta en el tubo de medio de OK
el escobillón que ha sacado del
hidróxido de sodio, siembre con
movimientos de rotación y presión
sobre todo el medio.
• Use un escobillón para cada tubo del
medio de OK y el mismo hidróxido
de sodio por muestra.
• Realice la baciloscopia tomando la
partícula útil de la muestra como se
indicó anteriormente.
• Los medios de Ok sembrados se
tapan bien y se les coloca cinta de
enmascarar alrededor de la tapa, se
envuelven uno a uno con papel, se
colocan en un recipiente o caja que
evite que se rompan y se envían al
laboratorio para incubarlos. Además
se debe relacionar la información de
los medios y pacientes que envía.
2
DEN
A
MES o. OR 2009
LUIS UTO N 28 DE
ESP RERO
FEB
Medio de Ogawa Kudoh 55

56. CONTROL AL TRATAMIENTO DE TUBERCULOSIS
MEDIO OGAWA KUDOH-BACILOSCOPIA DE ESPUTO.
Segundo mes
Cuarto mes
Sexto mes
LUIS MESA . orden 2
LUNo
ESPUTO ISMESA 2009
ESPU 28 DE
FEBRERO TO No. ord
en 2
FEBRERO
28 DE 20
09
Después de colocar la muestra de
esputo, catarro, gargajo o flema
en los tubos de medio OK, se
mandan a la Institución Prestadora
de Salud Indígena IPSI.
Medio de Ogawa Kudoh 56

57. Bibliografía
1.
Garzón MC, Llerena C, Orjuela DL, Victoria J. Tuberculosis. Técnicas y procedimientos. Subdirección de Epidemiología
y LNR. Instituto Nacional de Salud. Bogotá, Colombia. 2004.
2. Garzón MC, Naranjo ON, Sierra CR, Llerena C, Orjuela DL. Bacteriología del Mycobacterium tuberculosis y
Micobacterias no Tuberculosas. Manual de procedimientos. Subdirección de Epidemiología y LNR. Instituto Nacional
de Salud. Bogotá, Colombia. 2001.
3. Grupo de Tuberculosis. OMS; OPS. Manual de bacteriología de la Tuberculosis. Técnicas y procedimientos básicos.
Instituto Nacional para Programas Especiales de Salud. Laboratorio Nacional de Salud “Samper Martínez”. Colombia.
1973
4. Asencios L, Quispe N, Sanabria H. Manual de normas y procedimientos en bacteriología de Tuberculosis. Red Nacional
de Laboratorios de Salud. Ministerio de Salud, Instituto Nacional de Salud. Centro Nacional de Laboratorios de Salud
Pública. Serie de normas técnicas No. 10 Lima (Perú) mayo 1995.
5. Blancarte L, Latini O, Laszlo A, Valenzuela P Manual de normas y procedimientos técnicos para la bacteriología de la
.
Tuberculosis. Parte I La muestra. El examen microscópico. Centro Panamericano de Zoonosis. OPS. Nota técnica No.
26. Martínez (Argentina) 1988.
6. Amaro R. Su niño con Tuberculosis. Un manual para los padres. Servicios de Neumología Pediatría. University of Texas
Health Center at Tyler, Texas EEUU.1995.
7. Orozco LC. El cultivo de esputo para el diagnóstico de tuberculosis pulmonar. Biomédica 1985; 5(24).
8. Orozco LC, Quintero O, Ulloa I, Giraldo E. Tuberculosis. Manual de procedimientos. 3era ed. Bogotá (Colombia),
Instituto Nacional de Salud; 1990.
9. Dirección General de Salud. Ministerio de Salud, Normas técnicas y Guías de atención. Resolución 00412 febrero 25
de 2000. Guías de Atención de la Tuberculosis pulmonar y extrapulmonar 27 (1-44).
10. Sito Web consultado http://media,payson.tulane.edu
11. Munz M, Bergstrom K. Guía para supervisores comunitarios del tratamiento de la tuberculosis. Stop TB. Organización
Mundial de la Salud, 2004, Ginebra, Suiza.
Bibliografía
57

58. Este material se realizó con el apoyo de la Organizacion Panamericana
de la Salud y la Agencia Canadiense para el Desarrollo Internacional.
Segunda Edición
Bogotá D.C. Colombia, Marzo de 2009
58